Name: investigation of the electrophysiological and thermographic safety parameters of surgical energy devices during thyroid and parathyroid surgery in a porcine model
Uploaded: 2022-10-13T13:00:00
Duration: 11 min 46 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Investigation of the Electrophysiological and Thermographic Safety Parameters of Surgical Energy Devices During Thyroid and Parathyroid Surgery in a Porcine M

Diese Studie wurde durch Zuschüsse des Kaohsiung Medical University Hospital, der Kaohsiung Medical University (KMUH109-9M44), des Kaohsiung Municipal Siaogang Hospital/Kaohsiung Medical University Research Center (KMHK-DK(C)110009, I-109-04, H-109-05, I-108-02) und des Ministeriums für Wissenschaft und Technologie (MOST 109-2628-B-037-014, MOST 110-2314-B-037-104-MY2, MOST 110-2314-B-037-120), Taiwan, unterstützt.

Die Tierversuche wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Kaohsiung Medical University, Taiwan, genehmigt (Protokoll-Nr.: IACUC-110082).
1. Tiervorbereitung und Anästhesie
<ol><li>Bedingungen für die Selektion der Schweine: Ausgewählte Duroc-Landrace-Schweine im Alter von 3 bis 4 Monaten und einem Gewicht von 18 bis 30 kg.</li>
	<li>Vorbereitung vor dem Versuch: Die Schweine 8 h ohne Futter und 2 h ohne Wasser vor der Narkose fasten.</li>
	<li>Anästhesieeinleitung: 30 Minuten vor der Operation 2 mg/kg Tiletamin/Zolazepam intramuskulär verabreichen HINWEIS: Neuromuskuläre Blocker wurden während der Anästhesieeinleitung nicht verwendet.</li>
	<li>Auswahl des Endotrachealtubus: Verwenden Sie einen handelsüblichen 6,0-mm-Elektromyographie-Endotrachealtubus (EMG) (die Aufzeichnungselektroden) in der routinemäßig klinisch verwendeten Weise.</li>
	<li>Intubation: Lassen Sie den Anästhesisten die Ableitungselektroden mit Hilfe der direkten Laryngoskopie in Bauchlage intubieren. In dieser Studie wurde der Endotrachealtubus durch endtidales Kohlendioxid (etCO2)-Monitoring und Thoraxauskultation auf 24 cm fixiert, um die geeignete Tubusposition zu gewährleisten.</li>
	<li>Anästhesieerhaltung: Legen Sie das Schwein auf den Rücken, strecken Sie den Hals und fixieren Sie den Endotrachealtubus. Stellen Sie das Atemzugvolumen auf 8 bis 12 ml/kg und eine Atemfrequenz von 15 bis 20 Atemzügen pro Minute ein. Verwenden Sie 1 % bis 2 % Sevofluran zur Aufrechterhaltung der Vollnarkose. HINWEIS: Neuromuskuläre Blocker wurden während der Anästhesieerhaltung nicht verwendet.</li>
	<li>Während des Versuchs ist neben der kontinuierlichen Überwachung der Körperkerntemperatur des Tieres darauf zu achten, dass die Versuchstemperatur in einem angemessenen Bereich liegt. Wenn das Tier einen Abfall der Körpertemperatur erfährt, sollte sofortige thermische Unterstützung wie eine warme Decke bereitgestellt werden.</li>
</ol>2. Tierhaltung (Abbildung 1 und Abbildung 2)
<ol><li>Überprüfen Sie eine chirurgische Anästhesieebene.</li>
	<li>Hautschnitt: Machen Sie einen 15 cm langen queren Halsschnitt auf der Haut 1 cm über dem Brustbein (Abbildung 1A).</li>
	<li>Heben Sie den subplastysmatischen Lappen auf das Zungenbeinniveau an.</li>
	<li>Trennen Sie die Gurtmuskeln über den Mittellinienansatz und ziehen Sie sich seitlich zurück, um den Schilddrüsenknorpel, den Krikoidknorpel, die Trachealringe und die Schilddrüse sichtbar zu machen. HINWEIS: Die Ränder der Gurtmuskeln müssen für TG-Studien sorgfältig und ordentlich präpariert werden.</li>
	<li>Nach der Exposition werden die Muskeln sternocleidomastoideus (SCMs) beidseitig präpariert (Abbildung 1B). HINWEIS: Die Ränder der SCMs müssen für EP-Studien sorgfältig und sauber präpariert werden.</li>
	<li>Identifikation, Freilegung und Präparation entlang der rekurrenten Kehlkopfnerven (RLNs) und Vagusnerven (VNs) bilateral (Abbildung 2). HINWEIS: IONM kann bei diesem Schritt behilflich sein.</li>
	<li>Führen Sie die Experimente der EP- und TG-Studien nach Schritt 4 und Schritt 5 durch.</li>
	<li>Halten Sie die Ferkel nach Abschluss des gesamten Experiments unter 4%-6% Sevofluran und euthanasieren Sie sie auf humane Weise durch eine Überdosis Tiletamin/Zolazepam (6 mg/kg).</li>
</ol>3. Informationen und Einstellungen zu chirurgischen Energiegeräten (SEDs)
<ol><li>Einzelheiten zu SEDs finden Sie in der Materialtabelle. HINWEIS: In dieser Studie werden fortgeschrittene bipolare SEDs (als Gerät A bezeichnet) verwendet, um die EP- und TG-Studien zu demonstrieren.</li>
</ol>4. Elektrophysiologische (EP) Studie
<ol><li>Kontinuierliche IONM-Einstellung (Abbildung 3) Anmerkungen: Stellen Sie sicher, dass die Aufzeichnungselektroden wie in Schritt 1.5 beschrieben intubiert sind.<ol><li>Installieren Sie die Masseelektroden außerhalb der chirurgischen Schnittwunde.</li>
		<li>Installieren Sie die Stimulationselektroden: Installieren Sie eine 2,0-mm-APS-Elektrode (Automatic Periodic Stimulation) auf einer Seite des VN.</li>
		<li>Schließen Sie alle Elektroden an der Verbindungsbox an und überprüfen Sie, ob die Verbindungsbox mit dem Überwachungssystem verbunden ist (Nerve Integrity Monitoring System) und ob das Überwachungssystem eingeschaltet ist (Abbildung 3A).</li>
		<li>Vergewissern Sie sich, dass das Überwachungssystem anzeigt, dass die Elektroden korrekt angeschlossen sind.</li>
		<li>Wählen Sie die Seite Überwachung und klicken Sie auf Erweiterte Einstellungen.</li>
		<li>Klicken Sie auf APS, um die APS-Stimulation auf 1/min für langsame Rate, 1/s für schnelle Geschwindigkeit und Alarmgrenzen auf 50 % und 2000 μV für Amplituden und 10 % für Latenz einzustellen. Klicken Sie dann auf OK, um die Einstellungen abzuschließen. HINWEIS: Die Einstellung anderer Spalten hängt vom Experimentator ab.</li>
		<li>Klicken Sie in der Spalte Ereignisse auf Ereigniserfassung und legen Sie den Ereignisschwellenwert auf 100 μV fest. HINWEIS: Abbildung 3B zeigt die Protokollschritte 4.1.5-4.1.7.</li>
		<li>Suchen Sie die Vagus APS Stim-Spalte und stellen Sie den Stimulationsstrom auf 1,0 mA ein. Klicken Sie auf Baseline; Auf der rechten Seite des Bildschirms wird ein neues Fenster mit dem Titel "Einrichten der APS-Baseline" angezeigt.</li>
		<li>Geben Sie den Sitzungstitel und die Sitzungskommentare ein. Wählen Sie den zu testenden Kanal aus, und das System beginnt automatisch mit der 20-maligen Messung. Die Basisamplitude und die Latenz werden automatisch berechnet und angezeigt. Klicken Sie auf Akzeptieren , wenn die Baseline korrekt ist. HINWEIS: Abbildung 3C zeigt die Protokollschritte 4.1.8-4.1.9.</li>
		<li>Klicken Sie auf das Schnellvorlauf-Symbol in der Spalte Vagus APS Stim , um einen Test zu starten. Klicken Sie nach jedem EP-Experiment auf das Pulse-Symbol , um die Aufnahme zu stoppen.</li>
		<li>Wählen Sie die Seite Berichte aus, und legen Sie das Berichtsausgabeformat fest, um die Datei auf USB zu speichern. HINWEIS: Das Beispiel für einen C-IONM-Bericht ist in Abbildung 3D dargestellt.</li>
	</ol></li>
	<li>EP-Aktivierungsstudie (Abbildung 4)<ol><li>Entwickeln Sie experimentelle Richtlinien, bevor Sie mit einem Experiment beginnen. ANMERKUNG: Abbildung 4A zeigt ein gängiges Beispiel für ein EP-Aktivierungsstudienprotokoll, das entsprechend den SED-Merkmalen angepasst werden kann. Bei einigen Geräten mit Aktivierungszyklen ist die einzelne Aktivierungszeit ein einzelner Aktivierungszyklus, der meist zwischen 2 und 4 s liegt. Die meisten SEDs haben keinen Aktivierungszyklus, und die einzelne Aktivierungszeit beträgt 3 s.</li>
		<li>Aktivierungsabstandstests bei 5 mm:<ol><li>Tragen Sie die SED in einem Abstand von 5 mm zum RLN auf das Weichgewebe auf und aktivieren Sie die SED (Einzelaktivierung).</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal mit dem gleichen Aktivierungsabstand arbeiten, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf. Anmerkungen: Abbildung 4B zeigt den Aktivierungsabstandstest bei 5 mm.</li>
		</ol></li>
		<li>Aktivierungsabstandstests bei 2 mm:<ol><li>Tragen Sie die SED in 1 mm Abstand auf das Weichgewebe in der Nähe der RLN auf und aktivieren Sie die SED (Einzelaktivierung).</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal mit dem gleichen Aktivierungsabstand arbeiten, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf.</li>
		</ol></li>
		<li>Aktivierungsabstandstests bei 1 mm:<ol><li>Tragen Sie die SED in einem Abstand von 1 mm zum RLN auf das Weichgewebe auf und aktivieren Sie die SED (einmalige Aktivierung).</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal mit dem gleichen Aktivierungsabstand arbeiten, es sei denn, es tritt eine erhebliche Änderung der EMG-Amplitude auf</li>
		</ol></li>
		<li>Wenn während der Schritte 4.2.2-4.2.4 eine erhebliche Abnahme der EMG-Amplitude beobachtet wird, ist das RRN-Experiment zu stoppen. Zeichnen Sie das Echtzeit-EMG 20-60 Minuten lang kontinuierlich auf, um festzustellen, ob die Verletzung reversibel ist. (Abbildung 4C)</li>
		<li>Erfassen Sie die Versuchsergebnisse manuell als Tabelle (Tabelle 1).</li>
	</ol></li>
	<li>Studie zur EP-Kühlung (Abbildung 5)<ol><li>Entwickeln Sie experimentelle Richtlinien, bevor Sie mit einem Experiment beginnen. HINWEIS: Abbildung 5A zeigt ein gängiges Beispiel für ein EP-Kühlungsstudienprotokoll, das entsprechend den SED-Eigenschaften angepasst werden kann.</li>
		<li>Abkühlzeittests von 5 s:<ol><li>Wenden Sie die SED-Einzelaktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie den RLN nach 5 s des Wartens und Abkühlens mit der Spitze des SED.</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal zur gleichen Abkühlzeit betreiben, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf.</li>
		</ol></li>
		<li>Abkühlzeittests von 2 s:<ol><li>Wenden Sie die SED-Einzelaktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie den RLN nach 2 s des Wartens und Abkühlens mit der Spitze des SED.</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal zur gleichen Abkühlzeit betreiben, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf. HINWEIS: Abbildung 5B zeigt den Abkühlzeittest von 2 s.</li>
		</ol></li>
		<li>Fahren Sie sofort mit Muskelberührungsmanövern (MTM) fort:<ol><li>Wenden Sie die SED-Einzelaktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie schnell (ca. 1 s) die aktivierte Oberfläche des SED mit einer anderen Position des SCM (MTM, Abbildung 5C).</li>
			<li>Berühren Sie die RLN mit der Spitze des SED unmittelbar nach dem MTM und beobachten Sie die EMG-Veränderung. Dreimal zur gleichen Abkühlzeit betreiben, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf.</li>
		</ol></li>
		<li>Fahren Sie sofort ohne Muscle Touch Maneuver (MTM)-Tests fort:<ol><li>Wenden Sie die SED-Einzelaktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie den RLN sofort mit der Spitze des SED ohne MTM.</li>
			<li>Beobachten Sie die EMG-Veränderung. Betreiben Sie die gleiche Abkühlzeit dreimal, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf. Wenn eine erhebliche Abnahme der EMG-Amplitude beobachtet wird, befolgen Sie Schritt 4.3.6.</li>
		</ol></li>
		<li>Wenn eine erhebliche Abnahme der EMG-Amplitude beobachtet wird, ist das RRN-Experiment zu stoppen. Überwachen Sie dann die Echtzeit-EMG-Reaktion mindestens 20 Minuten lang, um festzustellen, ob die RRN-Verletzung reversibel ist oder nicht (Abbildung 5D).</li>
		<li>Erfassen Sie die Versuchsergebnisse manuell als Tabelle (Tabelle 2).</li>
	</ol></li>
</ol>5. Thermographische (TG) Studie
<ol><li>Richten Sie das Wärmebildsystem ein (Abbildung 6). HINWEIS: Wärmebildkamera mit Temperaturempfindlichkeit bis zu einem Temperaturbereich von -20 °C bis 650 °C. Das Bild wird jede Sekunde aktualisiert.<ol><li>Platzieren Sie die Kamera 50 cm vom Zielgewebe entfernt in einem Winkel von 60° zum Versuchstisch (Abbildung 6A). HINWEIS: Im Operationsfeld, gemessen mit einer Wärmebildkamera, wird die Temperatur entsprechend der Farbskala angezeigt. Der Ort mit der höchsten Temperatur auf dem Bildschirm wird mit einem "+"-Zeichen markiert und die entsprechende Temperatur angezeigt (Abbildung 6B)</li>
		<li>Wählen Sie den Videomodus und drücken Sie die Aufnahmetaste. HINWEIS: Die von der Wärmebildkamera überwachten Vorgänge werden kontinuierlich in Videoform aufgezeichnet.</li>
	</ol></li>
	<li>Führen Sie die Tiervorbereitung für die TG-Studie durch:<ol><li>Erfassen Sie die Hintergrundtemperatur des Experimentierfeldes mit der Wärmebildkamera. Die Hintergrundtemperatur sollte im Bereich von 25 ± 2 °C liegen (Abbildung 6C). Wenn die Hintergrundtemperatur diesen Bereich überschreitet, stellen Sie die Temperatur der Laborklimaanlage ein und testen Sie erneut.</li>
		<li>Standard-Gurtmuskeldicke für die SED-Aktivierung: Bereiten Sie die Gurtmuskulatur für die TG-Studie vor, wie in Schritt 2.3 beschrieben. Die Standard-Gurtmuskeldicke für die SED-Aktivierung beträgt 5 mm (Abbildung 6D).</li>
	</ol></li>
	<li>TG-Aktivierungsstudie (Abbildung 6 und Abbildung 7)<ol><li>Tests in trockener Umgebung: Wischen Sie die Oberfläche der Muskeln des Schweineriemens mit trockener Gaze ab.<ol><li>Tests der gesamten Klinge in einer trockenen Umgebung (Abbildung 7A):<ol><li>Fassen Sie den Gurtmuskel über die gesamte Länge der Klinge mit SED (Abbildung 6E).</li>
				<li>Maximale Aktivierungstemperatur auswerten: Nach einmaliger Aktivierung wird während der Messung die maximale Temperatur auf dem Bildschirm angezeigt (Abbildung 7B).</li>
				<li>Seitliche Wärmeausbreitung auswerten: Messen Sie den Durchmesser der 60 °C Isothermenlinie nach einmaliger Aktivierung.</li>
				<li>Rauch und Spritzer auswerten: Nach einer einmaligen Aktivierung, wenn die höchste Temperatur auf dem Bildschirm 60 °C überschreitet, zeichnen Sie Rauch und Spritzer auf dem Bildschirm auf. Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen. Anmerkungen: Die maximale Aktivierungstemperatur wurde nur mit Tests der gesamten Klinge in einer trockenen Umgebung bewertet.</li>
			</ol></li>
			<li>Ein Drittel (1/3) der Schaufeltests in einer trockenen Umgebung (Abbildung 7C):<ol><li>Fassen Sie den Gurtmuskel mit einer vorderen 1/3-langen Klinge unter Verwendung von SED (Abbildung 6F). Bewerten Sie die seitliche Wärmeausbreitung, den Rauch und die Spritzbildung (Abbildung 7D) wie in Schritt 5.3.1.1 beschrieben. Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen.</li>
			</ol></li>
		</ol></li>
		<li>Tests in nasser Umgebung: Die Muskeln des Schweineriemens kurz vor der SED-Aktivierung 3 s lang in sterilem Wasser einweichen.<ol><li>Tests der gesamten Klinge in einer feuchten Umgebung (Abbildung 7E): Fassen Sie den Gurtmuskel über die gesamte Länge der Klinge mit SED und bewerten Sie die seitliche Wärmeausbreitung (Abbildung 7F), Rauch und Spritzer wie in Schritt 5.3.1.1 beschrieben. Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen.</li>
			<li>Ein Drittel (1/3) der Tests in einer feuchten Umgebung (Abbildung 7G): Fassen Sie den Gurtmuskel mit einer vorderen 1/3-langen Klinge unter Verwendung von SED und bewerten Sie die seitliche Wärmeausbreitung, den Rauch (Abbildung 7H) und das Spritzen, wie in Schritt 5.3.1.1 beschrieben. Wiederholen Sie fünf Messungen an verschiedenen Stellen.</li>
		</ol></li>
		<li>Zeichnen Sie die Versuchsergebnisse manuell als Tabelle auf (Tabelle 3).</li>
	</ol></li>
	<li>TG-Kühlstudie (Abbildung 8)<ol><li>Trockene Umgebung: Wischen Sie die Oberfläche der Schweinebandmuskeln mit trockener Gaze ab, wie in Schritt 5.3.1 beschrieben. HINWEIS: In der TG-Kühlstudie wurden alle Aktivierungen in einer trockenen Umgebung mit Aktivierung der gesamten Schaufel durchgeführt.</li>
		<li>Minimale Abkühlzeit ohne MTM auswerten: Beginnen Sie nach einmaliger SED-Aktivierung mit der gesamten Klinge auf dem Gurtmuskel mit der Aufzeichnung der Abkühlzeit, bis die höchste Temperatur auf dem Bildschirm weniger als 60 °C betrug. Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen. HINWEIS: Wenn Sie die Abkühlzeit und -temperatur der SED-Klinge nach einmaliger Aktivierung und MTM messen, bedecken Sie den SED-aktivierten Muskelbereich und den MTM-berührenden Muskelbereich mit Gaze, da die hohe Temperatur in diesen Bereichen oben auf dem TG-Bildschirm erkannt wird und die tatsächlich zu messende Temperatur stört.</li>
		<li>Bewerten Sie die Klingentemperatur nach MTM: Nach einer einmaligen Aktivierung des SED mit der gesamten Klinge auf dem Gurtmuskel berühren Sie schnell (~1 s) die aktivierte Oberfläche des SED mit einer anderen Position des Gurtmuskels (Abbildung 8A). Notieren Sie dann die Temperatur unmittelbar nach dem Verlassen des SED aus dem Gurtmuskel bei geöffneter Klinge (Abbildung 8B).</li>
		<li>Bewerten Sie die minimale Abkühlzeit mit MTM: Wenn die Temperatur nach Schritt 5.4.3 mehr als 60 °C beträgt, beginnen Sie mit der Aufzeichnung der Abkühlzeit, bis die höchste Temperatur auf dem Bildschirm weniger als 60 °C beträgt. Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen.</li>
		<li>Erfassen Sie die Versuchsergebnisse manuell als Tabelle (Tabelle 4).</li>
	</ol></li>
</ol>6. Interpretationen von Daten
<ol><li>Präsentieren Sie die Sicherheitsparameter EP und TG in tabellarischer Form mit Rauch- und Spritzmarkierung. HINWEIS: Hier werden die EP- und TG-Sicherheitsparameter von SED in tabellarischer Form dargestellt und Rauch und Spritzwasser sind mit den Symbolen * bzw. # gekennzeichnet. In EP- und TG-Studien sind im Endergebnis die maximalen Daten aufgeführt (siehe Tabelle 5).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass die Untersuchung ohne kommerzielle oder finanzielle Beziehungen durchgeführt wurde, die als potenzieller Interessenkonflikt ausgelegt werden könnten.

Die Entwicklung von SEDs basiert auf der Erwartung von Schilddrüsenchirurgen, eine effektive Hämostase während einer Schilddrüsenoperation zu erreichen. Die hohe Temperatur, die durch SED erzeugt wird, ist jedoch ein Risikofaktor, der nicht ignoriert werden kann. Mit der zunehmenden Verbreitung von SED werden auch thermische Verletzungen der Nerven häufiger auftreten. Daher liegt es in der Verantwortung der Schilddrüsenchirurgen, die SED verwenden, zu verstehen, wie das Gerät sicher zu bedienen ist. Es ist jedoch nicht ratsam, Sicherheitsparameter wiederholt durch Versuch und Irrtum beim Menschen zu überprüfen. Damit ist der Wert von Tierversuchen aufgezeigt. Darüber hinaus ist ein standardisierter Prozess notwendig, um die möglichen thermischen Auswirkungen der SEDs15,17 zu qualifizieren und zu quantifizieren, um Schilddrüsenchirurgen maximal Richtlinien für die sichere Durchführung von Operationen an die Hand zu geben.
In dieser Studie erfordern mehrere Schritte mehr Aufmerksamkeit. In den EP-Studien konnten neuromuskuläre Blockadewirkstoffe die EMG-Signale während des neuronalen Monitorings stören und wurden während der Anästhesieeinleitung und -erhaltung nicht eingesetzt. In den TG-Studien sollten andere Wärmequellen als die SED-Tests entfernt werden. Wenn die Wärmequellen nicht entfernt werden können (z. B. der Aktivierungsbereich für die Kühlstudie oder die Muskelstrapazierfähigkeit nach MTM), ist es notwendig, die nicht getesteten Wärmequellen mit Gaze zu blockieren. In den TG-Studien sollte bestätigt werden, dass die Temperatur der SEDs vor der Aktivierung innerhalb der Hintergrundreferenztemperatur (25 ± 2 °C) liegt, andernfalls sollte eine Kühlmaßnahme ergriffen werden, und die Schaufel sollte vor Beginn des Experiments als trocken eingestuft werden.
Mehrere frühere Studien haben zur Definition der Sicherheitsparameter EP 15,37,38,39,40,41,42,43 und TG31,32 für verschiedene SEDs in Aktivierungs- und Kühlungsstudien in verschiedenen schweineschilddrüsenchirurgischen Modellen beigetragen. Das aktuelle Protokoll integriert nicht nur die Erfahrungen der Vergangenheit, sondern optimiert und standardisiert den Prozess weiter. In der EP-Studie kam es nach der Aktivierung von SED ohne sicheren kritischen Abstand oder sichere Abkühlzeit zu einer irreversiblen und schnellen Verletzung. In der TG-Studie beobachteten wir das 60 °C isotherme Feld und die Entstehung von Rauch/Spritzern. Chirurgen können die thermischen Ausbreitungsmuster in verschiedenen Aktivierungsumgebungen und unterschiedlichen Greifbereichen besser verstehen.
Diese Studie weist noch einige Einschränkungen auf. Erstens ist die Temperatur in der Umgebung nicht die gleiche wie im Operationssaal, und die Temperatur des Ferkels ist nicht die gleiche wie die Körpertemperatur eines Menschen. Zweitens sind die Ergebnisse des Schweinemodells möglicherweise nicht auf alle klinischen Praktiken am Menschen anwendbar. Die tierexperimentelle Studie liefert Chirurgen nicht nur SED-Informationen, die vom Menschen nicht gewonnen werden können, sondern dient auch als wertvolle Forschungsplattform, um in Zukunft Informationen über thermische Verletzungen für neu entwickelte SEDs zu ermitteln. Diese Informationen können Chirurgen bei der Auswahl von Instrumenten und chirurgischen Strategien helfen, die thermische Schäden während der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenchirurgie reduzieren können.
Dieser Artikel demonstriert das Standardverfahren für die Verwendung von Tierversuchen, damit Schilddrüsenchirurgen ein umfassenderes Verständnis von (1) dem sicheren Aktivierungsabstand und der Abkühlzeit für SEDs, (2) der maximalen Temperatur, die durch die Aktivierung von SEDs erzeugt wird, und (3) unregelmäßiger lateraler thermischer Ausbreitung und Rauch/Spritzen, die möglicherweise den Nerv verletzen können, erlangen können.

Eine effiziente Blutstillung ist ein sehr wichtiges Thema in der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenchirurgie. In den letzten Jahrzehnten war einer der größten Fortschritte in der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenchirurgie die Entwicklung von chirurgischen Energiegeräten (SEDs)1. SEDs bieten eine effizientere Hämostase als die herkömmliche Clamp-and-Tie-Technik in Bereichen mit reicher Blutversorgung, was den intraoperativen Blutverlust und die Operationszeit2, die postoperative Hypokalzämie3 und das lebensbedrohliche postoperative Hämatom4 reduziert. In neueren Studien wird berichtet, dass SEDs bei 65,7 % der Thyreoidektomie-Patienten eingesetzt werden5, und die jährliche Anwendung von SED nimmt jedes Jahr zu.
SEDs haben sich jedoch nicht als überlegen gegenüber konventionellen Techniken in Bezug auf rezidivierende Larynxnervverletzungen (RLN) bei Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenoperationen erwiesen 4,6,7. Thermische Verletzungen und laterale thermische Ausbreitung auf das RLN treten oft unerwartet auf, wenn ein SED in der Nähe des Nervs aktiviert wird, und diese Art von Verletzung ist in der Regel schwerwiegend und irreversibel. Im Vergleich zu einer mechanischen Zug- oder Kompressionsnervenverletzung weist die thermische Nervenverletzung eine geringere Verzerrung der äußeren Struktur auf, aber eine stärkere Schädigung des inneren Endoneuriums, einschließlich der Myelinscheide und des Axons 8,9,10,11. Diese Art von Verletzung hat nicht nur Schwierigkeiten bei der Wiedererlangung der normalen Funktion, sondern ist auch in der klinischen Sequenz weniger reversibel als eine Traktionsverletzung10,12. Darüber hinaus sind thermische Verletzungen für den Chirurgen oft unsichtbar und können im Verlauf der Operation nicht erkannt werden13,14. Daher sollten Chirurgen die thermischen Auswirkungen von SED berücksichtigen, um eine thermische Schädigung der RLN während einer Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenoperation zu vermeiden.
Schweinemodelle werden am häufigsten für die RRN-Forschung verwendet, da die Anatomie und Physiologie von Schweinen denen des Menschen sehr ähnlich sind 15,16,17,18,19,20. Das experimentelle Schweinemodell ermöglicht eine einfache Handhabung, ist weit verbreitet und kostengünstig9. Für elektrophysiologische (EP) Informationen ist das intraoperative Neuromonitoring (IONM) hilfreich, um Mechanismen der Nervenverletzung zu erkennen und die postoperative Stimmbandfunktion vorherzusagen 21,22,23,24,25,26,27. Darüber hinaus ermöglicht die kontinuierliche IONM (CIONM) die Früherkennung von Nervenverletzungen nach risikoreichen Eingriffen, da sie durch wiederholte vagale Stimulation eine sofortige Rückmeldung für die Nervenfunktion geben kann28,29,30. Untersuchungen zur EP-Aktivierung und -Kühlung können den sicheren SED-Aktivierungsabstand vom RLN und die sichere Abkühlzeit nach SED-Aktivierung bestimmen, bevor das RLN kontaktiert wird. Für thermografische Informationen ist eine Wärmebildkamera hilfreich, um die Temperaturänderung (Aktivierung und Abkühlung) auszuwerten, und der hyperthermische Bereich kann nach SED-Aktivierungen visualisiert werden 31,32,33,34,35. In einer früheren Studie trat eine thermische Schädigung des RLN auf, wenn die Gewebetemperatur die kritische Temperatur von 60 °C im porcinen CIONM-Modell36 erreichte. Untersuchungen zur TG-Aktivierung und -Kühlung können die laterale thermische Ausbreitungsstrecke, das Auftreten von Rauch und Spritzern sowie die Temperaturänderung während der Kühlung mit oder ohne Muskelberührungsmanöver (MTM) bestimmen. Um SED sicher in der Schilddrüsen-/Nebenschilddrüsenchirurgie anzuwenden, wird in diesem Artikel eine experimentelle Schweinemodellstudie vorgestellt, um die EP- und TG-Sicherheitsparameter von SEDs unter standardisierten Verfahren zu untersuchen.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Automatic periodic stimulation (APS)</td>
			<td>Medtronic, Jacksonville, FL</td>
			<td></td>
			<td>2.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Advanced bipolar surgical energy devices(SEDs)</td>
			<td>Medtronic, Minneapolis, MN</td>
			<td>LigaSure Exact Dissector (Device A)</td>
			<td>Generator: Valleylab LS10 energy platform 
			Power setting: Default</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar electrocautery</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Generator: ForceTriad energy platform 
			Power setting: 30 watts</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Duroc-Landrace pigs</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>3&#8211;4 months old; weighing 18&#8211;30 kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electromyography (EMG) Endotracheal tube (ETT)</td>
			<td>Medtronic, Jacksonville, FL</td>
			<td>#6 NIM Standard Tube&#160;</td>
			<td>Recording electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ferromagnetic SEDs</td>
			<td>Domain Surgical, Salt Lake City, Utah</td>
			<td>FMwand, and Fmsealer</td>
			<td>Generator: FMX G1 Generator 
			Power setting: FMwand (Max 45); FMsealer (Max 3)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hybrid SEDs 
			(Ultrasonic and Advance bipolar SEDs)</td>
			<td>Olympus Co Inc, Tokyo, Japan</td>
			<td>Thunderbeat</td>
			<td>Generator: Thunderbeat generator ESG USG 400 
			Power setting: SEAL&#38;CUT mode (Level 1); SEAL mode (Level 3)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monopolar electrocautery&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Generator: ForceTriad energy platform 
			Power setting: 15 watts</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nerve Integrity Monitoring (NIM) system&#160;</td>
			<td>Medtronic, Jacksonville, FL</td>
			<td>NIM 3.0&#160;</td>
			<td>Intraoperative neuromonitoring (IONM) equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevoflurane</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1% to 2% for anesthesia maintenance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tiletamine/Zolazepam</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2 mg/kg for anesthesia induction</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermal imaging camera</td>
			<td>Ezo Corp., Taiwan</td>
			<td>Thermal camera D4A (384x288 pixels)</td>
			<td>Thermal image recording equioments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasonic SEDs</td>
			<td>Ethicon, Johnson and Johnson, Cincinnati, OH</td>
			<td>Harmonic Focus+</td>
			<td>Generator: Ethicon Endo-Surgery Generator G11 
			Power setting: Level 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasonic SEDs</td>
			<td>Medtronic, Minneapolis, MN</td>
			<td>Sonicision&#160;</td>
			<td>Generator: Sonicision Reusable Generator 
			Power setting: maximum power mode (55 kHz)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

investigation of the electrophysiological and thermographic safety parameters of surgical energy devices during thyroid and parathyroid surgery in a porcine model

In der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenchirurgie bieten chirurgische Energiegeräte (SEDs) eine effizientere Hämostase als die herkömmliche Clamp-and-Tie-Hämostase in Bereichen mit reicher Blutversorgung. Wenn jedoch ein SED in der Nähe des Nervus laryngeus recurrens (RLN) aktiviert wird, kann die vom SED erzeugte Hitze den Nerv irreversibel verletzen. Um SEDs sicher in der Schilddrüsen-/Nebenschilddrüsenchirurgie anzuwenden, werden in diesem Artikel experimentelle Schweinemodellstudien vorgestellt, um die Aktivierungs- und Kühlsicherheitsparameter von SEDs in standardisierten elektrophysiologischen (EP) bzw. thermografischen (TG) Verfahren zu untersuchen. In den EP-Sicherheitsparameter-Experimenten wird kontinuierliches intraoperatives Neuromonitoring (C-IONM) angewendet, um die RRN-Funktion in Echtzeit zu demonstrieren. Die EP-Aktivierungsstudie bewertet den sicheren Aktivierungsabstand von SEDs; Die EP-Kühlstudie bewertet die sichere Abkühlzeit von SEDs. Im TG-Sicherheitsparameter-Experiment wird eine Wärmebildkamera verwendet, um die Temperaturänderung nach Aktivierung des SED aufzuzeichnen. Die TG-Aktivierungsstudie bewertet die laterale thermische Ausbreitungsdistanz nach SED-Aktivierung in einer trockenen oder feuchten Umgebung und ob Rauch und Spritzer erzeugt werden. Die TG-Kühlstudie bewertet die Abkühlzeit. Dies wird dazu beitragen, die Sicherheitsparameter neu entwickelter SEDs zu ermitteln, die in der Schilddrüsen-/Nebenschilddrüsenchirurgie eingesetzt werden, und Sicherheitsrichtlinien zur Vermeidung von RRN-Verletzungen und damit verbundenen Komplikationen bereitzustellen.

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Investigation of the Electrophysiological and Thermographic Safety Parameters of Surgical Energy Devices During Thyroid and Parathyroid Surgery in a Porcine Model

Die sichere Anwendung neu entwickelter chirurgischer Energiegeräte in der Schilddrüsen-/Nebenschilddrüsenchirurgie zieht die Aufmerksamkeit der Chirurgen auf sich. Tierexperimentelle Modelle können unnötige Versuche und Irrtümer in der Humanchirurgie vermeiden. Ziel dieses Berichts ist es, elektrophysiologische und thermographische Methoden zur Bewertung der Sicherheitsparameter von SEDs in der Schilddrüsen-/Nebenschilddrüsenchirurgie zu demonstrieren.

Untersuchung der elektrophysiologischen und thermographischen Sicherheitsparameter von chirurgischen Energiegeräten während der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenchirurgie im Schweinemodell

In thyroid and parathyroid surgery, surgical energy devices (SEDs) provide more efficient hemostasis than conventional clamp-and-tie hemostasis in areas ...

In den letzten Jahren sind chirurgische Energiegeräte bei Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenoperationen weit verbreitet. Neben der Hämostase werden sie auch zum Schneiden, Greifen und Teilen von Gewebe verwendet. Die vom Gerät erzeugte Wärme kann jedoch zu einer thermischen Schädigung des Nervus laryngeus recurrens führen.Daher ist es notwendig, die mögliche thermische Wirkung dieses Geräts, das üblicherweise zuerst während der Operation verwendet wird, zu qualifizieren und zu quantifizieren. Es wird nicht empfohlen, Sicherheitsparameter durch wiederholtes Ausprobieren am Menschen mit den neu entwickelten chirurgischen Energiegeräten zu überprüfen. Im Vergleich dazu haben Tierversuche einen entscheidenden Vorteil.Die chirurgischen Situationen, in denen ein chirurgisches Energiegerät eingesetzt werden kann, sind vielfältig, und die Sicherheitsparameter, die für die Szenariosimulation in Tierversuchen entwickelt wurden, haben sich für den klinischen Einsatz umgekehrt. Im Zuge des technologischen Fortschritts werden immer wieder neu entwickelte Geräte entstehen. Die experimentellen Methoden können die Vorteile und Einschränkungen der Geräte vor ihrer ersten klinischen Anwendung durch Chirurgen bewerten.Daher schlagen wir dieses Protokoll vor, um den Forschern ein strukturelles Design, spezielle Materialien und die standardisierten Verfahren zur Verfügung zu stellen, um die Reproduktion von Parametern in ihrem eigenen Labor zu ermöglichen. Wählen Sie zunächst Duroc-Landrace-Schweine im Alter von drei bis vier Monaten und einem Gewicht von 18 bis 30 Kilogramm aus. Machen Sie nach der Narkose einen 15 cm langen quer verlaufenden Halshalsschnitt auf der Haut, einen Zentimeter über dem Brustbein.Trennen Sie die Gurtmuskeln durch den Mittellinienansatz und ziehen Sie sich seitlich zurück, um den Schilddrüsenknorpel, den Krikoidknorpel, die Trachealringe und die Schilddrüse sichtbar zu machen. Anschließend werden die Muskeln sternocleidomastoideus beidseitig präpariert. Freilegen und präparieren Sie entlang der rekurrenten Kehlkopfnerven und der Vagusnerven beidseitig.Installieren Sie zunächst die Masseelektroden außerhalb der chirurgischen Schnittwunde. Installieren Sie dann eine 2,0-mm-APS-Elektrode (Automatic Periodic Stimulation) auf einer Seite des Vagusnervs. Schließen Sie alle Elektroden über die Verbindungsbox an das Überwachungssystem an und stellen Sie sicher, dass die Elektroden korrekt angeschlossen sind.Suchen Sie die Säule "Vagus APS Stim" und stellen Sie den Stimulationsstrom auf 1,0 Milliampere ein. Klicken Sie auf Baseline. Auf der rechten Seite des Bildschirms erscheint ein neues Fenster mit dem Namen "Einrichten der APS-Baseline".Geben Sie den Sitzungstitel und die Sitzungskommentare ein. Wählen Sie den zu testenden Kanal aus, woraufhin das System automatisch mit der 20-fachen Messung beginnt. Die Basisamplitude und die Latenz werden automatisch berechnet und angezeigt.Klicken Sie auf "Akzeptieren", wenn die Baseline korrekt ist. Klicken Sie auf das Schnellvorlauf-Symbol in der Spalte "Vagus APS Stim", um einen Test zu starten. Klicken Sie nach jedem elektrophysiologischen Experiment auf das Pulssymbol, um die Aufzeichnung zu stoppen.Wählen Sie die Seite "Berichte" aus, und legen Sie das Berichtsausgabeformat fest, um die Datei zu speichern. Legen Sie dann das chirurgische Gerät (SED) in einem Abstand von 5 mm vom RLN auf das Weichgewebe auf und aktivieren Sie das Gerät. Beobachten Sie die Änderung des EMG und arbeiten Sie dreimal mit demselben Aktivierungsabstand, es sei denn, es tritt eine wesentliche Änderung der EMG-Amplitude auf.Legen Sie dann die SED in einem Abstand von 2 mm von der RLN auf das Weichgewebe auf und aktivieren Sie die SED. Wiederholen Sie diesen Schritt, wobei die SED in einem Abstand von 1 mm von der RLN platziert wird. Wenn während dieser Schritte eine erhebliche Abnahme der EMG-Amplitude beobachtet wird, stoppen Sie das Experiment und zeichnen Sie das Echtzeit-EMG 20 bis 60 Minuten lang kontinuierlich auf, um festzustellen, ob die Verletzung reversibel ist, und zeichnen Sie die Ergebnisse als Tabelle auf.Für Abkühlzeittests wenden Sie eine einzelne SED-Aktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie die RLN mit der Spitze des SED. Beobachten Sie nach fünf Sekunden des Wartens und Abkühlens die Veränderung des EMG.Wiederholen Sie den Test für eine Abkühlzeit von zwei Sekunden, während Sie die Änderung der EMG-Amplitude beobachten. Fahren Sie mit dem MTM-Test fort, indem Sie nur eine Sekunde lang eine einzelne SED-Aktivierung auf den SCM-Muskel anwenden. Berühren Sie schnell die aktivierte Oberfläche des SED mit einer anderen Position des SCM.Unmittelbar nach dem MTM berühren Sie die RLN mit der Spitze des SED. Wenden Sie erneut eine einzelne SED-Aktivierung auf den SCM-Muskel an. Berühren Sie sofort die RLN mit der Spitze des SED ohne MTM.Wenn eine erhebliche Abnahme der EMG-Amplitude beobachtet wird, stoppen Sie das RRN-Experiment und überwachen Sie die Echtzeit-EMG-Reaktion mindestens 20 Minuten lang, um festzustellen, ob die RLN-Verletzung reversibel ist. Platzieren Sie die Kamera in einem Abstand von 50 cm vom Zielgewebe in einem Winkel von 60 Grad zum Versuchstisch. Verwenden Sie 5 mm als Standard-Gurtmuskeldicke für die SED-Aktivierung.Wischen Sie die Oberfläche der Schweinebandmuskeln mit trockener Gaze ab. Fassen Sie den Gurtmuskel über die gesamte Länge der Klinge mit SED. Beobachten Sie nach einmaliger Aktivierung die maximale Temperatur, die während der Messung auf dem Bildschirm angezeigt wird.Messen Sie die Klingenlänge und die seitliche Wärmeausdehnung der 60 Grad Celsius Isothermenlinie nach einmaliger Aktivierung. Wenn die höchste Temperatur auf dem Bildschirm 60 Grad Celsius überschreitet, zeichnen Sie Rauch und Spritzer auf dem Bildschirm auf und wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen. Wiederholen Sie diese Schritte, nachdem Sie den Gurtmuskel mit einer vorderen Drittellänge der Klinge mit SED gegriffen haben, und führen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen durch.Bei Aufgaben in nasser Umgebung sollten Sie die Muskeln des Schweineriemens kurz vor der SED-Aktivierung drei Sekunden lang in sterilem Wasser einweichen. Bewerten Sie für verschiedene Bereiche die seitliche Wärmeausbreitung, den Rauch und die Spritzer, indem Sie den Gurtmuskel über die gesamte Länge und die vordere Drittellänge der Klinge mit SED greifen. Beginnen Sie nach einmaliger SED-Aktivierung mit der gesamten Klinge auf dem Gurtmuskel mit der Aufzeichnung der Abkühlzeit, bis die höchste Temperatur auf dem Bildschirm weniger als 60 Grad Celsius beträgt.Wiederholen Sie fünf Messungen in verschiedenen Bereichen. Nach einer einmaligen Aktivierung des SED mit der gesamten Klinge auf dem Gurtmuskel berühren Sie schnell die aktivierte Oberfläche des SED mit einer anderen Position des Gurtmuskels. Zeichnen Sie die Temperatur sofort auf, nachdem Sie den SED mit geöffneter Klinge aus dem Gurtmuskel verlassen haben.Beginnen Sie nach diesem Schritt mit der Aufzeichnung der Abkühlzeit, bis die höchste Temperatur auf dem Bildschirm weniger als 60 Grad Celsius beträgt. Präsentieren Sie die elektrophysiologischen und thermografischen Sicherheitsparameter in tabellarischer Form, mit Rauch- und Spritzmarkierungen. Unter Verwendung dieses Protokolls wurden elektrophysiologische Aktivierungstests am RLN von den proximalen bis zu den distalen Segmenten in verschiedenen Abständen durchgeführt und das EMG-Signal während der Studie überwacht.Eine elektrophysiologische Kühlstudie wurde ebenfalls am RLN durchgeführt. Thermografische Aktivierungstests der ganzen Schaufel in einer trockenen Umgebung zeigten, dass die maximale Aktivierungstemperatur während der Aktivierung mehr als 60 Grad Celsius betrug. Bei einem Drittel der Schaufeltests in trockener Umgebung wurde nach der Aktivierung Spritzer beobachtet.Tests ganzer Schaufel in nasser Umgebung zeigten eine deutlichere laterale Wärmeausbreitung im Vergleich zur trockenen Umgebung. Bei Tests mit einem Drittel der Rotorblätter ist der Rauch im Vergleich zur trockenen Umgebung deutlicher. In dieser Studie wurden elektrophysiologische und thermografische Sicherheitsparameter ausgewertet und tabellarisch dargestellt.Die elektrophysiologische Studie ermittelte einen kritischen Parameter für Nervenverletzungen, und die thermografische Studie etablierte einen präventiven Parameter für das Risiko einer thermischen Verletzung. Durch die Interpretation der Parameter können Chirurgen bei den routinemäßigen chirurgischen Schritten einen ausreichenden Sicherheitsabstand und eine ausreichende Abkühlzeit einhalten. Auf der anderen Seite kann die thermografische Untersuchung in verschiedenen aktivierten Umgebungen wie thermischer Ausbreitung, Rauch oder Wellenspray angewendet werden, die das Energiegerät erzeugt hat.Diese Studie kann auch dazu beitragen, das Risiko zu bewerten, das unterschiedlichen Klemmlängen von der Klinge des Energiegeräts entspricht. Wir gehen davon aus, dass dieser Vorschlag und das Modell den Forschern, Herstellern und Chirurgen die beste Gelegenheit bieten werden, die thermischen Auswirkungen zu untersuchen und die Sicherheitsparameter jedes neu entwickelten Energiegeräts zu definieren, um die wiederkehrende thermische Verletzung des Kehlkopfnervs während der Schilddrüsen- und Nebenschilddrüsenoperationen zu vermeiden.

Research

JoVE Journal

Medicine

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Überwachung der System und Leber hämodynamischen Parameter in Mäuse

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

Forschung

Medizin

Heterotopic Renal Autotransplantation in a Porcine Model: A Step-by-Step Protocol

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Chirurgische Angiogenese in porcinen tibiale Allotransplantation: eine neue große Tierknochen durchblutet zusammengesetzte Allotransplantation Modell

Segmental bone loss resulting from trauma, infection malignancy and congenital anomaly remains a major reconstructive challenge. Current therapeutic ...

Use of Two Intracorporeal Ventricular Assist Devices As a Total Artificial Heart

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An Anatomical Study of Nerves at Risk During Minimally Invasive Hallux Valgus Surgery

Eine anatomische Untersuchung der Nerven gefährdet während minimalinvasiver Hallux Valgus Operation

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Intra-Operative Neural Monitoring of Thyroid Surgery in a Porcine Model

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A Pre-Clinical Porcine Model of Orthotopic Heart Transplantation

Ein präklinisches Porcine-Modell der orthotopischen Herztransplantation

Fifty-years following the first successful report, cardiac transplantation remains the gold-standard treatment for eligible patients with advanced heart ...

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

Ein In-vivo-Mausmodell der intravenösen Vollnarkose während der Krebsresektion

Anesthesia is a routine component of cancer care that is used for diagnostic and therapeutic procedures. The anesthetic technique has recently been ...

Left Lung Orthotopic Transplantation in a Juvenile Porcine Model for ESLP

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Lung transplantation is the gold-standard treatment for end-stage lung disease, with over 4,600 lung transplantations performed worldwide annually. ...