Name: the peel-blot technique: a cryo-em sample preparation method to separate single layers from multi-layered or concentrated biological samples
Uploaded: 2022-06-29T14:00:00
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이 작업의 일부는 NIH 보조금 HL090630(ISK)의 지원을 받았습니다.

1. 필 블롯 기술의 준비 단계
알림: 준비하려면 다음 항목을 서로 인접하게 배치해야 합니다.
<ol><li>20-25 μm 기공 크기 여과지 두 장을 쌓습니다( 재료 표 참조).</li>
	<li>~8cm x 10cm 길이의 파라핀 필름을 여과지 옆에 놓고 용지가 위를 향하도록 합니다.</li>
	<li>두 개의 추가 #4 여과지 위에 서브미크론 여과지를 놓습니다(그림 ...

<ol>
	<li>Johnson, M. C., Uddin, Y. M., Neselu, K., Schmidt-Krey, I. 2D crystallography of membrane protein single-, double- and multi-layered ordered arrays. Methods in Molecular Biology. 2215, 227-245 (2021).</li>
	<li>Ku&#776;hlbrandt, W., Downing, K. H. Two-dimensional structure of plant light harvesting complex at 3.7 &#197; resolution by electron crystallography. Journal .of Molecular Biology. 207&#160;(4), 823-828 (1989).</li>
	<li>Nannenga, B. L., Gonen, T. MicroED: a versatile cryoEM method for structure determination. Emerging Topics in Life Sciences. 2&#160;(1), 1-8 (2018).</li>
	<li>Martynowycz, M. W., Zhao, W., Hattne, J., Jensen, G. J., Gonen, T. Collection of continuous rotation microED data from ion beam-milled crystals of any size. Structure. 27&#160;(3), 545-548 (2019).</li>
	<li>Gonen, T. et al. Lipid-protein interactions in double-layered two-dimensional AQP0 crystals. Nature. 438&#160;(7068), 633-638(2005).</li>
	<li>Gonen, T. The collection of high-resolution electron diffraction data. Methods in Molecular Biology. 955, 153-169 (2013).</li>
	<li>Wisedchaisri, G., Gonen T. Phasing electron diffraction data by molecular replacement: strategy for structure determination and refinement. Methods in Molecular Biology. 955, 243-272 (2013).</li>
	<li>Gipson B., Zeng X., Zhang Z. Y., Stahlberg, H. 2dx-user-friendly image processing for 2D crystals. Journal of Structural Biology. 157&#160;(1), 64-72 (2007).</li>
	<li>Biyani, N. et al. Focus: The interface between data collection and data processing in cryo-EM. Journal of Structural Biology. 198&#160;(2), 124-133 (2017).</li>
	<li>Righetto, R., Stahlberg, H.Single particle analysis for high-resolution 2D electron crystallography. Methods in Molecular Biology. 2215, 267-284 (2021).</li>
</ol>

필 블롯은 Cryo-EM 데이터 수집 및 이미지 처리를 위해 다층 2D 결정 및 유사한 샘플의 적층 및 두께를 극복하는 강력한 방법입니다. 필 블롯 사용에 대한 결정은 샘플의 생물학적 파라미터를 기반으로 하며 3D Cryo-EM 모델을 사용할 수 있게 되면 평가도 필요합니다. 접촉의 생물학적 중요성과 접촉 영역의 잠재적 유연성은이 평가에서 특히 중요합니다.
필 블롯의 수는 처음에는 표...

필 블롯 기술은 적층된 막 단백질의 2차원 결정을 단층으로 분리하여 Cryo-EM 2D 및 3D 데이터 수집에 적합한 얇은 샘플을 얻고이미지 처리를 용이하게 하기 위해 개발되었습니다1. 이 프로토콜은 다른 유형의 다층 샘플뿐만 아니라 Z 단위의 두께를 늘리지 않고 그리드에서 두 샘플 유형의 높은 샘플 농도를 달성하는 데에도 적합합니다.
샘플 층을 하나의 층으로 감소시키는 것은 역주입 방법(2) 상에서 실질적으로 연장되고 변형되는 프로토콜에서 모세관 압력과 전단력의 조합을 적용함으로써 달성된다. 첫 번째 블로팅 단계는 백 주입 방법에서 20-25μm 여과지 기공 크기가 아닌 서브 마이크론에서 블로팅하는 동안 다층 샘플의 양쪽에 탄소 필름과 그리드 바를 단단히 샌드위치하고 부착시킵니다. 개별 층의 분리 또는 박리는 그리드가 트레할로스 드롭에 수직으로 눌려지면 샌드위치 된 층을 강제로 분리 할 때 발생하여 탄소 필름이 그리드 막대에서 멀어집니다 (그림 1). 그리드 바와의 원래 접촉점에서 멀리 떨어진 탄소 필름의 위치 변경은 그리드가 서브 마이크론 여과지에서 다시 한번 블롯 될 때 다음 단계에서 발생합니다. 이러한 단계의 반복 횟수는 특정 샘플에 대해 최적화할 수 있습니다. 또한 이 프로토콜을 사용하여 Z의 응집을 피하면서 샘플 농도를 높일 수 있습니다. 그리드 바 및 탄소 필름에 대한 부착과 강제 분리에 의존하기 때문에 이 접근법은 특정 섬세하거나 불안정한 단백질 및 단백질 복합체와 같은 매우 깨지기 쉬운 분자에는 적합하지 않을 수 있습니다.
필 블롯 기술은 특수 장비나 값비싼 소모품이 필요하지 않습니다. 그러나 특정 샘플에 대한 적용 가능성은 생물학적 매개 변수에 대한 신중한 고려가 필요합니다. 평탄도를 보장하기 위해 탄소 필름이 필요하기 때문에 2D 결정의 경우 결정이 더 쉽지만 필 블롯 기술을 통한 조작은 샘플의 생물학적 무결성 또는 결정 순서에 영향을 미칠 수 있습니다. 단일 입자에 대한 필 블롯 기술의 적합성은 탄소 필름이 필요하고 조작에 안정적인 것으로 제한되며 테스트 될 수 있습니다. 층 사이에 중요한 생물학적 상호 작용이있는 표본은 이러한 상호 작용의 중단으로 인해 필 블롯 기술의 도움으로 특성화에 적합하지 않을 수 있습니다.
필 블롯 기술("필 블롯")은 실온에서 TEM에 의한 음성 염색 또는 염색되지 않은 샘플로 테스트 및 스크리닝함으로써 가장 빠르게 최적화됩니다. 최적의 필 블롯 반복 횟수가 확인되면 유리화 전에 두께를 제어하는 시간을 결정할 수 있습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>600-mesh grids</td>
			<td>SPI</td>
			<td>2060-C-XA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-capillary forceps</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>510-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbon to coat mica</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryo-EM</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Cryo-EM grids may be screened at 120 kV or 200 kV.&#160; High-resolution data is collected at 300 kV.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dumpont #5 forceps</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>5622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Grid box for cryo-EM storage</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>160-40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Kim Wipes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid nitrogen</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mica</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>56</td>
			<td>The mica is carbon-coated and cut into squares that are slighlty larger than a TEM grid.&#160; The carbon thickness may require optimization to avoid thin carbon that breaks easily upon multiple peel blots.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Negative stain</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1-2% uranyl acetate is suitable for many samples.&#160; Other stains such as phosphotungstic acid can be substituted.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parafilm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polystyrene container</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Used for vitrifying the peel-blot grid. A polystyrene shipping container can be recycled for this purpose and lined with aluminium foil.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Submicron filter paper</td>
			<td>MilliporeSigma</td>
			<td>DAWP04700</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transmission electron microscope</td>
			<td>JEOL</td>
			<td>JEM-1400</td>
			<td>Any TEM operated at an accelerating voltage of 80-120 kV will be suitable for screening of negatively stained grids.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trehalose</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Prepare 4% trehalose solution.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Whatman #4 filter paper</td>
			<td>MilliporeSigma</td>
			<td>WHA1004150</td>
			<td>This corresponds to the 20-25 &#956;m pore size filter paper in the protocol.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the peel-blot technique: a cryo-em sample preparation method to separate single layers from multi-layered or concentrated biological samples

필 블롯 Cryo-EM 그리드 준비 기술은 다층 시료의 층을 줄이기 위해 크게 수정된 역주입 방법입니다. 플런지 동결 전에 층을 제거하면 시료 두께를 Cryo-EM 데이터 수집에 적합한 수준으로 줄이고 시료 평탄도를 개선하며 이미지 처리를 용이하게 하는 데 도움이 될 수 있습니다. 필 블롯 기술은 다층 멤브레인을 단일 층으로 분리하고, 층상 2D 결정을 개별 결정으로, 용해성 단백질의 적층 된 시트 모양의 구조를 단일 층으로 분리 할 수 있습니다. 이러한 유형의 시료의 높은 시료 두께는 특히 데이터 수집을 위해 현미경 스테이지를 기울여야 하는 경우 Cryo-EM 데이터 수집 및 Cryo-EM 이미지 처리에 극복할 수 없는 문제를 자주 제기합니다. 또한, 그리드 준비 이전의 샘플 농도를 증가시킬 수 있고 필 블롯 기술을 조정하여 단층 표본의 조밀 한 분포를 초래할 수 있기 때문에 이러한 샘플 중 임의의 고농도의 그리드를 효율적으로 데이터 수집을 위해 준비 할 수 있습니다.

성공적인 필 블롯 실험은 종종 고농도의 단일 샘플 층을 생성합니다. 대부분의 그리드 사각형의 일부 영역에는 여전히 여러 레이어가 포함될 것으로 예상되며, 특히 필 블롯 단계의 반복 횟수가 적습니다. 그러나 대부분의 그리드 사각형에는 인간 류코트리엔 C4 합성 효소 (그림 2) 및 리포좀 (3.2 단계, 그림 3에 추가됨)의 2D 결정에서 관찰 된 바?...

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The Peel-Blot Technique: A Cryo-EM Sample Preparation Method to Separate Single Layers From Multi-Layered or Concentrated Biological Samples

필 블롯 기술은 다층 및 농축된 생물학적 샘플을 단일 레이어로 분리하여 두께를 줄이고 샘플 농도를 높이며 이미지 처리를 용이하게 하는 Cryo-EM 그리드 준비 방법입니다.

필 블롯 기법: 다층 또는 농축된 생물학적 시료에서 단층을 분리하는 Cryo-EM 시료 전처리 방법

The peel-blot cryo-EM grid preparation technique is a significantly modified back-injection method with the objective of achieving a reduction in layers ...

필 블롯 기술을 사용하면 다층 및 농축된 생물학적 Cryo-EM 샘플을 단일 레이어로 분리하여 두께를 줄이고 농도를 높이며 이미지 처리를 용이하게 할 수 있습니다. 그리드 준비 전에 시료 농도를 높일 수 있으며, 필 블롯을 조정하여 매우 효율적인 데이터 수집을 위해 단층 표본을 조밀하게 분포시킬 수 있습니다. 시작하려면 20-25 마이크로 미터 기공 크기의 여과지 두 장을 쌓고 종이가 위를 향하도록 긴 파라핀 필름을 옆에 놓습니다.두 개의 추가 여과지 위에 서브미크론 여과지 한 장을 놓습니다. 구부러진 다리가 위를 향하고 직선 다리가 아래를 향하도록 모세관 방지 집게를 놓고 매끄럽거나 반짝이는 면이 위로 향하도록 600메쉬 그리드를 선택합니다. 깨끗한 그리드가 다른 품목과 접촉하지 않도록 집게를 페트리 접시 또는 기타 융기된 표면에 놓습니다.파라핀 필름에서 용지를 제거하고 측면을 당겨 작은 테두리를 만듭니다. 피펫 두 개의 150 마이크로 리터 방울 그래서 파라핀 필름의 한쪽 짧은 면으로부터 약 1-2 센티미터에서 4 % 트레할로스 용액. 두 방울은 약 1cm 떨어져 있어야합니다.그런 다음 별도의 벤치 또는 바닥에 액체 질소를 작은 폴리스티렌 폼 용기에 붓고 작은 cryo-EM 그리드 용기를 액체 질소에 놓습니다. 폴리스티렌 폼 용기를 보푸라기가없는 물티슈로 덮으십시오. 운모에서 탄소 필름을 띄우려면 Dumont 5 집게를 사용하고 트레할로스 용액 방울 중 하나에서 운모의 한쪽을 아래쪽으로 약간 비스듬히 만집니다.운모를 아래쪽으로 움직여 물의 장력이 탄소 필름에서 천천히 들어 올려지도록합니다. 탄소 필름이 물방울 표면에 떠 있으면 운모를 방출하십시오. 균열 형태의 손상이있는 탄소를 사용하지 않도록 탄소 필름을 육안으로 검사하십시오.모세관 방지 집게가 잡고 있는 그리드를 20-30도 각도로 인접한 위치의 트레할로스 드롭에 삽입한 다음 그리드를 탄소 필름 아래 중앙에 놓습니다. 탄소 필름을 집어 들고 그리드를 같은 방향으로 유지하고 방울의 표면 장력을 깨지 않고 그리드를 트레할로스 두 번째 방울 표면으로 천천히 내립니다. 이렇게 하면 그리드 가장자리를 거친 쪽으로 감았을 수 있는 불필요한 탄소 필름이 제거됩니다.모세관 방지 집게를 회전시켜 그리드의 탄소 면이 아래를 향하도록 페트리 접시에 놓습니다. 1.3 마이크로리터의 샘플을 그리드 상단의 약간의 트레할로스 메니스커스에 피펫팅합니다. 그런 다음 용액을 약 8-10회 피펫팅하여 트레할로스와 샘플을 그리드의 양쪽에 혼합하고 분배합니다.하나 이상의 트레할로스 용액을 파라핀 필름 상에 떨어뜨리고 1분 동안 그리드 상에서 샘플 트레할로스 용액을 인큐베이션한다. 탄소 필름이 위를 향하도록 그리드를 원래 위치로 다시 회전시키고 모세관 방지 집게를 사용하여 그리드를 서브미크론 여과지에 누릅니다. 용액이 여과지에 흡수되고 탄소 필름이 평평하게 놓이면 그리드를 들어 올려 1.7 마이크로 리터의 트레할로스 용액 방울에 수직으로 이동하기 전에 3 초 동안 기다리십시오.이러한 단계는 샘플에 따라 1-3회 이상 반복할 수 있습니다. 두 개의 여과지에 그리드를 닦아낸 다음 그리드를 필터 페이퍼에서 들어 올립니다. 습도 및 시료 버퍼에 따라 약 13초 후에 그리드를 작은 스티로폼 용기의 액체 질소에 넣고 Cryo-EM 그리드 용기에 넣거나 Cryo-EM 스크리닝 또는 데이터 수집을 위해 직접 옮깁니다.필 블롯 방법을 거친 인간 류코트리엔 C4 합성 효소의 2D 결정 샘플이 여기에 표시됩니다. 화살표의 왼쪽 영역은 탄소 필름과 그리드 막대 사이의 접촉 영역에서 단층 2D 결정으로 크게 축소되어 박리 블롯 된 다음 이동되었습니다. 화살표 오른쪽 영역은 필 블롯의 영향을 받지 않았습니다.이미지의 아래쪽 절반은 필 블롯의 적용으로 인해 발생하는 크고 대부분 단층 인 지질 이중층이있는 영역을 나타냅니다. 상반부는 그리드 바와 탄소 필름 사이의 접촉 영역에 있지 않았고, 따라서 두 개의 인지질 이중층을 갖는 완전한 리포좀을 함유하였다. 400 메쉬 그리드의 그리드 사각형은 그리드 막대의 풋프린트와 결과 필 블롯된 영역뿐만 아니라 그리드 바와 접촉하지 않았거나 더 적은 필 블롯 반복을 거친 영역을 보여줍니다.이들 이미지는 매우 얇은 탄소 필름을 사용하여 서브마이크론 여과지에 다시 주입하여 제조된 EM 그리드의 블롯팅을 보여주었다. 이미지는 멤브레인과의 초기 접촉시 단일 프레임, 접촉 후 1, 000 밀리 초 및 접촉 후 2, 000 밀리 초입니다. 화살표는 모세관 압력이 탄소 막을 파열시킨 격자 사각형을 나타냅니다.탄소 필름의 파손을 방지하고 서브미크론 여과지와 1.7마이크로리터 트레할로스 드롭을 결합하여 흡입한 다음 층을 분리하는 것이 핵심 단계입니다. 필 블롯된 샘플은 고해상도 Cryo-EM 데이터 수집에 사용되며, 구조 결정을 위한 이미지 처리가 이루어집니다. 필 블롯을 사용하면 이전에는 Cryo-EM에 비해 너무 두꺼웠던 단층 단백질 2D 결정을 구조화할 수 있습니다.또한 다양한 샘플을 탄소 필름의 단일 층으로 농축 할 수 있습니다.

Research

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