Name: a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit
Uploaded: 2023-11-21T12:20:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit at JoVE.com

Questo studio è stato supportato dal DoD Peer Reviewed Medical Research Program - Investigator-Initiated Research Award W81XWH-20-1-0304 dall'U.S. ARMY MEDICAL RESEARCH ACQUISITION ACTIVITY, dal NIH NIAMS R01AR076477 e da un programma completo di formazione muscoloscheletrica T32 dal NIH (AR065971) e dal NIH NIAMS Grant R01 AR069657. Gli autori desiderano ringraziare Kevin Carr per aver fornito la sua esperienza nella lavorazione e nella fabbricazione a questo progetto, e Drew Brown e l'Indiana Center for Musculoskeletal Health Bone Histology Core per l'aiuto con l'istologia.

La seguente procedura è stata eseguita con l'approvazione del Comitato per la cura e l'uso degli animali istituzionali della Indiana University School of Medicine (IACUC). Tutti gli interventi chirurgici di sopravvivenza sono stati eseguiti in condizioni sterili, come delineato dalle linee guida NIH. I rischi di dolore e infezione sono stati gestiti con analgesici e antibiotici adeguati per ottimizzare i risultati positivi. Per il presente studio sono stati utilizzati conigli bianchi neozelandesi maschi scheletricamente...

Questa procedura chirurgica mira a generare un danno cartilagineo consistente alla superficie portante del condilo femorale mediale del coniglio in un modello di PTOA. Un vantaggio di questa procedura è che l'approccio posteriore al ginocchio consente la visualizzazione diretta del condilo femorale mediale posteriore completo e può essere eseguito in circa 37 minuti (Tabella 2). Va anche notato che questo è un modello di lesione aperto e può portare a cambiamenti infiammatori acuti oltre il semplice ...

L'osteoartrite post-traumatica (PTOA) è una delle principali cause di disabilità in tutto il mondo e rappresenta il 12%-16% dell'osteoartrite sintomatica (OA)1. L'attuale gold standard per la gestione dell'OA allo stadio terminale è l'artroplastica totale del ginocchio e dell'anca2 o artrodesi, come nel caso dell'artrite tibioastragalica o sottoastragalica allo stadio terminale. Sebbene abbia in gran parte successo, l'artroplastica può avere complicanze costose e morbose3. Inoltre, l'artroplastica è meno auspicabile nei pazienti di età inferiore ai 50 anni, data la bassa sopravvivenza all'impianto senza revisione, pari al 77%-83%4,5. Attualmente, non esistono trattamenti approvati dalla FDA per prevenire o mitigare la progressione della PTOA.
La PTOA colpisce l'intera articolazione, compreso il tessuto sinoviale, l'osso subcondrale e la cartilagine articolare. È caratterizzata da degenerazione della cartilagine articolare, infiammazione sinoviale, rimodellamento dell'osso subcondrale e formazione di osteofiti 6,7. Il fenotipo della PTOA si sviluppa attraverso un complesso processo di interazione tra cartilagine, sinovia e osso subcondrale. L'attuale comprensione è che la lesione della cartilagine porta alla liberazione di componenti della matrice extracellulare (ECM) come il collagene di tipo 2 (COL2) e l'aggrecano (ACAN). Questi frammenti di componenti dell'ECM sono pro-infiammatori e causano un aumento della produzione di IL-6, IL-1β e specie reattive dell'ossigeno. Questi mediatori agiscono sui condrociti, causando una sovraregolazione delle metalloproteinasi della matrice (MMP), come la MMP-13, che degradano la cartilagine articolare diminuendo anche la sintesi della matrice, portando a un ambiente catabolico complessivo per la cartilagine articolare8. Inoltre, vi è evidenza di un aumento dell'apoptosi dei condrociti nell'osteoartrite primaria e nella PTOA 9,10. La disfunzione mitocondriale si verifica dopo un carico sovrafisiologico della cartilagine 11,12,13,14, che può portare ad un aumento dell'apoptosi dei condrociti 12,15. L'aumento dell'apoptosi dei condrociti è stato associato a un aumento della deplezione dei proteoglicani e del catabolismo della cartilagine e ha dimostrato di precedere i cambiamenti nel rimodellamento della cartilagine e dell'osso subcondrale16,17,18.
Come per la maggior parte delle malattie umane, sono necessari modelli affidabili e traslazionali di PTOA per comprendere ulteriormente la fisiopatologia della malattia e testare nuove terapie. Animali di grandi dimensioni come suini e canini sono stati utilizzati in modelli di frattura intra-articolare e di impatto di PTOA17,19, ma sono costosi. I modelli animali più piccoli, come topi, ratti e conigli, sono meno costosi e vengono utilizzati per studiare la PTOA generata attraverso la destabilizzazione articolare, che in genere comporta la transezione chirurgica del legamento crociato anteriore (LCA) e/o la rottura del menisco mediale 20,21,22,23,24,25. Sebbene il trauma articolare possa portare a varie conseguenze, tra cui lesioni legamentose26, il sovraccarico meccanico della cartilagine si verifica in quasi tutti i casi.
Ci sono evidenze emergenti che la patologia alla base dello sviluppo della PTOA dopo l'instabilità legamentosa (come nella transezione del LCA) e il danno condrale acuto è dovuta a meccanismi distinti27. Pertanto, è importante sviluppare modelli di lesioni dirette alla cartilagine. Attualmente esiste un numero limitato di modelli di impatto che generano lesioni osteocondrali o condrali nei ratti e nei topi28,29. Tuttavia, la cartilagine murina non è adatta a generare difetti condrali isolati. Questo perché la cartilagine articolare murina ha uno spessore di soli 3-5 strati cellulari e manca di zone cartilaginee superficiali, radiali e di transizione organizzate, nonché dello spesso strato di cartilagine calcificata che si trova negli esseri umani e negli animali più grandi. I modelli murini mostrano anche una risoluzione spontanea dei difetti parziali della cartilagine30,31. Quindi, abbiamo scelto il coniglio per questo modello di impatto poiché il suo spessore e la sua organizzazione della cartilagine sono simili a quelli degli esseri umani, ed è il modello animale più piccolo che consentirà di fornire un impatto condrale coerente che si traduce in PTOA. Precedenti modelli chirurgici aperti dell'impatto del condilo femorale nel coniglio hanno impiegato un pendolo32, un dispositivo portatile per l'impatto della cartilagine caricato a molla 33 e una torre di caduta che ha permesso la creazione di un impattatore specifico per il coniglio34. Tuttavia, questi studi mancavano di dati in vivo. Altri hanno riportato dati in vivo con dispositivi a percussione a pendolo 35, pneumatici36 e caricati a molla37 10, e questi studi mostrano un alto tasso di variabilità nelle sollecitazioni di picco e nei tassi di carico tra i metodi. Tuttavia, il campo manca di un approccio coerente per modellare in modo affidabile il trauma acuto della cartilagine in vivo.
L'attuale protocollo impiega un sistema basato su una torre di caduta per fornire un impatto coerente al condilo mediale posteriore del ginocchio del coniglio. Un approccio posteriore al ginocchio viene impiegato per esporre il condilo femorale mediale posteriore. Un perno di Steinman viene quindi posizionato attraverso i condili femorali da mediale a laterale in linea con la superficie articolare e fissato alla piattaforma. Una volta fissato, un carico viene consegnato al condilo femorale mediale posteriore. Questo metodo consente di infliggere danni consistenti alla cartilagine sulla superficie portante del femore distale del coniglio.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Flat head screw</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92210A194</td>
			<td>Stainless steel hex drive flat head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#15 scalpel blades</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1029066</td>
			<td>Scalpel McKesson No. 15 Stainless Steel / Plastic Classic Grip Handle Sterile Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>99065A120</td>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031801</td>
			<td>For irrigation; General Purpose Syringe McKesson 10 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031804</td>
			<td>For lidocaine/bupiviacaine injection; General Purpose Syringe McKesson 3 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 polysorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J332H</td>
			<td>3-0 Vircryl, CT-2, 1/2 circle, 26 mm, tapered</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 monosorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>Z397H</td>
			<td>4-0 PDS 2, FS-2, 3/8 circle, 19mm, cutting edge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-0 polysorb</td>
			<td>Med Vet International</td>
			<td>NC9335902</td>
			<td>Med Vet International 5-0 ETHICON COATED VICRYL C-3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Accelerometer</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>8743A5</td>
			<td>Accelerometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson-Browns Forceps</td>
			<td>World precision tools</td>
			<td>500177</td>
			<td>Adson-Brown Forceps, 12 cm, Straight, TC Jaws, 7 x 7 Teeth</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alfaxalone</td>
			<td>Jurox</td>
			<td>49480-002-01</td>
			<td>Alfaxan Multidose by Jurox : 10 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Par Pharmaceuticals</td>
			<td>42023-0179-05</td>
			<td>Buprenorphine HCL injection: 0.3 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Butorphanol&#160;</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>54771-2033</td>
			<td>Butorphanol tartrate&#160;10mg/ml by Zoetis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine Hand Scrub</td>
			<td>BD</td>
			<td>371073</td>
			<td>BD E-Z Scrub 107 Surgical Scrub Brush/Sponge, 4% CHG, Red</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collet</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>14023</td>
			<td>Stryker 4100-62 wire Collet 0.28-0.71&#39;&#39;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cordless Driver handpiece</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S4300</td>
			<td>Stryker 4300 CD3 Cordless Driver 3 handpiece</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cricket Retractors</td>
			<td>Novosurgical</td>
			<td>G3510 21</td>
			<td>2x Heiss (Holzheimer) Cross Action Retractor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissector Scissors</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0662</td>
			<td>Aesculap AG, Metzenbaum, Scissors, Straight 5 3/4&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elizabethian Collar</td>
			<td>ElizaSoft</td>
			<td>62054</td>
			<td>ElizaSoft Elizabethan Recovery Collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacin</td>
			<td>Custom Meds</td>
			<td></td>
			<td>Enrofloxacin compounded by Custom Meds</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye Ointment</td>
			<td>Pivetal&#160;</td>
			<td>46066-753-55</td>
			<td>Pivetal Articifical Tears- recently recalled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5631T11</td>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fast green</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>F7258</td>
			<td>Fast green</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freer</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0226Q</td>
			<td>Freer elevator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -1</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91251A197</td>
			<td>Black-oxide alloy steel socket head screw, 8-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -2</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A194</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -3</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A146</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -4</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A151</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 6-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>GHS132-1L</td>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hex nut</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91841A007</td>
			<td>Stainless steel hex nut, 6-32</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5126A71</td>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact device</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact platform</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K-wires</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0250A</td>
			<td>JorVet Intramedullary Steinman Pins, Trocar-Trocar 1/16&#34; x 7&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab View</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Load cell</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>9712B5000</td>
			<td>Load cell</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB</td>
			<td>The MathWorks Inc.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DMi-8</td>
			<td>Leica DMi8 microscope with LAS-X software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Almaject</td>
			<td>72611-749-10</td>
			<td>Midazolam Hydrochloride injection: 5mg/ml by Almaject</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>milling machine depth stops</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>2949A71</td>
			<td>Clamp-on milling machine depth stops</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mobile C-arm</td>
			<td>Philips</td>
			<td>718095</td>
			<td>BV&#160;Pulsera, Mobile C-arm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>9338T7</td>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Driver</td>
			<td>A2Z Scilab</td>
			<td>A2ZTCIN39</td>
			<td>TC Webster Needle Holder Smooth Jaws 5&#34;, Premium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentobarbital</td>
			<td>Vortech</td>
			<td>0298-9373-68</td>
			<td>Pentobarbital 390 mg/mL by Vortech</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safranin O</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>HT90432</td>
			<td>Safranin O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Battery pack</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>NS014036</td>
			<td>6212 Small Battery pack- 9.6 V</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>89535K25</td>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline</td>
			<td>ICU Medical</td>
			<td>6139-22</td>
			<td>AquaLite Solution Pour Bottles, 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stryker 6110-120 System 6 Battery Charger</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S6110-120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gloves</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1044729</td>
			<td>Surgical Glove McKesson Perry Size 6.5 Sterile Pair Latex Extended Cuff Length Smooth Brown Not Chemo Approved</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gown</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1104452</td>
			<td>Non-Reinforced Surgical Gown with Towel McKesson Large Blue Sterile AAMI Level 3 Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture scissors</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0910SA</td>
			<td>Super Cut Scissors, Mayo, Straight, 5 1/2&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TUNEL staining kit</td>
			<td>ABP Bioscience</td>
			<td>A049</td>
			<td>TUNEL Chromogenic Apoptosis Detection Kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weitlaner Retractors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>17012-11</td>
			<td>2x Weitlaner-Locktite Retractors</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit

L'osteoartrite post-traumatica (PTOA) è responsabile del 12% di tutti i casi di osteoartrite negli Stati Uniti. La PTOA può essere innescata da un singolo evento traumatico, come un carico ad alto impatto che agisce sulla cartilagine articolare, o da un'instabilità articolare, come avviene con la rottura del legamento crociato anteriore. Attualmente non esistono terapie efficaci per prevenire la PTOA. Lo sviluppo di un modello animale affidabile di PTOA è necessario per comprendere meglio i meccanismi attraverso i quali procede il danno alla cartilagine e per studiare nuove strategie di trattamento per alleviare o prevenire la progressione della PTOA. Questo protocollo descrive un modello di impatto del condilo femorale di coniglio aperto e basato su una torre di caduta per indurre danni alla cartilagine. Questo modello ha fornito carichi di picco di 579,1 ± 71,1 N e sollecitazioni di picco di 81,9 ± 10,1 MPa con un carico di picco di 2,4 ± 0,5 ms. La cartilagine articolare dei condili femorali mediali (MFC) impattati aveva tassi più elevati di cellule apoptotiche (p = 0,0058) e possedeva punteggi più elevati dell'Osteoarthritis Research Society International (OARSI) di 3,38 ± 1,43 rispetto alle MFC controlaterali non impattate (0,56 ± 0,42) e ad altre superfici cartilaginee del ginocchio impattato (p < 0,0001). Non sono state rilevate differenze nei punteggi OARSI tra le superfici articolari non impattate (p > 0,05).

Il successo di questa procedura è stato monitorato immediatamente dopo l'impatto mediante la visualizzazione del condilo da parte del chirurgo (Figura 4A) e mediante radiografia per garantire che non si verificasse alcuna frattura (Figura 4B). C'è il rischio di fallimento dell'impatto che porta a una frattura intraoperatoria del condilo. Ciò era in genere dovuto a un posizionamento improprio dei perni di Steinman (Figura 5). Util...

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A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit

Il modello aperto di impatto del condilo femorale mediale nei conigli è affidabile per lo studio dell'osteoartrite post-traumatica (PTOA) e di nuove strategie terapeutiche per mitigare la progressione della PTOA. Questo protocollo genera un difetto cartilagineo isolato del condilo femorale mediale posteriore nei conigli utilizzando una torre di caduta basata su carrello con una testa del dispositivo di impatto.

Un modello riproducibile di impatto della cartilagine per generare l'artrosi post-traumatica nel coniglio

Post-traumatic osteoarthritis (PTOA) is responsible for 12% of all osteoarthritis cases in the United States. PTOA can be initiated by a single traumatic ...

Questo metodo provoca danni acuti alla cartilagine della superficie portante del ginocchio del coniglio e induce in modo affidabile l'artrosi post-traumatica. Questo modello rispecchia i traumi articolari rilevanti per la pratica clinica. Consentirà la valutazione di nuove terapie per mitigare l'artrite post-traumatica.Il principale ostacolo tecnico è il posizionamento del perno di Steinmann nell'asta femorale. Il posizionamento errato provocherà la frattura dell'albero femorale. Si consiglia di praticare questo modello prima sui cadaveri di coniglio.Per iniziare, posizionare il blocco delle gambe anteriori in acciaio inossidabile sotto l'estremità della piattaforma d'impatto e coprire la piattaforma con un termoforo. Posizionare il coniglio anestetizzato in posizione prona sul termoforo. Posiziona una protuberanza imbottita sotto l'anca controlaterale.Utilizzando del nastro di seta, ritrarre delicatamente la coda superiore e controlaterale all'estremità operativa. Pulire il sito chirurgico con clorexidina e una garza sterile imbevuta di alcol al 70%, partendo dalla parte posteriore del ginocchio con una spazzata circolare verso l'esterno. Posizionare un guanto sterile sul piede operatorio fino alla caviglia e avvolgerlo con un bendaggio coesivo sterile.Coprire il sito chirurgico utilizzando tre teli posizionandone uno direttamente sotto l'estremità operatoria e gli altri due che coprono il resto del corpo. Fissare le tende con morsetti per asciugamani. Palpare la posizione della rotula anteriormente per stimare la posizione dell'articolazione del ginocchio.Utilizzando una lama da 15, praticare un'incisione di tre o quattro centimetri lungo la faccia posteriore del ginocchio esteso dal livello del polo superiore della rotula distalmente. Eseguire dissezioni smussate e taglienti attraverso la fascia superficiale sottostante. Dopo aver sviluppato lateralmente l'intervallo tra la pelle medialmente e il gastrocnemio mediale, posizionare un divaricatore Weitlaner autobloccante in questo intervallo.Quindi sezionare lateralmente alla safena e ritrarre medialmente la vascolarizzazione e lateralmente il complesso gastrosoleo. Continuare la dissezione distalmente fino a quando non viene identificata una piccola fabella mobile sopra il condilo femorale posteromediale. Eseguire un'artrotomia, smobilitare la fabella superolaterale, esponendo il condilo femorale mediale sottostante.Ritrarre i tessuti molli. Mantenendo il condilo esposto, posizionare un perno di Steinmann da 0,062 pollici sull'aspetto superiore del condilo femorale mediale e centrato nella direzione anteriore posteriore del condilo femorale mediale, a circa cinque millimetri dall'aspetto posteriore del condilo. Successivamente, utilizzando un cacciavite Steinmann alimentato a batteria, guidare il perno lateralmente attraverso l'osso e la pelle laterale parallelamente alla superficie articolare.Rimuovere i divaricatori e chiudere l'incisione cutanea con una sutura 3-0 Polysorb in modo continuo. Coprire l'incisione con una garza sterile. Rimuovere il telo sotto l'arto operatorio.Regolare l'altezza delle parti inferiori dei morsetti a perno Steinmann in modo che corrispondano all'altezza del perno. Fissare il perno Steinmann su entrambi i lati del ginocchio fissando gli aspetti superiori dei morsetti e serrando le viti. Rimuovere la sutura e riaprire l'incisione.Utilizzare divaricatori autobloccanti Weitlaner e grilli per esporre il condilo femorale mediale. Fissare la testa sterile dell'impattatore da tre millimetri al carrello della torre di caduta. Portare la torre di caduta sopra l'estremità operativa e posizionare la sua base sotto la piattaforma d'impatto.Abbassare delicatamente il dispositivo d'urto al centro del condilo femorale posteromediale. Sposta il coniglio o la torre per assicurarti che la testa del dispositivo d'urto sia centrata sul condilo femorale mediale. Una volta assicurata la traiettoria appropriata, clamp la torre sulla piattaforma con i morsetti a ginocchiera.Quindi, posiziona l'impattatore sulla torre di caduta a sette centimetri sopra il condilo femorale mediale. Nel software di acquisizione dati della vista di laboratorio, fare clic sul pulsante di avvio appena prima di liberare l'arresto del mandrino per rilasciare il carrello e lasciarlo cadere sotto la forza di gravità. Eseguire la visualizzazione della superficie della cartilagine per determinare se si è verificato un danno alla cartilagine appropriato.Per analizzare i dati utilizzando il codice MATLAB, spostare il file di dati dai sensori nella stessa cartella di MATLAB ed eseguire il codice. Ispezionare la curva del tempo di caricamento e assicurarsi che sia liscia, indicando che non si è verificata alcuna frattura. Rimuovere la torre di caduta da sopra l'estremità operatoria, mettendo da parte tutti gli strumenti chirurgici usati.Dopo aver indossato i nuovi guanti sterili, riapplicare un telo sterile sull'arto inferiore. Quindi esporre nuovamente il condilo femorale mediale. Sciacquare accuratamente il sito chirurgico con 50-60 millilitri di soluzione fisiologica sterile.Chiudere la capsula posteriore utilizzando una sutura Polysorb 5-0, seguita dalla chiusura cutanea con una sutura Monosorb 4-0. Rimuovere il meccanismo a vite regolabile in altezza che fissa il perno Steinmann. Rimuovere il perno di Steinmann dal femore con il trascinatore a filo alimentato.Medicare la ferita con una medicazione non adesiva, seguita da nastro adesivo. Eseguire una radiografia dell'estremità operatoria per assicurarsi che non si sia verificata alcuna frattura e che il posizionamento appropriato del perno. Il successo della procedura chirurgica è stato monitorato attraverso la visualizzazione del condilo e la radiografia per confermare l'assenza di fratture.Il posizionamento improprio del perno di Steinmann ha provocato una frattura osteocondrale all'impatto. In questo modello, la sollecitazione media di impatto di picco è stata di 82 megapascal e la velocità di carico media è stata di 37 megapascal per millisecondo. Il danno alla cartilagine non è stato osservato nel condilo femorale controlaterale non lesionato ed è stato principalmente localizzato nel sito di impatto.I condili femorali mediali a 16 settimane impattati, o MFC, avevano punteggi OARSI più elevati rispetto agli MFC di controllo. Inoltre, gli MFC del ginocchio impattati hanno anche mostrato punteggi OARSI più elevati rispetto a MTP, LTP e LFC. Al contrario, non sono state osservate differenze nei punteggi OARSI tra i compartimenti MFC, LTP, MTP e LFC del ginocchio controlaterale non impattato.Non sono state riscontrate differenze significative tra le superfici dei giunti LFC, MTP e LTP impattate e non impattate. La cartilagine articolare delle MFC incluse presentava livelli più elevati di positività al tunnel, indicando un aumento dell'apoptosi dei condrociti rispetto alle MFC non impattate. Alla fine della procedura, è possibile monitorare il comportamento dolorante dei conigli.Dopo lo studio, lo sviluppo dell'artrosi post-traumatica sarà valutato utilizzando tecniche di imaging, istologia e altri metodi. Stiamo usando questo modello per testare terapie e dispositivi che mirano a mitigare l'osteoartrite post-traumatica. Il modello può anche aiutarci a comprendere meglio la progressione di questa malattia.

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Application of Acupotomy in a Knee Osteoarthritis Model in Rabbit

Author Spotlight: Investigating the Mechanism of Action of Acupotomy in Treating Knee Osteoarthritis

Knee osteoarthritis (KOA) is one of the most frequently encountered diseases in the orthopedic department, which seriously reduces the quality of life of ...

Therapeutic Potential of Tuina Massage for Knee Osteoarthritis

Tuina Intervention in Sodium Monoiodoacetate Injection-Induced Rat Model of Knee Osteoarthritis

Treating Knee Osteoarthritis with Tuina - A New Perspective (Video) | JoVE

Intervento di Tuina nel modello di ratto indotto dall'iniezione di monoiodoacetato di sodio di osteoartrite del ginocchio

Knee osteoarthritis (KOA), a common degenerative joint disorder, is characterized by chronic pain and disability, which can progress to irreparable ...

Training Prior to Executing Tuina on Knee Osteoarthritis Rabbit Model

Allenamento prima dell'esecuzione di Tuina sul modello di coniglio per osteoartrite del ginocchio

Performing Tuina on Knee Osteoarthritis (KOA) Rabbit Model

Performing Tuina on Knee Osteoarthritis (KOA) Rabbit Model (Video) | JoVE 

Esecuzione di Tuina su osteoartrite del ginocchio (KOA) Modello di coniglio