Name: a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit
Uploaded: 2023-11-21T12:20:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit at JoVE.com

Cette étude a été financée par le Doer Peer Reviewed Medical Research Program - Investigator-Initiated Research Award W81XWH-20-1-0304 de l’U.S. ARMY MEDICAL RESEARCH ACQUISITION ACTIVITY, par le NIH NIAMS R01AR076477 et un programme complet de formation musculo-squelettique T32 du NIH (AR065971) et par la subvention NIH NIAMS R01 AR069657. Les auteurs tiennent à remercier Kevin Carr d’avoir apporté son expertise en usinage et en fabrication à ce projet, ainsi que Drew Brown et le centre d’histologie osseuse du Centre de santé musculo-squelettique de l’Indiana pour leur aide en histologie.

La procédure suivante a été réalisée avec l’approbation du Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) de l’École de médecine de l’Université de l’Indiana. Toutes les chirurgies de survie ont été effectuées dans des conditions stériles, comme le soulignent les directives du NIH. Les risques de douleur et d’infection ont été gérés avec des analgésiques et des antibiotiques appropriés pour optimiser les résultats positifs. Des lapins blancs de Nouvelle-Zélande mâles...

Cette intervention chirurgicale vise à générer des lésions cartilagineuses constantes sur la surface portante du condyle fémoral médial du lapin dans un modèle de PTOA. L’un des avantages de cette procédure est que l’approche postérieure du genou permet une visualisation directe du condyle fémoral médial postérieur complet, et qu’elle peut être réalisée en environ 37 minutes (tableau 2). Il convient également de noter qu’il s’agit d’un modèle de blessure ouverte et qu’il pe...

L’arthrose post-traumatique est l’une des principales causes d’invalidité dans le monde et représente 12 à 16 % des arthroses symptomatiques1. L’étalon-or actuel pour la prise en charge de l’arthrose terminale est l’arthroplastie totale du genou et de la hanche2 ou arthrodèse, comme dans le cas de l’arthrite tibiotalienne ou sous-talienne terminale. Bien qu’elle soit largement couronnée de succès, l’arthroplastie peut entraîner des complications coûteuses et morbides3. De plus, l’arthroplastie est moins souhaitable chez les patients de moins de 50 ans, étant donné le faible taux de survie sans révision de l’implant de 77 % à 83 %4,5. À l’heure actuelle, il n’existe aucun traitement approuvé par la FDA pour prévenir ou atténuer la progression de la PTOA.
La PTOA affecte l’ensemble de l’articulation, y compris le tissu synovial, l’os sous-chondral et le cartilage articulaire. Elle se caractérise par une dégénérescence du cartilage articulaire, une inflammation synoviale, un remodelage osseux sous-chondral et la formation d’ostéophytes 6,7. Le phénotype de la PTOA se développe via un processus complexe d’interaction entre le cartilage, la synoviale et l’os sous-chondral. La compréhension actuelle est que les lésions cartilagineuses conduisent à la libération de composants de la matrice extracellulaire (MEC) tels que le collagène de type 2 (COL2) et l’aggrécan (ACAN). Ces fragments de composants de l’ECM sont pro-inflammatoires et provoquent une production accrue d’IL-6, d’IL-1β et d’espèces réactives de l’oxygène. Ces médiateurs agissent sur les chondrocytes, provoquant une régulation à la hausse des métalloprotéinases matricielles (MMP), telles que MMP-13, qui dégradent le cartilage articulaire tout en diminuant la synthèse matricielle, conduisant à un environnement catabolique global pour le cartilage articulaire8. De plus, il existe des preuves d’une augmentation de l’apoptose des chondrocytes dans l’arthrose primaire et la PTOA 9,10. Le dysfonctionnement mitochondrial survient après une charge supraphysiologique du cartilage 11,12,13,14, ce qui peut entraîner une augmentation de l’apoptose des chondrocytes 12,15. L’amélioration de l’apoptose des chondrocytes a été associée à une augmentation de l’épuisement des protéoglycanes et du catabolisme cartilagineux et il a été démontré qu’elle précède les changements dans le cartilage et le remodelage osseux sous-chondral16,17,18.
Comme pour la plupart des maladies humaines, des modèles fiables et translationnels de PTOA sont nécessaires pour mieux comprendre la physiopathologie de la maladie et tester de nouvelles thérapies. Les grands animaux tels que les porcs et les canidés ont été utilisés dans les modèles de fracture intra-articulaire et d’impact de PTOA17,19, mais ils sont coûteux. Les modèles animaux plus petits, tels que les souris, les rats et les lapins, sont moins coûteux et sont utilisés pour étudier la PTOA générée par la déstabilisation articulaire, qui implique généralement une section chirurgicale du ligament croisé antérieur (LCA) et/ou une rupture du ménisque médial 20,21,22,23,24,25. Bien que les traumatismes articulaires puissent entraîner diverses conséquences, y compris une lésion ligamentaire26, une surcharge mécanique du cartilage se produit dans presque tous les cas.
Il existe de nouvelles preuves que la pathologie à l’origine du développement de la PTOA après une instabilité ligamentaire (comme dans la transection du LCA) et une lésion chondrale aiguë est due à des mécanismes distincts27. Par conséquent, il est important de développer des modèles de lésions directes du cartilage. Il existe actuellement un nombre limité de modèles d’impact générant des lésions ostéochondrales ou chondrales chez le rat et la souris28,29. Cependant, le cartilage murin n’est pas bien adapté pour générer des défauts chondrals isolés. En effet, le cartilage articulaire murin n’a que 3 à 5 couches cellulaires d’épaisseur et n’a pas de zones cartilagineuses superficielles, radiales et transitionnelles organisées, ainsi que l’épaisse couche de cartilage calcifié que l’on trouve chez les humains et les animaux de plus grande taille. Les modèles murins présentent également une résolution spontanée des défauts partiels du cartilage30,31. Par conséquent, nous avons choisi le lapin pour ce modèle d’impact car l’épaisseur et l’organisation de son cartilage sont similaires à celles des humains, et c’est le plus petit modèle animal qui permettra de délivrer un impact chondral cohérent qui se traduit par une PTOA. Des modèles chirurgicaux ouverts antérieurs d’impact sur le condyle fémoral chez le lapin ont utilisé un pendule32, un dispositif d’impaction cartilagineux à ressort portatif 33 et une tour de chute qui a permis la création d’impacteurs spécifiques au lapin34. Cependant, ces études manquaient de données in vivo. D’autres ont rapporté des données in vivo avec des dispositifs d’impact à pendule35, pneumatiques 36 et à ressort37 10, et ces études montrent un taux élevé de variabilité des taux de contrainte et de charge de pointe entre les méthodes. Pourtant, le domaine manque d’une approche cohérente pour modéliser de manière fiable les traumatismes cartilagineux aigus in vivo.
Le protocole actuel utilise un système basé sur une tour de chute pour fournir un impact constant sur le condyle médial postérieur du genou du lapin. Une approche postérieure du genou est utilisée pour exposer le condyle fémoral médial postérieur. Une broche Steinman est ensuite placée sur les condyles fémoraux, de la partie médiale à la partie latérale, dans l’alignement de la surface articulaire, et fixée à la plate-forme. Une fois fixée, une charge est délivrée au condyle fémoral médial postérieur. Cette méthode permet d’acheminer des lésions cartilagineuses constantes vers la surface portante du fémur distal du lapin.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Flat head screw</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92210A194</td>
			<td>Stainless steel hex drive flat head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#15 scalpel blades</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1029066</td>
			<td>Scalpel McKesson No. 15 Stainless Steel / Plastic Classic Grip Handle Sterile Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>99065A120</td>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031801</td>
			<td>For irrigation; General Purpose Syringe McKesson 10 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031804</td>
			<td>For lidocaine/bupiviacaine injection; General Purpose Syringe McKesson 3 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 polysorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J332H</td>
			<td>3-0 Vircryl, CT-2, 1/2 circle, 26 mm, tapered</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 monosorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>Z397H</td>
			<td>4-0 PDS 2, FS-2, 3/8 circle, 19mm, cutting edge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-0 polysorb</td>
			<td>Med Vet International</td>
			<td>NC9335902</td>
			<td>Med Vet International 5-0 ETHICON COATED VICRYL C-3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Accelerometer</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>8743A5</td>
			<td>Accelerometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson-Browns Forceps</td>
			<td>World precision tools</td>
			<td>500177</td>
			<td>Adson-Brown Forceps, 12 cm, Straight, TC Jaws, 7 x 7 Teeth</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alfaxalone</td>
			<td>Jurox</td>
			<td>49480-002-01</td>
			<td>Alfaxan Multidose by Jurox : 10 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Par Pharmaceuticals</td>
			<td>42023-0179-05</td>
			<td>Buprenorphine HCL injection: 0.3 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Butorphanol&#160;</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>54771-2033</td>
			<td>Butorphanol tartrate&#160;10mg/ml by Zoetis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine Hand Scrub</td>
			<td>BD</td>
			<td>371073</td>
			<td>BD E-Z Scrub 107 Surgical Scrub Brush/Sponge, 4% CHG, Red</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collet</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>14023</td>
			<td>Stryker 4100-62 wire Collet 0.28-0.71&#39;&#39;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cordless Driver handpiece</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S4300</td>
			<td>Stryker 4300 CD3 Cordless Driver 3 handpiece</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cricket Retractors</td>
			<td>Novosurgical</td>
			<td>G3510 21</td>
			<td>2x Heiss (Holzheimer) Cross Action Retractor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissector Scissors</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0662</td>
			<td>Aesculap AG, Metzenbaum, Scissors, Straight 5 3/4&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elizabethian Collar</td>
			<td>ElizaSoft</td>
			<td>62054</td>
			<td>ElizaSoft Elizabethan Recovery Collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacin</td>
			<td>Custom Meds</td>
			<td></td>
			<td>Enrofloxacin compounded by Custom Meds</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye Ointment</td>
			<td>Pivetal&#160;</td>
			<td>46066-753-55</td>
			<td>Pivetal Articifical Tears- recently recalled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5631T11</td>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fast green</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>F7258</td>
			<td>Fast green</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freer</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0226Q</td>
			<td>Freer elevator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -1</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91251A197</td>
			<td>Black-oxide alloy steel socket head screw, 8-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -2</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A194</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -3</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A146</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -4</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A151</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 6-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>GHS132-1L</td>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hex nut</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91841A007</td>
			<td>Stainless steel hex nut, 6-32</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5126A71</td>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact device</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact platform</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K-wires</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0250A</td>
			<td>JorVet Intramedullary Steinman Pins, Trocar-Trocar 1/16&#34; x 7&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab View</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Load cell</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>9712B5000</td>
			<td>Load cell</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB</td>
			<td>The MathWorks Inc.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DMi-8</td>
			<td>Leica DMi8 microscope with LAS-X software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Almaject</td>
			<td>72611-749-10</td>
			<td>Midazolam Hydrochloride injection: 5mg/ml by Almaject</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>milling machine depth stops</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>2949A71</td>
			<td>Clamp-on milling machine depth stops</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mobile C-arm</td>
			<td>Philips</td>
			<td>718095</td>
			<td>BV&#160;Pulsera, Mobile C-arm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>9338T7</td>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Driver</td>
			<td>A2Z Scilab</td>
			<td>A2ZTCIN39</td>
			<td>TC Webster Needle Holder Smooth Jaws 5&#34;, Premium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentobarbital</td>
			<td>Vortech</td>
			<td>0298-9373-68</td>
			<td>Pentobarbital 390 mg/mL by Vortech</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safranin O</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>HT90432</td>
			<td>Safranin O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Battery pack</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>NS014036</td>
			<td>6212 Small Battery pack- 9.6 V</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>89535K25</td>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline</td>
			<td>ICU Medical</td>
			<td>6139-22</td>
			<td>AquaLite Solution Pour Bottles, 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stryker 6110-120 System 6 Battery Charger</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S6110-120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gloves</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1044729</td>
			<td>Surgical Glove McKesson Perry Size 6.5 Sterile Pair Latex Extended Cuff Length Smooth Brown Not Chemo Approved</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gown</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1104452</td>
			<td>Non-Reinforced Surgical Gown with Towel McKesson Large Blue Sterile AAMI Level 3 Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture scissors</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0910SA</td>
			<td>Super Cut Scissors, Mayo, Straight, 5 1/2&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TUNEL staining kit</td>
			<td>ABP Bioscience</td>
			<td>A049</td>
			<td>TUNEL Chromogenic Apoptosis Detection Kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weitlaner Retractors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>17012-11</td>
			<td>2x Weitlaner-Locktite Retractors</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit

L’arthrose post-traumatique (PTOA) est responsable de 12% de tous les cas d’arthrose aux États-Unis. La PTOA peut être déclenchée par un seul événement traumatique, tel qu’une charge d’impact élevée agissant sur le cartilage articulaire, ou par une instabilité articulaire, comme cela se produit avec la rupture du ligament croisé antérieur. À l’heure actuelle, il n’existe aucun traitement efficace pour prévenir la PTOA. La mise au point d’un modèle animal fiable de PTOA est nécessaire pour mieux comprendre les mécanismes par lesquels les lésions cartilagineuses se produisent et pour étudier de nouvelles stratégies de traitement afin d’atténuer ou de prévenir la progression de la PTOA. Ce protocole décrit un modèle d’impact de condyle fémoral de lapin basé sur une tour de chute ouverte pour induire des dommages au cartilage. Ce modèle a fourni des charges de pointe de 579,1 ± 71,1 N et des contraintes de pointe de 81,9 ± 10,1 MPa avec un temps de charge de pointe de 2,4 ± 0,5 ms. Le cartilage articulaire des condyles fémoraux médians (CMF) inclus présentait des taux plus élevés de cellules apoptotiques (p = 0,0058) et présentait des scores plus élevés de 3,38 ± 1,43 par rapport aux CMF controlatérales non incluses (0,56 ± 0,42) et aux autres surfaces cartilagineuses du genou touché (p < 0,0001). Aucune différence dans les scores OARSI n’a été détectée entre les surfaces articulaires non impactées (p > 0,05).

Le succès de cette intervention a été surveillé immédiatement après l’impact par la visualisation du condyle par le chirurgien (figure 4A) et par radiographie pour s’assurer qu’aucune fracture ne s’est produite (figure 4B). Il existe un risque de rupture d’impact conduisant à une fracture peropératoire du condyle. Cela était généralement dû à un mauvais placement des broches Steinman (Figure 5). En utilisant c...

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A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit

Le modèle d’impact du condyle fémoral médial ouvert chez le lapin est fiable pour l’étude de l’arthrose post-traumatique (PTOA) et de nouvelles stratégies thérapeutiques pour atténuer la progression de la PTOA. Ce protocole génère un défaut cartilagineux isolé du condyle fémoral médial postérieur chez le lapin à l’aide d’une tour de chute basée sur un chariot avec une tête d’impacteur.

Un modèle d’impact cartilagineux reproductible pour générer de l’arthrose post-traumatique chez le lapin

Post-traumatic osteoarthritis (PTOA) is responsible for 12% of all osteoarthritis cases in the United States. PTOA can be initiated by a single traumatic ...

Cette méthode provoque des lésions cartilagineuses aiguës de la surface portante du genou du lapin et induit de manière fiable une arthrose post-traumatique. Ce modèle reflète les traumatismes articulaires qui sont pertinents pour la pratique clinique. Il permettra d’évaluer de nouvelles thérapies pour atténuer l’arthrite post-traumatique.Le principal obstacle technique est le placement de la broche de Steinmann dans la diaphyse fémorale. Un mauvais placement entraînera une fracture de la diaphyse fémorale. Nous vous recommandons de pratiquer ce modèle d’abord sur des cadavres de lapins.Pour commencer, placez le bloc de jambe avant en acier inoxydable sous l’extrémité de la plate-forme d’impact et couvrez la plate-forme avec un coussin chauffant. Placez le lapin anesthésié en position couchée sur le coussin chauffant. Placez une bosse rembourrée sous la hanche controlatérale.À l’aide d’un ruban de soie, rétractez doucement la queue supérieure et controlatérale à l’extrémité opératoire. Nettoyez le site chirurgical avec de la chlorhexidine et de la gaze stérile imbibée d’alcool à 70 %, en commençant par la partie postérieure du genou avec un balayage circulaire vers l’extérieur. Placez un gant stérile sur le pied opératoire jusqu’à la cheville et enveloppez-le d’un bandage cohésif stérile.Draper le site chirurgical à l’aide de trois champs en plaçant un directement sous l’extrémité opératoire et les deux autres couvrant le reste du corps. Fixez les rideaux avec des pinces à serviettes. Palpez la position de la rotule vers l’avant pour estimer la position de l’articulation du genou.À l’aide d’une lame de 15, faites une incision de trois à quatre centimètres le long de la face postérieure du genou étendu à partir du niveau du pôle supérieur de la rotule distalement. Effectuez des dissections émoussées et nettes à travers le fascia superficiel sous-jacent. Après avoir développé l’intervalle entre la peau médialement et le gastrocnémien médial latéralement, placez un écarteur de Weitlaner auto-retenu dans cet intervalle.Ensuite, disséquez latéralement vers la saphène et rétractez le système vasculaire médialement et le complexe gastrosoléaire latéralement. Continuez à disséquer distalement jusqu’à ce qu’une petite fabella mobile soit identifiée sur le condyle fémoral postéro-médial. Effectuer une arthrotomie démobiliser la fabella superolatérale, en exposant le condyle fémoral médial sous-jacent.Rétractez les tissus mous. Tout en maintenant le condyle exposé, placez une épingle de Steinmann de 0,062 pouce sur la face supérieure du condyle fémoral médial et centrée dans la direction antérieure postérieure du condyle fémoral médial, à environ cinq millimètres de la face postérieure du condyle. Ensuite, à l’aide d’un tournevis à goupille Steinmann alimenté par batterie, enfoncez la goupille latéralement à travers l’os et la peau latérale parallèlement à la surface de l’articulation.Retirez les écarteurs et fermez l’incision cutanée avec une suture Polysorb 3-0 en mode courant. Couvrez l’incision avec de la gaze stérile. Retirez le champ sous le membre opératoire.Ajustez la hauteur des parties inférieures des pinces à goupille Steinmann de manière à ce qu’elles correspondent à la hauteur de la goupille. Fixez la goupille Steinmann des deux côtés du genou en fixant les aspects supérieurs des pinces et en serrant les vis. Retirez la suture et rouvrez l’incision.Utilisez des écarteurs de Weitlaner et de cricket auto-retenus pour exposer le condyle fémoral médial. Fixez la tête d’impact stérile de trois millimètres au chariot de la tour de chute. Amenez la tour de chute au-dessus de l’extrémité opératoire et placez sa base sous la plate-forme d’impact.Abaissez doucement l’impacteur au centre du condyle fémoral postéro-médial. Déplacez le lapin ou la tour pour vous assurer que la tête de l’impacteur est centrée sur le condyle fémoral médial. Une fois que la trajectoire appropriée est assurée, fixez la tour sur la plate-forme avec les pinces à genouillère.Ensuite, placez l’impacteur sur la tour de chute à sept centimètres au-dessus du condyle fémoral médial. Dans le logiciel d’acquisition de données de vue laboratoire, cliquez sur le bouton de démarrage juste avant de libérer la butée de broche pour libérer le chariot et lui permettre de tomber sous la force de gravité. Effectuez une visualisation de la surface du cartilage pour déterminer si des dommages cartilagineux appropriés se sont produits.Pour analyser les données à l’aide du code MATLAB, déplacez le fichier de données des capteurs vers le même dossier que MATLAB et exécutez le code. Inspectez la courbe de temps de chargement et assurez-vous qu’elle est lisse, indiquant qu’aucune fracture ne s’est produite. Retirez la tour de chute au-dessus de l’extrémité opératoire, en mettant de côté tous les outils chirurgicaux usagés.Après avoir porté les nouveaux gants stériles, réappliquez un champ stérile sur le membre inférieur. Ensuite, réexposez le condyle fémoral médial. Rincez abondamment le site chirurgical avec 50 à 60 millilitres de solution saline stérile.Fermez la capsule postérieure à l’aide d’une suture Polysorb 5-0, suivie d’une fermeture cutanée avec une suture Monosorb 4-0. Retirez le mécanisme de vis réglable en hauteur fixant la goupille Steinmann. Retirez la broche Steinmann du fémur à l’aide du tournevis à fil motorisé.Pansez la plaie avec un pansement non adhésif, suivi d’un ruban adhésif. Effectuez une radiographie de l’extrémité opératoire pour vous assurer qu’aucune fracture ne s’est produite et que la broche est bien placée. Le succès de l’intervention chirurgicale a été contrôlé par la visualisation du condyle et la radiographie pour confirmer l’absence de fracture.Un mauvais placement de la goupille de Steinmann a entraîné une fracture ostéochondrale à l’impact. Dans ce modèle, la contrainte d’impact maximale moyenne était de 82 mégapascals et le taux de charge moyen était de 37 mégapascals par milliseconde. Aucune lésion cartilagineuse n’a été observée dans le condyle fémoral controlatéral non blessé et était principalement localisée au site d’impact.Les condyles fémoraux médians (MFC) atteints à 16 semaines présentaient des scores OARSI plus élevés que les MFC témoins. De plus, les MFC du genou touché ont également affiché des scores OARSI plus élevés que le MTP, le LTP et le LFC. En revanche, aucune différence dans les scores OARSI n’a été observée entre les compartiments MFC, LTP, MTP et LFC du genou controlatéral non impacté.Il n’y avait pas de différences significatives entre les surfaces de joints LFC, MTP et LTP touchées et non touchées. Le cartilage articulaire des MFC impactés présentait des niveaux plus élevés de positivité des tunnels, ce qui indique une augmentation de l’apoptose des chondrocytes par rapport aux MFC non impactés. À la fin de la procédure, le comportement douloureux des lapins peut être suivi.Après l’étude, le développement de l’arthrose post-traumatique sera évalué à l’aide de techniques d’imagerie, d’histologie et d’autres méthodes. Nous utilisons ce modèle pour tester des thérapies et des dispositifs qui visent à atténuer l’arthrose post-traumatique. Le modèle peut également nous aider à mieux comprendre la progression de cette maladie.

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Traumatic joint injuries such as anterior cruciate ligament (ACL) rupture or meniscus tears commonly lead to post-traumatic osteoarthritis (PTOA) within ...

Establishment of the KOA Model in Rabbits Using the Modified Videman Method

Application of Acupotomy in a Knee Osteoarthritis Model in Rabbit

Author Spotlight: Investigating the Mechanism of Action of Acupotomy in Treating Knee Osteoarthritis

Knee osteoarthritis (KOA) is one of the most frequently encountered diseases in the orthopedic department, which seriously reduces the quality of life of ...

Therapeutic Potential of Tuina Massage for Knee Osteoarthritis

Tuina Intervention in Sodium Monoiodoacetate Injection-Induced Rat Model of Knee Osteoarthritis

Treating Knee Osteoarthritis with Tuina - A New Perspective (Video) | JoVE

Intervention de Tuina dans le modèle d’arthrose du genou induit par injection de monoiodoacétate de sodium chez le rat

Knee osteoarthritis (KOA), a common degenerative joint disorder, is characterized by chronic pain and disability, which can progress to irreparable ...

Training Prior to Executing Tuina on Knee Osteoarthritis Rabbit Model

Entraînement avant l’exécution du modèle de lapin d’arthrose du genou Tuina on knee

Performing Tuina on Knee Osteoarthritis (KOA) Rabbit Model

Performing Tuina on Knee Osteoarthritis (KOA) Rabbit Model (Video) | JoVE 

Effectuer le Tuina sur l’arthrose du genou (KOA) Modèle de lapin