Name: microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment
Uploaded: 2022-09-07T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door het National Institute of Health onder toekenningsnummer R21GM143658 en door de National Science Foundation onder subsidienummer 2150798. De inhoud is uitsluitend de verantwoordelijkheid van de auteurs en vertegenwoordigt niet noodzakelijkerwijs de officiële standpunten van de financieringsagentschappen.

1. Fabricage van het tweedelige kanaal en de modulaire platformbasis
OPMERKING: Het microfluïdische kanaal is opgebouwd uit twee delen - de microfluïdische kanaal "uitsparing", die scheermes gesneden is uit een polydimethyl siloxaan (PDMS) plaat van gedefinieerde dikte, en de kanaalafdekking, die reversibel aan de uitsparing bindt en het kanaal vormt. Het kanaal is omgeven door een poly (methylmethacrylaat) (PMMA) frame dat zal fungeren als een mediareservoir (<strong class="x...

Protocollen voor het genereren van COL1-matrices met uitgelijnde vezels zijn beschreven met behulp van magnetische methoden, de directe toepassing van mechanische spanning en microfluïdische technieken47. Microfluïdische benaderingen worden vaak gebruikt om microfysiologische systemen te creëren vanwege hun goed gedefinieerde stroom- en transportkenmerken, die nauwkeurige controle over de biochemische micro-omgeving mogelijk maken. Aangezien uitgelijnde COL1-vezels belangrijke instructieve sign...

Cellen bevinden zich in een complex 3D-vezelig netwerk dat de extracellulaire matrix (ECM) wordt genoemd, waarvan het grootste deel bestaat uit het structurele eiwit collageen type I (COL1)1,2. De biofysische eigenschappen van de ECM geven aanwijzingen aan cellen en als reactie daarop hermodelleren cellen de ECM-microarchitectuur 3,4,5. Deze reciproke cel-matrix interacties kunnen aanleiding geven tot uitgelijnde COL1 vezeldomeinen6 die angiogenese en celinvasie in de tumoromgeving 7,8,9 bevorderen en de celmorfologie 10,11,12, polarisatie 13 en differentiatie 14 beïnvloeden. Uitgelijnde collageenvezels bevorderen ook wondgenezing 15, spelen een sleutelrol in weefselontwikkeling16 en dragen bij aan celcommunicatie op lange afstand17,18. Daarom is het repliceren van de inheemse COL1-vezelmicroarchitectuur in vitro een belangrijke stap in de richting van het ontwikkelen van gestructureerde modellen om celreacties op uitgelijnde micro-omgevingen te bestuderen.
Microfluïdische celkweeksystemen zijn vastgesteld als een voorkeurstechnologie om microfysiologische systemen (MPS) te ontwikkelen 19,20,21,22,23. Door gebruik te maken van gunstige schaaleffecten op microschaal, bieden deze systemen nauwkeurige controle over vloeistofstromen, ondersteunen ze de gecontroleerde introductie van mechanische krachten en definiëren ze de biochemische micro-omgeving binnen een microkanaal 21,24,25,26,27. MPS-platforms zijn gebruikt om weefselspecifieke micro-omgevingen te modelleren en multi-orgaaninteracties te bestuderen28. Tegelijkertijd zijn hydrogels op grote schaal onderzocht om de 3D-mechanica en biologische invloed van de ECM die in vivo worden waargenomen samen te vatten 29,30. Met een groeiende nadruk op het integreren van 3D-cultuur met microfluïdische platforms, kunnen tal van benaderingen COL1-hydrogels combineren in microfluïdische apparaten31,32,33. De methoden om COL1-hydrogels in microfluïdische kanalen uit te lijnen, zijn echter beperkt tot dunne 2D-"matten" (<40 μm dik) in kanalen <1 mm breed, met een beperkt potentieel om celresponsen te modelleren in uitgelijnde 3D-micro-omgevingen31,34,35,36.
Om uitgelijnde 3D COL1-hydrogels in een microfluïdisch systeem te bereiken, is aangetoond dat, wanneer een zelfassemblerende COL1-oplossing wordt blootgesteld aan lokale extensieve stromen (snelheidsverandering langs de stroomsgewijze richting), de resulterende COL1-hydrogels een mate van vezeluitlijning vertonen die recht evenredig is met de grootte van de extensieve reksnelheid die ze ervaren37, 38. Het microkanaalontwerp in dit protocol is op twee manieren uniek; ten eerste introduceert het gesegmenteerde ontwerp lokale extensieve spanning in de COL1-oplossing, en ten tweede stelt de "tweedelige" constructie de gebruiker in staat om COL1-vezels uit te lijnen en vervolgens het kanaal te demonteren om rechtstreeks toegang te krijgen tot de uitgelijnde vezels in een open formaat. Deze aanpak kan verder worden toegepast om modulaire microfluïdische platforms te ontwikkelen die microfysiologische systemen ontwikkelen met geordende COL1-matrices. Het volgende protocol beschrijft het proces van het fabriceren van gesegmenteerde microkanalen en beschrijft het gebruik van de kanalen om runderatelo COL1 uit te lijnen. Dit protocol biedt ook instructies voor het kweken van cellen op COL1 in een open putformaat en bespreekt het toevoegen van functionaliteit aan het platform met behulp van een modulaire, magnetische basislaag.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)triethoxysilane, 99% (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>440140-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 Gauge IT Series Angled Dispensing Tip</td>
			<td>Jensen Global</td>
			<td>JG-20-1.0-90</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/16&#34; dia. x 1/16&#34; thick Nickel Plated Magnet</td>
			<td>KJ Magnetics</td>
			<td>D31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3M (TC) 12X12-6-467MP</td>
			<td>DigiKey</td>
			<td>3M9726-ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACETONE ACS REAGENT &#8805;99.5%</td>
			<td>Signa Aldrich</td>
			<td>179124-4L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD-20AC LABORATORY CORONA TREATER</td>
			<td>Electro-Technic Products</td>
			<td>12051A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V, 98%, Reagent Grade, Alfa Aesar</td>
			<td>VWR</td>
			<td>AAJ64100-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear cast acrylic sheet</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>8560K181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Trypsin 10x, 2.5% Trypsin in HBSS [-] calcium, magnesium, phenol red, Porcine Parvovirus Tested</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II Automated Cell Counter</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>AMQAX1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT-FIRE software</td>
			<td>LOCI - University of Wisconsin</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit, (CC-3156 &#38; CC-4176), Lonza CC-3162, 500 mL</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>CC-3162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% in aqueous solution, Reagent Grade, Packaging=HDPE Bottle, Size=100 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>VWRV0875-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphtec CELITE-50</td>
			<td>Graphtec</td>
			<td>CE LITE-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1 M)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15-630-080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Purity Silicone Rubber .010&#34; Thick, 6&#34; X 8&#34; Sheet, 55A Durometer</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>87315K62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial cells</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C0035C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen&#160;Trypan Blue Stain (0.4%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A4154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser cutter</td>
			<td>Full Spectrum</td>
			<td>20x12 H-series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics Syringe pump</td>
			<td>New Era Syringe Pumps</td>
			<td>NE-1002X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microman E Single Channel Pipettor, Gilson, Model M1000E</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>H3570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutragen Bovine Atelo Collagen</td>
			<td>Advanced BioMatrix</td>
			<td>5010-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pbs (10x), pH 7.4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>70011044.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010049.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS, 10x), with Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>J63521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement carrier sheet for graphtec craft ROBO CC330L-20</td>
			<td>USCUTTER</td>
			<td>GRPCARSHTN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restek Norm-Ject Plastic Syringe 1 mL Luer Slip</td>
			<td>Restek</td>
			<td>22766.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon wafer</td>
			<td>University wafer</td>
			<td>452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide, ACS, Packaging=Poly Bottle, Size=500 g</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BDH9292-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102092-312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific&#160;Pierce 20x PBS Tween 20</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>28352.00</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment

Uitgelijnde collageen I (COL1) vezels begeleiden de motiliteit van tumorcellen, beïnvloeden de morfologie van endotheelcellen, controleren stamceldifferentiatie en zijn een kenmerk van hart- en bewegingsweefsels. Om de celrespons op uitgelijnde micro-omgevingen in vitro te bestuderen, zijn verschillende protocollen ontwikkeld om COL1-matrices te genereren met gedefinieerde vezeluitlijning, waaronder magnetische, mechanische, celgebaseerde en microfluïdische methoden. Hiervan bieden microfluïdische benaderingen geavanceerde mogelijkheden, zoals nauwkeurige controle over vloeistofstromen en de cellulaire micro-omgeving. De microfluïdische benaderingen om uitgelijnde COL1-matrices te genereren voor geavanceerde in vitro kweekplatforms zijn echter beperkt tot dunne "matten" (<40 μm in dikte) van COL1-vezels die zich uitstrekken over afstanden van minder dan 500 μm en niet bevorderlijk zijn voor 3D-celkweektoepassingen. Hier presenteren we een protocol om 3D COL1-matrices (130-250 μm dik) te fabriceren met millimeterschaalgebieden van gedefinieerde vezeluitlijning in een microfluïdisch apparaat. Dit platform biedt geavanceerde celkweekmogelijkheden om gestructureerde weefselmicro-omgevingen te modelleren door directe toegang te bieden tot de micro-engineered matrix voor celkweek.

Wanneer een zelfassemblerende COL1-oplossing door een kanaal met afnemende doorsnede stroomt, neemt de stroomsgewijze snelheid (v x) van de COL1-oplossing lokaal toe met een magnitude, ∂v x, langs de lengte van de vernauwing tussen de twee segmenten (∂x), wat resulteert in een extensieve reksnelheid (ε̇) waarbij ε̇ = ∂v x/∂x. De extensieve reksnelheid kan worden berekend uit de vloeistofsnelheid, die wordt gemeten met behulp van deeltjesbeeldvelocimetrie (PIV), zoals te zien i...

Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment (Video) | JoVE

Dit protocol demonstreert het gebruik van een microfluïdisch kanaal met veranderende geometrie langs de vloeistofstroomrichting om extensieve spanning (stretching) te genereren om vezels uit te lijnen in een 3D-collageenhydrogel (< 250 μm dik). De resulterende uitlijning strekt zich uit over enkele millimeters en wordt beïnvloed door de extensieve reksnelheid.

Micro-engineering 3D collageen hydrogels met lange-afstand vezeluitlijning

Aligned collagen I (COL1) fibers guide tumor cell motility, influence endothelial cell morphology, control stem cell differentiation, and are a hallmark ...

Deze methode stelt ons in staat om 3D-collageenhydrogels te ontwikkelen met gecontroleerde niveaus van vezeluitlijning om omgevingen te modelleren die worden aangetroffen in gezond en ziek weefsel in het lichaam. Deze techniek biedt een eenvoudige microfluïdische benadering om uitgelijnde collageenhydrogels te engineeren, cellen te introduceren en te kwantificeren hoe cellen zich gedragen in topografisch gedefinieerde 3D-omgevingen. Neil Joshi, Mehran Mansouri, Ann Byerly en Justin Vidas demonstreren de procedure voor mijn laboratorium.Monteer om te beginnen een 250 micrometer dik PDMS-vel op een plastic drager en snijd het microfluïdische ontwerp met behulp van een ambachtelijke snijder op een mesdiepte van 0,5 millimeter, een snelheid van één centimeter per seconde en een hoge kracht. Reinig met behulp van een ultrasoon bad de microfluïdische kanaaluitsparingen gedurende vijf minuten. Spoel de gesonificeerde kanalen in gedeïoniseerd water en droog ze gedurende vijf minuten op een hete plaat bij 100 graden Celsius.Bewaar de kanalen in een schone, afgedekte petrischaal tot gebruik. Om de PDMS-deklaag te fabriceren en het oppervlak te functionaliseren voor toekomstige modificatie, bereidt u een 2% aminopropyltriethoxysilaanoplossing in een glazen bekerglas door één milliliter aminopropyltriethoxysilaan toe te voegen aan 49 milliliter aceton. Verdun vervolgens een 25% glutaaraldehyde-oplossing tot 5% in gedeïoniseerd water.Maak twee milliliter oplossing voor elke afdeklaag van 24 millimeter bij 50 millimeter. Reinig de afdekslip in een badsonicator gedurende vijf minuten met behulp van IPA. Spoel de IPA van de afdekslips af met gedeïoniseerd water.Een gladde laag water op de afdeklaag geeft aan dat de IPA grondig is gespoeld. Droog het deksel vijf minuten op een hete plaat bij 100 graden Celsius. Plaats de gedroogde hoesjes in schone petrischaaltjes en zorg ervoor dat ze elkaar niet overlappen.Stel met behulp van een corona-ontladingsstokje de afdekking elk één minuut bloot aan een corona-ontlading. Verwijder de afdekslip binnen vijf minuten na blootstelling aan corona en dompel elke afdekslip gedurende 10 seconden onder in de aminopropyltriethoxysilaanoplossing, zodat de afdekslip wordt ondergedompeld Verwijder vervolgens de afdekstroken uit de aminopropyltriethoxysilaanoplossing, dompel ze gedurende 10 seconden onder in aceton en droog ze met perslucht. Plaats de droge deksel terug in de petrischaal, de behandelde kant naar boven gericht.Pipetteer een milliliter glutaaraldehyde-oplossing op het oppervlak van elke afdekslip. Bedek zoveel mogelijk oppervlak zonder dat de oplossing over de rand van de afdekslip loopt. Laat de deksel 30 minuten in contact komen met de oplossing en spoel vervolgens gedurende 20 seconden af met gedeïoniseerd water.Droog de afdekslips met perslucht en plaats ze terug in de petrischaaltjes, de met plasma behandelde kant naar boven Voor het lasersnijden van de modulaire magnetische basis, knipt u de ontwerpen uit de PMMA-laag met behulp van de juiste laserinstellingen, zoals het aantal passages en het vermogen. De laserinstellingen moeten worden aangepast, zodat de magneten in de PMMA-laag kunnen worden gedrukt. Was het lasergesneden deel met water en zeep om vuil uit het lasersnijproces te verwijderen.Gebruik geen oplosmiddelen, omdat deze microscheurtjes in de lasergesneden randen kunnen verspreiden. Om het platform te monteren, duwt u magneten met de hand in de lasergesneden basis. De dikte van de magneten moet kleiner zijn dan de dikte van de PMMA-basis om ervoor te zorgen dat de magneten gelijk zijn met het oppervlak van de basis.Verwijder de achterkant van de drukgevoelige lijm of PSA-plaat en bevestig de basis aan een met glutaaraldehyde behandelde afdeklaag met de gefunctionaliseerde kant naar boven gericht. Plaats de PDMS-kanaaluitsparing voorzichtig in de holte die door het frame wordt gedefinieerd. Druk met een pincet met brede punt om luchtbellen te verwijderen en te zorgen voor conformaal contact.Plaats de runderserumalbumine of de met BSA behandelde kanaalafdekking bovenop de kanaaluitsparing met de BSA-zijde naar beneden gericht. Zorg ervoor dat de vloeistofinlaat- en uitlaatpoorten zijn uitgelijnd met het kanaal. Het apparaat is klaar voor de collageen I-injectie.Plaats een spuitpomp, een gekoelde steriele spuit, gekoelde geneutraliseerde collageen I-oplossing en een steriele 20-gauge 90 graden luer lock naald in een bioveiligheidskast. Laad de collageen I-oplossing in de spuit en vermijd bubbels. Bevestig de punt van de naald aan de spuit, plaats de spuit in de spuitpomp, de naald naar beneden gericht en bereid de naald voor met collageen I-oplossing.Stel de spuitpomp in op het vereiste debiet tussen 50 en 2.000 microliter per minuut. Plaats voorbereide PDMS-kanalen op een laboratoriumaansluiting en waterpas met de naald. Steek de naald in de inlaatpoort van het PDMS-kanaal.Injecteer het kanaal totdat een druppel collageen van 30 microliter ik aan de uitlaatzijde verzamel. Laat de lab-aansluiting zakken en scheid de naald voorzichtig van het nieuw gevulde kanaal. Herhaal dit totdat alle kanalen zijn gevuld met collageen I-oplossing.Laad de gevulde kanalen in de petrischalen naast een schoon, pluisvrij doekje verzadigd met gedeïoniseerd water om uitdroging van de nieuw gevormde collageen I-gel te voorkomen. Dek de petrischaal af en plaats de geladen kanalen twee uur in de incubator voor de afpelstap. Voor peel-off en media-equilibratie, begin met het optillen van de PDMS-cover met een pincet om de gepolymeriseerde collageen I-gel bloot te leggen.Voeg 650 microliter endotheelgroeimedia toe aan de put. U kunt ook een andere module bevestigen om een extra collageenlaag te introduceren of mediaperfusiemogelijkheden te bieden. Laat de apparaten minimaal vier uur in de couveuse staan om de gel en media in evenwicht te brengen.Vervang de media voor het zaaien door cellen. Het functionaliseren van de glazen afdekslip maakte kanaallancering mogelijk en het functionaliseren van de PDMS-afdekking met BSA voorkwam collageen I-bevestiging. De collageen I-vezeluitlijning bleef onaangetast na het optillen van de hoes.Afbeeldingen van de HUVECs gekweekt op het uitgelijnde segment van de matrix toonden een verhoogde actinevezeluitlijning in vergelijking met de HUVECs op het segment met willekeurige vezels. Onze aanpak stelt ons in staat om de micro-omgeving van de tumor te modelleren en te kwantificeren hoe verschillende celtypen reageren. We kunnen ook stroomkanalen introduceren om langetermijnexperimenten te ondersteunen.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization (Video) | JoVE

Electrospun Nanovezel Steigers met gradaties in Fiber Organisatie

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration (Video) | JoVE

Engineering 3D Cellularized Collageen Gel voor Vasculaire Tissue Regeneration

Synthetic materials are known to initiate clinical complications such as inflammation, stenosis, and infections when implanted as vascular substitutes. ...

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix (Video) | JoVE

Planar Gradient Diffusion System Chemotaxis onderzoeken in een 3D collageenmatrix

The importance of cell migration can be seen through the development of human life. When cells migrate, they generate forces and transfer these forces to ...

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue (Video) | JoVE

Engineered 3D Silk-collageen-gebaseerde model van de gepolariseerde zenuwweefsel

Despite huge efforts to decipher the anatomy, composition and function of the brain, it remains the least understood organ of the human body. To gain a ...

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels (Video) | JoVE

Driedimensionale Biomimetic Technologie: Novel Biorubber Creëert Defined micro- en macro-schaal Architectures in Collageen Hydrogels

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo (Video) | JoVE

Voorbereiding van de 3D Collageen Gels en Microkanalen voor de Studie van 3D-Interacties<em&gt; In Vivo</em

Historically, most cellular processes have been studied in only 2 dimensions.  While these studies have been informative about general cell signaling ...

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture (Video) | JoVE

Tunable Hydrogels van Pulmonary extracellulaire matrix voor 3D-Cell Culture

Here we present a method for establishing multiple component cell culture hydrogels for in vitro lung cell culture. Beginning with healthy en bloc lung ...

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification (Video) | JoVE

Synthese van Hydrogels met Antifouling eigenschappen membranen voor waterzuivering

Hydrogels have been widely utilized to enhance the surface hydrophilicity of membranes for water purification, increasing the antifouling properties and ...

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D (Video) | JoVE

Productie van elastine-achtige eiwitten Hydrogels voor inkapselen en immunokleuring van cellen in 3D

Two-dimensional (2D) tissue culture techniques have been essential for our understanding of fundamental cell biology. However, traditional 2D tissue ...

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels (Video) | JoVE

Meten mondiale cellulaire Matrix Metalloproteinase en metabole activiteit in 3D Hydrogels

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...