Name: microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment
Uploaded: 2022-09-07T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Dette arbeidet ble støttet delvis av National Institute of Health under tildelingsnummer R21GM143658 og av National Science Foundation under tilskuddsnummer 2150798. Innholdet er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til finansieringsorganene.

1. Fabrikasjon av den todelte kanalen og modulære plattformbasen
MERK: Den mikrofluidiske kanalen er konstruert ved hjelp av to deler - den mikrofluidiske kanalen "cutout", som er barberhøvel kuttet fra et polydimetylsiloksan (PDMS) ark med definert tykkelse, og kanaldekselet, som reversibelt binder seg til utskjæringen og danner kanalen. Kanalen er omgitt av en poly (metylmetakrylat) (PMMA) ramme som vil fungere som et mediereservoar (figur 1). ...

Protokoller for å generere COL1-matriser med justerte fibre har blitt beskrevet ved hjelp av magnetiske metoder, direkte anvendelse av mekanisk belastning og mikrofluidiske teknikker47. Mikrofluidiske tilnærminger brukes ofte til å skape mikrofysiologiske systemer på grunn av deres veldefinerte strømnings- og transportegenskaper, noe som muliggjør presis kontroll over det biokjemiske mikromiljøet. Siden justerte COL1-fibre gir viktige instruktive signaler under patofysiologiske prosesser so...

Celler bor i et komplekst 3D-fibrøst nettverk kalt den ekstracellulære matrisen (ECM), hvorav hoveddelen består av det strukturelle proteinkollagen type I (COL1) 1,2. De biofysiske egenskapene til ECM gir veiledende signaler til celler, og som svar omdanner celler ECM-mikroarkitekturen 3,4,5. Disse gjensidige cellematriseinteraksjonene kan gi opphav til justerte COL1-fiberdomener6 som fremmer angiogenese og celleinvasjon i tumormiljøet 7,8,9 og påvirker cellemorfologi 10,11,12, polarisering 13 og differensiering 14. Justerte kollagenfibre fremmer også sårheling 15, spiller en nøkkelrolle i vevsutvikling16 og bidrar til langdistanse cellekommunikasjon17,18. Derfor er replikering av den opprinnelige COL1-fibermikroarkitekturen in vitro et viktig skritt mot å utvikle strukturerte modeller for å studere celleresponser på justerte mikromiljøer.
Mikrofluidiske cellekultursystemer er etablert som en foretrukket teknologi for å utvikle mikrofysiologiske systemer (MPS)19,20,21,22,23. Ved å utnytte gunstige skaleringseffekter i mikroskala, gir disse systemene presis kontroll over væskestrømmer, støtter kontrollert innføring av mekaniske krefter og definerer det biokjemiske mikromiljøet i en mikrokanal 21,24,25,26,27. MPS-plattformer har blitt brukt til å modellere vevsspesifikke mikromiljøer og studere multiorganinteraksjoner28. Samtidig har hydrogeler blitt mye utforsket for å rekapitulere 3D-mekanikken og biologisk påvirkning av ECM som observeres in vivo29,30. Med en økende vekt på å integrere 3D-kultur med mikrofluidiske plattformer, kan mange tilnærminger kombinere COL1-hydrogeler i mikrofluidiske enheter31,32,33. Imidlertid har metodene for å justere COL1-hydrogeler i mikrofluidiske kanaler vært begrenset til tynne 2D "matter" (<40 μm i tykkelse) i kanaler <1 mm brede, noe som gir begrenset potensial for å modellere celleresponser i justerte 3D-mikromiljøer31,34,35,36.
For å oppnå justerte 3D COL1-hydrogeler i et mikrofluidisk system, har det vist seg at når en selvmonterende COL1-løsning blir utsatt for lokale ekstensjonelle strømmer (hastighetsendring langs strømretningen), viser de resulterende COL1-hydrogelene en grad av fiberjustering som er direkte proporsjonal med størrelsen på ekstensjonsbelastningshastigheten de opplever37, 38. Mikrokanaldesignet i denne protokollen er unikt på to måter; For det første introduserer den segmenterte designen lokal forlengelsesbelastning til COL1-løsningen, og for det andre tillater den "todelte" konstruksjonen brukeren å justere COL1-fibre og deretter demontere kanalen for direkte tilgang til de justerte fibrene i et åpent format. Denne tilnærmingen kan videre tas i bruk for å utvikle modulære mikrofluidiske plattformer som utvikler mikrofysiologiske systemer med bestilte COL1-matriser. Følgende protokoll beskriver prosessen med å fremstille segmenterte mikrokanaler og beskriver bruken av kanalene for å justere storfe atelo COL1. Denne protokollen gir også instruksjoner for dyrking av celler på COL1 i et åpent brønnformat og diskuterer å legge til funksjonalitet til plattformen ved hjelp av et modulært, magnetisk baselag.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)triethoxysilane, 99% (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>440140-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 Gauge IT Series Angled Dispensing Tip</td>
			<td>Jensen Global</td>
			<td>JG-20-1.0-90</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/16&#34; dia. x 1/16&#34; thick Nickel Plated Magnet</td>
			<td>KJ Magnetics</td>
			<td>D31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3M (TC) 12X12-6-467MP</td>
			<td>DigiKey</td>
			<td>3M9726-ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACETONE ACS REAGENT &#8805;99.5%</td>
			<td>Signa Aldrich</td>
			<td>179124-4L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD-20AC LABORATORY CORONA TREATER</td>
			<td>Electro-Technic Products</td>
			<td>12051A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V, 98%, Reagent Grade, Alfa Aesar</td>
			<td>VWR</td>
			<td>AAJ64100-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear cast acrylic sheet</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>8560K181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Trypsin 10x, 2.5% Trypsin in HBSS [-] calcium, magnesium, phenol red, Porcine Parvovirus Tested</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II Automated Cell Counter</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>AMQAX1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT-FIRE software</td>
			<td>LOCI - University of Wisconsin</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit, (CC-3156 &#38; CC-4176), Lonza CC-3162, 500 mL</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>CC-3162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% in aqueous solution, Reagent Grade, Packaging=HDPE Bottle, Size=100 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>VWRV0875-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphtec CELITE-50</td>
			<td>Graphtec</td>
			<td>CE LITE-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1 M)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15-630-080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Purity Silicone Rubber .010&#34; Thick, 6&#34; X 8&#34; Sheet, 55A Durometer</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>87315K62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial cells</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C0035C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen&#160;Trypan Blue Stain (0.4%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A4154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser cutter</td>
			<td>Full Spectrum</td>
			<td>20x12 H-series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics Syringe pump</td>
			<td>New Era Syringe Pumps</td>
			<td>NE-1002X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microman E Single Channel Pipettor, Gilson, Model M1000E</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>H3570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutragen Bovine Atelo Collagen</td>
			<td>Advanced BioMatrix</td>
			<td>5010-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pbs (10x), pH 7.4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>70011044.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010049.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS, 10x), with Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>J63521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement carrier sheet for graphtec craft ROBO CC330L-20</td>
			<td>USCUTTER</td>
			<td>GRPCARSHTN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restek Norm-Ject Plastic Syringe 1 mL Luer Slip</td>
			<td>Restek</td>
			<td>22766.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon wafer</td>
			<td>University wafer</td>
			<td>452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide, ACS, Packaging=Poly Bottle, Size=500 g</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BDH9292-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102092-312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific&#160;Pierce 20x PBS Tween 20</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>28352.00</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment

Justert kollagen I (COL1) fibre veileder tumorcellemotilitet, påvirker endotelcellemorfologi, kontrollstamcelledifferensiering, og er et kjennetegn på hjerte- og muskelskjelettvev. For å studere cellerespons på justerte mikromiljøer in vitro har flere protokoller blitt utviklet for å generere COL1-matriser med definert fiberjustering, inkludert magnetiske, mekaniske, cellebaserte og mikrofluidiske metoder. Av disse tilbyr mikrofluidiske tilnærminger avanserte evner som nøyaktig kontroll over væskestrømmer og det cellulære mikromiljøet. Imidlertid har de mikrofluidiske tilnærmingene for å generere justerte COL1-matriser for avanserte in vitro-kulturplattformer vært begrenset til tynne "matter" (<40 μm i tykkelse) av COL1-fibre som strekker seg over avstander mindre enn 500 μm og ikke bidrar til 3D-cellekulturapplikasjoner. Her presenterer vi en protokoll for å fremstille 3D COL1-matriser (130-250 μm i tykkelse) med millimeterskalaregioner med definert fiberjustering i en mikrofluidisk enhet. Denne plattformen gir avanserte cellekulturfunksjoner for å modellere strukturerte vevsmikromiljøer ved å gi direkte tilgang til den mikrokonstruerte matrisen for cellekultur.

Når en selvmonterende COL1-løsning strømmer gjennom en kanal med avtagende tverrsnittsareal, øker strømhastigheten (v x) til COL1-løsningen lokalt med en størrelse, ∂v x, langs lengden av innsnevringen mellom de to segmentene (∂x), noe som resulterer i en ekstensjonsbelastningshastighet (ε̇) hvor ε̇ = ∂v x/∂x. Den ekstensjonelle belastningshastigheten kan beregnes ut fra væskehastigheten, som måles ved hjelp av partikkelbildehastighet (PIV), som vist i <strong class="...

Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment (Video) | JoVE

Denne protokollen demonstrerer bruken av en mikrofluidisk kanal med endring av geometri langs væskestrømningsretningen for å generere ekstensjonsbelastning (strekking) for å justere fibre i en 3D-kollagenhydrogel (<250 μm i tykkelse). Den resulterende justeringen strekker seg over flere millimeter og påvirkes av ekstensjonsbelastningshastigheten.

Microengineering 3D kollagenhydrogeler med langdistanse fiberjustering

Aligned collagen I (COL1) fibers guide tumor cell motility, influence endothelial cell morphology, control stem cell differentiation, and are a hallmark ...

Denne metoden lar oss konstruere 3D-kollagenhydrogeler med kontrollerte nivåer av fiberjustering til modellmiljøer som finnes i sunt og sykt vev i kroppen. Denne teknikken gir en enkel mikrofluidisk tilnærming til å konstruere justerte kollagenhydrogeler, introdusere celler og kvantifisere hvordan celler oppfører seg i topografisk definerte 3D-miljøer. Demonstrere prosedyren vil være Neil Joshi, Mehran Mansouri, Ann Byerly, og Justin Vidas for laboratoriet mitt.For å begynne, monter et 250 mikrometer tykt PDMS-ark på en plastbærer og barberhøvel kutt den mikrofluidiske designen ved hjelp av en håndverkskutter med en bladdybde på 0,5 millimeter, hastighet på en centimeter per sekund og høy kraft. Bruk et ultralydbad, rengjør de mikrofluidiske kanalutskjæringene i fem minutter. Skyll sonikerte kanaler i avionisert vann og tørk dem på en kokeplate ved 100 grader Celsius i fem minutter.Oppbevar kanalene i en ren, dekket petriskål til bruk. For å fremstille PDMS-deksellaget og funksjonalisere overflaten for fremtidig modifikasjon, lag en 2% aminopropyltrietoksysilanoppløsning i et glassbeger ved å tilsette en milliliter aminopropyltrietoksysilan til 49 ml aceton. Deretter fortynnes en 25% glutaraldehydoppløsning til 5% i avionisert vann.Lag to milliliter løsning for hver 24 millimeter med 50 millimeter dekselslipp. Rengjør dekselet i en badet sonicator i fem minutter med IPA. Skyll av IPA fra dekselet med avionisert vann.En glatt film av vann på dekselslippet indikerer at IPA skylles grundig. Tørk dekselet på en kokeplate i fem minutter ved 100 grader Celsius. Legg det tørkede dekselet i rene petriskåler, slik at de ikke overlapper hverandre.Bruk en koronautløpsstav, og utsett dekselet for en koronautladning i ett minutt hver. Fjern dekselet innen fem minutter etter koronaeksponering og senk hvert deksel ned i aminopropyltrietoksysilanoppløsningen i 10 sekunder, og sørg for at dekselet er nedsenket Fjern deretter dekselslippene fra aminopropyltrietoksysilanoppløsningen, senk dem ned i aceton i 10 sekunder og tørk dem med trykkluft. Legg tørrtrekket tilbake i petriskålen, med den behandlede siden vendt opp.Pipett en milliliter glutaraldehydoppløsning på overflaten av hver dekselglid. Dekk til så mye overflate som mulig uten å la løsningen søle over kanten av dekselet. La dekselet gli i kontakt med løsningen i 30 minutter og skyll deretter med avionisert vann i 20 sekunder.Tørk dekselslippene med trykkluft og legg dem tilbake i petriskålene, den plasmabehandlede siden opp For laserskjæring av den modulære magnetiske basen, kutt ut designene fra PMMA-laget ved hjelp av passende laserinnstillinger, for eksempel antall passeringer og strøm. Laserinnstillingene bør justeres slik at magnetene kan trykkmonteres i PMMA-laget. Vask den laserkuttede delen med såpe og vann for å fjerne rusk fra laserskjæringsprosessen.Ikke bruk løsemidler, da de kan forplante mikrosprekker i laserkuttede kanter. For å montere plattformen, skyv magneter for hånd inn i den laserkuttede basen. Tykkelsen på magnetene må være mindre enn tykkelsen på PMMA-basen for å sikre at magnetene er flush med overflaten av basen.Fjern underlaget fra det trykkfølsomme limet, eller PSA-arket, og fest basen til en glutaraldehydbehandlet dekselslip med den funksjonaliserte siden vendt oppover. Plasser forsiktig PDMS-kanalutskjæringen i hulrommet som er definert av rammen. Trykk ned med pinsett med bred spiss for å fjerne luftbobler og sikre konform kontakt.Plasser bovint serumalbumin, eller BSA-behandlet kanaldeksel på toppen av kanalutskjæringen med BSA-siden vendt ned. Forsikre deg om at væskeinntaks- og utløpsportene er justert med kanalen. Enheten er klar for kollagen I-injeksjon.Plasser en sprøytepumpe, en kjølt steril sprøyte, kjølt nøytralisert kollagen I-løsning, og en steril 20-gauge 90 graders vinkelspiss luer lås nål inn i et biosikkerhetsskap. Legg kollagen I-oppløsningen i sprøyten, unngå bobler. Fest kanylespissen til sprøyten, legg sprøyten inn i sprøytepumpen, kanylen vendt nedover, og klargjør nålen med kollagen I oppløsning.Sett sprøytepumpen til ønsket strømningshastighet mellom 50 og 2.000 mikroliter per minutt. Plasser forberedte PDMS-kanaler på en laboratoriekontakt og nivå med nålen. Stikk kanylen inn i innløpsporten på PDMS-kanalen.Injiser kanalen til en 30 mikroliter dråpe kollagen jeg samler på utløpssiden. Senk laboratoriekontakten og skill kanylen forsiktig fra den nylig fylte kanalen. Gjenta til alle kanalene er fylt med kollagen I-løsning.Legg de fylte kanalene i petriskålene sammen med en ren, lofri klut mettet med avionisert vann for å forhindre dehydrering av det nydannede kollagen I-gelen. Dekk petriskålen og plasser de lastede kanalene i inkubatoren i to timer før avskallingstrinnet. For avskalling og medielikevekt, start med å løfte av PDMS-dekselet med pinsett for å eksponere det polymeriserte kollagen I-gelen.Tilsett 650 mikroliter endotelvekstmedier til brønnen. Alternativt kan du feste en annen modul for å introdusere et ekstra kollagenlag eller gi medieperfusjonsfunksjoner. La enhetene stå i inkubatoren i minst fire timer for å balansere gelen og mediet.Bytt ut mediet før såing med celler. Funksjonalisering av glassdekselet aktiverte kanalløft og funksjonalisering av PDMS-dekselet med BSA forhindret kollagen I-feste. Kollagen I-fiberjusteringen forble upåvirket etter løfting av dekselet.Bilder av HUVECs dyrket på det justerte segmentet av matrisen viste økt aktinfiberjustering sammenlignet med HUVECs på segmentet med tilfeldige fibre. Vår tilnærming tillater oss å modellere tumormikromiljøet og kvantifisere hvordan forskjellige celletyper reagerer. Vi kan også introdusere flytkanaler for å støtte langsiktige eksperimenter.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization (Video) | JoVE

Elektrospunnede nanofiber Stillas med graderinger i Fiber Organization

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration (Video) | JoVE

Ingeniør 3D Cellularized Kollagen Geleer til Vaskulær Tissue Regeneration

Synthetic materials are known to initiate clinical complications such as inflammation, stenosis, and infections when implanted as vascular substitutes. ...

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix (Video) | JoVE

Planar Gradient Diffusion System for å etterforske Chemotaxis i en 3D Collagen Matrix

The importance of cell migration can be seen through the development of human life. When cells migrate, they generate forces and transfer these forces to ...

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue (Video) | JoVE

Engineered 3D Silk-kollagen-basert modell av polarisert Neural Tissue

Despite huge efforts to decipher the anatomy, composition and function of the brain, it remains the least understood organ of the human body. To gain a ...

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels (Video) | JoVE

Tredimensjonal Biomimetic Technology: Novel Biorubber Oppretter Defined mikro- og makroskala arkitektur i Kollagen Hydrogeler

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo (Video) | JoVE

Utarbeidelse av 3D kollagen Gels og mikro for studier av 3D Interaksjoner<em&gt; I Vivo</em

Historically, most cellular processes have been studied in only 2 dimensions.  While these studies have been informative about general cell signaling ...

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture (Video) | JoVE

Fleksibel Hydrogeler fra Lunge ekstracellulær matriks for 3D Cell Culture

Here we present a method for establishing multiple component cell culture hydrogels for in vitro lung cell culture. Beginning with healthy en bloc lung ...

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification (Video) | JoVE

Syntese av hydrogeler med Bunn Egenskaper som membraner for vannrensing

Hydrogels have been widely utilized to enhance the surface hydrophilicity of membranes for water purification, increasing the antifouling properties and ...

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D (Video) | JoVE

Produksjonen av Elastin som Protein Hydrogels for innkapsling og immunostai-celler i 3D

Two-dimensional (2D) tissue culture techniques have been essential for our understanding of fundamental cell biology. However, traditional 2D tissue ...

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels (Video) | JoVE

Måling av Global mobilnettet matrise Metalloproteinase og metabolsk aktivitet i 3D Hydrogels

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...