Name: investigating long-distance transport of perfluoroalkyl acids in wheat via a split-root exposure technique
Uploaded: 2022-09-28T14:05:00
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Agradecemos el apoyo financiero de la Fundación de Ciencias Naturales de China (NSFC 21737003), el Fondo Científico de las Universidades Chinas (No. 2452021103) y la Fundación de Ciencias Postdoctorales de China (No. 2021M692651, 2021M702680).

Las semillas de trigo, Triticum aestivum L., fueron adquiridas (ver Tabla de Materiales) y utilizadas para el presente estudio.
1. Germinación de plántulas de trigo y cultivo hidropónico
<ol><li>Seleccione semillas de trigo de tamaño similar y desinfúntelas durante 15 minutos con una solución de peróxido de hidrógeno al 8% (p/p).</li>
	<li>Enjuague bien las semillas desinfectadas con agua desionizada y luego colóquelas en papel de filtro h?...

<ol>
	<li>Lindstrom, A. B., Strynar, M. J., Libelo, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Polyfluorinated+compounds:+Past,+present,+and+future.">Polyfluorinated compounds: Past, present, and future.</a> Environmental Science &amp; Technology. 45 (19), 7954-7961 (2011).</li><li>Kannan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perfluoroalkyl+and+polyfluoroalkyl+substances:+Current+and+future+perspectives.">Perfluoroalkyl and polyfluoroalkyl substances: Current and future perspectives.</a> Environmental Chemistry. 8 (4), 333-338 (2011).</li><li>Cui, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Occurrence+and+tissue+distribution+of+novel+perfluoroether+carboxylic+and+sulfonic+acids+and+legacy+per/polyfluoroalkyl+substances+in+black-spotted+frog+(Pelophylax+nigromaculatus).">Occurrence and tissue distribution of novel perfluoroether carboxylic and sulfonic acids and legacy per/polyfluoroalkyl substances in black-spotted frog (Pelophylax nigromaculatus).</a> Environmental Science &amp; Technology. 52 (3), 982-990 (2018).</li><li>Negri, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exposure+to+PFOA+and+PFOS+and+fetal+growth:+a+critical+merging+of+toxicological+and+epidemiological+data.">Exposure to PFOA and PFOS and fetal growth: a critical merging of toxicological and epidemiological data.</a> Critical Reviews in Toxicology. 47 (6), 489-515 (2017).</li><li>Chi, Q., Li, Z., Huang, J., Ma, J., Wang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interactions+of+perfluorooctanoic+acid+and+perfluorooctanesulfonic+acid+with+serum+albumins+by+native+mass+spectrometry,+fluorescence+and+molecular+docking.">Interactions of perfluorooctanoic acid and perfluorooctanesulfonic acid with serum albumins by native mass spectrometry, fluorescence and molecular docking.</a> Chemosphere. 198, 442-449 (2018).</li><li>Zhang, X., Chen, L., Fei, X. C., Ma, Y. S., Gao, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Binding+of+PFOS+to+serum+albumin+and+DNA:+insight+into+the+molecular+toxicity+of+perfluorochemicals.">Binding of PFOS to serum albumin and DNA: insight into the molecular toxicity of perfluorochemicals.</a> Bmc Molecular Biology. 10, 16 (2009).</li><li>Pan, Y. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Worldwide+distribution+of+novel+perfluoroether+carboxylic+and+sulfonic+acids+in+surface+water.">Worldwide distribution of novel perfluoroether carboxylic and sulfonic acids in surface water.</a> Environmental Science &amp; Technology. 52 (14), 7621-7629 (2018).</li><li>Knight, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+investigation+into+the+long-term+binding+and+uptake+of+PFOS,+PFOA+and+PFHxS+in+soil+-+plant+systems.">An investigation into the long-term binding and uptake of PFOS, PFOA and PFHxS in soil - plant systems.</a> Journal of Hazardous Materials. 404, 124065 (2021).</li><li>Liu, Z. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Crop+bioaccumulation+and+human+exposure+of+perfluoroalkyl+acids+through+multi-media+transport+from+a+mega+fluorochemical+industrial+park,+China.">Crop bioaccumulation and human exposure of perfluoroalkyl acids through multi-media transport from a mega fluorochemical industrial park, China.</a> Environment International. 106, 37-47 (2017).</li><li>Mei, W. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Per-+and+polyfluoroalkyl+substances+(PFASs)+in+the+soil-plant+system:+Sorption,+root+uptake,+and+translocation.">Per- and polyfluoroalkyl substances (PFASs) in the soil-plant system: Sorption, root uptake, and translocation.</a> Environment International. 156, 106642 (2021).</li><li>Wang, W., Rhodes, G., Ge, J., Yu, X., Li, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Uptake+and+accumulation+of+per-+and+polyfluoroalkyl+substances+in+plants.">Uptake and accumulation of per- and polyfluoroalkyl substances in plants.</a> Chemosphere. 261, 127584 (2020).</li><li>Lu, J., Wu, J., Stoffella, P. J., Wilson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+bisphenol+A,+nonylphenol,+and+natural+estrogens+in+vegetables+and+fruits+using+gas+chromatography-tandem+mass+spectrometry.">Analysis of bisphenol A, nonylphenol, and natural estrogens in vegetables and fruits using gas chromatography-tandem mass spectrometry.</a> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 61 (1), 84-89 (2013).</li><li>Herschbach, C., Gessler, A., Rennenberg, H., Luttge, U., Beyschlag, W., Budel, B., Francis, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+Distance+Transport+and+Plant+Internal+Cycling+of+N-+and+S-Compounds.">Long Distance Transport and Plant Internal Cycling of N- and S-Compounds.</a> Progress in Botany 73. , 161-188 (2012).</li><li>Liu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Uptake+kinetics,+accumulation,+and+long-distance+transport+of+organophosphate+esters+in+plants:+Impacts+of+chemical+and+plant+properties.">Uptake kinetics, accumulation, and long-distance transport of organophosphate esters in plants: Impacts of chemical and plant properties.</a> Environmental Science &amp; Technology. 53 (9), 4940-4947 (2019).</li><li>Wang, Z. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Xylem-+and+phloem-based+transport+of+CuO+nanoparticles+in+maize+(Zea+mays+L.).">Xylem- and phloem-based transport of CuO nanoparticles in maize (Zea mays L.).</a> Environmental Science &amp; Technology. 46 (8), 4434-4441 (2012).</li><li>Chen, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Uptake,+accumulation,+and+translocation+mechanisms+of+steroid+estrogens+in+plants.">Uptake, accumulation, and translocation mechanisms of steroid estrogens in plants.</a> Science of the Total Environment. 753, 141979 (2021).</li><li>Felizeter, S., McLachlan, M. S., de Voogt, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Uptake+of+perfluorinated+alkyl+acids+by+hydroponically+grown+lettuce+(Lactuca+sativa).">Uptake of perfluorinated alkyl acids by hydroponically grown lettuce (Lactuca sativa).</a> Environmental Science &amp; Technology. 46 (21), 11735-11743 (2012).</li><li>Zhou, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insights+into+uptake,+translocation,+and+transformation+mechanisms+of+perfluorophosphinates+and+perfluorophosphonates+in+wheat+(Triticum+aestivum+L.).">Insights into uptake, translocation, and transformation mechanisms of perfluorophosphinates and perfluorophosphonates in wheat (Triticum aestivum L.).</a> Environmental Science &amp; Technology. 54 (1), 276-285 (2020).</li></ol>

Para garantizar la precisión de este método, se debe realizar una operación cuidadosa para garantizar que la solución con púas en el tubo B no contamine la solución sin pinchos en el tubo A. La concentración dada de PFAA objetivo en el presente estudio fue relativamente más alta que su concentración en el entorno real, lo que garantiza monitorear los PFAA objetivo en trigo y solución sin púas utilizando LC-MS / MS. 
Existen limitaciones para este método. Dado que solo se utilizó u...

Los ácidos perfluoroalquilo (PFAA) son ampliamente utilizados en diversos productos comerciales e industriales debido a sus excelentes propiedades fisicoquímicas, incluida la actividad superficial y la estabilidad térmica y química 1,2,3. El ácido perfluorooctano sulfónico (PFOS) y el ácido perfluorooctano (PFOA) son los dos PFAA más importantes utilizados en todo el mundo 4,5,6, aunque estos compuestos se enumeraron en el Convenio internacional de Estocolmo en 2009 y 20197,8, respectivamente. Debido a su persistencia y uso generalizado, el PFOS y el PFOA se han detectado ampliamente en diversas matrices ambientales. Las concentraciones de PFOA y PFOS en las aguas superficiales de diferentes ríos y lagos del mundo son de 0,15 a 52,8 ng/L y de 0,09 a 29,7 ng/L,respectivamente9. Debido al uso de aguas subterráneas o regeneradas para riego y también al uso de biosólidos como fertilizantes, el PFOA y el PFOS están ampliamente presentes en el suelo, oscilando entre 0,01-123 μg/kg y 0,003-162 μg/kg, respectivamente10, lo que podría introducir una gran cantidad de PFAA en las plantas y plantear riesgos potenciales para la salud humana. Las concentraciones de PFAA (C4-C8) en suelos agrícolas y granos (trigo y maíz) muestran una correlación lineal positiva11. Por lo tanto, es imperativo investigar la acumulación y translocación de PFAA dentro de las plantas.
La translocación de PFAAs en plantas ocurre primero desde las raíces a los tejidos aéreos, y la translocación de PFAAs desde las raíces a los tejidos comestibles se considera transporte a larga distancia12,13. Estudios previos han detectado bisfenol A, nonilfenol y estrógenos naturales en verduras y frutas14, lo que implica que estos productos químicos podrían migrar a través del floema. Por lo tanto, descubrir la translocación de PFAA en las plantas es importante para evaluar su riesgo potencial. Sin embargo, la acumulación y translocación de PFAA se ven afectadas por su biodisponibilidad en el suelo, por lo que no es fácil evaluar la capacidad de translocación de los PFAA objetivo en las plantas. Además, los experimentos hidropónicos generalmente están limitados por varios factores, lo que dificulta la adquisición de los tejidos comestibles de las plantas. Típicamente, el floema fue recolectado directamente de las plantas para observar la translocación de compuestos orgánicos a través de largas distancias en las plantas, mientras que es difícil adquirir floemas de las plántulas de las plantas15. Por lo tanto, se introdujo un método simple y efectivo, la técnica de raíz dividida, para estudiar la translocación de PFAA en plantas durante una exposición relativamente a corto plazo. En cuanto a la investigación de raíz dividida, las raíces en una plántula de planta se separan en dos partes; una parte se coloca en la solución nutritiva que contiene PFAA objetivo (tubo A), y la otra se coloca en la solución nutritiva en ausencia de PFAA (tubo B). Después de la exposición durante varios días, los PFAA en el tubo B se miden mediante LC-MS/MS. La concentración de PFAAs en el tubo B revela el potencial de translocación de PFAAs a través del floema dentro de las plantas16,17,18.
El experimento de raíz dividida se ha reportado para estudiar la translocación a larga distancia de muchos compuestos en plantas, como las nanopartículas de CuO17, los estrógenos esteroides 18 y los ésteres organofosforados16. Estos estudios proporcionaron evidencia de que estos compuestos podrían transferirse a través del floema a las partes comestibles de las plantas. Sin embargo, es necesario explorar más a fondo si los PFAA podrían ayudar en la translocación en las plantas y el impacto de las propiedades de los compuestos. Sobre la base de estos informes, el experimento de raíz dividida se llevó a cabo en el presente estudio para revelar el transporte a larga distancia de PFAA en el trigo.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>ACQUITY UPLC BEH C18 column</td>
			<td>Waters, Milford, MA</td>
			<td></td>
			<td>Liquid chromatographic column</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cleanert PEP cartridge</td>
			<td>Bonna- Angel Technologies, China</td>
			<td></td>
			<td>Solid phase extraction column</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clearnert Pesticarb cartridge</td>
			<td>Bonna- Angel Technologies, China</td>
			<td></td>
			<td>Solid phase extraction column</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LC-MS/MS(Waters Acquity UPLC i-Class Coupled to Xevo TQ-S)</td>
			<td>Waters, Milford, MA</td>
			<td></td>
			<td>Liquid chromatography and mass spectrometry</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lyophilizer&#160;</td>
			<td>Boyikang Instrument Ltd., Beijing, China</td>
			<td>FD-1A50</td>
			<td>Freeze-dried sample</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Masslynx</td>
			<td>Waters, Milford, MA</td>
			<td></td>
			<td>data analysis software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methyl tert-butyl ether</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)</td>
			<td></td>
			<td>use for extracting target compounds from plant tissues</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MPFAC-MXA</td>
			<td>Wellington Laboratories (Ontario, Canada)</td>
			<td>PFACMXA0518</td>
			<td>the internal standards</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFAC-MXB</td>
			<td>Wellington Laboratories (Ontario, Canada)</td>
			<td>PFACMXB0219</td>
			<td>mixture of PFAA calibration standards</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFOA</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)</td>
			<td>335-67-1</td>
			<td>a represent PFAAs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFOS</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)</td>
			<td>2795-39-3</td>
			<td>a represent PFAAs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium carbonate buffer</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)</td>
			<td></td>
			<td>use for extracting target compounds from plant tissues</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetrabutylammonium hydrogen sulfate</td>
			<td>Sigma-Aldrich Chemical Co. (St. Louis, US)</td>
			<td></td>
			<td>use for extracting target compounds from plant tissues</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wheat seeds</td>
			<td>Chinese Academy of Agricultural Sciences (Beijing,China)&#160;</td>
			<td></td>
			<td>Triticum aestivum L.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

investigating long-distance transport of perfluoroalkyl acids in wheat via a split-root exposure technique

Grandes cantidades de ácidos perfluoroalquilo (PFAA) se han introducido en el suelo y las plantas las han acumulado, lo que plantea riesgos potenciales para la salud humana. Es imperativo investigar la acumulación y translocación de PFAA dentro de las plantas. El transporte a larga distancia es una vía importante para los PFAA transferidos de las hojas de la planta a los tejidos comestibles a través del floema. Sin embargo, anteriormente era difícil evaluar el potencial de translocación de la contaminación orgánica en un período de exposición a corto plazo. El experimento de raíz dividida proporciona una solución para descubrir eficazmente la translocación a larga distancia de PFAA utilizando un experimento hidropónico, que, en este estudio, se llevó a cabo en dos tubos de centrífuga de 50 ml (A y B), de los cuales el tubo de centrífuga A tenía 50 ml de solución nutritiva estéril Hoagland de un cuarto de fuerza, mientras que el tubo de centrífuga B tenía la misma cantidad de concentración de nutrientes. y los PFAA objetivo (ácido perfluorooctano sulfónico, PFOS, y ácido perfluorooctano, PFOA) añadidos a una concentración dada. Una raíz de trigo integral se separó manualmente en dos partes y se insertó cuidadosamente en los tubos A y B. La concentración de PFAAs en las raíces, brotes de trigo y soluciones en los tubos A y B se evaluaron utilizando LC-MS/MS, respectivamente, después de ser cultivados en una incubadora durante 7 días y cosechados. Los resultados sugirieron que el PFOA y el PFOS experimentan un proceso similar de transporte a larga distancia a través del floema desde el brote hasta la raíz y podrían liberarse en el ambiente ambiente. Por lo tanto, la técnica de raíz dividida se puede utilizar para evaluar el transporte a larga distancia de diferentes productos químicos.

El experimento de raíz dividida investigó el transporte a larga distancia de PFAA en el trigo. Como se muestra en la figura 2A,C, tanto el PFOA como el PFOS podrían ser absorbidos por la raíz de trigo y transferidos al brote. No se detectaron PFOS ni PFOA en la raíz de trigo y la solución en el tubo A del control en blanco. Se encontró que se detectaron PFOS y PFOA en las raíces de trigo cultivadas en la solución sin pinchos, con una concentración de 0,26 ng/g ± 0...

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Investigating Long-Distance Transport of Perfluoroalkyl Acids in Wheat via a Split-Root Exposure Technique

El presente protocolo describe un método simple y eficiente para el transporte a larga distancia de ácidos perfluoroalquilo en el trigo.

Investigación del transporte a larga distancia de ácidos perfluoroalquilo en trigo a través de una técnica de exposición de raíz dividida

Large amounts of perfluoroalkyl acids (PFAAs) have been introduced into the soil and accumulated by plants, posing potential risks to human health. It is ...

El floema se recolectó directamente de las plantas para observar la translocación de compuestos orgánicos a través de largas distancias, mientras que es difícil adquirir floema de las plántulas de las plantas. Se introdujo un método simple y efectivo, la técnica de raíz dividida, para estudiar la translocación de PFAA en plantas, durante una exposición relativamente a corto plazo. Este método también puede revelar el transporte a larga distancia de diferentes compuestos en las plantas.La concentración dada de PFAA objetivo debe ser relativamente más alta que su concentración en el entorno real, asegurando el monitoreo de los PFAA objetivo en el trigo en solución sin pinchos. Comience seleccionando el Triticum aestivum de tamaño similar, o semillas de trigo, y desinfecte durante 15 minutos con una solución de peróxido de hidrógeno al 8%. Enjuague bien las semillas desinfectadas con agua desionizada.Coloque las semillas en el papel de filtro húmedo en la oscuridad a temperatura ambiente durante 5 días para la germinación. Seleccione aproximadamente 9 plántulas germinadas, de tamaño uniforme, y transfiéralas a vasos de plástico con 250 mililitros de 1/4 de fuerza de la solución de Hoagland. Antes del tratamiento, cultive las plántulas en cámaras de crecimiento durante 7 días con un ciclo de 14 horas a 22 grados centígrados y 10 horas a 27 grados centígrados.Para el cultivo de plántulas, prepare 2 tubos de centrífuga, A y B, cada uno con 50 mililitros de 1/4 de fuerza de la solución de Hoagland. Disuelva el ácido perfluorooctano comercial, o PFOA, y el ácido perfluorooctanosulfónico, o PFOS, en metanol, y dilúyalo con la solución nutritiva estéril como solución madre, luego agregue la solución madre al tubo B a 100 microgramos por litro de PFOA y PFOS. A continuación, separe las raíces enteras de una plántula de trigo en 2 partes iguales usando pinzas con las raíces conectadas al mismo brote, luego insértelas en los tubos A y B respectivamente.Selle los 2 tubos con papel de aluminio antes de cultivarlos en una incubadora durante 7 días con un ciclo de 14 horas a 22 grados centígrados y 10 horas a 27 grados centígrados. Después de 7 días, recoja las plántulas de trigo y sepárelas en 3 partes usando tijeras, como brotes y raíces cultivadas en la solución con púas de ácidos perfluoroaquillo, o PFAA, en solución sin púas. Seque las muestras de plantas en un liofilizador a menos 55 grados centígrados durante 48 horas.Después de 2 días, homogeneizar. Pesar la raíz y disparar muestras. Recoja las muestras de solución con y sin púas.En un tubo de polipropileno de 15 mililitros, agregue 2 mililitros de tampón de carbonato de sodio, 1 mililitro de sulfato de hidrógeno de tetrabutilamonio, 5 mililitros de metil terc-butil éter y la raíz o brote homogeneizado. Cuando haya terminado, agite el tubo a 250 RPM durante 20 minutos, antes de centrifugar a 2000 g durante 10 minutos a temperatura ambiente para obtener la fase orgánica sobrenadante. Después de la segunda extracción, agrupe los extractos de tratamiento similares y vaporícelos hasta que se sequen en una suave corriente de nitrógeno, luego reconstituya con 5 mililitros de metanol y vórtice, manteniendo la misma velocidad durante aproximadamente 30 segundos.Acondicione el cartucho PestiCarb con 5 mililitros de hidróxido de amonio al 0,1% en metanol, 5 mililitros de agua y 5 mililitros de metanol. Agregue 5 mililitros de solución de metanol de extracción a través del cartucho PestiCarb para eliminar el pigmento. Eluya el cartucho con 5 mililitros de metanol y recoja en los tubos de muestra.Evapore los 10 mililitros recolectados de solución de metanol a sequedad y reconstituya con 200 microlitros de metanol antes del vórtice, luego centrifugar la muestra a 10, 000 g durante 20 minutos a temperatura ambiente. Acondicione el cartucho de extracción de polímero mejorado con polares con 5 mililitros de metanol y 5 mililitros de agua para activarlo. Agregue 1 mililitro de la solución enriquecida o 50 mililitros de las muestras de solución sin púas a través del cartucho.Eludir los PFAA objetivo con 10 mililitros de metanol. Evaporar el extracto con una suave corriente de nitrógeno y luego reconstituir el extracto evaporado con 200 microlitros de metanol para su análisis. El experimento de raíz dividida investigó el transporte a larga distancia de PFAA en el trigo.Se observó que el PFOA y el PFOS fueron absorbidos por la raíz de trigo con una concentración de 11,94 nanogramos por gramo y 30,67 nanogramos por gramo de peso seco en solución enriquecida respectivamente, y se transfirieron a los brotes con una concentración de 5,01 nanogramos por gramo y 4,17 nanogramos por gramo de peso seco. Se encontró que PFOA y PFOS se detectaron en raíces de trigo cultivadas en la solución sin púas con una concentración de 0,26 nanogramos por gramo y 0,64 nanogramos por gramo de peso seco, respectivamente. Sugirió que el PFOA y el PFOS podrían experimentar transporte a larga distancia a través del floema desde el brote hasta la raíz.Se observó que también se encontraron PFOA y PFOS en la solución nutritiva sin púas con una concentración de 17,8 nanogramos por litro y 28,5 nanogramos por litro, respectivamente, lo que sugiere que el PFOA y el PFOS podrían pasar a través de la raíz de la tira de Casparian. Se debe tener precaución para garantizar que la solución con púas en el tubo B no contamine la solución sin pinchos en el tubo A. La demostración visual de este método puede proporcionar una operación simple para revelar el transporte a larga distancia de PFAA en el trigo.

Research

JoVE Journal

Environment

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