Name: genotyping single nucleotide polymorphisms in the mitochondrial genome by pyrosequencing
Uploaded: 2023-02-10T13:50:00
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Nos gustaría agradecer a Silvia Marchet y Constanza Lamperti (Istituto Neurologico "Carlo Besta", Fondazione IRCCS, Milán) por preparar y proporcionar las células cíbridas m.3243A>G utilizadas como ejemplos ilustrativos para este protocolo. También nos gustaría agradecer a los miembros del Grupo de Genética Mitocondrial (MRC-MBU, Universidad de Cambridge) por su útil discusión durante el curso de esta investigación. Este trabajo fue apoyado por fondos básicos del Consejo de Investigación Médica del Reino Unido (MC_UU_00015/4 y MC_UU_00028/3). P.A.N. y P.S.-P. cuentan además con el apoyo de The Lily Foundation y The Champ Foundation, respectivamente.

Se proporcionó consentimiento informado para el uso de las células cíbridas humanas 3243A>G y las MEF m.5024C>T inmortalizadas utilizadas en este estudio. La aprobación ética no fue requerida en este caso ya que las células del paciente no se recolectaron en la Universidad de Cambridge. Sin embargo, el uso de fibroblastos humanos puede requerir aprobación ética. Se recomienda encarecidamente seguir las mejores prácticas para la configuración de PCR al preparar la muestra de ADN para la pirosecuenciación. La am...

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F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+single-cell+mitochondrial+DNA+copy+number+and+heteroplasmy+using+digital+droplet+polymerase+chain+reaction.">Measuring single-cell mitochondrial DNA copy number and heteroplasmy using digital droplet polymerase chain reaction.</a> Journal of Visualized Experiments. (185), e63870 (2022).</li></ol>

Un aspecto crítico para el éxito del protocolo es evitar contaminaciones, particularmente cuando se utilizan bajas cantidades de material de partida. Se recomienda utilizar una campana UV y puntas de pipeta filtradas al preparar las muestras siempre que sea posible, así como mantener separadas las áreas de preamplificación y postamplificación. Siempre deben incluirse mediciones en blanco y muestras de heteroplasmia conocida (como ADN de tipo salvaje) para ser utilizadas como puntos de referencia para verificar el s...

El genoma mitocondrial existe en forma de pequeñas moléculas circulares (ADNmt) (16,5 kb) presentes en el compartimento más interno de las mitocondrias llamado matriz y codifica 13 subunidades de la cadena respiratoria mitocondrial, así como los ARNt y ARNr necesarios para su traducción in situ por el ribosoma mitocondrial1. Este genoma representa aproximadamente el 1% de todas las proteínas necesarias para la función mitocondrial, el resto de las cuales están codificadas por el ADN nuclear (ADNn). Comúnmente se asume que las mitocondrias se derivan de un evento de fusión endosimbiótica entre un ancestro alfa-proteobacteriano y una célula eucariota ancestral. Una vez que tuvo lugar esta simbiosis hipotética, la información genética de las mitocondrias se transfirió gradualmente al núcleo durante eones, lo que explica la compacidad antes mencionada del ADNmt en comparación con los genomas de las cianobacterias modernas2. Tal transferencia de genes se evidencia más fuertemente por la existencia de largos tramos de ADNn que son altamente homólogos a las secuencias que se encuentran en el ADNmt. Estas secuencias mitocondriales nucleares (NMT) son una fuente común de interpretación errónea durante el genotipado, y se deben tomar ciertas precauciones para evitar sesgos nucleares al genotipar el ADNmt3 (Figura 1A).
Otra característica distintiva del ADNmt es que su número de copias varía según el tipo de célula, numerando desde decenas hasta miles de copias por célula4. Debido a esta naturaleza de múltiples copias, el ADNmt puede albergar una amplia gama de genotipos dentro de una sola célula, lo que puede resultar en una distribución más continua de alelos en contraste con los alelos discretos asociados con genes nucleares cuando se considera la cigosidad de los cromosomas. Esta heterogeneidad de alelos mitocondriales se conoce como heteroplasmia mitocondrial, que generalmente se expresa en el porcentaje de prevalencia de una mutación dada como proporción del ADNmt total en una célula dada. La heteroplasmia se puede contrastar con la homoplasmia, que se refiere a una especie única de ADNmt presente en una célula.
La medición de la heteroplasmia mitocondrial es de particular interés cuando se cuantifica la proporción de moléculas de ADNmt que albergan variantes patogénicas. Tales variantes vienen en forma de polimorfismos de nucleótido único (SNP), pequeños indeles o deleciones a gran escala5. La mayoría de los seres humanos son heteroplásmicos para variantes patogénicas; sin embargo, no exhiben fenotipos clínicos, que a menudo sólo se manifiestan a niveles más altos de heteroplasmia de ADNmt patógeno en un fenómeno denominado efecto umbral6. Si bien los valores asociados con la patogenicidad dependen en gran medida de la naturaleza de la mutación patogénica y del tejido en el que ocurre, generalmente se encuentran por encima del 60% de heteroplasmia7.
Hay varias áreas de investigación en las que el genotipado mitocondrial es común. En el campo de la medicina, las pruebas o cuantificaciones de mutaciones en ADNmt pueden servir como criterio diagnóstico para enfermedades mitocondriales, muchas de las cuales tienen como origen las aberraciones del ADNmt5. Además del estudio de las mutaciones patogénicas humanas, es probable que aumente la prevalencia de modelos animales que albergan SNP patógenos en el ADNmt, dado el reciente advenimiento de la edición de bases mitocondriales habilitada por los editores de bases de citosina derivados de DddA (DdCBE)8 y las desaminasas basadas en TALE (TALED) para la edición de bases de adenina9. Este enfoque será fundamental para comprender la interacción entre los genotipos mitocondriales aberrantes y las disfunciones resultantes. También hay investigaciones científicas en curso sobre la remodelación del genoma mitocondrial para su uso final como estrategia terapéutica en enfermedades mitocondriales humanas a través de un enfoque conocido como desplazamiento de heteroplasmia. Este campo de investigación consiste principalmente en dirigir nucleasas específicas de mutación a la matriz mitocondrial; esto resulta en la degradación preferencial del ADNmt patógeno, lo que lleva a rescates en el fenotipo10,11,12,13. Cualquier experimento que implique la remodelación del genotipo mitocondrial requiere un método cuantitativo robusto para evaluar los cambios de heteroplasmia.
Se utiliza una amplia variedad de métodos para genotipar el ADNmt, y estos varían según la naturaleza de la mutación. Los métodos de secuenciación de próxima generación (NGS) son más precisos cuando se trata de cuantificar SNP en ADNmt; Sin embargo, estos métodos siguen siendo prohibitivamente caros para la cuantificación rutinaria de la heteroplasmia mitocondrial, particularmente si el número de muestras es pequeño. La secuenciación de Sanger también puede permitir la detección de SNP; Sin embargo, este enfoque no es cuantitativo y a menudo no detecta niveles bajos de heteroplasmia o puede ser inexacto al estimar heteroplasmias altas. La pirosecuenciación, como un ensayo que implica una preparación mínima y permite la cuantificación rápida de la heteroplasmia para cualquier muestra de ADNmt, se propone como un compromiso adecuado entre estos dos extremos. Este método ha sido utilizado rutinariamente para cuantificar SNPs mitocondriales por numerosos investigadores en diversos contextos, incluyendo análisis forenses 14,15, diagnóstico clínico16, o el genotipado de ADNmt a partir de células individuales17.
Este ensayo implica un primer paso de preamplificación por PCR de una región que flanquea el SNP en el ADNmt, que es seguido por un ensayo de secuenciación por síntesis utilizando una hebra del amplicón generado previamente. Uno de los dos cebadores utilizados en la etapa de preamplificación debe ser biotinilado en el extremo 5', lo que permitirá que el aparato de pirosecuenciación aísle la cadena única de ADN que se utilizará como plantilla para la reacción de secuenciación. Luego se recocece un tercer cebador de secuenciación en la hebra biotinilada retenida, lo que permite la síntesis de ADN naciente como desoxinucleótidos que se dispensan en un orden predefinido en la cámara de reacción. El pirosecuenciador registra la cantidad de cada base incorporada en base a una lectura luminiscente, permitiendo la cuantificación relativa de alelos mitocondriales mutantes y de tipo salvaje sobre la síntesis de ADN (Figura 1B). La luminiscencia es generada por una enzima luciferasa, que emite luz en presencia de ATP que una ATP sulfurilasa sintetiza de novo en cada evento de incorporación a partir de los pirofosfatos liberados por cada nucleótido. Estas dos reacciones se pueden resumir de la siguiente manera:
1. PPi (de incorporación de nucleótidos) + APS → ATP + sulfato (ATP sulfurilasa)
2. ATP + luciferina +O2 → AMP + PPi + oxiluciferina + CO2 + luz (luciferasa)
La detección de bases de adenina por el pirosecuenciador sin reacción cruzada de ATP con la luciferasa en la segunda reacción es un desafío. Sin embargo, esto se resuelve mediante el uso de un análogo de adenina para la síntesis de ADN, a saber, dATPαS. A pesar de no ser un sustrato perfecto para la luciferasa, produce una luminiscencia más fuerte en comparación con los otros tres nucleótidos, que se ajusta digitalmente mediante el pirosecuenciador y se establece en un factor de 0,9. Debido a esta variabilidad inherente, se sugiere evitar la secuenciación de adenina en la posición SNP (ver la discusión para más detalles).
El siguiente protocolo detalla el método de evaluación de heteroplasmia de ADNmt mediante pirosecuenciación y describe las precauciones necesarias en el diseño de los cebadores de amplificación para evitar sesgos biológicos o técnicos al genotipar SNP en ADNmt. Este último implica inspeccionar digitalmente y seleccionar los conjuntos de cebadores, optimizar la PCR de preamplificación y, finalmente, secuenciar y refinar el ensayo. Se demuestran dos ensayos de ejemplo aplicados: primero, la optimización de la variante patógena humana más común m.3243A>G18, y segundo, el genotipado de células de fibroblastos embrionarios (MEF) de ratón que han sufrido un cambio de heteroplasmia utilizando tecnologías desarrolladas en el laboratorio Minczuk en Cambridge 10,11,12,19,20,21,22.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>KOD Hot Start DNA Polymerase</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>71086</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PyroMark Assay Design&#160;2.0</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pyromark Q48 Absorber Strips&#160;</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>974912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PyroMark Q48 Advanced CpG Reagents (4 x 48)</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>974022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pyromark Q48 Autoprep&#160;</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>9002470</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PyroMark Q48 Cartridge Set</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>9024321</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pyromark Q48 Disks</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>974901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pyromark Q48 Magnetic beads&#160;</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>974203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PyroMark Q48 Software License (1)</td>
			<td>QIAGEN</td>
			<td>9024325</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

genotyping single nucleotide polymorphisms in the mitochondrial genome by pyrosequencing

Las mutaciones en el genoma mitocondrial (ADNmt) se han asociado con enfermedades genéticas hereditarias por la madre. Sin embargo, el interés en los polimorfismos de ADNmt ha aumentado en los últimos años debido a la capacidad recientemente desarrollada para producir modelos mediante mutagénesis de ADNmt y una nueva apreciación de la asociación entre las aberraciones genéticas mitocondriales y las enfermedades comunes relacionadas con la edad, como el cáncer, la diabetes y la demencia. La pirosecuenciación es una técnica de secuenciación por síntesis que se emplea ampliamente en todo el campo mitocondrial para experimentos de genotipado de rutina. Su relativa asequibilidad en comparación con los métodos de secuenciación paralela masiva y su facilidad de implementación la convierten en una técnica invaluable en el campo de la genética mitocondrial, lo que permite la cuantificación rápida de la heteroplasmia con mayor flexibilidad. A pesar de la practicidad de este método, su implementación como medio de genotipado de ADNmt requiere la observación de ciertas pautas, específicamente para evitar ciertos sesgos de origen biológico o técnico. Este protocolo describe los pasos y precauciones necesarios en el diseño e implementación de ensayos de pirosecuenciación para su uso en el contexto de la medición de heteroplasmia.

Esta sección presenta un ejemplo de optimización de un ensayo de pirosecuenciación para una mutación patógena humana de ADNmt, así como datos de secuenciación del genotipado de fibroblastos embrionarios (MEF) de ratón heteroplásmicos (m.5024C>T) tratados con nucleasas mitocondriales de dedos de zinc (mtZFN). La optimización del ensayo para células humanas y la comparación de dos ensayos diferentes demuestra cómo seleccionar el más preciso, mientras que el genotipado de células MEF modificadas genéticament...

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Genotyping Single Nucleotide Polymorphisms in the Mitochondrial Genome by Pyrosequencing

Los ensayos de pirosecuenciación permiten el genotipado robusto y rápido de polimorfismos de nucleótido único de ADN mitocondrial en células o tejidos heteroplásmicos.

Genotipado de polimorfismos de nucleótido único en el genoma mitocondrial mediante pirosecuenciación

Mutations in the mitochondrial genome (mtDNA) have been associated with maternally inherited genetic diseases. However, interest in mtDNA polymorphisms ...

La pirosecuenciación es una técnica de secuenciación por síntesis que se puede utilizar para genotipar polimorfismos de nucleótido único en el ADN mitocondrial. Este método es ventajoso en su facilidad de implementación y rentabilidad en comparación con otros métodos de secuenciación. Se puede utilizar fácilmente como método de diagnóstico para ciertas enfermedades mitocondriales mediante la determinación de valores de heteroplasmia de variantes patogénicas en el ADN mitocondrial.Para comenzar, obtenga un archivo de secuencia de ADN mitocondrial para la especie que se está genotipando e identifique la posición del polimorfismo de nucleótido único, o SNP. Asegúrese de que la secuencia de referencia utilizada emplea la numeración de base adecuada para la mutación estudiada, de modo que la posición del SNP pueda identificarse fácilmente. Copie 1.000 pares de bases aguas arriba y aguas abajo del sitio SNP y pegue la secuencia truncada en el software de diseño de imprimación de pirosecuenciación.Resalte la base polimórfica, haga clic con el botón derecho sobre ella y, a continuación, seleccione Establecer región de destino para establecer la base SNP analizada como el objetivo del ensayo de pirosecuenciación. Presione el icono Play en la esquina superior derecha de la interfaz para iniciar la selección del cebador y espere a que el software genere automáticamente los tríos de cebadores, dos cebadores para la preamplificación del ADN de la plantilla y el tercer cebador para la secuenciación por la síntesis en la máquina de pirosecuenciación. Haga clic con el botón derecho y seleccione Copiar todos los juegos de imprimación para conservar todos los juegos de cebadores.Abra el software de ejecución suministrado con el pirosecuenciador, seleccione Nuevo ensayo y, a continuación, seleccione la plantilla de ensayo de cuantificación de alelos. Introduzca la secuencia a analizar en el cuadro correspondiente escribiendo los nucleótidos directamente aguas abajo del cebador de secuenciación. Para la posición variable, denote las dos bases posibles, separadas por una barra.Presione Generar orden de dispensación y deje que el software determine automáticamente un orden adecuado para que los nucleótidos se dispensen en la secuenciación por reacción de síntesis. Guarde y proporcione un nombre para el ensayo. A continuación, ejecute la ejecución diluyendo el ADN a analizar a 5 nanogramos por microlitro.En la primera ejecución, asegúrese de incluir muestras de heteroplasmia conocida como referencia y muestras de tipo salvaje. Luego realice una PCR de presecuenciación de 5 microlitros de ADN diluido y 25 microlitros de reacciones, utilizando los cebadores de amplificación y los parámetros. Para ejecutar la configuración del archivo, seleccione Nueva ejecución en el software del pirosecuenciador.El pirosecuenciador puede secuenciar simultáneamente 48 reacciones preamplificadas separadas con un cuadrado vacío que representa un solo pozo de secuenciación en un disco de pirosecuenciación. Cargue los ensayos haciendo clic con el botón derecho en un cuadrado y seleccionando Cargar ensayo. Si es necesario, secuencie hasta cuatro ensayos separados con diferentes cebadores de secuenciación.Establezca el modo de dispensación de cebador en automático para asignar automáticamente una cámara de inyección para cada cebador de secuenciación utilizado para la ejecución. Establezca el modo de ejecución en estándar, a menos que ejecute cuatro tipos diferentes de ensayos en un disco de secuenciación. Asegúrese de que el número de ensayos en el archivo de plantilla de ejecución coincida con el número de reacciones de PCR que se amplifican.A continuación, guarde los archivos de ejecución en una unidad USB. Para preparar el pirosecuenciador, presione el botón de limpieza en la pantalla táctil principal del dispositivo y limpie todos los inyectores con agua de alta pureza, siguiendo las instrucciones en la pantalla. Al insertar la tira absorbente en la máquina, asegúrese de que los extremos se encuentren en la posición de las 9 en punto.Después de conectar la memoria USB, presione el botón Secuencia para cargar los archivos de ejecución preparados anteriormente. Siga las instrucciones del dispositivo para cargar y cebar los reactivos, según sea necesario, en los inyectores correspondientes de la máquina. Cargue 3 microlitros de perlas en los pozos y luego cargue 10 microlitros de cada reacción de PCR para secuenciarla en la muestra correspondiente.Pipetear hacia arriba y hacia abajo para mezclar la muestra con las perlas magnéticas. Busque la indicación en el pirosecuenciador cebado de que el disco se puede cargar en la máquina. Desenrosque la tuerca de sujeción de la placa y alinee la placa de muestra cargada con el pasador de metal en el compartimiento del disco.Una vez que la placa esté firmemente atornillada en el compartimento de la placa, inicie la ejecución de secuenciación presionando el botón de inicio en la interfaz de la pantalla táctil. Una vez completada la ejecución, retire la unidad USB de la máquina y vuelva a conectarla a la computadora que ejecuta el software del pirosecuenciador. Después de que el archivo de ejecución recién generado aparezca en la unidad USB, haga doble clic en el archivo Run Result.Esto analiza automáticamente la producción de luciferasa de cada pozo tras la incorporación de nucleótidos, y cuantifica el alelo mitocondrial de interés. Busque las puntuaciones de color mostradas por el software en función de la calidad de las lecturas. Para guardar los resultados, seleccione Informes en la ventana superior, seguido de Informe completo para generar un archivo PDF que contenga los pirogramas y los resultados de cada pozo de la carrera.Como alternativa, descargue los resultados en otros formatos en la pestaña Informes. Electroforesis en gel de agarosa de una amplificación por PCR utilizando los cebadores de amplificación de ambos conjuntos seleccionados para la mutación m. 3243A>G como se muestra en esta figura.Aquí, Het denota la muestra casi homoplásmica m. 3243A>G a analizar. En esta figura se muestra una comparación del rendimiento de ambos conjuntos de cebadores utilizando patrones molares para la calibración.Los valores medidos se denotan mediante las líneas punteadas verticales. Se muestra una función lineal X=Y para ilustrar qué tan cerca está cada uno de los dos ensayos probados de una medición ideal. Los nombres de las líneas celulares en el eje X son los nombres de los diversos clones cíbridos que fueron genotipados usando este ensayo.Los resultados del genotipado en cuatro clones cíbridos de heteroplasmia m. 3243A>G desconocida utilizando ambos ensayos se muestran aquí. La secuenciación se realizó por triplicado técnico.Aquí se muestran los resultados de genotipado de células tratadas con nucleasa de dedos de zinc mitocondriales, junto con controles no tratados y tratados simuladamente, y los pirogramas de dos réplicas de PCR de muestras de células MEF utilizadas para generar los resultados, así como el control de genotipado de tipo salvaje. La pirosecuenciación se puede utilizar como una lectura para experimentos de terapia génica para evaluar diversas tecnologías de terapia génica en el ADN mitocondrial.

Research

JoVE Journal

Medicine

The Use of Primary Human Fibroblasts for Monitoring Mitochondrial Phenotypes in the Field of Parkinson's Disease

El uso de fibroblastos humanos primarios para la Supervisión de fenotipos mitocondriales en el campo de la enfermedad de Parkinson

Parkinson's disease (PD) is the second most  common movement disorder and affects 1% of people over the age of 60 1. Because ageing is  the most important ...

Investigación

Medicina

Identification of Sleeping Beauty Transposon Insertions in Solid Tumors using Linker-mediated PCR

Identification of Sleeping Beauty Transposon Insertions in Solid Tumors using Linker-mediated PCR

Identificación de los<em&gt; La Bella Durmiente</em&gt; Transposón inserciones en tumores sólidos utilizando vinculador mediada por PCR

Genomic, proteomic, transcriptomic, and epigenomic analyses of human tumors indicate that there are thousands of anomalies within each cancer genome ...

Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

Recolección y extracción de ADN de la saliva de Next Generation Sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality ...

Single-stage Dynamic Reanimation of the Smile in Irreversible Facial Paralysis by Free Functional Muscle Transfer

De una etapa dinámica Reanimación de la Sonrisa en Irreversible Parálisis facial por Free transferencia muscular funcional

Unilateral facial paralysis is a common disease that is associated with significant functional, aesthetic and psychological issues. Though idiopathic ...

Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo: A Model of Single Vessel Stroke

Rose Bengal Photothrombosis by Confocal Optical Imaging In Vivo:  A Model of Single Vessel Stroke

Rosa de Bengala Photothrombosis por imagen óptica confocal<em&gt; En Vivo</em&gt;: Un modelo de solo recipiente Stroke

In vivo imaging techniques have increased in utilization due to recent advances in imaging dyes and optical technologies, allowing for the ability to ...

Phosphorus-31 Magnetic Resonance Spectroscopy: A Tool for Measuring In Vivo Mitochondrial Oxidative Phosphorylation Capacity in Human Skeletal Muscle

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El fósforo-31 espectroscopía de resonancia magnética: una herramienta para medir<em&gt; En Vivo</em&gt; Capacidad de la fosforilación oxidativa mitocondrial en el músculo esquelético humano

Skeletal muscle mitochondrial oxidative phosphorylation (OXPHOS) capacity, which is critically important in health and disease, can be measured in vivo ...

Imaging Metals in Brain Tissue by Laser Ablation - Inductively Coupled Plasma - Mass Spectrometry (LA-ICP-MS)

Imaging Metals in Brain Tissue by Laser Ablation - Inductively Coupled Plasma - Mass Spectrometry LA-ICP-MS

Metales de imagen en el tejido cerebral por ablación con láser - plasma de acoplamiento inductivo - espectrometría de masas (LA-ICP-MS)

Metals are found ubiquitously throughout an organism, with their biological role dictated by both their chemical reactivity and abundance within a ...

An Ex Vivo Tissue Culture Model for Fibrovascular Complications in Proliferative Diabetic Retinopathy

Un modelo de cultivo de tejidos Ex Vivo para las complicaciones Fibrovascular en la retinopatía diabética proliferativa

Diabetic retinopathy (DR) is the most common microvascular complication of diabetes and one of the leading causes of blindness in working-age adults. No ...

Osteoarthritis Pain Model Induced by Intra-Articular Injection of Mono-Iodoacetate in Rats

Modelo de dolor de osteoartritis inducido por inyección intraarticular de monoyodoacetato en ratas

The current animal models of osteoarthritis (OA) can be divided into spontaneous models and induced models, both of which aim to simulate the ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Lesión de isquemia-reperfusión de órganos mediante la simulación de cambios hemodinámicos en el modelo de trasplante de hígado de rata

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...