Name: high-resolution cardiac positron emission tomography/computed tomography for small animals
Uploaded: 2022-12-16T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals at JoVE.com

Diese Forschung wurde teilweise durch das JPI-HDHL-INTIMIC "GUTMOM" Projekt unterstützt: Maternal obesity and cognitive dysfunction in the offspring: Cause-effect role of the GUT MicrobiOMe and early dietary prevention (Projekt Nr. INTIMIC-085, Italian Ministry of Education, University and Research Decree Nr. 946/2019).

Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit den Empfehlungen im Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Versuchstieren der Internationalen Richtlinien für den Umgang mit Labortieren durchgeführt, die von der europäischen Richtlinie (Richtlinie 86/609/EWG von 1986 und Richtlinie 2010/63/EU) und italienischen Gesetzen (D.Lgs. 26/2014) gefordert wurden.
1. Einrichtung der PET/CT-Bildgebungsprotokolle und des Workflows
HINWEIS: Das hier vorgestell...

Das in diesem Artikel vorgestellte Protokoll konzentriert sich auf ein typisches experimentelles Verfahren für die translationale kardiovaskuläre Forschung an Kleintiermodellen von Herzverletzungen unter Verwendung hochauflösender PET/CT-Bildgebung. Die vorgestellten Ergebnisse sind bezeichnend für den hohen quantitativen und qualitativen Wert von PET- und Cine-CT-Bildern, die sowohl funktionelle als auch strukturelle Informationen des gesamten Herzens über seinen Glukosestoffwechsel, seine Form und die Dynamik sein...

Kleintiermodelle sind äußerst wichtig für das Verständnis von Herz-Kreislauf-Erkrankungen 1,2. Nicht-invasive, diagnostische Bildgebungsinstrumente haben die Art und Weise, wie wir die Herzfunktion betrachten, in den letzten Jahrzehnten sowohl im klinischen als auch im präklinischen Umfeld revolutioniert. Für Kleintiermodelle von Herzerkrankungen wurden spezifische bildgebende Verfahren mit sehr hoher raumzeitlicher Auflösung entwickelt. Somit können solche Instrumente die Notwendigkeit einer genauen Quantifizierung der relevanten metabolischen und kinetischen Myokardparameter an den sehr kleinen und sich sehr schnell bewegenden Herzen von Mäusen und Ratten in spezifischen Krankheitsmodellen wie Herzinsuffizienz (HF)3 oder Myokardinfarkt (MI)4 erfüllen. Hierfür stehen mehrere Modalitäten zur Verfügung, jede mit ihren eigenen Stärken und Schwächen. Die Ultraschallbildgebung (US) ist aufgrund ihrer großen Flexibilität, sehr hohen zeitlichen Auflösung und relativ niedrigen Kosten die am weitesten verbreitete Modalität. Die Einführung der US-amerikanischen kardialen Bildgebung bei Kleintieren hat seit dem Aufkommen von Systemen mit Sonden mit Ultrahochfrequenz 5,6 und räumlichen Auflösungen unter 50 μm erheblich zugenommen.
Zu den Hauptnachteilen von US für die vollständige 3D-Herzbildgebung gehört die Notwendigkeit linearer Scans entlang der Herzachse, indem die Sonde auf einem motorisierten Translationstisch montiert wird, um einen vollständigen Stapel dynamischer B-Mode-Bilder des gesamten Herzens zu erstellen7. Schließlich führt dieses Verfahren (nach genauer räumlicher und zeitlicher Registrierung der in jeder Sondenposition aufgenommenen Bilder) zu einem 4D-Bild mit unterschiedlichen räumlichen Auflösungen zwischen der In-Plane- und Out-of-Plane-Richtung. Das gleiche Problem der ungleichmäßigen räumlichen Auflösung tritt bei der kardialen MR (CMR)8 auf, die immer noch den Goldstandard in der funktionellen Bildgebung des Herzens darstellt. Echte isotrope 3D-Bildgebung kann stattdessen sowohl mit Computertomographie (CT) als auch mit Positronen-Emissions-Tomographie (PET)9 erhalten werden. PET bietet ein sehr empfindliches Werkzeug in Bezug auf das Bildsignal pro injizierter Sondenmenge (im nanomolaren Bereich), obwohl es im Vergleich zu CT, MR oder US eine reduzierte räumliche Auflösung aufweist. Der Hauptvorteil von PET ist seine Fähigkeit, die zellulären und molekularen Mechanismen darzustellen, die der Pathophysiologie des Organs zugrunde liegen. Zum Beispiel ermöglicht ein PET-Scan nach der Injektion von [18F]FDG die Rekonstruktion einer 3D-Karte des Glukosestoffwechsels im Körper. Durch die Kombination mit dynamischer (d.h. zeitaufgelöster) Datenerfassung kann die kinetische Tracermodellierung verwendet werden, um parametrische Karten der metabolischen Raten der Glukoseaufnahme (MRGlu) zu berechnen, die wichtige Informationen über die myokardiale Lebensfähigkeit liefern10.
Die CT erfordert signifikante Mengen an externen Kontrastmitteln (CA) in hohen Konzentrationen (bis zu 400 mg Jod pro ml), um eine messbare Verbesserung der relevanten Gewebekomponenten (z. B. Blut vs. Muskel) zu erreichen, zeichnet sich jedoch durch räumliche und zeitliche Auflösung aus, insbesondere bei Verwendung modernster Mikro-CT-Scanner, die für die Bildgebung von Kleintieren entwickelt wurden. 11 Ein typisches Krankheitsmodell, in dem die kardiale PET/CT angewendet werden kann, ist die experimentelle Bewertung von Myokardinfarkt und Herzinsuffizienz und dem damit verbundenen Ansprechen auf die Therapie. Eine übliche Methode zur Induktion von MI bei Kleintieren ist die chirurgische Ligatur der linken vorderen absteigenden Koronararterie (LAD)12,13 und die anschließende longitudinale Bewertung des Fortschreitens der Erkrankung und des Herzumbaus in den folgenden Tagen4. Dennoch ist die quantitative morphofunktionelle Bewertung des Herzens bei Kleintieren weitgehend auch für andere Krankheitsmodelle anwendbar, wie z.B. die Bewertung des Einflusses des Alterns auf die Herzfunktion14 oder die veränderte Rezeptorexpression in Modellen der Adipositas15. Das vorgestellte Bildgebungsprotokoll ist nicht auf ein bestimmtes Krankheitsmodell beschränkt und könnte daher in verschiedenen Kontexten der präklinischen Forschung mit kleinen Nagetieren von größtem Interesse sein.
In diesem Artikel stellen wir ein Start-to-End-Versuchsprotokoll für die kardiale Bildgebung mit kleintierintegrierter PET / CT vor. Obwohl das vorgestellte Protokoll für einen bestimmten bimodalen integrierten Scanner ausgelegt ist, können die PET- und CT-Teile des beschriebenen Verfahrens unabhängig voneinander auf separaten Scannern verschiedener Hersteller durchgeführt werden. Im eingesetzten PET/CT-Scanner ist der Arbeitsablauf in einem vorprogrammierten Workflow organisiert. Die Hauptzweige jedes Workflows sind ein oder mehrere Erfassungsprotokolle. Jedes Erfassungsprotokoll kann eine oder mehrere Verzweigungen für bestimmte Vorverarbeitungsprotokolle aufweisen, und jedes Vorverarbeitungsprotokoll kann wiederum eine oder mehrere Verzweigungen für bestimmte Rekonstruktionsprotokolle aufweisen. Sowohl die Vorbereitung des Tieres auf dem Bildgebungsbett als auch die Herstellung der externen Mittel, die während der bildgebenden Verfahren injiziert werden sollen, werden beschrieben. Nach Abschluss des Bildaufnahmeverfahrens werden Beispielverfahren zur quantitativen Bildanalyse auf Basis gängiger Softwaretools bereitgestellt. Das Hauptprotokoll wurde speziell für Mausmodelle entwickelt. Obwohl die Maus nach wie vor die am häufigsten verwendete Spezies in diesem Bereich ist, zeigen wir am Ende des Hauptprotokolls auch eine Anpassung des Protokolls für die Rattenbildgebung. Repräsentative Ergebnisse werden sowohl für Mäuse als auch für Ratten gezeigt, die zeigen, welche Art von Leistung mit den beschriebenen Verfahren zu erwarten ist. Am Ende dieses Papiers wird eine gründliche Diskussion geführt, um die Vor- und Nachteile der Technik, kritische Punkte sowie die Art und Weise, wie verschiedene PET-Radiotracer verwendet werden können, fast ohne Änderung der Vorbereitungs- und Akquisitions- / Rekonstruktionsschritte hervorzuheben.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% sterile saline</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td></td>
			<td>0.9% sodium chloride for injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1025L Physiological Monitoring</td>
			<td>Small Animal Instruments</td>
			<td></td>
			<td>Physiological monitoring system for small animal imaging</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL syringes</td>
			<td>Artsana</td>
			<td></td>
			<td>Syringes with needle for injection of PET tracer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atomlab 500</td>
			<td>Else Nuclear</td>
			<td></td>
			<td>PET Dose calibrator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atrium software</td>
			<td>Inviscan</td>
			<td>Version 1.5.5</td>
			<td>PET/CT operating software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Butterfly catheters</td>
			<td>Delta Med</td>
			<td></td>
			<td>27.5 G needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carimas software</td>
			<td>Turku PET Center</td>
			<td>Version 2.10</td>
			<td>Image analysis software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fenestra VC</td>
			<td>Medilumine</td>
			<td></td>
			<td>Lipid emulsion iodinated contrast agent for small animals</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat lamp</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Heat lamp with clamp and switch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin syringes</td>
			<td>Artsana</td>
			<td></td>
			<td>Syringes with needle for injection of CT CA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iomeron 400 mgI/mL</td>
			<td>Bracco</td>
			<td></td>
			<td>Iomeprol, vascular contrast agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IRIS PET/CT</td>
			<td>Inviscan</td>
			<td></td>
			<td>PET/CT scanner for small animals</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td></td>
			<td>Inhalation anesthetic, 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OneTouch Glucometer</td>
			<td>Johnson&#38;Johnson Medical</td>
			<td></td>
			<td>Glucose meter kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Osirix MD software</td>
			<td>Pixmeo</td>
			<td>Version 11</td>
			<td>Image analysis software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oxygen</td>
			<td>Air liquide</td>
			<td></td>
			<td>Compressed gas</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rectal probe for 1025L</td>
			<td>Small Animal Instruments</td>
			<td></td>
			<td>Rectal probe with cable for SAII 1025L systems</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Respiratory sensor for 1025L</td>
			<td>Small Animal Instruments</td>
			<td></td>
			<td>Respiratory pillow with tubings for SAII 1025L systems</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TJ-3A syringe pump</td>
			<td>Longer</td>
			<td></td>
			<td>Motorized syringe pump for CT CA injection</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

high-resolution cardiac positron emission tomography/computed tomography for small animals

Die Positronen-Emissions-Tomographie (PET) und die Computertomographie (CT) gehören zu den am häufigsten verwendeten diagnostischen bildgebenden Verfahren und dienen beide zum Verständnis der Herzfunktion und des Stoffwechsels. In der präklinischen Forschung werden spezielle Scanner mit hoher Empfindlichkeit und hoher räumlich-zeitlicher Auflösung eingesetzt, die den anspruchsvollen technologischen Anforderungen der kleinen Herzgröße und der sehr hohen Herzfrequenz von Mäusen und Ratten gerecht werden. In dieser Arbeit wird ein bimodales kardiales PET/CT-Bildgebungsprotokoll für experimentelle Maus- und/oder Rattenmodelle von Herzerkrankungen beschrieben, von der Tierpräparation über die Bildaufnahme und -rekonstruktion bis hin zur Bildverarbeitung und Visualisierung.
Insbesondere der 18 F-markierte Fluordesoxyglucose ([18F]FDG)-PET-Scan ermöglicht die Messung und Visualisierung des Glukosestoffwechsels in den verschiedenen Segmenten des linken Ventrikels (LV). Polarkarten sind praktische Werkzeuge, um diese Informationen anzuzeigen. Der CT-Teil besteht aus einer zeitaufgelösten 3D-Rekonstruktion des gesamten Herzens (4D-CT) mittels retrospektivem Gating ohne Elektrokardiographie (EKG) Ableitungen, die die morphofunktionelle Bewertung der LV und die anschließende Quantifizierung der wichtigsten Herzfunktionsparameter wie Ejektionsfraktion (EF) und Schlagvolumen (SV) ermöglicht. Mit einem integrierten PET/CT-Scanner kann dieses Protokoll innerhalb derselben Anästhesieinduktion ausgeführt werden, ohne dass das Tier zwischen verschiedenen Scannern neu positioniert werden muss. Daher kann PET/CT als umfassendes Werkzeug für die morphofunktionelle und metabolische Bewertung des Herzens in mehreren Kleintiermodellen von Herzerkrankungen angesehen werden.

In diesem Abschnitt werden typische Ergebnisse sowohl für die PET- als auch für die CT-Analytik nach den bisher beschriebenen Verfahren gezeigt. Abbildung 6 zeigt die Ergebnisse der automatischen Myokard- und LV-Hohlraumsegmentierung des [18F]FDG PET-Scans einer (gesunden) CD-1-Kontrollmaus. Auch wenn der rechte Ventrikel in den rekonstruierten Bildern nicht immer sichtbar ist, können die auf dem DICOM-Header basierenden Orientierungsachsen verwendet werden, um das interventrik...

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High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals

Hier stellen wir ein experimentelles Bildgebungsprotokoll zur Quantifizierung der Herzfunktion und -morphologie mittels hochauflösender Positronen-Emissions-Tomographie/Computertomographie für Kleintiere vor. Es werden sowohl Mäuse als auch Ratten betrachtet, wobei die unterschiedlichen Anforderungen an Computertomographie-Kontrastmittel für die beiden Arten diskutiert werden.

Hochauflösende kardiale Positronen-Emissions-Tomographie/Computertomographie für Kleintiere

Positron emission tomography (PET) and computed tomography (CT) are among the most employed diagnostic imaging techniques, and both serve in understanding ...

Das vorgestellte kardiale PET/CT-Protokoll ist nützlich, um funktionelle und morphologische Informationen in einer Vielzahl von Kleintiermodellen für Herzerkrankungen zu erhalten. Zu den Vorteilen der PET/CT-Bildgebung im Vergleich zu anderen präklinischen Bildgebungsmodalitäten gehören unter anderem eine hohe Empfindlichkeit und eine sehr hohe räumliche zeitliche Auflösung sowie die Robustheit, da keine manuelle Positionierung der Sonden durch die Bediener erforderlich ist. Eines der wichtigsten Krankheitsmodelle, die mit diesem Protokoll untersucht werden können, ist der Myokardinfarkt.Es können jedoch auch andere kardiometabolische Erkrankungen und auch das Ansprechen auf die Therapie untersucht werden. Zum Beispiel interessiert sich unsere Gruppe für die Rolle von Fettleibigkeit und Diabetes auf den Herzstoffwechsel und die Herzfunktion. Die in diesem Protokoll enthaltenen Schritte können von Benutzern ohne Erfahrung leicht befolgt werden.Einige Schritte wie Schwanzvenenkanülierungen und Blutentnahmen können jedoch etwas Training und Erfahrung erfordern, um reproduzierbar durchgeführt zu werden. Federica La Rosa, wissenschaftliche Mitarbeiterin aus unserem Labor, Federico Granziera, Doktorand der Sant'Anna School of Advanced Studies, und Domiziana Terlizzi, Tierärztin der Fondazione Toscana Gabriele Monasterio, demonstrieren das Verfahren. Setzen Sie zunächst die Maus kopfüber in Rückenlage auf das Scannerbett des PET/CT-Tomographen, stecken Sie ihre Nase zur Anästhesie in die Nasenmaske und blockieren Sie den Kopf der Maske sanft mit Klebeband.Fixieren Sie die oberen und unteren Gliedmaßen auf dem Scannerbett, um unwillkürliche Bewegungen während bildgebender Verfahren zu vermeiden, die zu Bewegungsartefakten führen können. Überwachen Sie die Körpertemperatur mit einer rektalen Sonde und die Atemfrequenz mit einem Atemkissen. Für Mäuse ziehen Sie 100 bis 150 Mikroliter 10 Megabecquerel Fluor-18 FDG mit einer Insulinspritze.Wenn die ursprüngliche Konzentration des Tracers in der Durchstechflasche hoch ist, verdünnen Sie den Tracer mit Kochsalzlösung auf eine Konzentration von 50 bis 100 Megabecquerel pro Milliliter. Verwenden Sie den PET-Dosiskalibrator, um die tatsächliche Aktivität in der Spritze zu messen. Kommentieren Sie die Aktivität vor der Injektion und den Zeitpunkt der Messung, da diese Werte später mit speziellen Eingabemodulen der grafischen Benutzeroberfläche des PET-Scanners verwendet werden.Wenn Sie Iomeprol verwenden, stellen Sie die Injektionsrate auf 10 Milliliter pro Stunde und das Volumen auf 0,5 Milliliter ein. Schließen Sie die Spritze an die Spritzenpumpe an und stellen Sie die Pumpe auf die tatsächliche Spritzengröße und den tatsächlichen Durchmesser ein, verbinden Sie dann die Spritze mit dem CA-Schlauch und der Nadel und füllen Sie den Schlauch mit der CA vor. Stellen Sie die Injektionsrate auf 10 Milliliter pro Stunde ein und begrenzen Sie das Einspritzvolumen auf 0,5 Milliliter. Verwenden Sie für die Iomeprol-Injektion eine Spritzenpumpe, die eine langsame Injektion mit einer konstanten Rate mit einer bereits eingestellten Injektionsrate von 10 Milliliter pro Stunde ermöglicht.Begrenzen Sie das Injektionsvolumen auf 0,5 Milliliter, stoppen Sie die Injektion nach drei Minuten. Nachdem Sie sichergestellt haben, dass der Schlauch und die Nadel mit CA vorgefüllt sind, verbinden Sie die am CA-Schlauch befestigte Nadel mit der Kanüle der Schwanzvene. Starten Sie die Injektion.Schließen Sie den Deckel des Scanners und bereiten Sie sich auf den Cine-CT-Scan vor. Drücken Sie nach 60 Sekunden nach Beginn der Injektion die Taste Continue (Weiter) auf der Benutzeroberfläche des Tomographen, um die Cine-CT-Erfassung zu starten. Die Injektion von CA wird ungefähr zur gleichen Zeit wie der Abschluss des Cine-CT-Scans beendet.Öffnen Sie die DICOM-Bilder des dynamischen PET-Scans. Wählen Sie das Herz-Plugin-Modul aus. Zoomen Sie in das Maus- oder Rattenherzbild und wählen Sie den letzten Zeitrahmen oder die Summe der letzten drei bis fünf Zeitrahmen, für die der größte Teil der Blutpoolaktivität bereits ausgewaschen wurde.Folgen Sie den Anweisungen auf dem Bildschirm, um das Bild entlang der Hauptachse des Tierherzens neu auszurichten. Tun Sie dies interaktiv, indem Sie die angezeigten Marker für die Herzbasis und die Spitze verschieben. Wählen Sie als Nächstes das Segmentierungswerkzeug aus.Wenn das Ergebnis der automatischen Segmentierung nicht akzeptabel ist, verfeinern Sie die Form des segmentierten Myokards oder der linken Ventrikelhöhle, indem Sie den manuellen Modus ROI-Suche deaktivieren. Wählen Sie im Modellierungswerkzeug das entsprechende kinetische Modell oder die dynamische PET-Analyse aus. Wählen Sie in diesem Fall grafisch und dann Patlak, um die Patlak-Diagrammanalyse zu aktivieren, um die metabolische Rate der Glukoseaufnahme für jeden Herzsektor zu berechnen.Wählen Sie anschließend im Polarkartenwerkzeug die richtige Anzahl der angezeigten Herzsegmente aus. Wählen Sie in diesem Fall 17 Segmente aus. Drücken Sie nun die Taste Fit, um den Anpassungsvorgang der Patlak-Analyse durchzuführen.Beachten Sie am Ende des Anpassungsvorgangs die angezeigte Polarkarte der KI-Werte. Laden Sie die DICOM-Bilder des Cine-CT-Scans in die Software. Öffnen Sie dann den dynamischen Datensatz mit dem integrierten 4D-Viewer.Und mit dem 3D-Multiplayer-Reformations- oder MPR-Werkzeug können Sie die Bilddaten entlang der kurzen Achse neu ausrichten. Exportieren Sie die neu ausgerichteten Daten nach DICOM und stellen Sie sicher, dass die gesamten 4D-Daten mit erhaltener Schichtdicke und Bildbittiefe von 16 Bit pro Voxel exportiert werden. Öffnen Sie die exportierten 4D MPR-Bilder mit dem 4D Viewer, wählen Sie dann einen Zeitrahmen aus, der der Enddiastole entspricht, und durchsuchen Sie alle Zeitrahmen mit dem Zeitschieberegler in der Hauptsymbolleiste, um sicherzustellen, dass die richtige Herzphase ausgewählt ist.Wählen Sie in diesem Zeitrahmen das geschlossene Polygon-Anmerkungswerkzeug aus und skizzieren Sie manuell die Endokardwand des linken Ventrikels. Machen Sie dasselbe für 10 bis 20 Slices von der Basis bis zum Apex, um sicherzustellen, dass alle ROIs den gleichen Namen haben. Wählen Sie anschließend im Menü ROI die Option ROI-Volumen aus, und generieren Sie dann fehlende ROIs, um die ROIs für alle kurzen Achsenscheiben durch Interpolation der manuell gezeichneten ROIs zu generieren.Wählen Sie dann ROI-Volumen, gefolgt von Rechenvolumen, um das Volumen der ROI-Gruppe mit demselben ROI-Namen zu berechnen. Durchsuchen Sie als Nächstes die Zeitrahmen, wählen Sie eine Phase aus, die der Endsystole entspricht, und berechnen Sie das Volumen der ROI-Gruppe mit demselben ROI-Namen wie gezeigt. Berechnen Sie schließlich das Hubvolumen und die Auswurffraktion anhand der im Manuskript beschriebenen Gleichung.Die Ergebnisse der automatischen Myokard- und Hohlkammersegmentierung einer CD1-Kontrollmaus sind hier dargestellt. Selbst bei gesunden Probanden werden bei PET häufig niedrigere rekonstruierte Werte um die Spitze beobachtet. Die grafische Patlak-Analyse zeigte ein Beispiel für die regionale KI, das Streudiagramm und die lineare Regressionsanalyse sowie die Werte der Steigung und des Schnittpunkts der linearen Anpassung für jedes Segment zusammen mit dem entsprechenden Determinationskoeffizienten.Bei der gesunden Ratte werden unterschiedliche Formen und Größen des linken Ventrikels für die enddiastolische und endsystolische Phase gezeigt. Mit der 3D-Rekonstruktion des segmentierten linken Ventrikelvolumens ergab die Berechnung der Volumina ein enddiastolisches Volumen von 0,361 Milliliter und ein endsystolisches Volumen von 0,038 Millilitern. Eine Volumendarstellung desselben Rattenherzens für die Enddiastole und Endsystole ermöglicht die Darstellung der jodverstärkten Kammern und Gefäße, so dass ihr Wert eher qualitativ als quantitativ ist.Halten Sie das Niveau der Anästhesie aufrecht und überprüfen Sie oft die physiologischen Parameter des Tieres während der Studie. Darüber hinaus muss eine erste Überprüfung der Durchgängigkeit der Kanülierung durchgeführt werden, um erfolglose Injektionen zu vermeiden. Aufgrund des nicht-invasiven Charakters dieser Studie kann das Tier nach dem Eingriff und dem Zerfall des radioaktiven Tracers geborgen werden, so dass praktisch jede andere Untersuchungsmethode angewendet werden kann.Andernfalls, wenn das Tier nach PET / CT-Bildgebung eingeschläfert wird, können alle Standard-Ex-vivo-Analysen an angeregtem Gewebe durchgeführt werden.

Research

JoVE Journal

Medicine

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Medizin

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