Name: examining the effect of pesticides on caenorhabditis elegans neurons
Uploaded: 2022-05-27T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Examining the Effect of Pesticides on Caenorhabditis elegans Neurons at JoVE.com

Die in diesem Manuskript beschriebene Arbeit wurde für eine Mittelstufe in Neurowissenschaften durchgeführt. Die Mittel für die Reagenzien und Vorräte wurden von der Biologieabteilung des Vassar College zur Verfügung gestellt. Die Mikroskope und das digitale Bildgebungssystem wurden auch von der Biologieabteilung des Vassar College zur Verfügung gestellt. Der Autor dankt all den vielen Studenten, die diesen Kurs besucht haben.

Die gesamte Verwendung von wirbellosen Tieren erfolgte in Übereinstimmung mit den Tierpflege- und Verwendungsrichtlinien der Einrichtung.
1. Herstellung von pestizidbeschichteten Petriplatten
<ol><li>Bereiten Sie Agar-Petrischalen (6 cm Durchmesser funktionieren am besten) mit Standardverfahren6 zu. HINWEIS: Diese können Monate im Voraus hergestellt und bis zum Gebrauch im Kühlschrank aufbewahrt werden. Bringen Sie die Platten auf Raumtemperatur...

<ol>
	<li>Duzguner, V., Erdogan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+exposure+to+imidacloprid+induces+inflammation+and+oxidative+stress+in+the+liver+&amp;+central+nervous+system+of+rats.">Chronic exposure to imidacloprid induces inflammation and oxidative stress in the liver &amp; central nervous system of rats.</a> Pesticide Biochemistry and Physiology. 104 (1), 58-64 (2012).</li><li>Catae, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exposure+to+a+sublethal+concentration+of+imidacloprid+and+the+side+effects+on+target+and+nontarget+organs+of+Apis+mellifera+(Hymenoptera,+Apidae).">Exposure to a sublethal concentration of imidacloprid and the side effects on target and nontarget organs of Apis mellifera (Hymenoptera, Apidae).</a> Ecotoxicology. 27 (2), 109-121 (2018).</li><li>Bradford, B. R., Whidden, E., Gervasio, E. D., Checchi, P. M., Raley-Susman, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neonicotinoid-containing+insecticide+disruption+of+growth,+locomotion,+and+fertility+in+Caenorhabditis+elegans.">Neonicotinoid-containing insecticide disruption of growth, locomotion, and fertility in Caenorhabditis elegans.</a> PLOS One. 15 (9), 0238637 (2020).</li><li>Jospin, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+neuronal+acetylcholine+receptor+regulates+the+balance+of+muscle+excitation+and+inhibition+in+Caenorhabditis+elegans.">A neuronal acetylcholine receptor regulates the balance of muscle excitation and inhibition in Caenorhabditis elegans.</a> PLoS Biology. 7 (12), 1000265 (2009).</li><li>Susman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Discovery-Based Learning in the Life Sciences. , (2015).</li><li>Stiernagle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+of+C.+elegans.">Maintenance of C. elegans.</a> WormBook. , (2006).</li><li>Brody, H. A., Chou, E., Gray, J. M., Pokyrwka, N. J., Raley-Susman, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mancozeb-induced+behavioral+deficits+precede+structural+neural+degeneration.">Mancozeb-induced behavioral deficits precede structural neural degeneration.</a> NeuroToxicology. 34, 74-81 (2013).</li><li>Chen, P., Martinez-Finley, E. J., Bornhorst, J., Chakraborty, S., Aschner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metal-induced+neurodegeneration+in+C.+elegans.">Metal-induced neurodegeneration in C. elegans.</a> Frontiers in Aging Neuroscience. 5, (2013).</li><li>Hart, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavior.">Behavior.</a> WormBook. , (2006).</li><li>Harlow, P. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+nematode+Caenorhabditis+elegans+as+a+tool+to+predict+chemical+activity+on+mammalian+development+and+identify+mechanisms+influencing+toxicological+outcome.">The nematode Caenorhabditis elegans as a tool to predict chemical activity on mammalian development and identify mechanisms influencing toxicological outcome.</a> Scientific Reports. 6 (1), 22965 (2016).</li></ol>

Die in diesem Manuskript beschriebenen Protokolle arbeiten erfolgreich allein oder im Rahmen eines mehrwöchigen unabhängigen Studentengruppenprojekts. Die Protokolle sind auch für eigenständige, einwöchige Erkundungserfahrungen zugänglich. Die Nematodenstämme sind günstig und im Forschungslabor pflegeleicht. Die Schüler können leicht lernen, wie man Würmer mit einem Wurmpick pflückt oder wie man sie bewegt, indem man Platten mit Wasser spült und ihnen erlaubt, sich durch Schwerkraft abzusetzen. Die Experimen...

Caenorhabditis elegans ist ein ausgezeichneter Modellorganismus für die Laborausbildung in biologisch-naturwissenschaftlichen Kursen für Einsteiger und Mittelstufen. Dieses Laborverfahren kann als Teil eines mehrwöchigen Moduls verwendet werden, das verschiedene Auswirkungen häufig verwendeter Pestizide auf das Verhalten von C. elegans und die Zellbiologie untersucht. Die Studierenden können lernen, unabhängige Projekte zu entwerfen und durchzuführen, die ihnen Datenanalyse- und Präsentationsfähigkeiten vermitteln. Dieses Papier konzentriert sich auf die Protokolle zur Exposition von C. elegans gegenüber Pestizidmischungen und dann zur Beobachtung und Analyse der Auswirkungen auf die Neuronenmorphologie.
Rasenchemische Pestizidmischungen werden häufig für den privaten und landwirtschaftlichen Gebrauch verwendet und können in jedem örtlichen Gartengeschäft erworben werden. Es gibt zunehmende Besorgnis über die Sicherheit dieser Chemikalien für Mensch und Tier 1,2,3. Die Studierenden können die wissenschaftliche Literatur lesen und ein Pestizid für die experimentelle Bewertung auswählen und dabei grundlegende Biologie und Neurobiologie sowie wichtige Laborfähigkeiten wie experimentelles Design und Analyse und allgemeine Laborfähigkeiten wie Pipettieren und serielle Verdünnungen, Seziermikroskopie, Fluoreszenzmikroskopie, digitale Fotografie und Figurenproduktion erlernen.
Die in diesem Artikel beschriebenen Protokolle können in einem Mittelstufenkurs in Biologie oder Neurowissenschaften allein stehen oder Teil eines mehrwöchigen Moduls sein, das auch Messungen von Verhaltensweisen umfassen kann, die von bestimmten Gruppen von Neuronen gesteuert werden. In diesem Protokoll wird beispielsweise eine Beurteilung der Morphologie cholinerger Neuronen beschrieben, die die Fortbewegung unter Verwendung eines Nematodenstamms steuern, der GFP (LX 929) in cholinergen Neuronen4 exprimiert. Diese Stämme können zu sehr niedrigen Preisen vom Caenorhabditis elegans Genetics Center (https://cgc.umn.edu/) bezogen werden. Stämme, die GFP in dopaminergen Neuronen (OH 7457), cholinerge Neuronen (LX 929) oder mCherry, die in allen Neuronen exprimiert werden (PVX4), exprimieren, sind alle eine gute Wahl. Die Schüler konnten auch die Fortbewegung messen und Daten erhalten, um die Beurteilung der Morphologie zu begleiten. Eine vollständige Beschreibung eines mehrwöchigen Studentengruppenprojekts finden Sie in Susman5.
Dieses Studentengruppenprojekt ist recht kostengünstig und für Gruppen von vier Studenten einfach einzurichten. Zu den benötigten Materialien gehören ein Seziermikroskop, der Zugang zu einem Fluoreszenzverbindungsmikroskop, das eine angeschlossene Digitalkamera haben kann, Petriplatten und Zugang zu Nematodenwachstumsagar, wachstumsbegrenzte Bakterien (Stamm OP50, aus dem CGC), ein Gasflammen-Bunsenbrenner oder eine Alkohollampe, ein Autoklav, Platindraht und allgemeines Labormaterial wie Mikropipetter, Objektträger, Deckgläser und Pasteur-Pipetten aus Glas. Abhängig von dem chemischen Giftstoff, der von den Studentengruppen untersucht wird, müssen die Schritte im Protokoll möglicherweise unter einem Abzug oder mit Handschuhen erfolgen. Dieses Protokoll verwendet chemische Gemische, die wasserlöslich (nicht flüchtig) sind, und alle vom Hersteller empfohlenen sicheren Handhabungsverfahren werden befolgt.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Agar</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP97445</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>MP1AGAH0250</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcohol lamp</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>&#160;17012826</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bunsen burner</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>17-012-820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C. elegans strains</td>
			<td>C. elegans Genetics Center</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>10035-04-8</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cholesterol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAA1147030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-545-AP</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital camera</td>
			<td>Nikon</td>
			<td></td>
			<td>These can vary depending on the requirement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting scope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ745</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E. coli strain (OP50)</td>
			<td>C. elegans Genetics Center</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP2818100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescent scope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td></td>
			<td>These can vary depending on the requirement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging software</td>
			<td>Nikon</td>
			<td></td>
			<td>These can vary depending on the requirement</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inoculation loop</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>&#160;131045</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LB Broth Base</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP9723-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>10034-99-8</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfuge tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>&#160;05408129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope slides</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-265446</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pasteur pipets</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>13-678-20A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AS4050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette tips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>94060316</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipetters</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-386-319</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Platinum wire</td>
			<td>Genesee Scientific</td>
			<td>59-1M30P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium Phosphate buffer</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AAJ61413AP</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium azide</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>AC447810250</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

examining the effect of pesticides on caenorhabditis elegans neurons

Caenorhabditis elegans ist ein leistungsfähiger Modellorganismus, der in vielen Forschungslabors verwendet wird, um die Folgen der Exposition gegenüber chemischen Schadstoffen, Pestiziden und einer Vielzahl von toxischen Substanzen zu verstehen. Diese Nematoden sind einfach zu bearbeiten und können verwendet werden, um neue Forschungsergebnisse zu generieren, sogar im Bachelor-Biologielabor. Eine mehrwöchige Laborreihe authentischer, studentischer Forschungsprojekte schult die Studierenden in einem Toolkit von Techniken und Ansätzen in Verhaltensmessungen, Zellbiologie und Mikroskopie, die sie dann auf ihre Projekte anwenden. Eine Technik in diesem Toolkit ist die Quantifizierung des Prozentsatzes von Neuronen, die neurodegenerative Schäden aufweisen, nachdem sie einem chemischen Giftstoff wie einem Pestizid ausgesetzt waren. Junge erwachsene C. elegans-Nematoden können 2-24 h lang unterschiedlichen Konzentrationen kommerziell erhältlicher Pestizide oder anderer Arten von Giftstoffen ausgesetzt sein . Dann können Studenten verschiedene Neuronensubtypen mit fluoreszierenden exprimierenden Stämmen von C. elegans visualisieren. Diese Techniken erfordern keine ausgeklügelte Bildverarbeitungssoftware und sind selbst bei geringen Vergrößerungen wirksam, so dass die Notwendigkeit einer teuren konfokalen Mikroskopie überflüssig wird. Dieses Papier zeigt, wie man die Nematoden mit Pestiziden behandelt und wie man die Neuronen abbildet und bewertet. Es bietet auch ein einfaches Protokoll für die Mikroskopie und Analyse der Neuronenmorphologie. Die für diese Technik verwendeten Materialien sind kostengünstig und in den meisten Biologieabteilungen des Grundstudiums leicht verfügbar. Diese Technik kann mit Verhaltensmaßnahmen wie Fortbewegung, basaler Verlangsamung oder Eiablage kombiniert werden, um eine potenziell veröffentlichungsfähige Reihe von Experimenten durchzuführen und Studenten eine authentische Forschungserfahrung zu sehr niedrigen Kosten zu bieten.

Die in diesem Papier beschriebenen Methoden und Protokolle bieten wichtige Laborfähigkeiten für Studenten der Mittelstufe in Biologie oder Neurowissenschaften. Die Studierenden können wichtige Erfahrungen bei der Entwicklung eines unabhängigen Projekts und der Durchführung eines Experiments ihres eigenen Designs sammeln, das zu neuartigen Ergebnissen führen könnte. Abbildung 3 zeigt ein optimales Ergebnis eines Studentenprojekts, das schließlich Teil einer veröffentlichten Arbeit<su...

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Examining the Effect of Pesticides on Caenorhabditis elegans Neurons

Junge erwachsene Caenorhabditis elegans Nematoden sind 2-24 h lang unterschiedlichen Konzentrationen kommerzieller Pestizide oder anderer Giftstoffe ausgesetzt. Dann können verschiedene Neuronen mit fluoreszierenden exprimierenden Stämmen sichtbar gemacht werden. Dieses Papier zeigt, wie man Nematoden Pestiziden aussetzt und Neuronenschäden bewertet.

Untersuchung der Wirkung von Pestiziden auf Caenorhabditis elegans Neuronen

Caenorhabditis elegans is a powerful model organism used in many research laboratories to understand the consequences of exposure to chemical pollutants, ...

Dieses Protokoll ist eine einfache und praktikable Möglichkeit für Studenten, authentische Forschung zu betreiben, die zu veröffentlichungsfähigen Ergebnissen führen könnte. Der Hauptvorteil besteht darin, dass die Studierenden originelle Forschung zu Fragen durchführen können, die sie selbst entscheiden. Stellen Sie zunächst einen Lösungsstreuer her, indem Sie eine neun Milliliter große Pasteur-Pipette aus Glas vorsichtig in einer Bunsenbrennerflamme biegen und die Öffnung der Pipette schließen.Dann sterilisieren Sie den Streuer vor jedem Aufstrich auf der Petriplatte. Mit einem Mikropipetter 100 Mikroliter der Verdünnung auf die Mitte des Agars legen und mit dem sterilisierten Streuer vorsichtig über die Oberfläche verteilen. Dann legen Sie die abgedeckten Petrischalen beiseite und lassen Sie die Lösung in die Oberfläche einweichen, bis sie getrocknet ist.Für Expositionszeiträume von mehr als 12 Stunden fügen Sie 50 Mikroliter einer Nachtkultur von Escherichia coli zu den Platten hinzu, bevor Sie die Nematoden hinzufügen, während für akute Experimente von 12 Stunden oder weniger E.coli nicht auf den Platten vorhanden ist. Geben Sie mit einer Mikropipette einen Milliliter steriles Wasser auf die Platte der Nematoden. Als nächstes schwenken Sie das Wasser herum, um die Nematoden anzuheben, und entfernen Sie dann die Flüssigkeit mit den Nematoden zu einem 1,5-Milliliter-Mikrofugenröhrchen.Nach 10 Minuten, wenn sich die Nematoden durch die Schwerkraft absetzen, entfernen Sie vorsichtig mindestens 500 Mikroliter des Wassers und entsorgen Sie. Dann suspendieren Sie die Nematoden und entfernen Sie mit einer abgeschnittenen gelben Pipettenspitze 50 bis 100 Mikroliter hängender Würmer auf jede Behandlungsplatte, um sicherzustellen, dass jede Platte mindestens 10 erwachsene Würmer enthält. Bereiten Sie zwei Dias vor, indem Sie ein Stück Etikettenband auf nur eine Seite des Objektträgers legen, um ein Pad mit gleichmäßiger Dicke zu bilden, und positionieren Sie dann ein sauberes, unbenutztes Dia zwischen ihnen auf der Tischplatte.Legen Sie einen 10-Mikroliter-Tropfen geschmolzener Agarose mit einem Mikropipetter auf die Mitte des Objektträgers. Flachen Sie dann den Tropfen ab, indem Sie einen weiteren sauberen Schlitten senkrecht zum Objektträger mit dem Tropfen auf die Oberseite legen, und üben Sie Druck aus, so dass der Agarosetropfen die Dicke des Beschriftungsbandes bildet. Üben Sie anschließend gleichmäßigen Druck aus, um die beiden Folien zu trennen.Legen Sie dann diese Folie mit der Agarseite nach oben auf die Tischplatte und lassen Sie sie vor der Verwendung ein bis zwei Minuten trocknen. Um Nematoden des vorbereiteten Objektträgers mit dem Agarose-Pad hinzuzufügen, fügen Sie dem Agar-Pad einen Fünf-Mikroliter-Tropfen Wasser mit einem molaren Natriumazid hinzu, der die Würmer betäubt und mobilisiert. Dann bei 10 Nematoden pro Behandlungsobjektträger mit einem Wurmpickel auf das Tröpfchen übertragen, der vor und nach dem Transfer der Nematoden sterilisiert werden sollte.Als nächstes fügen Sie einen Deckzettel mit einer Pinzette hinzu, indem Sie ihn in einem Winkel platzieren und langsam absenken. Anschließend legen Sie die vorbereitete Nasshalterung auf ein fluoreszierendes Mikroskop, um die Würmer zuerst unter 10-facher Vergrößerung und Phasenkontrast und dann unter 40-facher Vergrößerung mit Phasenkontrast und fluoreszierender Beleuchtung zu beobachten. Platzieren Sie jeweils eine vorbereitete nasse Halterung auf dem Mikroskoptisch und befestigen Sie sie mit den Clips der Mikroskoptische, beginnen Sie dann mit der Betrachtung der nassen Halterungen mit dem niedrigsten Vergrößerungsobjektiv, das typischerweise 10X beträgt, und verwenden Sie einen hellen Feld- oder Phasenkontrast, um die Nematoden zu visualisieren und zu fokussieren.Sobald sich ein Nematode im Sichtfeld befindet, fokussieren Sie ihn mit dem feinen Fokusknopf am Mikroskop, schalten Sie dann die Beleuchtung auf Fluoreszenz, indem Sie das Drehrad drehen und das Licht auf die Kamera richten, um die digitalen Bilder aufzunehmen. Als nächstes passen Sie die Beleuchtung mit der Bildgebungssoftware so an, dass die Neuronen hell beleuchtet, aber nicht übersättigt sind. Erhalten Sie irgendwann ein separates Bild eines Lineals mit der gleichen Vergrößerung wie die Zellbilder, um eine Vergrößerungsskala für ihre Figur bereitzustellen.Die Auswirkungen von manganhaltigen Pestiziden auf die Morphologie von Dopaminneuronen unter Verwendung eines Stammes, in dem Dopaminneuronen GFP exprimierten, wurden untersucht und zeigten ein helles Signal. Das fluoreszierende Signal bleicht jedoch aus, wenn die Neuronen über einen längeren Zeitraum Licht ausgesetzt sind. Dieses Verfahren kann Teil eines mehrwöchigen studentischen Projekts sein, das auch Verhaltens- oder andere Daten enthalten kann.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Examining the Effect of Pesticides on Caenorhabditis elegans Neurons

Brain Imaging Investigation of the Impairing Effect of Emotion on Cognition

Brain Imaging Untersuchung der beeinträchtigende Wirkung von Emotion auf Kognition

Emotions can impact cognition by exerting both enhancing (e.g., better memory for emotional events) and impairing (e.g., increased emotional ...

Forschung

Neurowissenschaften

Vibrodissociation of Neurons from Rodent Brain Slices to Study Synaptic Transmission and Image Presynaptic Terminals

Vibrodissociation von Neuronen aus Nager Hirnschnitten zu Study Synaptic Transmission and Image präsynaptischen

Mechanical dissociation of neurons from the central nervous system has the advantage that presynaptic boutons remain attached to the isolated neuron of ...

Cut-loading: A Useful Tool for Examining the Extent of Gap Junction Tracer Coupling Between Retinal Neurons

Cut-loading: ein nützliches Werkzeug für die Prüfung des Umfangs der Gap Junction Tracer Kopplung zwischen Netzhautneuronen

In addition to chemical synaptic transmission, neurons that are connected by gap junctions can also communicate rapidly via electrical synaptic ...

In Vivo Two-photon Imaging Of Experience-dependent Molecular Changes In Cortical Neurons

In Vivo Two-photon Imaging Of Experience-dependent Molecular Changes In Cortical Neurons

In Vivo Zwei-Photonen-Imaging Of Experience-abhängigen molekularen Veränderungen in kortikalen Neuronen

The brain's ability to change in response to experience is essential for healthy brain function, and abnormalities in this process contribute to a variety ...

A Caenorhabditis elegans Model System for Amylopathy Study

A Caenorhabditis elegans Model System for Amylopathy Study

A<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Modell-System für Amylopathy Study

Amylopathy is a term that describes abnormal synthesis and accumulation of amyloid beta (A&beta;) in tissues with time. A&beta; is a hallmark of ...

Simultaneous Electrophysiological Recording and Calcium Imaging of Suprachiasmatic Nucleus Neurons

Simultaneous electrophysiological and fluorescent imaging recording methods were used to study the role of changes of membrane potential or current in ...

Methods for Studying the Mechanisms of Action of Antipsychotic Drugs in Caenorhabditis elegans

Methods for Studying the Mechanisms of Action of Antipsychotic Drugs in Caenorhabditis elegans

Methoden zur Untersuchung der Wirkmechanismen von Psychopharmaka in<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Caenorhabditis elegans is a simple genetic organism amenable to  large-scale forward and reverse genetic screens and chemical genetic screens. The C.  ...

An Assay for Measuring the Effects of Ethanol on the Locomotion Speed of Caenorhabditis elegans

An Assay for Measuring the Effects of Ethanol on the Locomotion Speed of Caenorhabditis elegans

Ein Test zur Messung der Wirkung von Ethanol auf die Fortbewegungsgeschwindigkeit der<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Alcohol use disorders are a significant public health concern, for which there are few effective treatment strategies. One difficulty that has delayed the ...

Agarose Microchambers for Long-term Calcium Imaging of Caenorhabditis elegans

Agarose Microchambers for Long-term Calcium Imaging of Caenorhabditis elegans

Agarose Mikrokammern für Langzeit Calcium Imaging von<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Behavior is controlled by the nervous system. Calcium imaging is a straightforward method in the transparent nematode Caenorhabditis elegans to measure ...

Novel Metrics to Characterize Embryonic Elongation of the Nematode Caenorhabditis elegans

Novel Metrics to Characterize Embryonic Elongation of the Nematode Caenorhabditis elegans

Novel Metrics zur Charakterisierung von Embryonic Dehnung des Nematode<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Dissecting the signaling pathways that control the alteration of morphogenic processes during embryonic development requires robust and sensitive metrics. ...