Name: a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit
Uploaded: 2023-11-21T12:20:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit at JoVE.com

Denne studien ble støttet av DoD Peer Reviewed Medical Research Program - Investigator-Initiert Research Award W81XWH-20-1-0304 fra US Army Medical Research Acquisition Activity, av NIH NIAMS R01AR076477 og et omfattende muskuloskeletale T32 treningsprogram fra NIH (AR065971) og av NIH NIAMS Grant R01 AR069657. Forfatterne vil gjerne takke Kevin Carr for å gi sin ekspertise innen maskinering og fabrikasjon til dette prosjektet, og Drew Brown og Indiana Center for Musculoskeletal Health Bone Histology Core for å hjelpe til med histologi.

Følgende prosedyre ble utført med godkjenning fra Indiana University School of Medicine Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). Alle overlevelsesoperasjoner ble utført under sterile forhold, som beskrevet i NIHs retningslinjer. Smerte- og infeksjonsrisiko ble håndtert med riktige smertestillende midler og antibiotika for å optimalisere vellykkede resultater. Skjelettmodne mannlige New Zealand hvite kaniner, som veier 3,0-4,0 kg, ble brukt til denne studien.
1. Fabrikasj...

Denne kirurgiske prosedyren tar sikte på å generere konsekvent bruskskade på den vektbærende overflaten av kaninmediale femoralkondyle i en modell av PTOA. En fordel med denne prosedyren er at den bakre tilnærmingen til kneet gir mulighet for direkte visualisering av hele bakre mediale femurkondyle, og den kan utføres på ca. 37 minutter (tab 2). Det skal også bemerkes at dette er en åpen skademodell og kan føre til akutte betennelsesforandringer utover bare virkningen på grunn av potensiell sk...

Posttraumatisk slitasjegikt (PTOA) er en ledende årsak til uførhet over hele verden, og står for 12%-16% av symptomatisk slitasjegikt (OA)1. Den nåværende gullstandarden for OA-behandling i sluttstadiet er total kne- og hofteartroplastikk2 eller arthrodesis, som i tilfelle av tibiotalar eller subtalar artritt i sluttstadiet. Selv om det i stor grad er vellykket, kan artroplastikk ha kostbare og sykelige komplikasjoner3. I tillegg er artroplastikk mindre ønskelig hos pasienter under 50 år, gitt den lave revisjonsfrie implantatoverlevelsen på 77% -83%4,5. For tiden er det ingen FDA-godkjente behandlinger for å forhindre eller redusere utviklingen av PTOA.
PTOA påvirker hele leddet, inkludert synovialvev, subkondralt bein og leddbrusk. Det er preget av leddbruskdegenerasjon, synovial betennelse, subchondral beinremodellering og osteofyttdannelse 6,7. Fenotypen av PTOA utvikler seg via en kompleks prosess med samspill mellom brusk, synovium og subkondralt bein. Den nåværende forståelsen er at bruskskade fører til frigjøring av ekstracellulære matrikskomponenter (ECM) som type 2 kollagen (COL2) og aggrecan (ACAN). Disse ECM-komponentfragmentene er proinflammatoriske og forårsaker økt produksjon av IL-6, IL-1β og reaktive oksygenarter. Disse mediatorene virker på kondrocytter, forårsaker oppregulering av matriksmetalloproteinaser (MMP), slik som MMP-13, som nedbryter leddbrusk samtidig som matrisesyntesen reduseres, noe som fører til et samlet katabolsk miljø for leddbrusk8. I tillegg er det holdepunkter for økt kondrocyttapoptose ved primær artrose og PTOA 9,10. Mitokondriell dysfunksjon oppstår etter suprafysiologisk belastning av brusk 11,12,13,14, noe som kan føre til økt kondrocyttapoptose 12,15. Forbedret kondrocyttapoptose har vært assosiert med økt proteoglykanuttømming og bruskkatabolisme og har vist seg å gå foran endringer i brusk og subkondral beinremodellering16,17,18.
Som med de fleste menneskelige sykdommer, er det nødvendig med pålitelige og translasjonsmodeller av PTOA for å forstå patofysiologien til sykdommen og teste nye terapier. Store dyr som svin og hjørnetenner har blitt brukt i intraartikulære brudd- og slagmodeller av PTOA17,19, men de er kostbare. Mindre dyremodeller, som mus, rotter og kaniner, er billigere og brukes til å studere PTOA generert gjennom felles destabilisering, som vanligvis involverer kirurgisk transeksjon av fremre korsbånd (ACL) og / eller forstyrrelse av mediale menisk 20,21,22,23,24,25. Selv om felles traumer kan føre til ulike konsekvenser, inkludert ligamentøs skade26, oppstår mekanisk overbelastning av brusk i nesten alle tilfeller.
Det er fremvoksende evidens for at patologien bak utviklingen av PTOA etter ligamentøs instabilitet (som ved korsbåndtranseksjon) og akutt kondral skade skyldes forskjellige mekanismer27. Derfor er det viktig å utvikle modeller for direkte skade på brusk. Det er for tiden et begrenset antall slagmodeller som genererer osteokondral eller kondral skade hos rotter og mus28,29. Murine brusk er imidlertid ikke godt egnet for å generere isolerte kondrale defekter. Dette skyldes at murine leddbrusk bare er 3-5 cellelag tykke og mangler organiserte overfladiske, radiale og overgangsbrusksoner, samt det tykke forkalkede brusklaget som finnes hos mennesker og større dyr. Murine modeller viser også spontan oppløsning av partielle bruskdefekter30,31. Derfor valgte vi kaninen for denne slagmodellen, da brusktykkelsen og organisasjonen ligner på menneskers, og det er den minste dyremodellen som gjør det mulig å levere en kondral innvirkning som resulterer i PTOA. Tidligere åpne kirurgiske modeller av lårkondylpåvirkning hos kaninen har benyttet en pendel32, en håndholdt fjærbelastet bruskpåvirkningsanordning 33 og et falltårn som tillot kaninspesifikk påvirkningsdannelse34. Disse studiene manglet imidlertid in vivo data. Andre har rapportert in vivo-data med pendelbaserte35, pneumatiske 36 og fjærbelastede37 slagenheter 10, og disse studiene viser en høy grad av variabilitet i toppspenning og belastningshastigheter mellom metodene. Likevel mangler feltet en konsistent tilnærming til pålitelig modellering av akutt brusktrauma in vivo.
Den nåværende protokollen benytter et drop-tower-basert system for å levere en konsistent innvirkning på den bakre mediale kondylen av kaninkneet. En bakre tilnærming til kneet brukes til å eksponere den bakre mediale femorale kondylen. En Steinman-pinne plasseres deretter over femoralkondylene fra mediale til laterale på linje med leddflaten og festes til plattformen. Når den er sikret, leveres en last til den bakre mediale femorale kondylen. Denne metoden gjør det mulig å levere konsekvent bruskskade til den vektbærende overflaten av kaninens distale lårben.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Flat head screw</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92210A194</td>
			<td>Stainless steel hex drive flat head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#15 scalpel blades</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1029066</td>
			<td>Scalpel McKesson No. 15 Stainless Steel / Plastic Classic Grip Handle Sterile Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>99065A120</td>
			<td>1/2&#8221;-20 threaded rod</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031801</td>
			<td>For irrigation; General Purpose Syringe McKesson 10 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 mL syringe</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1031804</td>
			<td>For lidocaine/bupiviacaine injection; General Purpose Syringe McKesson 3 mL Blister Pack Luer Lock Tip Without Safety.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 polysorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J332H</td>
			<td>3-0 Vircryl, CT-2, 1/2 circle, 26 mm, tapered</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-0 monosorb</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>Z397H</td>
			<td>4-0 PDS 2, FS-2, 3/8 circle, 19mm, cutting edge</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-0 polysorb</td>
			<td>Med Vet International</td>
			<td>NC9335902</td>
			<td>Med Vet International 5-0 ETHICON COATED VICRYL C-3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Accelerometer</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>8743A5</td>
			<td>Accelerometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson-Browns Forceps</td>
			<td>World precision tools</td>
			<td>500177</td>
			<td>Adson-Brown Forceps, 12 cm, Straight, TC Jaws, 7 x 7 Teeth</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alfaxalone</td>
			<td>Jurox</td>
			<td>49480-002-01</td>
			<td>Alfaxan Multidose by Jurox : 10 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Par Pharmaceuticals</td>
			<td>42023-0179-05</td>
			<td>Buprenorphine HCL injection: 0.3 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Butorphanol&#160;</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>54771-2033</td>
			<td>Butorphanol tartrate&#160;10mg/ml by Zoetis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine Hand Scrub</td>
			<td>BD</td>
			<td>371073</td>
			<td>BD E-Z Scrub 107 Surgical Scrub Brush/Sponge, 4% CHG, Red</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collet</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>14023</td>
			<td>Stryker 4100-62 wire Collet 0.28-0.71&#39;&#39;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cordless Driver handpiece</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S4300</td>
			<td>Stryker 4300 CD3 Cordless Driver 3 handpiece</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cricket Retractors</td>
			<td>Novosurgical</td>
			<td>G3510 21</td>
			<td>2x Heiss (Holzheimer) Cross Action Retractor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissector Scissors</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0662</td>
			<td>Aesculap AG, Metzenbaum, Scissors, Straight 5 3/4&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elizabethian Collar</td>
			<td>ElizaSoft</td>
			<td>62054</td>
			<td>ElizaSoft Elizabethan Recovery Collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacin</td>
			<td>Custom Meds</td>
			<td></td>
			<td>Enrofloxacin compounded by Custom Meds</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye Ointment</td>
			<td>Pivetal&#160;</td>
			<td>46066-753-55</td>
			<td>Pivetal Articifical Tears- recently recalled</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5631T11</td>
			<td>Face-mount shaft collar</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fast green</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>F7258</td>
			<td>Fast green</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freer</td>
			<td>Jorvet labs</td>
			<td>J0226Q</td>
			<td>Freer elevator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -1</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91251A197</td>
			<td>Black-oxide alloy steel socket head screw, 8-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -2</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A194</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -3</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A146</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 8-32, 1/2&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Head screw -4</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>92196A151</td>
			<td>Stainless steel socket head screw, 6-32, 3/4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>GHS132-1L</td>
			<td>Hematoxylin Solution, Gill No. 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hex nut</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>91841A007</td>
			<td>Stainless steel hex nut, 6-32</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>5126A71</td>
			<td>Hold-down toggle clamp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact device</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impact platform</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>custom made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K-wires</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0250A</td>
			<td>JorVet Intramedullary Steinman Pins, Trocar-Trocar 1/16&#34; x 7&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab View</td>
			<td>National Instruments</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Load cell</td>
			<td>Kistler</td>
			<td>9712B5000</td>
			<td>Load cell</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB</td>
			<td>The MathWorks Inc.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>DMi-8</td>
			<td>Leica DMi8 microscope with LAS-X software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Almaject</td>
			<td>72611-749-10</td>
			<td>Midazolam Hydrochloride injection: 5mg/ml by Almaject</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>milling machine depth stops</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>2949A71</td>
			<td>Clamp-on milling machine depth stops</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mobile C-arm</td>
			<td>Philips</td>
			<td>718095</td>
			<td>BV&#160;Pulsera, Mobile C-arm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>9338T7</td>
			<td>Mounted linear ball bearing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Driver</td>
			<td>A2Z Scilab</td>
			<td>A2ZTCIN39</td>
			<td>TC Webster Needle Holder Smooth Jaws 5&#34;, Premium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentobarbital</td>
			<td>Vortech</td>
			<td>0298-9373-68</td>
			<td>Pentobarbital 390 mg/mL by Vortech</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safranin O</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>HT90432</td>
			<td>Safranin O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Battery pack</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>NS014036</td>
			<td>6212 Small Battery pack- 9.6 V</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>89535K25</td>
			<td>Steel rod, 2&#8217;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Saline</td>
			<td>ICU Medical</td>
			<td>6139-22</td>
			<td>AquaLite Solution Pour Bottles, 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stryker 6110-120 System 6 Battery Charger</td>
			<td>STRYKER</td>
			<td>OR-S6110-120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gloves</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1044729</td>
			<td>Surgical Glove McKesson Perry Size 6.5 Sterile Pair Latex Extended Cuff Length Smooth Brown Not Chemo Approved</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical gown</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>1104452</td>
			<td>Non-Reinforced Surgical Gown with Towel McKesson Large Blue Sterile AAMI Level 3 Disposable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture scissors</td>
			<td>Jorvet Labs</td>
			<td>J0910SA</td>
			<td>Super Cut Scissors, Mayo, Straight, 5 1/2&#8243;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TUNEL staining kit</td>
			<td>ABP Bioscience</td>
			<td>A049</td>
			<td>TUNEL Chromogenic Apoptosis Detection Kit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weitlaner Retractors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>17012-11</td>
			<td>2x Weitlaner-Locktite Retractors</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a reproducible cartilage impact model to generate post-traumatic osteoarthritis in the rabbit

Posttraumatisk slitasjegikt (PTOA) er ansvarlig for 12% av alle slitasjegikt tilfeller i USA. PTOA kan initieres ved en enkelt traumatisk hendelse, for eksempel en høy belastning som virker på leddbrusk, eller ved leddinstabilitet, som oppstår ved fremre korsbåndsruptur. Det finnes ingen effektive terapeutiske midler for å forhindre PTOA for øyeblikket. Utvikling av en pålitelig dyremodell av PTOA er nødvendig for å bedre forstå mekanismene som bruskskader fortsetter og for å undersøke nye behandlingsstrategier for å lindre eller forhindre progresjon av PTOA. Denne protokollen beskriver en åpen, dråpetårnbasert kanin femoral kondyle slagmodell for å indusere bruskskader. Denne modellen leverte toppbelastninger på 579,1 ± 71,1 N, og toppspenninger på 81,9 ± 10,1 MPa med en toppbelastning på 2,4 ± 0,5 ms. Leddbrusk fra påvirkede mediale femorale kondyler (MFC) hadde høyere forekomst av apoptotiske celler (p = 0,0058) og hadde høyere Osteoarthritis Research Society International (OARSI) score på 3,38 ± 1,43 sammenlignet med ikke-påvirkede kontralaterale MFC (0,56 ± 0,42) og andre bruskflater i det berørte kneet (p < 0,0001). Det ble ikke påvist forskjeller i OARSI-skår mellom de ikke-påvirkede leddflatene (p > 0,05).

Suksessen med denne prosedyren ble overvåket umiddelbart etter sammenstøtet ved visualisering av kondylen av kirurgen (figur 4A) og ved radiografi for å sikre at det ikke oppsto brudd (figur 4B). Det er fare for støtsvikt som fører til et intraoperativt brudd i kondylen. Dette skyldtes typisk feil plassering av Steinman-stiften (figur 5). Ved bruk av denne modellen var det en bruddsviktrate sekundært til intraoperativ fraktur ...

Watch this Scientific Journal Video about A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit at JoVE.com

A Reproducible Cartilage Impact Model to Generate Post-Traumatic Osteoarthritis in the Rabbit

Den åpne mediale femurkondyleeffektmodellen hos kaniner er pålitelig for å studere posttraumatisk slitasjegikt (PTOA) og nye terapeutiske strategier for å redusere PTOA-progresjon. Denne protokollen genererer en isolert bruskdefekt av den bakre mediale femurkondylen hos kaniner ved bruk av et vognbasert falltårn med et slaghode.

En reproduserbar bruskpåvirkningsmodell for å generere posttraumatisk slitasjegikt hos kaninen

Post-traumatic osteoarthritis (PTOA) is responsible for 12% of all osteoarthritis cases in the United States. PTOA can be initiated by a single traumatic ...

Denne metoden forårsaker akutt bruskskade på den vektbærende overflaten av kaninkneet og induserer pålitelig posttraumatisk slitasjegikt. Denne modellen speiler leddtraumer som er relevante for klinisk praksis. Det vil tillate evaluering av nye terapier for å redusere posttraumatisk leddgikt.Den viktigste tekniske hindringen er plassering av Steinmann-pinnen i lårbenskaftet. Feilplassering vil resultere i lårbensbrudd. Vi anbefaler å praktisere denne modellen først på kaninkadavre.For å begynne, plasser den rustfrie stålbenblokken under enden av slagplattformen og dekk plattformen med en varmepute. Plasser den bedøvede kaninen i utsatt stilling på varmeputen. Plasser en polstret støt under den kontralaterale hoften.Bruk silkebånd, trekk forsiktig halen overlegen og kontralateral til operativ ekstremitet. Rengjør operasjonsstedet med klorhexidin og 70% alkohol-gjennomvåt sterilt gasbind, starter fra bakre kne med en sirkulær feie utover. Legg en steril hanske over operasjonsfoten opp til ankelen og pakk den inn med en steril sammenhengende omslag.Draper operasjonsstedet ved hjelp av tre gardiner ved å plassere en direkte under den operative ekstremiteten og de to andre som dekker resten av kroppen. Fest gardinene med håndkleklemmer. Palpere posisjonen til patella anteriort for å estimere kneleddets posisjon.Bruk et 15-blad til å lage et snitt på tre til fire centimeter langs det bakre aspektet av det forlengede kneet fra nivået på patellaens øvre pol distalt. Utfør stumpe og skarpe disseksjoner gjennom den underliggende overfladiske fascien. Etter å ha utviklet intervallet mellom huden medialt og mediale gastrocnemius lateralt, plasser en selvbevarende Weitlaner-retractor i dette intervallet.Deretter dissekeres lateralt til saphenous og trekker vaskulaturen medialt og gastrosoleuskomplekset lateralt. Fortsett å dissekere distalt til en liten mobil fabella er identifisert over den posteromediale femoralkondylen. Utfør en artrotomi, demobiliser fabella superolateral, og utsett den underliggende mediale femorale kondylen.Trekk bløtvevet tilbake. Mens du opprettholder kondylen eksponert, plasser en 0, 062-tommers Steinmann-pinne på det overlegne aspektet av mediale femoralkondylen og sentrert i den fremre bakre retningen av den mediale femorale kondylen, omtrent fem millimeter fra det bakre aspektet av kondylen. Deretter, ved hjelp av en batteridrevet Steinmann-pindriver, kjør tappen lateralt gjennom beinet og lateral hud parallelt med leddoverflaten.Fjern tilbaketrekkerne og lukk hudsnittet med en 3-0 Polysorb sutur på løpende måte. Dekk snittet med sterilt gasbind. Fjern gardinen under operativ lem.Juster høyden på de nedre delene av Steinmann-klemmene slik at de samsvarer med høyden på tappen. Fest Steinmann-stiften på begge sider av kneet ved å feste de øverste aspektene av klemmene og stramme skruene. Fjern suturen og åpne snittet igjen.Bruk selvbevarende Weitlaner og cricket retractors for å avsløre mediale femoralkondyle. Fest det sterile støthodet på tre millimeter til falltårnvognen. Ta falltårnet over den operative ekstremiteten og plasser basen under slagplattformen.Senk støteren forsiktig ned på midten av den posteromediale femurkondylen. Flytt kaninen eller tårnet for å sikre at slaghodet er sentrert over det mediale femurkondylet. Når passende bane er sikret, klemmer du tårnet på plattformen med vippeklemmer.Sett deretter støtet på falltårnet på syv centimeter over mediale femoralkondyle. I laboratorievisningsprogramvaren klikker du på startknappen like før du frigjør spindelstoppet for å frigjøre vognen og la den falle under tyngdekraften. Utfør visualisering av bruskoverflaten for å avgjøre om passende bruskskade har oppstått.Hvis du vil analysere dataene ved hjelp av MATLAB-koden, flytter du datafilen fra sensorene til samme mappe som MATLAB og kjører koden. Inspiser lastetidskurven og sørg for at den er jevn, noe som indikerer at det ikke har oppstått brudd. Fjern falltårnet fra over den operative ekstremiteten, og legg alle brukte kirurgiske verktøy til side.Etter å ha brukt de nye sterile hanskene, påfør en steril drapering på underekstremiteten. Deretter eksponeres den mediale femorale kondylen på nytt. Skyll operasjonsstedet grundig med 50 til 60 ml steril saltvann.Lukk den bakre kapselen med en 5-0 Polysorb-sutur, etterfulgt av hudlukking med en 4-0 Monosorb-sutur. Fjern den høydejusterbare skruemekanismen som fester Steinmann-pinnen. Fjern Steinmann-pinnen fra lårbenet med den drevne ledningsdriveren.Kle såret med en ikke-klebende dressing, etterfulgt av tape. Utfør et røntgenbilde av den operative ekstremiteten for å sikre at det ikke oppstod brudd og riktig pinneplassering. Suksessen med den kirurgiske prosedyren ble overvåket gjennom visualisering av kondylen og radiografi for å bekrefte ingen brudd.Feil plassering av Steinmann-stiften resulterte i et osteokondralt brudd ved støt. I denne modellen var gjennomsnittlig toppslagspenning 82 megapascal, og gjennomsnittlig belastningshastighet var 37 megapascal per millisekund. Bruskskade ble ikke observert i kontralateral uskadd femurkondyle og var hovedsakelig lokalisert til nedslagsstedet.Påvirkede 16-ukers mediale femurkondyler, eller MFC, hadde høyere OARSI-score sammenlignet med kontroll-MFC-ene. Videre viste berørte kne-MFC-er også høyere OARSI-score sammenlignet med MTP, LTP og LFC. I motsetning til dette ble det ikke observert forskjeller i OARSI-score blant MFC-, LTP-, MTP- og LFC-delene i det kontralaterale ikke-påvirkede kneet.Det var ingen signifikante forskjeller mellom de berørte og ikke-påvirkede LFC-, MTP- og LTP-leddflatene. Leddbrusk fra påvirket MFC hadde høyere nivåer av tunnelpositivitet, noe som indikerer økt kondrocyttapoptose sammenlignet med ikke-påvirkede MFC. Ved slutten av prosedyren kan kaninens smerteoppførsel spores.Etter studien vil utviklingen av posttraumatisk slitasjegikt bli evaluert ved hjelp av bildebehandlingsteknikker, histologi og andre metoder. Vi bruker denne modellen til å teste terapeutika og enheter som tar sikte på å redusere posttraumatisk slitasjegikt. Modellen kan også hjelpe oss til å bedre forstå utviklingen av denne sykdommen.

Research

JoVE Journal

Medicine

The Monoiodoacetate Model of Osteoarthritis Pain in the Mouse

Den Monoiodoacetate modell av Artrose Smerter i Mus

A major symptom of patients with osteoarthritis (OA) is pain that&#160;is triggered by peripheral as well as central changes within the pain pathways. The ...

The Lower Body Positive Pressure Treadmill for Knee Osteoarthritis Rehabilitation

Den nedre kroppen positivt trykk tredemølle for kneet slitasjegikt rehabilitering

Here, based on a clinician&rsquo;s point-of-view, we propose a two-model lower body positive pressure (LBPP) protocol (walking and squatting models) in ...

Destabilization of the Medial Meniscus and Cartilage Scratch Murine Model of Accelerated Osteoarthritis

Destabilisering av den mediale menisken og brusk ripe murine modell av akselerert slitasjegikt

Osteoarthritis is the most prevalent musculoskeletal disease in people over 45, leading to an increasing economic and societal cost. Animal models are ...

Standardized Tuina Manipulation for Knee Osteoarthritis in Rats

Tuina Manipulation to Reduce Inflammation and Cartilage Loss in Knee Osteoarthritis Rats

Understanding the Mechanism of Tuina Manipulation in Rats (Video) | JoVE

Tuina manipulasjon for å redusere betennelse og brusk tap i kneet slitasjegikt rotter

Clinical trials suggest that Tuina manipulation is effective in treating knee osteoarthritis (KOA), while further studies are required to discover its ...

Treating Knee Osteoarthritis with Tuina in a Rabbit Model

Tuina Intervention in Rabbit Model of Knee Osteoarthritis

Using a Rabbit Model to Explore the Efficacy of Tuina in Treating Knee Osteoarthritis (Video) | JoVE

Tuina-intervensjon i kaninmodell av knet artrose

Knee osteoarthritis (KOA) is mainly characterized by degenerative changes in the knee joint's cartilage and surrounding soft tissues. The efficacy of ...

Impact of Non-Invasive ACL Injury and Surgery on Protease Activity in Mice

Non-Invasive Compression-Induced Anterior Cruciate Ligament (ACL) Injury and In Vivo Imaging of Protease Activity in Mice

Author Spotlight: Investigating Early Events and Long-Term Effects of ACL Injuries for Osteoarthritis Progression

Traumatic joint injuries such as anterior cruciate ligament (ACL) rupture or meniscus tears commonly lead to post-traumatic osteoarthritis (PTOA) within ...

Establishment of the KOA Model in Rabbits Using the Modified Videman Method

Application of Acupotomy in a Knee Osteoarthritis Model in Rabbit

Author Spotlight: Investigating the Mechanism of Action of Acupotomy in Treating Knee Osteoarthritis

Knee osteoarthritis (KOA) is one of the most frequently encountered diseases in the orthopedic department, which seriously reduces the quality of life of ...

Therapeutic Potential of Tuina Massage for Knee Osteoarthritis

Tuina Intervention in Sodium Monoiodoacetate Injection-Induced Rat Model of Knee Osteoarthritis

Treating Knee Osteoarthritis with Tuina - A New Perspective (Video) | JoVE

Tuina-intervensjon i natriummonoiodoacetat injeksjon-indusert rottemodell av knet artrose

Knee osteoarthritis (KOA), a common degenerative joint disorder, is characterized by chronic pain and disability, which can progress to irreparable ...