Name: microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment
Uploaded: 2022-09-07T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Bu çalışma kısmen R21GM143658 ödül numarası altında Ulusal Sağlık Enstitüsü ve 2150798 hibe numarası altında Ulusal Bilim Vakfı tarafından desteklenmiştir. İçerik yalnızca yazarların sorumluluğundadır ve finansman kuruluşlarının resmi görüşlerini temsil etmek zorunda değildir.

1. İki parçalı kanal ve modüler platform tabanının imalatı
NOT: Mikroakışkan kanal iki parça kullanılarak inşa edilmiştir - tanımlanmış kalınlıkta bir poli dimetil siloksan (PDMS) levhadan jiletle kesilen mikroakışkan kanal "kesme" ve kesime geri dönüşümlü olarak bağlanan ve kanalı oluşturan kanal kapağı. Kanal, bir ortam rezervuarı görevi görecek bir poli (metil metakrilat) (PMMA) çerçevesi ile çevrilidir (Şekil 1</stron...

Hizalanmış liflerle COL1 matrisleri oluşturmak için protokoller, manyetik yöntemler, mekanik gerinimin doğrudan uygulanması ve mikroakışkan teknikler kullanılarak tanımlanmıştır47. Mikroakışkan yaklaşımlar, biyokimyasal mikro çevre üzerinde hassas kontrol sağlayan iyi tanımlanmış akış ve taşıma özellikleri nedeniyle mikrofizyolojik sistemler oluşturmak için yaygın olarak kullanılmaktadır. Hizalanmış COL1 lifleri, yara iyileşmesi, tümör hücresi invazyonu ve d...

Hücreler, hücre dışı matris (ECM) adı verilen karmaşık bir 3D fibröz ağda bulunur ve bunların büyük kısmı yapısal protein kollajen tip I (COL1)1,2'den oluşur. ECM'nin biyofiziksel özellikleri, hücrelere rehberlik ipuçları sağlar ve buna cevaben, hücreler ECM mikromimarisiniyeniden şekillendirir 3,4,5. Bu karşılıklı hücre-matriks etkileşimleri,tümör ortamında anjiyogenezi ve hücre invazyonunu teşvik eden hizalanmış COL1 lif alanları6'ya yol açabilir 7,8,9 ve hücre morfolojisini10,11,12, polarizasyon 13 ve farklılaşma 14'ü etkiler. Hizalanmış kollajen lifleri ayrıca yara iyileşmesini destekler 15, doku gelişiminde önemli bir rol oynar16 ve uzun menzilli hücre iletişimine katkıda bulunur17,18. Bu nedenle, yerel COL1 fiber mikromimarisini in vitro olarak çoğaltmak, hizalanmış mikro ortamlara hücre tepkilerini incelemek için yapılandırılmış modeller geliştirmeye yönelik önemli bir adımdır.
Mikroakışkan hücre kültürü sistemleri, mikrofizyolojik sistemler (MPS) geliştirmek için tercih edilen bir teknoloji olarak kurulmuştur19,20,21,22,23. Uygun mikro ölçekli ölçeklendirme etkilerinden yararlanan bu sistemler, sıvı akışları üzerinde hassas kontrol sağlar, mekanik kuvvetlerin kontrollü bir şekilde kullanılmasını destekler ve bir mikrokanal 21,24,25,26,27 içindeki biyokimyasal mikro ortamı tanımlar. MPS platformları, dokuya özgü mikro ortamları modellemek ve çoklu organ etkileşimlerini incelemek için kullanılmıştır28. Aynı zamanda, hidrojeller, in vivo29,30 gözlemlenen ECM'nin 3D mekaniğini ve biyolojik etkisini özetlemek için yaygın olarak araştırılmıştır. 3D kültürün mikroakışkan platformlarla entegrasyonuna giderek artan bir vurgu ile, çok sayıda yaklaşım COL1 hidrojellerini mikroakışkan cihazlarda birleştirebilir31,32,33. Bununla birlikte, COL1 hidrojellerini mikroakışkan kanallarda hizalama yöntemleri, <1 mm genişliğindeki kanallarda ince 2D "paspaslar" (<40 μm kalınlığında) ile sınırlandırılmıştır ve hizalanmış 3D mikro ortamlarda hücre tepkilerini modellemek için sınırlı potansiyel sunar31,34,35,36.
Mikroakışkan bir sistemde hizalanmış 3D COL1 hidrojelleri elde etmek için, kendiliğinden monte edilen bir COL1 çözeltisi yerel uzatma akışlarına maruz kaldığında (akış yönünde hız değişimi), ortaya çıkan COL1 hidrojellerinin, yaşadıkları uzatma gerinim oranının büyüklüğü ile doğru orantılı bir derece lif hizalaması gösterdiği gösterilmiştir37, 38. Bu protokoldeki mikrokanal tasarımı iki şekilde benzersizdir; Birincisi, segmentli tasarım COL1 çözümüne yerel uzatma gerinimi getirir ve ikincisi, "iki parçalı" yapısı, kullanıcının COL1 liflerini hizalamasına ve daha sonra hizalanmış liflere açık bir biçimde doğrudan erişmek için kanalı sökmesine izin verir. Bu yaklaşım, sıralı COL1 matrislerine sahip mikrofizyolojik sistemler geliştiren modüler mikroakışkan platformlar geliştirmek için de benimsenebilir. Aşağıdaki protokol, parçalı mikro kanalların üretilmesi sürecini açıklamakta ve sığır atelo COL1'i hizalamak için kanalların kullanımını detaylandırmaktadır. Bu protokol aynı zamanda COL1 üzerindeki hücrelerin açık bir kuyu biçiminde kültürlenmesi için talimatlar sağlar ve modüler, manyetik bir taban katmanı kullanarak platforma işlevsellik eklemeyi tartışır.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>(3-Aminopropyl)triethoxysilane, 99% (APTES)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>440140-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 Gauge IT Series Angled Dispensing Tip</td>
			<td>Jensen Global</td>
			<td>JG-20-1.0-90</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/16&#34; dia. x 1/16&#34; thick Nickel Plated Magnet</td>
			<td>KJ Magnetics</td>
			<td>D31</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3M (TC) 12X12-6-467MP</td>
			<td>DigiKey</td>
			<td>3M9726-ND</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACETONE ACS REAGENT &#8805;99.5%</td>
			<td>Signa Aldrich</td>
			<td>179124-4L</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD-20AC LABORATORY CORONA TREATER</td>
			<td>Electro-Technic Products</td>
			<td>12051A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V, 98%, Reagent Grade, Alfa Aesar</td>
			<td>VWR</td>
			<td>AAJ64100-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clear cast acrylic sheet</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>8560K181</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Trypsin 10x, 2.5% Trypsin in HBSS [-] calcium, magnesium, phenol red, Porcine Parvovirus Tested</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-666</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Countess II Automated Cell Counter</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>AMQAX1000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT-FIRE software</td>
			<td>LOCI - University of Wisconsin</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EGM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKit, (CC-3156 &#38; CC-4176), Lonza CC-3162, 500 mL</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>CC-3162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% in aqueous solution, Reagent Grade, Packaging=HDPE Bottle, Size=100 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>VWRV0875-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphtec CELITE-50</td>
			<td>Graphtec</td>
			<td>CE LITE-50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES (1 M)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>15-630-080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-Purity Silicone Rubber .010&#34; Thick, 6&#34; X 8&#34; Sheet, 55A Durometer</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>87315K62</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial cells</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>C0035C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invitrogen&#160;Trypan Blue Stain (0.4%)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>T10282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A4154</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser cutter</td>
			<td>Full Spectrum</td>
			<td>20x12 H-series</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microfluidics Syringe pump</td>
			<td>New Era Syringe Pumps</td>
			<td>NE-1002X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microman E Single Channel Pipettor, Gilson, Model M1000E</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>FD10006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Alexa Fluor 488 Phalloidin</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>A12379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Molecular Probes Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>H3570</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutragen Bovine Atelo Collagen</td>
			<td>Advanced BioMatrix</td>
			<td>5010-50ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pbs (10x), pH 7.4</td>
			<td>VWR</td>
			<td>70011044.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010049.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS, 10x), with Triton X-100</td>
			<td>Alfa Aesar</td>
			<td>J63521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Replacement carrier sheet for graphtec craft ROBO CC330L-20</td>
			<td>USCUTTER</td>
			<td>GRPCARSHTN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restek Norm-Ject Plastic Syringe 1 mL Luer Slip</td>
			<td>Restek</td>
			<td>22766.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon wafer</td>
			<td>University wafer</td>
			<td>452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hydroxide, ACS, Packaging=Poly Bottle, Size=500 g</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BDH9292-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sylgard 184</td>
			<td>VWR</td>
			<td>102092-312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermo Scientific&#160;Pierce 20x PBS Tween 20</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>28352.00</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microengineering 3d collagen hydrogels with long-range fiber alignment

Hizalanmış kollajen I (COL1) lifleri tümör hücresi motilitesine rehberlik eder, endotel hücre morfolojisini etkiler, kök hücre farklılaşmasını kontrol eder ve kalp ve kas-iskelet sistemi dokularının ayırt edici özelliğidir. İn vitro hizalanmış mikro ortamlara hücre tepkisini incelemek için, manyetik, mekanik, hücre tabanlı ve mikroakışkan yöntemler de dahil olmak üzere tanımlanmış fiber hizalamasına sahip COL1 matrisleri üretmek için çeşitli protokoller geliştirilmiştir. Bunlardan mikroakışkan yaklaşımlar, sıvı akışları ve hücresel mikro çevre üzerinde doğru kontrol gibi gelişmiş yetenekler sunar. Bununla birlikte, gelişmiş in vitro kültür platformları için hizalanmış COL1 matrisleri oluşturmaya yönelik mikroakışkan yaklaşımlar, 500 μm'den daha az mesafelere yayılan ve 3D hücre kültürü uygulamalarına elverişli olmayan COL1 liflerinin ince "paspasları" (<40 μm kalınlığında) ile sınırlandırılmıştır. Burada, mikroakışkan bir cihazda tanımlanmış fiber hizalamasının milimetre ölçekli bölgelerine sahip 3D COL1 matrislerini (130-250 μm kalınlığında) üretmek için bir protokol sunuyoruz. Bu platform, hücre kültürü için mikro mühendislik matrisine doğrudan erişim sağlayarak yapılandırılmış doku mikro ortamlarını modellemek için gelişmiş hücre kültürü yetenekleri sağlar.

Kendiliğinden birleşen bir COL1 çözeltisi, kesit alanı azalan bir kanaldan aktığında, COL1 çözeltisinin akış hızı (v x), iki segment (∂x) arasındaki daralmanın uzunluğu boyunca yerel olarak bir büyüklük∂te, v x ile artar ve ε̇ = ∂v x/∂x olan bir uzatma gerinim oranı (ε̇) ile sonuçlanır. Ekstansiyonel gerinim oranı, Şekil 2'de görüldüğü gibi parçacık görüntü velosimetrisi (PIV) kullanılarak ölçülen sıvı hız...

Watch this Scientific Journal Video about Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment at JoVE.com

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment (Video) | JoVE

Bu protokol, lifleri bir 3D kollajen hidrojel (kalınlığı <250 μm) hizalamak için uzatma gerinim (germe) oluşturmak için sıvı akış yönü boyunca değişen geometriye sahip bir mikroakışkan kanalın kullanımını göstermektedir. Ortaya çıkan hizalama birkaç milimetre boyunca uzanır ve uzatma gerinim hızından etkilenir.

Uzun Menzilli Fiber Hizalamalı Mikromühendislik 3D Kollajen Hidrojelleri

Aligned collagen I (COL1) fibers guide tumor cell motility, influence endothelial cell morphology, control stem cell differentiation, and are a hallmark ...

Bu yöntem, vücuttaki sağlıklı ve hastalıklı dokularda bulunan model ortamlarına kontrollü lif hizalama seviyelerine sahip 3D kollajen hidrojelleri tasarlamamızı sağlar. Bu teknik, hizalanmış kollajen hidrojellerini tasarlamak, hücreleri tanıtmak ve hücrelerin topografik olarak tanımlanmış 3D ortamlarda nasıl davrandığını ölçmek için basit bir mikroakışkan yaklaşım sağlar. Prosedürü laboratuvarım için Neil Joshi, Mehran Mansouri, Ann Byerly ve Justin Vidas gösterecek.Başlamak için, 250 mikrometre kalınlığında bir PDMS levhayı plastik bir taşıyıcıya monte edin ve tıraş bıçağı, 0,5 milimetre bıçak derinliğinde, saniyede bir santimetre hızda ve yüksek kuvvette bir zanaat kesici kullanarak mikroakışkan tasarımı kesin. Ultrasonik bir banyo kullanarak, mikroakışkan kanal kesiklerini beş dakika boyunca temizleyin. Sonikasyonlu kanalları deiyonize suda durulayın ve beş dakika boyunca 100 santigrat derecede sıcak bir plaka üzerinde kurutun.Kanalları kullanana kadar temiz, kapalı bir Petri kabında saklayın. PDMS kapak tabakasını imal etmek ve yüzeyi gelecekteki modifikasyonlar için işlevselleştirmek için, 49 mililitre asetona bir mililitre aminopropil trietoksisilan ekleyerek bir cam beherde% 2'lik bir aminopropil trietoksisilan çözeltisi hazırlayın. Daha sonra,% 25'lik bir glutaraldehit çözeltisini% 5'e seyreltin.Her 24 milimetre x 50 milimetre kapak kayması için iki mililitre çözelti yapın. IPA kullanarak kapak fişlerini banyo sonikatöründe beş dakika boyunca temizleyin. IPA'yı deiyonize su kullanarak kapak fişlerinden durulayın.Kapak kayması üzerindeki pürüzsüz bir su filmi, IPA'nın iyice durulandığını gösterir. Kapak kaymalarını sıcak bir plaka üzerinde 100 santigrat derecede beş dakika kurutun. Kurutulmuş kapak fişlerini temiz Petri kaplarına yerleştirin ve üst üste binmemelerini sağlayın.Bir korona boşaltma değneği kullanarak, kapak kaymalarını her biri bir dakika boyunca bir korona deşarjına maruz bırakın. Korona maruziyetinden sonraki beş dakika içinde kapak fişlerini çıkarın ve her kapak kaymasını 10 saniye boyunca aminopropil trietoksisilan çözeltisine batırın, kapak kaymasının suya batırıldığından emin olun Ardından, kapak kaymalarını aminopropil trietoksisilan çözeltisinden çıkarın, 10 saniye boyunca asetona daldırın ve basınçlı hava ile kurutun. Kuru kapak kaymasını Petri kabına geri yerleştirin, tedavi edilen taraf yukarı bakacak şekilde.Her kapak kaymasının yüzeyine bir mililitre glutaraldehit çözeltisi pipetin. Çözeltinin kapak kaymasının kenarına dökülmesine izin vermeden mümkün olduğunca fazla yüzeyi örtün. Kapak kaymalarının 30 dakika boyunca çözelti ile temas etmesine izin verin ve ardından 20 saniye boyunca deiyonize suyla durulayın.Kapak fişlerini basınçlı hava kullanarak kurutun ve plazma ile işlenmiş tarafı yukarı doğru Petri kaplarına geri yerleştirin Modüler manyetik tabanı lazerle kesmek için, geçiş sayısı ve güç gibi uygun lazer ayarlarını kullanarak tasarımları PMMA katmanından kesin. Lazer ayarları, mıknatıslar PMMA katmanına preslenebilecek şekilde ayarlanmalıdır. Lazer kesim işlemindeki kalıntıları gidermek için lazerle kesilmiş kısmı sabun ve su kullanarak yıkayın.Solvent kullanmayın, çünkü lazerle kesilmiş kenarlarda mikro çatlaklar yayabilirler. Platformu monte etmek için, mıknatısları elle lazer kesim tabanına itin. Mıknatısların kalınlığı, mıknatısların tabanın yüzeyi ile aynı hizada olmasını sağlamak için PMMA tabanının kalınlığından daha az olmalıdır.Basıncı hassas yapıştırıcıdan veya PSA tabakasından desteği çıkarın ve tabanı, işlevselleştirilmiş tarafı yukarı bakacak şekilde glutaraldehit ile muamele edilmiş bir kapak kaymasına takın. PDMS kanal kesimini çerçeve tarafından tanımlanan boşluğa yavaşça yerleştirin. Hava kabarcıklarını çıkarmak ve konformal temas sağlamak için geniş uçlu cımbızla bastırın.Sığır serum albüminini veya BSA ile muamele edilmiş kanal kapağını, BSA tarafı aşağı bakacak şekilde kanal kesiğinin üstüne yerleştirin. Sıvı giriş ve çıkış portlarının kanalla aynı hizada olduğundan emin olun. Cihaz kollajen I enjeksiyonu için hazırdır.Bir biyogüvenlik kabinine bir şırınga pompası, soğutulmuş steril bir şırınga, soğutulmuş nötralize edilmiş kollajen I çözeltisi ve steril bir 20-gauge 90 derece açı uçlu luer kilit iğnesi yerleştirin. Kollajen I solüsyonunu şırıngaya yükleyerek kabarcıklardan kaçının. İğne ucunu şırıngaya takın, şırıngayı şırınga pompasına, iğne aşağı bakacak şekilde yükleyin ve iğneyi kollajen I çözeltisi ile astarlayın.Şırınga pompasını dakikada 50 ila 2.000 mikrolitre arasında gerekli akış hızına ayarlayın. Hazırlanan PDMS kanallarını bir laboratuvar jakına yerleştirin ve iğne ile düzleştirin. İğneyi PDMS kanalının giriş portuna yerleştirin.Çıkış tarafında topladığım 30 mikrolitrelik bir kollajen damlasına kadar kanala enjekte edin. Laboratuvar jakını indirin ve iğneyi yeni doldurulan kanaldan yavaşça ayırın. Tüm kanallar kollajen I çözeltisi ile doldurulana kadar tekrarlayın.Yeni oluşan kollajen I jelinin dehidrasyonunu önlemek için doldurulmuş kanalları Petri kaplarına deiyonize suyla doyurulmuş temiz, tüy bırakmayan bir mendille birlikte yükleyin. Petri kabını örtün ve yüklü kanalları soyma adımından önce iki saat boyunca inkübatöre yerleştirin. Soyulma ve ortam dengesi için, polimerize kollajen I jelini açığa çıkarmak için cımbız kullanarak PDMS kapağını kaldırarak başlayın.Kuyuya 650 mikrolitre endotel büyüme ortamı ekleyin. Alternatif olarak, ek bir kollajen tabakası tanıtmak veya ortam perfüzyon yetenekleri sağlamak için başka bir modül takın. Jeli ve ortamı dengelemek için cihazları inkübatörde en az dört saat bırakın.Hücrelerle tohumlamadan önce ortamı değiştirin. Cam kapağın kaymasını etkinleştiren kanalın kaldırılmasını ve PDMS kapağının BSA ile işlevselleştirilmesi kollajen I yapışmasını önledi. Kollajen I lif hizalaması, kapağı kaldırdıktan sonra etkilenmeden kaldı.Matrisin hizalanmış segmentinde kültürlenen HUVEC'lerin görüntüleri, rastgele liflere sahip segmentteki HUVEC'lere kıyasla artmış aktin lifi hizalaması gösterdi. Yaklaşımımız, tümör mikro ortamını modellememize ve farklı hücre tiplerinin nasıl tepki verdiğini ölçmemize olanak tanır. Uzun vadeli deneyleri desteklemek için akış kanallarını da tanıtabiliriz.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Microengineering 3D Collagen Hydrogels with Long-Range Fiber Alignment

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization (Video) | JoVE

Fiber Teşkilatı geçişleri ile electrospun Nanolif iskeleleri

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration

Engineering 3D Cellularized Collagen Gels for Vascular Tissue Regeneration (Video) | JoVE

Vasküler Doku Rejenerasyon için Mühendislik 3D cellularized Kollajen jeller

Synthetic materials are known to initiate clinical complications such as inflammation, stenosis, and infections when implanted as vascular substitutes. ...

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix

Planar Gradient Diffusion System to Investigate Chemotaxis in a 3D Collagen Matrix (Video) | JoVE

Planar Gradient Difüzyon Sistemi 3D Kollajen Matrix Kemotaksis Araştırma

The importance of cell migration can be seen through the development of human life. When cells migrate, they generate forces and transfer these forces to ...

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue

Engineered 3D Silk-collagen-based Model of Polarized Neural Tissue (Video) | JoVE

Polarize Sinir Doku Engineered 3D İpek-kolajen bazlı Modeli

Despite huge efforts to decipher the anatomy, composition and function of the brain, it remains the least understood organ of the human body. To gain a ...

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels

Three-dimensional Biomimetic Technology: Novel Biorubber Creates Defined Micro- and Macro-scale Architectures in Collagen Hydrogels (Video) | JoVE

Üç boyutlu Biyomimetik Teknoloji: Roman Biorubber Kollajen Hidrojeller içinde Mikro ve Makro ölçekli Mimarileri Tanımlı oluşturur

Tissue scaffolds play a crucial role in the tissue regeneration process. The ideal scaffold must fulfill several requirements such as having proper ...

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo

Preparation of 3D Collagen Gels and Microchannels for the Study of 3D Interactions In Vivo (Video) | JoVE

3D Etkileşimleri Çalışmaları 3D Kollajen jeller ve Mikrokanallarda Hazırlanması<em&gt; İn Vivo</em

Historically, most cellular processes have been studied in only 2 dimensions.  While these studies have been informative about general cell signaling ...

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture

Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture (Video) | JoVE

3D Hücre Kültürü için Pulmoner Ekstrasellüler Matrix Ayarlanabilir Hidrojellerinin

Here we present a method for establishing multiple component cell culture hydrogels for in vitro lung cell culture. Beginning with healthy en bloc lung ...

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification

Synthesis of Hydrogels with Antifouling Properties As Membranes for Water Purification (Video) | JoVE

Su Arıtma Membranlar olarak Zehirli Özelliklere Sahip Hidrojeller Sentezi

Hydrogels have been widely utilized to enhance the surface hydrophilicity of membranes for water purification, increasing the antifouling properties and ...

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D

Production of Elastin-like Protein Hydrogels for Encapsulation and Immunostaining of Cells in 3D (Video) | JoVE

Elastin benzeri Protein Hydrogels üretimi için saklama ve Immunostaining hücre 3D

Two-dimensional (2D) tissue culture techniques have been essential for our understanding of fundamental cell biology. However, traditional 2D tissue ...

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels

Measuring Global Cellular Matrix Metalloproteinase and Metabolic Activity in 3D Hydrogels (Video) | JoVE

Küresel hücresel matriks metalloproteinaz ve 3D Hydrogels metabolik etkinliğini ölçme

Three-dimensional (3D) cell culture systems often more closely recapitulate in vivo cellular responses and functions than traditional two-dimensional (2D) ...