Name: microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment
Uploaded: 2022-09-07T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Dette arbejde blev delvist støttet af National Institute of Health under tildelingsnummer R21GM143658 og af National Science Foundation under bevillingsnummer 2150798. Indholdet er udelukkende forfatternes ansvar og repræsenterer ikke nødvendigvis finansieringsorganernes officielle synspunkter.

1. Fremstilling af den todelte kanal og modulære platformbase
BEMÆRK: Den mikrofluidiske kanal er konstrueret ved hjælp af to dele - den mikrofluidiske kanal "udskæring", som er barberbladsskåret fra et polydimethylsiloxan (PDMS) ark med defineret tykkelse, og kanaldækslet, som reversibelt binder til udskæringen og danner kanalen. Kanalen er omgivet af en poly (methylmethacrylat) (PMMA) ramme, der fungerer som et mediereservoir (figur 1). PMM...

Protokoller til generering af COL1-matricer med justerede fibre er blevet beskrevet ved hjælp af magnetiske metoder, direkte anvendelse af mekanisk stamme og mikrofluidiske teknikker47. Mikrofluidiske tilgange bruges almindeligvis til at skabe mikrofysiologiske systemer på grund af deres veldefinerede strømnings- og transportegenskaber, som muliggør præcis kontrol over det biokemiske mikromiljø. Da justerede COL1-fibre giver vigtige lærerige signaler under patofysiologiske processer såsom ...

Celler befinder sig i et komplekst 3D-fibrøst netværk kaldet den ekstracellulære matrix (ECM), hvoraf hovedparten består af det strukturelle protein kollagen type I (COL1)1,2. ECM's biofysiske egenskaber giver vejledende signaler til celler, og som svar ombygger celler ECM-mikroarkitekturen 3,4,5. Disse gensidige celle-matrix-interaktioner kan give anledning til justerede COL1-fiberdomæner6, der fremmer angiogenese og celleinvasion i tumormiljøet 7,8,9 og påvirker cellemorfologi 10,11,12, polarisering 13 og differentiering 14. Justerede kollagenfibre fremmer også sårheling15, spiller en nøglerolle i vævsudvikling 16 og bidrager til langtrækkende cellekommunikation17,18. Derfor er replikering af den oprindelige COL1-fibermikroarkitektur in vitro et vigtigt skridt i retning af at udvikle strukturerede modeller til at studere celleresponser på justerede mikromiljøer.
Mikrofluidiske cellekultursystemer er blevet etableret som en foretrukken teknologi til udvikling af mikrofysiologiske systemer (MPS)19,20,21,22,23. Ved at udnytte gunstige mikroskalaskaleringseffekter giver disse systemer præcis kontrol over væskestrømme, understøtter kontrolleret introduktion af mekaniske kræfter og definerer det biokemiske mikromiljø inden for en mikrokanal 21,24,25,26,27. MPS-platforme er blevet brugt til at modellere vævsspecifikke mikromiljøer og studere multiorganinteraktioner28. Samtidig er hydrogeler blevet bredt udforsket for at rekapitulere 3D-mekanikken og den biologiske indflydelse af ECM, der observeres in vivo29,30. Med en stigende vægt på at integrere 3D-kultur med mikrofluidiske platforme kan mange tilgange kombinere COL1-hydrogeler i mikrofluidiske enheder31,32,33. Imidlertid har metoderne til justering af COL1-hydrogeler i mikrofluidiske kanaler været begrænset til tynde 2D "måtter" (<40 μm i tykkelse) i kanaler <1 mm brede, hvilket giver begrænset potentiale til at modellere celleresponser i justerede3D-mikromiljøer 31,34,35,36.
For at opnå justerede 3D COL1-hydrogeler i et mikrofluidisk system har det vist sig, at når en selvsamlende COL1-opløsning udsættes for lokale udvidelsesstrømme (hastighedsændring langs strømretningen), viser de resulterende COL1-hydrogeler en grad af fiberjustering, der er direkte proportional med størrelsen af den ekstensionelle belastningshastighed, de oplever37, 38. Mikrokanaldesignet i denne protokol er unikt på to måder; For det første introducerer det segmenterede design lokal udvidelsesbelastning til COL1-løsningen, og for det andet giver dens "todelte" konstruktion brugeren mulighed for at justere COL1-fibre og derefter adskille kanalen for direkte adgang til de justerede fibre i et åbent format. Denne tilgang kan yderligere vedtages for at udvikle modulære mikrofluidiske platforme, der udvikler mikrofysiologiske systemer med ordnede COL1-matricer. Følgende protokol beskriver processen med fremstilling af segmenterede mikrokanaler og beskriver brugen af kanalerne til justering af bovin atelo COL1. Denne protokol indeholder også instruktioner til dyrkning af celler på COL1 i et åbent brøndformat og diskuterer tilføjelse af funktionalitet til platformen ved hjælp af et modulært, magnetisk basislag.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)triethoxysilane, 99% (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>440140-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 Gauge IT Series Angled Dispensing Tip</td>
			<td>Jensen Global</td>
			<td>JG-20-1.0-90</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/16&#34; dia. x 1/16&#34; thick Nickel Plated Magnet</td>
			<td>KJ Magnetics</td>
			<td>D31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3M (TC) 12X12-6-467MP</td>
			<td>DigiKey</td>
			<td>3M9726-ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACETONE ACS REAGENT &#8805;99.5%</td>
			<td>Signa Aldrich</td>
			<td>179124-4L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD-20AC LABORATORY CORONA TREATER</td>
			<td>Electro-Technic Products</td>
			<td>12051A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V, 98%, Reagent Grade, Alfa Aesar</td>
			<td>VWR</td>
			<td>AAJ64100-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear cast acrylic sheet</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>8560K181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Trypsin 10x, 2.5% Trypsin in HBSS [-] calcium, magnesium, phenol red, Porcine Parvovirus Tested</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II Automated Cell Counter</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>AMQAX1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT-FIRE software</td>
			<td>LOCI - University of Wisconsin</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit, (CC-3156 &#38; CC-4176), Lonza CC-3162, 500 mL</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>CC-3162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% in aqueous solution, Reagent Grade, Packaging=HDPE Bottle, Size=100 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>VWRV0875-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphtec CELITE-50</td>
			<td>Graphtec</td>
			<td>CE LITE-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1 M)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15-630-080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Purity Silicone Rubber .010&#34; Thick, 6&#34; X 8&#34; Sheet, 55A Durometer</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>87315K62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial cells</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C0035C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen&#160;Trypan Blue Stain (0.4%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A4154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser cutter</td>
			<td>Full Spectrum</td>
			<td>20x12 H-series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics Syringe pump</td>
			<td>New Era Syringe Pumps</td>
			<td>NE-1002X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microman E Single Channel Pipettor, Gilson, Model M1000E</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>H3570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutragen Bovine Atelo Collagen</td>
			<td>Advanced BioMatrix</td>
			<td>5010-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pbs (10x), pH 7.4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>70011044.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010049.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS, 10x), with Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>J63521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement carrier sheet for graphtec craft ROBO CC330L-20</td>
			<td>USCUTTER</td>
			<td>GRPCARSHTN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restek Norm-Ject Plastic Syringe 1 mL Luer Slip</td>
			<td>Restek</td>
			<td>22766.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon wafer</td>
			<td>University wafer</td>
			<td>452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide, ACS, Packaging=Poly Bottle, Size=500 g</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BDH9292-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102092-312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific&#160;Pierce 20x PBS Tween 20</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>28352.00</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment

Justerede kollagen I (COL1) fibre styrer tumorcellemotilitet, påvirker endotelcellemorfologi, styrer stamcelledifferentiering og er et kendetegn for hjerte- og muskuloskeletale væv. For at studere cellerespons på justerede mikromiljøer in vitro er der udviklet flere protokoller til at generere COL1-matricer med defineret fiberjustering, herunder magnetiske, mekaniske, cellebaserede og mikrofluidiske metoder. Af disse tilbyder mikrofluidiske tilgange avancerede muligheder såsom nøjagtig kontrol over væskestrømme og det cellulære mikromiljø. Imidlertid har de mikrofluidiske tilgange til generering af justerede COL1-matricer til avancerede in vitro-kulturplatforme været begrænset til tynde "måtter" (<40 μm i tykkelse) af COL1-fibre, der strækker sig over afstande mindre end 500 μm og ikke er befordrende for 3D-cellekulturapplikationer. Her præsenterer vi en protokol til fremstilling af 3D COL1-matricer (130-250 μm i tykkelse) med millimeterskalaområder med defineret fiberjustering i en mikrofluidisk enhed. Denne platform giver avancerede cellekulturfunktioner til modellering af strukturerede vævsmikromiljøer ved at give direkte adgang til den mikrokonstruerede matrix til cellekultur.

Når en selvsamlende COL1-opløsning strømmer gennem en kanal med faldende tværsnitsareal, øges COL1-opløsningens strømvise hastighed (v x) lokalt med en størrelsesorden ∂v x langs længden af indsnævringen mellem de to segmenter (∂x), hvilket resulterer i en ekstensionel belastningshastighed (ε̇), hvor ε̇ = ∂v x/∂x. Den ekstensive belastningshastighed kan beregnes ud fra væskehastigheden, som måles ved hjælp af partikelbilledhastighed (PIV), som vist i <strong class...

Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment (Video) | JoVE

Denne protokol demonstrerer brugen af en mikrofluidisk kanal med skiftende geometri langs væskestrømningsretningen for at generere ekstensionel belastning (strækning) for at justere fibre i en 3D-kollagenhydrogel (<250 μm i tykkelse). Den resulterende justering strækker sig over flere millimeter og påvirkes af den ekstensionelle belastningshastighed.

Microengineering 3D kollagenhydrogeler med langtrækkende fiberjustering

Aligned collagen I (COL1) fibers guide tumor cell motility, influence endothelial cell morphology, control stem cell differentiation, and are a hallmark ...

Denne metode giver os mulighed for at konstruere 3D-kollagenhydrogeler med kontrollerede niveauer af fiberjustering til modelmiljøer, der findes i sundt og sygt væv i kroppen. Denne teknik giver en simpel mikrofluidisk tilgang til at konstruere justerede kollagenhydrogeler, introducere celler og kvantificere, hvordan celler opfører sig i topografisk definerede 3D-miljøer. Demonstration af proceduren vil være Neil Joshi, Mehran Mansouri, Ann Byerly og Justin Vidas til mit laboratorium.Til at begynde med skal du montere et 250 mikrometer tykt PDMS-ark på en plastbærer og barbermaskine skære det mikrofluidiske design ved hjælp af en håndværksskærer i en bladdybde på 0,5 millimeter, hastighed på en centimeter pr. Sekund og høj kraft. Brug et ultralydbad til at rengøre de mikrofluidiske kanaludskæringer i fem minutter. Skyl de sonikerede kanaler i deioniseret vand og tør dem på en kogeplade ved 100 grader Celsius i fem minutter.Opbevar kanalerne i en ren, overdækket petriskål indtil brug. For at fremstille PDMS-dæklaget og funktionalisere overfladen til fremtidig modifikation skal du forberede en 2% aminopropyltriethoxysilanopløsning i et glasbægerglas ved at tilsætte en milliliter aminopropyltriethoxysilan til 49 ml acetone. Derefter fortyndes en 25% glutaraldehydopløsning til 5% i deioniseret vand.Lav to milliliter opløsning for hver 24 millimeter x 50 millimeter dæksel. Rengør dækslet glider i en bad sonikator i fem minutter ved hjælp af IPA. Skyl IPA'en af dækslerne med deioniseret vand.En glat film af vand på dækselsedlen indikerer, at IPA'en skylles grundigt. Tør dækslet glider på en varm plade i fem minutter ved 100 grader Celsius. Læg de tørrede dæksler i rene petriskåle, og sørg for, at de ikke overlapper hinanden.Brug en koronaudladningsstav til at udsætte dækselsedlerne for en koronaudladning i et minut hver. Fjern dækselsedlerne inden for fem minutter efter koronaeksponering, og nedsænk hvert dæksel i aminopropyltriethoxysilanopløsningen i 10 sekunder, hvilket sikrer, at dækselen er nedsænket Fjern derefter dækselgliderne fra aminopropyltriethoxysilanopløsningen, nedsænk dem i acetone i 10 sekunder, og tør dem med trykluft. Placer det tørre dæksel tilbage i petriskålen, den behandlede side vender opad.Pipette en milliliter glutaraldehydopløsning på overfladen af hver dæksel. Dæk så meget overflade som muligt uden at lade opløsningen spildes ud over kanten af dækselen. Lad dækslet glide i kontakt med opløsningen i 30 minutter og skyl derefter med deioniseret vand i 20 sekunder.Tør dækselgliderne med trykluft og læg dem tilbage i petriskålene, den plasmabehandlede side opad For laserskæring af den modulære magnetiske base skal du skære designene ud af PMMA-laget ved hjælp af passende laserindstillinger, såsom antallet af gennemløb og effekt. Laserindstillingerne skal justeres, så magneterne kan pressemonteres i PMMA-laget. Vask den laserskårne del med sæbe og vand for at fjerne snavs fra laserskæreprocessen.Brug ikke opløsningsmidler, da de kan sprede mikrorevner i de laserskårne kanter. For at samle platformen skal du skubbe magneter manuelt ind i den laserskårne base. Magneternes tykkelse skal være mindre end tykkelsen af PMMA-basen for at sikre, at magneterne flugter med basens overflade.Fjern bagsiden fra det trykfølsomme klæbemiddel eller PSA-ark, og fastgør basen til en glutaraldehydbehandlet dæksel med den funktionaliserede side opad. Placer forsigtigt PDMS-kanaludskæringen i hulrummet, der er defineret af rammen. Tryk ned med en pincet med bred spids for at fjerne luftbobler og sikre konform kontakt.Placer bovin serumalbumin eller BSA-behandlet kanaldæksel oven på kanaludskæringen med BSA-siden nedad. Sørg for, at væskeindløbs- og udløbsportene er justeret med kanalen. Enheden er klar til kollagen I-injektionen.Anbring en sprøjtepumpe, en kølet steril sprøjte, kølet neutraliseret kollagen I-opløsning og en steril 20-gauge 90 graders vinkelspids luer lock nål i et biosikkerhedsskab. Læg kollagen I-opløsningen i sprøjten, undgå bobler. Sæt kanylespidsen på sprøjten, læg sprøjten i sprøjtepumpen med nålen nedad, og prim kanylen med kollagen I-opløsning.Indstil sprøjtepumpen til den krævede strømningshastighed mellem 50 og 2.000 mikroliter pr. Minut. Placer forberedte PDMS-kanaler på en laboratoriestik, og nivellerer med nålen. Indsæt nålen i PDMS-kanalens indløbsport.Injicer kanalen, indtil en 30 mikroliter dråbe kollagen jeg samler på udløbssiden. Sænk laboratoriestikket, og adskil forsigtigt nålen fra den nyligt fyldte kanal. Gentag indtil alle kanaler er fyldt med kollagen I-opløsning.Læg de fyldte kanaler i petriskålene sammen med en ren, fnugfri klud mættet med deioniseret vand for at forhindre dehydrering af den nydannede kollagen I-gel. Dæk petriskålen og læg de indlæste kanaler i inkubatoren i to timer før afskalningstrinnet. For afskalning og medieligevægt skal du starte med at løfte PDMS-dækslet af ved hjælp af pincet for at eksponere den polymeriserede kollagen I-gel.Tilsæt 650 mikroliter endotelvækstmedier til brønden. Alternativt kan du vedhæfte et andet modul for at introducere et ekstra kollagenlag eller give medieperfusionsfunktioner. Lad enhederne være i inkubatoren i mindst fire timer for at afbalancere gelen og mediet.Udskift mediet inden såning med celler. Funktionalisering af glasdækslet aktiverede kanalløft og funktionalisering af PDMS-dækslet med BSA forhindrede kollagen I-fastgørelse. Kollagen I-fiberjusteringen forblev upåvirket efter løft af dækslet.Billeder af HUVEC'erne dyrket på det justerede segment af matrixen viste øget aktinfiberjustering sammenlignet med HUVEC'erne på segmentet med tilfældige fibre. Vores tilgang giver os mulighed for at modellere tumormikromiljøet og kvantificere, hvordan forskellige celletyper reagerer. Vi kan også introducere flowkanaler til støtte for langsigtede eksperimenter.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization (Video) | JoVE

Elektrospundne Nanofiber Stilladser med inddeling i Fiber Organization

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration (Video) | JoVE

Engineering 3D Cellularized kollagengeler for Vascular Tissue Regeneration

Synthetic materials are known to initiate clinical complications such as inflammation, stenosis, and infections when implanted as vascular substitutes. ...

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix (Video) | JoVE

Planar Gradient Diffusion System til Undersøg Chemotaxis i en 3D kollaqenmatrix

The importance of cell migration can be seen through the development of human life. When cells migrate, they generate forces and transfer these forces to ...

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue (Video) | JoVE

Udviklet 3D Silke-collagen-baserede model for polariseret nervevæv

Despite huge efforts to decipher the anatomy, composition and function of the brain, it remains the least understood organ of the human body. To gain a ...

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels (Video) | JoVE

Tre-dimensionel Biomimetic Teknologi: Novel Biorubber Opretter Defineret mikro- og makro-skala Architectures i Collagen Hydrogeler

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo (Video) | JoVE

Udarbejdelse af 3D Kollagen Gels og mikrokanalerne for Studiet af 3D Interactions<em&gt; In vivo</em

Historically, most cellular processes have been studied in only 2 dimensions.  While these studies have been informative about general cell signaling ...

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture (Video) | JoVE

Tunable Hydrogeler fra Pulmonal ekstracellulære matrix for 3D cellekultur

Here we present a method for establishing multiple component cell culture hydrogels for in vitro lung cell culture. Beginning with healthy en bloc lung ...

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification (Video) | JoVE

Syntese af Hydrogeler med antitilsmudsningsegenskaber som membraner til vandrensning

Hydrogels have been widely utilized to enhance the surface hydrophilicity of membranes for water purification, increasing the antifouling properties and ...

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D (Video) | JoVE

Produktionen af Elastin-lignende Protein Hydrogels til indkapsling og immunfarvning af celler i 3D

Two-dimensional (2D) tissue culture techniques have been essential for our understanding of fundamental cell biology. However, traditional 2D tissue ...

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels (Video) | JoVE

Måling af Global cellulære Matrix Metalloproteinase og metaboliske aktivitet i 3D Hydrogels

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...