Name: microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment
Uploaded: 2022-09-07T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

تم دعم هذا العمل جزئيا من قبل المعهد الوطني للصحة بموجب رقم الجائزة R21GM143658 ومن قبل المؤسسة الوطنية للعلوم بموجب المنحة رقم 2150798. المحتوى هو مسؤولية المؤلفين وحدهم ولا يمثل بالضرورة الآراء الرسمية لوكالات التمويل.

1. تصنيع القناة المكونة من قطعتين وقاعدة المنصة المعيارية
ملاحظة: يتم إنشاء قناة الموائع الدقيقة باستخدام جزأين - قناة الموائع الدقيقة "انقطاع" ، وهي عبارة عن شفرة حلاقة مقطوعة من ورقة بولي ثنائي ميثيل سيلوكسان (PDMS) بسماكة محددة ، وغطاء القناة ، الذي يرتبط بشكل عكسي ب?...

تم وصف بروتوكولات توليد مصفوفات COL1 مع الألياف المحاذاة باستخدام الطرق المغناطيسية ، والتطبيق المباشر للإجهاد الميكانيكي ، وتقنيات الموائع الدقيقة47. تستخدم مناهج الموائع الدقيقة بشكل شائع لإنشاء أنظمة فسيولوجية دقيقة بسبب خصائص التدفق والنقل المحددة جيدا ، والتي تتيح التح?...

توجد الخلايا في شبكة ليفية ثلاثية الأبعاد معقدة تسمى المصفوفة خارج الخلية (ECM) ، ويتكون الجزء الأكبر منها من الكولاجين البروتيني الهيكلي من النوع الأول (COL1) 1,2. توفر الخصائص الفيزيائية الحيوية ل ECM إشارات إرشادية للخلايا ، واستجابة لذلك ، تعيد الخلايا تشكيل العمارة الدقيقة ECM3،4،5. يمكن أن تؤدي هذه التفاعلات المتبادلة بين مصفوفة الخلايا إلى محاذاة مجالات ألياف COL16 التي تعزز تكوين الأوعية الدموية وغزو الخلايا في بيئة الورم7،8،9 وتؤثر على مورفولوجيا الخلية 10،11،12 ، الاستقطاب 13 ، والتمايز 14. تعمل ألياف الكولاجين المحاذاة أيضا على تعزيز التئام الجروح 15 ، وتلعب دورا رئيسيا في نمو الأنسجة16 ، وتساهم في اتصال الخلايا بعيد المدى17,18. لذلك ، يعد تكرار البنية الدقيقة لألياف COL1 الأصلية في المختبر خطوة مهمة نحو تطوير نماذج منظمة لدراسة استجابات الخلايا للبيئات الدقيقة المحاذاة.
تم إنشاء أنظمة زراعة خلايا الموائع الدقيقة كتقنية مفضلة لتطوير أنظمة الفيزيولوجيا الدقيقة (MPS) 19،20،21،22،23. من خلال الاستفادة من تأثيرات التحجيم المجهرية المواتية ، توفر هذه الأنظمة تحكما دقيقا في تدفقات السوائل ، وتدعم الإدخال المتحكم فيه للقوى الميكانيكية ، وتحدد البيئة المكروية الكيميائية الحيوية داخل قناة دقيقة21،24،25،26،27. تم استخدام منصات MPS لنمذجة البيئات الدقيقة الخاصة بالأنسجة ودراسة التفاعلات متعددة الأعضاء28. في الوقت نفسه ، تم استكشاف الهلاميات المائية على نطاق واسع لتلخيص ميكانيكا 3D والتأثير البيولوجي ل ECM التي لوحظت في الجسم الحي29,30. مع التركيز المتزايد على دمج ثقافة 3D مع منصات الموائع الدقيقة ، يمكن للعديد من الأساليب الجمع بين الهلاميات المائية COL1 في أجهزة الموائع الدقيقة31،32،33. ومع ذلك ، فقد اقتصرت طرق محاذاة الهلاميات المائية COL1 في قنوات الموائع الدقيقة على "حصائر" 2D رقيقة (سمك < 40 ميكرومتر) في قنوات بعرض <1 مم ، مما يوفر إمكانات محدودة لنمذجة استجابات الخلايا في البيئات الدقيقة ثلاثية الأبعادالمحاذاة 31،34،35،36.
لتحقيق الهلاميات المائية ثلاثية الأبعاد COL1 المحاذاة في نظام الموائع الدقيقة ، فقد ثبت أنه عندما يتعرض محلول COL1 ذاتي التجميع لتدفقات التمديد المحلية (تغير السرعة على طول الاتجاه الانسيابي) ، تعرض الهلاميات المائية COL1 الناتجة درجة من محاذاة الألياف تتناسب طرديا مع حجم معدل الإجهاد الممتد الذي يواجهونه37 ، 38. تصميم microchannel في هذا البروتوكول فريد من نوعه بطريقتين. أولا ، يقدم التصميم المجزأ إجهادا محليا ممتدا لحل COL1 ، وثانيا ، يسمح بنائه "المكون من قطعتين" للمستخدم بمحاذاة ألياف COL1 ثم تفكيك القناة للوصول مباشرة إلى الألياف المحاذاة بتنسيق مفتوح. يمكن اعتماد هذا النهج أيضا لتطوير منصات الموائع الدقيقة المعيارية التي تطور أنظمة فسيولوجية دقيقة مع مصفوفات COL1 مرتبة. يصف البروتوكول التالي عملية تصنيع القنوات الدقيقة المجزأة ويفصل استخدام القنوات لمحاذاة الأبقار atelo COL1. يوفر هذا البروتوكول أيضا تعليمات لزراعة الخلايا على COL1 بتنسيق بئر مفتوح ويناقش إضافة وظائف إلى النظام الأساسي باستخدام طبقة قاعدة مغناطيسية معيارية.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)triethoxysilane, 99% (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>440140-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 Gauge IT Series Angled Dispensing Tip</td>
			<td>Jensen Global</td>
			<td>JG-20-1.0-90</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/16&#34; dia. x 1/16&#34; thick Nickel Plated Magnet</td>
			<td>KJ Magnetics</td>
			<td>D31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3M (TC) 12X12-6-467MP</td>
			<td>DigiKey</td>
			<td>3M9726-ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACETONE ACS REAGENT &#8805;99.5%</td>
			<td>Signa Aldrich</td>
			<td>179124-4L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD-20AC LABORATORY CORONA TREATER</td>
			<td>Electro-Technic Products</td>
			<td>12051A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V, 98%, Reagent Grade, Alfa Aesar</td>
			<td>VWR</td>
			<td>AAJ64100-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear cast acrylic sheet</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>8560K181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Trypsin 10x, 2.5% Trypsin in HBSS [-] calcium, magnesium, phenol red, Porcine Parvovirus Tested</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II Automated Cell Counter</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>AMQAX1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT-FIRE software</td>
			<td>LOCI - University of Wisconsin</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit, (CC-3156 &#38; CC-4176), Lonza CC-3162, 500 mL</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>CC-3162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% in aqueous solution, Reagent Grade, Packaging=HDPE Bottle, Size=100 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>VWRV0875-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphtec CELITE-50</td>
			<td>Graphtec</td>
			<td>CE LITE-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1 M)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15-630-080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Purity Silicone Rubber .010&#34; Thick, 6&#34; X 8&#34; Sheet, 55A Durometer</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>87315K62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial cells</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C0035C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen&#160;Trypan Blue Stain (0.4%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A4154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser cutter</td>
			<td>Full Spectrum</td>
			<td>20x12 H-series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics Syringe pump</td>
			<td>New Era Syringe Pumps</td>
			<td>NE-1002X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microman E Single Channel Pipettor, Gilson, Model M1000E</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>H3570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutragen Bovine Atelo Collagen</td>
			<td>Advanced BioMatrix</td>
			<td>5010-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pbs (10x), pH 7.4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>70011044.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010049.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS, 10x), with Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>J63521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement carrier sheet for graphtec craft ROBO CC330L-20</td>
			<td>USCUTTER</td>
			<td>GRPCARSHTN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restek Norm-Ject Plastic Syringe 1 mL Luer Slip</td>
			<td>Restek</td>
			<td>22766.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon wafer</td>
			<td>University wafer</td>
			<td>452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide, ACS, Packaging=Poly Bottle, Size=500 g</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BDH9292-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102092-312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific&#160;Pierce 20x PBS Tween 20</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>28352.00</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment

توجه ألياف الكولاجين I (COL1) المحاذاة حركة الخلايا السرطانية ، وتؤثر على مورفولوجيا الخلايا البطانية ، وتتحكم في تمايز الخلايا الجذعية ، وهي سمة مميزة لأنسجة القلب والعضلات والعظام. لدراسة استجابة الخلايا للبيئات الدقيقة المحاذاة في المختبر ، تم تطوير العديد من البروتوكولات لتوليد مصفوفات COL1 مع محاذاة الألياف المحددة ، بما في ذلك الطرق المغناطيسية والميكانيكية والقائمة على الخلايا والموائع الدقيقة. من بين هذه الأساليب ، توفر مناهج الموائع الدقيقة قدرات متقدمة مثل التحكم الدقيق في تدفقات السوائل والبيئة المكروية الخلوية. ومع ذلك ، فإن مناهج الموائع الدقيقة لتوليد مصفوفات COL1 المحاذاة لمنصات الزراعة المتقدمة في المختبر قد اقتصرت على "الحصير" الرقيقة (<40 ميكرومتر في السماكة) من ألياف COL1 التي تمتد على مسافات أقل من 500 ميكرومتر ولا تفضي إلى تطبيقات زراعة الخلايا ثلاثية الأبعاد. هنا ، نقدم بروتوكولا لتصنيع مصفوفات 3D COL1 (بسمك 130-250 ميكرومتر) مع مناطق مقياس ملليمتر من محاذاة الألياف المحددة في جهاز الموائع الدقيقة. توفر هذه المنصة قدرات متقدمة لزراعة الخلايا لنمذجة البيئات الدقيقة للأنسجة المهيكلة من خلال توفير الوصول المباشر إلى المصفوفة المهندسة الدقيقة لزراعة الخلايا.

عندما يتدفق محلول COL1 ذاتي التجميع عبر قناة ذات مساحة مقطعية متناقصة ، تزداد السرعة الانسيابية (v x) لمحلول COL1 محليا بمقدار ∂v x ، على طول الانقباض بين الجزأين (∂x) ، مما يؤدي إلى معدل إجهاد ممتد (ε̇) حيث ε̇ = ∂v x / ∂x. يمكن حساب معدل الإجهاد الممتد من سرعة السائل ، والتي يتم قياس?...

Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment (Video) | JoVE

يوضح هذا البروتوكول استخدام قناة الموائع الدقيقة مع تغيير الهندسة على طول اتجاه تدفق السوائل لتوليد إجهاد ممتد (تمتد) لمحاذاة الألياف في هيدروجيل الكولاجين ثلاثي الأبعاد (سمك <250 ميكرومتر). تمتد المحاذاة الناتجة عبر عدة ملليمترات وتتأثر بمعدل الإجهاد الممتد.

الهندسة المجهرية 3D الكولاجين الهلاميات المائية مع محاذاة الألياف طويلة المدى

Aligned collagen I (COL1) fibers guide tumor cell motility, influence endothelial cell morphology, control stem cell differentiation, and are a hallmark ...

تسمح لنا هذه الطريقة بهندسة الهلاميات المائية للكولاجين 3D مع مستويات خاضعة للرقابة من محاذاة الألياف إلى البيئات النموذجية الموجودة في الأنسجة السليمة والمريضة في الجسم. توفر هذه التقنية نهجا بسيطا للسوائع الدقيقة لهندسة الهلاميات المائية الكولاجينية المحاذاة ، وإدخال الخلايا ، وتحديد كيفية تصرف الخلايا في بيئات 3D المحددة طبوغرافيا. سيوضح الإجراء نيل جوشي ومهران منصوري وآن بيرلي وجوستين فيداس لمختبري.للبدء ، قم بتركيب ورقة PDMS بسمك 250 ميكرومتر على حامل بلاستيكي وقم بقص تصميم الموائع الدقيقة باستخدام قاطع حرفية على عمق شفرة يبلغ 0.5 ملم ، وسرعة سنتيمتر واحد في الثانية ، وقوة عالية. باستخدام حمام بالموجات فوق الصوتية ، قم بتنظيف قواطع قناة الموائع الدقيقة لمدة خمس دقائق. شطف القنوات الصوتية في الماء منزوع الأيونات وتجفيفها على طبق ساخن عند 100 درجة مئوية لمدة خمس دقائق.قم بتخزين القنوات في طبق بتري نظيف ومغطى حتى الاستخدام. لتصنيع طبقة غطاء PDMS وتشغيل السطح للتعديل المستقبلي ، قم بإعداد محلول 2٪ أمينوبروبيل ثلاثي إيثوكسيسيلان في دورق زجاجي عن طريق إضافة ملليلتر واحد من أمينوبروبيل ثلاثي إيثوكسيسيلان إلى 49 ملليلتر من الأسيتون. بعد ذلك ، قم بتخفيف محلول جلوتارالدهيد بنسبة 25٪ إلى 5٪ في الماء منزوع الأيونات.اصنع ملليلتر من المحلول لكل 24 ملم × 50 ملم من انزلاق الغطاء. تنظيف زلات الغطاء في سونيكاتور الحمام لمدة خمس دقائق باستخدام IPA. اشطف IPA من زلات الغطاء باستخدام ماء منزوع الأيونات.يشير فيلم الماء الناعم على قسيمة الغطاء إلى شطف IPA جيدا. جفف الغطاء ينزلق على طبق ساخن لمدة خمس دقائق عند 100 درجة مئوية. ضع الغطاء المجفف في أطباق بتري النظيفة ، مع التأكد من عدم تداخلها.باستخدام عصا تفريغ الهالة ، قم بتعريض انزلاقات الغطاء لتفريغ الهالة لمدة دقيقة واحدة لكل منها. قم بإزالة زلات الغطاء في غضون خمس دقائق من التعرض للإكليل واغمر كل غطاء ينزلق في محلول أمينوبروبيل ثلاثي إيثوكسيسيلان لمدة 10 ثوان ، مع التأكد من غمر انزلاق الغطاء بعد ذلك ، قم بإزالة زلات الغطاء من محلول أمينوبروبيل ثلاثي إيثوكسيسيلان ، واغمرها في الأسيتون لمدة 10 ثوان ، وجففها بالهواء المضغوط. ضع الغطاء الجاف مرة أخرى في طبق بتري ، بحيث يكون الجانب المعالج متجها لأعلى.ماصة ملليلتر واحد من محلول الجلوتارالدهيد على سطح كل زلة غطاء. قم بتغطية أكبر قدر ممكن من السطح دون السماح للمحلول بالانسكاب على حافة انزلاق الغطاء. اترك الغطاء ينزلق على اتصال بالمحلول لمدة 30 دقيقة ثم اشطفه بالماء منزوع الأيونات لمدة 20 ثانية.جفف انزلاقات الغطاء باستخدام الهواء المضغوط وضعها مرة أخرى في أطباق بتري ، الجانب المعالج بالبلازما لأعلى لقطع القاعدة المغناطيسية المعيارية بالليزر ، قم بقص التصميمات من طبقة PMMA باستخدام إعدادات الليزر المناسبة ، مثل عدد التمريرات والطاقة. يجب ضبط إعدادات الليزر بحيث يمكن تركيب المغناطيس بالضغط في طبقة PMMA. اغسل الجزء المقطوع بالليزر باستخدام الماء والصابون لإزالة الحطام من عملية القطع بالليزر.لا تستخدم المذيبات ، لأنها قد تنشر الشقوق الدقيقة في الحواف المقطوعة بالليزر. لتجميع المنصة ، ادفع المغناطيس يدويا إلى القاعدة المقطوعة بالليزر. يجب أن يكون سمك المغناطيس أقل من سمك قاعدة PMMA لضمان تدفق المغناطيس مع سطح القاعدة.انزع الجزء الخلفي من المادة اللاصقة الحساسة للضغط ، أو لوح PSA ، وقم بتوصيل القاعدة بغطاء معالج بالجلوتارالدهيد مع توجيه الجانب الوظيفي لأعلى. ضع فتحة قناة PDMS برفق في التجويف المحدد بواسطة الإطار. اضغط لأسفل باستخدام ملاقط عريضة الطرف لإزالة فقاعات الهواء وضمان الاتصال المطابق.ضع ألبومين مصل الأبقار ، أو غطاء القناة المعالج ب BSA أعلى فتحة القناة بحيث يكون جانب BSA متجها لأسفل. تأكد من محاذاة منافذ مدخل ومخرج السوائل مع القناة. الجهاز جاهز لحقن الكولاجين I.ضع مضخة حقنة ، وحقنة معقمة مبردة ، ومحلول كولاجين مبرد من النوع الأول ، وإبرة قفل معقمة بزاوية 20 درجة بزاوية 90 درجة في خزانة السلامة البيولوجية. قم بتحميل محلول الكولاجين I في المحقنة ، وتجنب الفقاعات. قم بتوصيل طرف الإبرة بالمحقنة ، وقم بتحميل المحقنة في مضخة المحقنة ، والإبرة متجهة لأسفل ، وقم بتجهيز الإبرة بمحلول الكولاجين I.اضبط مضخة المحقنة على معدل التدفق المطلوب بين 50 إلى 2،000 ميكرولتر في الدقيقة. ضع قنوات PDMS المحضرة على مقبس المختبر وقم بتسويتها بالإبرة. أدخل الإبرة في منفذ مدخل قناة PDMS.قم بحقن القناة حتى يتم جمع قطرة 30 ميكرولتر من الكولاجين I على جانب المخرج. اخفض مقبس المختبر وافصل الإبرة برفق عن القناة المملوءة حديثا. كرر حتى تمتلئ جميع القنوات بمحلول الكولاجين I.قم بتحميل القنوات المملوءة في أطباق بتري جنبا إلى جنب مع مناديل نظيفة وخالية من النسالة مشبعة بالماء منزوع الأيونات لمنع جفاف جل الكولاجين I المتشكل حديثا. غطي طبق بتري وضع القنوات المحملة في الحاضنة لمدة ساعتين قبل خطوة التقشير. للتقشير وتوازن الوسائط ، ابدأ برفع غطاء PDMS باستخدام ملاقط لكشف الكولاجين المبلمر I Gel.أضف 650 ميكرولتر من وسائط النمو البطانية إلى البئر. بدلا من ذلك ، قم بتوصيل وحدة أخرى لإدخال طبقة كولاجين إضافية أو توفير إمكانات نضح الوسائط. اترك الأجهزة في الحاضنة لمدة لا تقل عن أربع ساعات لموازنة الجل والوسائط.استبدل الوسائط قبل البذر بالخلايا. إن تشغيل الغطاء الزجاجي الذي مكن من الانزلاق في رفع القناة وتشغيل غطاء PDMS مع BSA منع ارتباط الكولاجين I. ظلت محاذاة ألياف الكولاجين I غير متأثرة بعد رفع الغطاء.أظهرت صور HUVECs المستزرعة على الجزء المحاذي من المصفوفة زيادة محاذاة ألياف الأكتين مقارنة ب HUVECs على الجزء ذي الألياف العشوائية. يسمح لنا نهجنا بنمذجة البيئة المكروية للورم وتحديد كيفية استجابة أنواع الخلايا المختلفة. يمكننا أيضا تقديم قنوات التدفق لدعم التجارب طويلة المدى.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization (Video) | JoVE

Electrospun ألياف نانوية السقالات مع التدريجات ​​في منظمة الألياف

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration (Video) | JoVE

الهندسة 3D Cellularized الهلام الكولاجين لتجديد الأنسجة الوعائية

Synthetic materials are known to initiate clinical complications such as inflammation, stenosis, and infections when implanted as vascular substitutes. ...

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix (Video) | JoVE

مستو التدرج نظام إنتشار المعنية بالتحقيق في الانجذاب الكيميائي في الكولاجين مصفوفة 3D

The importance of cell migration can be seen through the development of human life. When cells migrate, they generate forces and transfer these forces to ...

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue (Video) | JoVE

استنادا الحرير الكولاجين المهندسة 3D نموذج الاستقطاب العصبية الأنسجة

Despite huge efforts to decipher the anatomy, composition and function of the brain, it remains the least understood organ of the human body. To gain a ...

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels (Video) | JoVE

ثلاثي الأبعاد تكنولوجيا المحاكاة البيولوجية: رواية Biorubber يخلق معرف الصغرى، وعلى نطاق والماكرو-البنى في الكولاجين الهلاميات المائية

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo (Video) | JoVE

إعداد 3D الهلام الكولاجين وMicrochannels لدراسة التفاعلات 3D<em&gt; في فيفو</em

Historically, most cellular processes have been studied in only 2 dimensions.  While these studies have been informative about general cell signaling ...

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture (Video) | JoVE

الانضباطي الهلاميات المائية من الرئوي خارج الخلية مصفوفة للثقافة خلية 3D

Here we present a method for establishing multiple component cell culture hydrogels for in vitro lung cell culture. Beginning with healthy en bloc lung ...

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification (Video) | JoVE

توليف الهلاميات المائية مع خصائص المضادة للحشف والأغشية لتنقية المياه

Hydrogels have been widely utilized to enhance the surface hydrophilicity of membranes for water purification, increasing the antifouling properties and ...

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D (Video) | JoVE

إنتاج بروتين الايلاستين مثل الهلاميات المائية للتغليف وإيمونوستينينج من الخلايا في 3D

Two-dimensional (2D) tissue culture techniques have been essential for our understanding of fundamental cell biology. However, traditional 2D tissue ...

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels (Video) | JoVE

قياس أية مصفوفة الخلوية العالمية والنشاط الأيضي في الهلاميات المائية 3D

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...