Name: infrared thermography for the detection of changes in brown adipose tissue activity
Uploaded: 2022-09-28T14:30:00
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Questo studio è stato finanziato dalla borsa di ricerca della Fondazione scientifica croata (IP-2018-01- 7416).

Tutte le procedure sperimentali su animali da laboratorio sono state approvate dal Comitato Etico Nazionale e dal Ministero dell'Agricoltura (EP 185/2018). Gli esperimenti sono stati condotti in conformità con il Codice etico della Società croata per la scienza degli animali da laboratorio e le linee guida ARRIVE. Tutte le procedure eseguite negli studi che coinvolgono partecipanti umani erano conformi alla Dichiarazione di Helsinki e approvate dal Comitato Etico dell'Università di Zagabria, Facoltà di Medicina (UP/I...

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	<li>van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cold-activated+brown+adipose+tissue+in+healthy+men.">Cold-activated brown adipose tissue in healthy men.</a> New England Journal of Medicine. 360 (15), 1500-1508 (2009).</li><li>Morrison, S. 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P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mapping+of+human+brown+adipose+tissue+in+lean+and+obese+young+men.">Mapping of human brown adipose tissue in lean and obese young men.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (32), 8649-8654 (2017).</li><li>Vosselman, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue+activity+after+a+high-calorie+meal+in+humans.">Brown adipose tissue activity after a high-calorie meal in humans.</a> American Journal of Clinical Nutrition. 98 (1), 57-64 (2013).</li><li>Hibi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue+is+involved+in+diet-induced+thermogenesis+and+whole-body+fat+utilization+in+healthy+humans.">Brown adipose tissue is involved in diet-induced thermogenesis and whole-body fat utilization in healthy humans.</a> International Journal of Obesity. 40 (11), 1655-1661 (2016).</li><li>Fenzl, A., Kiefer, F. 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K. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hot+fat+in+a+cool+man:+Infrared+thermography+and+brown+adipose+tissue.">Hot fat in a cool man: Infrared thermography and brown adipose tissue.</a> Diabetes, Obesity and Metabolism. 13 (1), 92-93 (2011).</li><li>Ang, Q. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+of+infrared+thermography+for+quantification+of+brown+adipose+tissue+activation+in+healthy+adults+(TACTICAL):+A+randomized+trial.">A new method of infrared thermography for quantification of brown adipose tissue activation in healthy adults (TACTICAL): A randomized trial.</a> Journal of Physiological Sciences. 67 (3), 395-406 (2017).</li><li>Jang, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Infrared+thermography+in+the+detection+of+brown+adipose+tissue+in+humans.">Infrared thermography in the detection of brown adipose tissue in humans.</a> Physiological Reports. 2 (11), 12167 (2014).</li><li>Dodd, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Leptin+and+insulin+act+on+POMC+neurons+to+promote+the+browning+of+white+fat.">Leptin and insulin act on POMC neurons to promote the browning of white fat.</a> Cell. 160 (1-2), 88-104 (2015).</li><li>Habek, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+brown+adipose+tissue+in+diet-induced+thermogenesis+is+GC-C+dependent.">Activation of brown adipose tissue in diet-induced thermogenesis is GC-C dependent.</a> Pfl&#252;gers Archiv: European Journal of Physiology. 472 (3), 405-417 (2020).</li><li>Burke, L. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sex+difference+in+physical+activity,+energy+expenditure+and+obesity+driven+by+a+subpopulation+of+hypothalamic+POMC+neurons.">Sex difference in physical activity, energy expenditure and obesity driven by a subpopulation of hypothalamic POMC neurons.</a> Molecular Metabolism. 5 (3), 245-252 (2016).</li><li>Glumer, C., Jorgensen, T., Borch-Johnsen, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevalences+of+diabetes+and+impaired+glucose+regulation+in+a+Danish+population:+The+Inter99+study.">Prevalences of diabetes and impaired glucose regulation in a Danish population: The Inter99 study.</a> Diabetes Care. 26 (8), 2335-2340 (2003).</li><li>Sicree, R. 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E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+sex+and+hormone+replacement+therapy+use+on+the+prevalence+of+isolated+impaired+fasting+glucose+and+isolated+impaired+glucose+tolerance+in+subjects+with+a+family+history+of+type+2+diabetes.">Effects of sex and hormone replacement therapy use on the prevalence of isolated impaired fasting glucose and isolated impaired glucose tolerance in subjects with a family history of type 2 diabetes.</a> Diabetes. 55 (12), 3529-3535 (2006).</li><li>Williams, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gender+differences+in+the+prevalence+of+impaired+fasting+glycaemia+and+impaired+glucose+tolerance+in+Mauritius.+Does+sex+matter.">Gender differences in the prevalence of impaired fasting glycaemia and impaired glucose tolerance in Mauritius. Does sex matter.</a> Diabetic Medicine. 20 (11), 915-920 (2003).</li><li>Stanford, K. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue+regulates+glucose+homeostasis+and+insulin+sensitivity.">Brown adipose tissue regulates glucose homeostasis and insulin sensitivity.</a> Journal of Clinical Investigation. 123 (1), 215-223 (2013).</li><li>Brasil, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+systematic+review+on+the+role+of+infrared+thermography+in+the+brown+adipose+tissue+assessment.">A systematic review on the role of infrared thermography in the brown adipose tissue assessment.</a> Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 21 (1), 37-44 (2020).</li><li>Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. 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R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+standardized+infrared+imaging+technique+that+specifically+detects+UCP1-mediated+thermogenesis+in+vivo.">A standardized infrared imaging technique that specifically detects UCP1-mediated thermogenesis in vivo.</a> Molecular Metabolism. 3 (4), 490-494 (2014).</li><li>Hartwig, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multimodal+imaging+for+the+detection+of+brown+adipose+tissue+activation+in+women:+A+pilot+study+using+NIRS+and+infrared+thermography.">Multimodal imaging for the detection of brown adipose tissue activation in women: A pilot study using NIRS and infrared thermography.</a> Journal of Healthcare Engineering. 2017, 5986452 (2017).</li><li>James, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+infrared+thermography+in+the+measurement+and+characterization+of+brown+adipose+tissue+activation.">The use of infrared thermography in the measurement and characterization of brown adipose tissue activation.</a> Temperature. 5 (2), 147-161 (2018).</li><li>Folgueira, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothalamic+dopamine+signaling+regulates+brown+fat+thermogenesis.">Hypothalamic dopamine signaling regulates brown fat thermogenesis.</a> Nature Metabolism. 1 (8), 811-829 (2019).</li><li>Ratko, M., Habek, N., Kordi&#263;, M., Dugand&#382;i&#263;, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+infrared+technology+as+a+novel+approach+for+studies+with+female+laboratory+animals.">The use of infrared technology as a novel approach for studies with female laboratory animals.</a> Croatian Medical Journal. 61 (4), 346-353 (2020).</li></ol>

Studi recenti presentano prove crescenti per quanto riguarda la regolazione fisiologica e l'importanza dell'attività delle BAT nell'uomo adulto e negli animali nello sviluppo dell'obesità e del diabete mellito. Inoltre, la possibile attivazione delle BAT da parte di attivatori esogeni sta diventando un obiettivo per le aziende farmaceutiche. Per poter stimare la regolazione fisiologica e l'importanza fisiopatologica delle BAT in patologie molto gravose, nonché scoprire un potenziale approccio terapeutico, la termograf...

Il tessuto adiposo bruno (BAT), a differenza del tessuto adiposo bianco (WAT), non immagazzina ma piuttosto spende energia. Dopo la stimolazione simpatica, BAT utilizza acidi grassi e glucosio e produce calore mediante l'attivazione della proteina disaccoppiante 1 (UCP1). La funzione di UCP1 è quella di utilizzare un gradiente H + tra due membrane mitocondriali per produrre calore invece di ATP. La funzione delle BAT è quella di aumentare la produzione di calore in condizioni di freddo, il che porta ad un aumento del dispendio energetico1. Dopo l'esposizione al freddo, gli input sensoriali dalla pelle inibiscono i neuroni sensibili al caldo nel nucleo preottico mediano (MnPO) dell'area preottica ipotalamica (POA), che diminuisce l'effetto inibitorio dei neuroni POA sul raphe pallido rostrale (rRPa). L'attivazione dei neuroni rRPa aumenta l'attività simpatica, seguita da un aumento dell'attività BAT 2,3. L'attivazione BAT indotta dal freddo migliora la sensibilità all'insulina nell'uomo4 e questa attività è diminuita negli esseri umani con aumento dell'indice di massa corporea (BMI) e dell'età 1,5,6,7.
Oltre al suo ruolo nella termogenesi indotta dal freddo, dopo un pasto, l'assorbimento di glucosio nella BAT aumenta nella popolazione maschile magra, contribuendo alla termogenesi indotta dalla dieta (DIT), che è più alta nei soggetti maschi BAT positivi 8,9. La tecnica all'avanguardia utilizzata per misurare l'attività BAT è la tomografia computerizzata ad emissione di positroni, nota come PET-CT. Questo metodo determina l'attività BAT misurando l'accumulo del fluorodesossiglucosio radiotracciante (18F-FDG). Tuttavia, la PET-CT fallisce come metodo di scelta per rilevare l'attivazione di BAT dopo un pasto. Uno dei motivi è che, dopo un pasto, 18F-FDG compete con l'iperglicemia postprandiale per lo stesso trasportatore del glucosio, il che lo rende inadatto a determinare l'attivazione di BAT dopo un pasto, specialmente quando si confronta l'attività BAT in partecipanti sani e diabetici con possibili differenze nelle concentrazioni di glucosio nel sangue. Inoltre, il BAT utilizza gli acidi grassi come fonte di energia per la produzione di calore che non è visibile con la PET-CT. 18 L'accumulo di F-FDG in BAT dopo un pasto è appena visibile10 ed è, quindi, interpretato come un risultato negativo nella maggior parte dei casi. Non sorprende che, recentemente, sia stato suggerito che l'attivazione delle BAT sia più pronunciata nella popolazione umana di quanto si pensasse in precedenza; pertanto, è necessario un nuovo approccio per rilevare l'attività delle BAT e il suo coinvolgimento nei disturbi metabolici7. Un tentativo di risolvere questo problema è misurare il volume di BAT con risonanza magnetica (MRI) in pazienti prediabetici e pazienti con diabete mellito di tipo 2 (T2DM) con insulino-resistenza11. Tuttavia, il volume delle BAT misurato mediante risonanza magnetica non è un indicatore sufficiente per stimare la funzione quotidiana e l'utilizzo di glucosio e acidi grassi da parte delle BAT. Pertanto, per stimare le reali differenze nell'attività delle BAT nei pazienti sani rispetto ai pazienti con DMT2, è necessario un nuovo approccio che offra la possibilità di scoprire il meccanismo patologico del malfunzionamento delle BAT nei pazienti con DMT2.
Per determinare l'attivazione del BAT, abbiamo eseguito misurazioni della produzione di calore BAT prima e dopo un pasto utilizzando la termografia a infrarossi (IR) (Figura 1) 12,13. Stabilire la termografia IR come metodo di scelta per misurare l'attività BAT dopo un pasto in individui sani e obesi o pazienti con diabete mellito avrà un enorme impatto sul campo. Ad oggi, la termografia IR viene utilizzata per la determinazione dell'attivazione indotta dal freddo di BAT13,14,15. Nella storia umana recente, l'attività BAT indotta dal freddo non è più molto pronunciata (a causa del corretto riscaldamento degli habitat, abbigliamento adeguato), mentre l'attivazione delle BAT dopo un pasto si verifica ogni giorno. Inoltre, la regolazione fisiologica di queste due funzioni BAT attraverso l'ipotalamo è completamente diversa. Dopo un pasto, l'attivazione dei neuroni che esprimono proopiomelanocortina (POMC) nel nucleo arcuato ipotalamico (Arc) porta ad un aumento dell'attività del nervo simpatico tramite rRPa16. L'attivazione indotta dal freddo di BAT misurata mediante termografia IR o PET-CT è impropria se utilizzata come misura per l'attività quotidiana di BAT. L'aumento dell'attività BAT dopo un pasto è seguito dall'utilizzo del glucosio, che è in definitiva importante per mantenere l'omeostasi del glucosio, la sensibilità all'insulina e la regolazione giornaliera della concentrazione di glucosio. L'attivazione postprandiale della BAT porta ad un aumento del consumo di glucosio postprandiale, seguito da un aumento della produzione di calore e della temperatura corporea (DIT). Questo è stato dimostrato essere sesso, età e BMI dipendente12. Differenze di genere simili nell'attivazione delle BAT dopo un pasto sono state osservate nei topi di laboratorio maschi e femmine17. Questi risultati corrispondono alle differenze di genere recentemente scoperte nella regolazione della BAT da Burke et al., che hanno dimostrato che la regolazione ipotalamica del BAT browning attraverso una sottopopolazione di neuroni POMC differisce nei topi maschi e femmine18. L'attivazione postprandiale della BAT è minore nelle donne, nelle popolazioni anziane e nelle persone obese. La mancanza di attivazione delle BAT dopo un pasto (diminuzione dell'utilizzo del glucosio) potrebbe portare ad una maggiore prevalenza di ridotta tolleranza al glucosio nelle donne 19,20,21,22. Sfortunatamente, la maggior parte degli studi sull'attivazione delle BAT sono stati condotti solo sugli uomini. Attivando la BAT dopo un pasto, l'assorbimento di glucosio aumenta nella popolazione maschile magra. Non sorprende che, dopo l'attivazione della BAT, il DIT sia più alto nei soggetti maschi BAT positivi 8,9. Inoltre, il trapianto di BAT nei topi maschi migliora la tolleranza al glucosio, aumenta la sensibilità all'insulina e diminuisce il peso corporeo e la massa grassa23.
La PET-CT fallisce come metodo di scelta per misurare l'attività delle BAT, specialmente dopo un pasto. Pertanto, è stato sviluppato un metodo non invasivo e più sensibile. La termografia IR consente di stimare l'attività delle BAT in diversi animali da laboratorio (topi knock-out), nonché in partecipanti umani, indipendentemente dal sesso, dall'età o dagli effetti di diverse condizioni patologiche sull'attività delle BAT. Un ulteriore vantaggio di questo metodo è la semplicità per i partecipanti e gli animali da laboratorio, che ci consente di stimare i potenziali benefici della terapia di richiamo BAT. I recenti studi che utilizzano la termografia IR per determinare il comportamento fisiologico del BAT dopo l'esposizione al freddo o un pasto sono descritti nella recente pubblicazione di Brasil et al.24.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.1% cresyl violet acetate&#160;</td>
			<td>Commonly used chemical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Device for measuring air temperature and humidity</td>
			<td>Kesterl</td>
			<td>Kestrel 4200</td>
			<td>Certificat of conformity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>External data storage</td>
			<td>Hard Drive with at least 1 TB</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass microscopic slides</td>
			<td>Commonly used</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small cotton tip swab&#160;</td>
			<td>Urethral swabs</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software for analysis</td>
			<td>FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA</td>
			<td>FLIR Tools</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Software for meassurements</td>
			<td>FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA</td>
			<td>ResearchIR software</td>
			<td>FLIR ResearchIR Max, version 4.40.12.38 (64-bit)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermac Camera</td>
			<td>FLIR Systems, Wilsonville, OR, USA</td>
			<td>FLIR T-1020</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

infrared thermography for the detection of changes in brown adipose tissue activity

La misurazione dell'attività del tessuto adiposo bruno (BAT) mediante tomografia computerizzata ad emissione di positroni (PET-CT) attraverso l'accumulo di 18F-fluorodesossiglucosio (FDG) dopo un pasto o in pazienti obesi o diabetici fallisce come metodo di scelta. La ragione principale è che 18F-FDG compete con l'alta concentrazione plasmatica di glucosio postprandiale per lo stesso trasportatore di glucosio sulla membrana delle cellule BAT. Inoltre, BAT utilizza anche acidi grassi come fonte di energia, che non è visibile con PET-CT e potrebbe essere modificata insieme alla concentrazione di glucosio nei pazienti obesi e diabetici. Pertanto, per stimare l'importanza fisiologica delle BAT negli animali e nell'uomo, viene applicato un nuovo metodo di termografia a infrarossi utilizzato in recenti pubblicazioni.
Dopo il digiuno notturno, l'attività BAT è stata misurata mediante termografia a infrarossi prima e dopo un pasto in volontari umani e topi selvatici femmina. Il software della fotocamera calcola la temperatura dell'oggetto utilizzando la distanza dall'oggetto, l'emissività della pelle, la temperatura ambiente riflessa, la temperatura dell'aria e l'umidità relativa. Nei topi, l'area rasata sopra il BAT era una regione di interesse per la quale sono state misurate le temperature medie e massime. La fase del ciclo estrale nei topi femmina è stata determinata dopo un esperimento con strisci vaginali colorati con soluzione di colorazione di viola cresil (0,1%). Nei volontari sani, sono state selezionate due aree cutanee del collo: l'area sopraclavicolare (sopra la clavicola, dove sono presenti le cellule BAT) e l'area interclavicolare (tra le clavicole, dove non è stato rilevato tessuto BAT). L'attività BAT è determinata dalla sottrazione di questi due valori. Inoltre, le temperature medie e massime delle aree della pelle potrebbero essere determinate negli animali e nei partecipanti umani.
I cambiamenti nell'attività BAT dopo un pasto misurati dalla termografia a infrarossi, un metodo non invasivo e più sensibile, hanno dimostrato di essere sesso, età e fase del ciclo estrale dipendenti negli animali da laboratorio. Come parte della termogenesi indotta dalla dieta, l'attivazione delle BAT negli esseri umani ha anche dimostrato di dipendere dal sesso, dall'età e dall'indice di massa corporea. Determinare ulteriormente i cambiamenti fisiopatologici nell'attività BAT dopo un pasto sarà di grande importanza per i partecipanti con alte concentrazioni plasmatiche di glucosio (obesità e diabete mellito di tipo 2), nonché in diversi animali da laboratorio (topi knock-out). Questo metodo è anche uno strumento variabile per determinare possibili farmaci attivanti che potrebbero ringiovanire l'attività delle BAT.

Il modo più semplice per determinare l'attività delle BAT è sottrarre la temperatura massima della pelle al di sopra della BAT prima e dopo un pasto nei soggetti umani. Un modo migliore per calcolare l'attività delle BAT è selezionare due regioni di interesse: l'area cutanea sopra il BAT, che si trova nell'area sopraclavicolare, e l'area interclavicolare della pelle in cui non si trova tessuto BAT nell'uomo, designata come area di riferimento (secondo PET-CT; Figura 1). L'attività BAT ...

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Infrared Thermography for the Detection of Changes in Brown Adipose Tissue Activity

Qui, presentiamo un protocollo per misurare l'attività del tessuto adiposo bruno dopo un pasto negli esseri umani e negli animali da laboratorio.

Termografia a infrarossi per la rilevazione di cambiamenti nell'attività del tessuto adiposo bruno

Measuring brown adipose tissue (BAT) activity by positron emission tomography computed tomography (PET-CT) via the accumulation of 18F-fluorodeoxyglucose ...

La termografia a infrarossi consente di stimare l'attività del tessuto adiposo bruno negli animali da laboratorio e nei partecipanti umani, indipendentemente dal sesso, dall'età o dagli effetti di diverse condizioni patologiche. La PET-CT fallisce come metodo di scelta per misurare l'attività del tessuto adiposo bruno, specialmente dopo un pasto. Pertanto, è stata sviluppata una termografia a infrarossi non invasiva e più sensibile.Utilizzando la termografia a infrarossi, possiamo determinare che i cambiamenti fisiopatologici nell'attività del tessuto adiposo bruno o nell'attività del bagno nelle persone con obesità e diabete mellito e determinare il farmaco che può ringiovanire la cattiva attività in questi pazienti. Questo metodo potrebbe essere utilizzato per determinare gli effetti fisiologici degli ormoni o sintetizzare sostanze terapeutiche sulla cattiva attività nell'uomo e negli animali da laboratorio. Chiedi ai partecipanti se sono ben riposati e digiunano durante la notte.Riposeranno per almeno 30 minuti prima delle misurazioni per evitare possibili attivazioni del tessuto adiposo bruno. Esegui gli esperimenti nelle ore del mattino. 15 minuti prima della misurazione, chiedere ai partecipanti di togliersi gli indumenti superiori.Mentre i partecipanti sono a riposo, montare la telecamera termica sul treppiede e posizionarla a un metro di distanza dal punto in cui il partecipante sarà seduto. Collegare la termocamera a un computer e software come indicato dal produttore. Determinare la temperatura riflessa della stanza registrando un foglio di alluminio rugoso a una distanza focale di un metro.Per fare ciò, nel software della fotocamera, inserire la distanza di zero metri e l'emissività di uno. Quindi, inserisci i valori della pressione atmosferica e dell'umidità relativa. Per determinare la temperatura riflessa, scegli la forma quadrata e seleziona un ROI sul foglio di alluminio.Quindi, scegli la prima icona da sinistra nella finestra principale della fotocamera e leggi la temperatura media, necessaria per ulteriori analisi. Poco prima di iniziare le misurazioni, determinare la temperatura dell'aria ambiente e l'umidità dell'aria. Nel software, sopra la finestra principale della fotocamera, scegli la terza icona da sinistra.Nel menu a comparsa, scegli Modifica impostazioni record, per aprire una nuova finestra. In modalità di registrazione, selezionare Registra su disco e impostare il record per questa durata all'ora desiderata. Nelle Opzioni di registrazione della stessa finestra, limitare la velocità di registrazione a cinque hertz e scegliere la posizione in cui verranno salvate le registrazioni.Chiudi la finestra esistente, apri Modifica nel menu principale e seleziona Preferenze. Immettete cinque nella frequenza fotogrammi di destinazione. Selezionare Tasto di scelta rapida / Avvio remoto può interrompere la registrazione.E dal menu a discesa, seleziona In modalità Start / Stop. Al momento della misurazione, assicurarsi che siano presenti solo il partecipante e lo sperimentatore. Evitare il movimento dell'aria e assicurarsi che il partecipante sia lontano da correnti d'aria fredda, luce solare o qualsiasi fonte di calore come le lampadine.Individuare l'area sopraclavicolare del collo sopra la clavicola, dove si trova il tessuto adiposo bruno. Posizionare il partecipante in modo tale che quest'area sia a una distanza focale di un metro. Registra un breve filmato per 10-15 secondi a un frame rate di 5 FPS premendo il tasto F5.Assicurati che tutti i partecipanti mangino lo stesso pasto. Dopo il pasto, effettuare una nuova registrazione a 30 minuti e poi una, due e tre ore premendo F5 utilizzando gli stessi valori di impostazione. Il giorno prima dell'esperimento, raccogliere il tampone vaginale dell'animale e distribuire le cellule su un vetrino.Lasciare asciugare all'aria. Macchiare le cellule con 500 microlitri di acetato di violetto cresyl allo 0,1% per un minuto, quindi sciacquarle tre volte con acqua. Guarda le cellule al microscopio ottico con ingrandimento 100 volte e illuminazione a campo chiaro.Determinare la fase del ciclo estrale in base al numero di leucociti e cellule epiteliali nucleate e quantificate osservate nello striscio. La mattina dell'esperimento, preparare la termocamera e le impostazioni di registrazione. Posizionare con attenzione l'animale in una gabbia pulita e posizionare la gabbia sotto la termocamera a una distanza focale di un metro.Registrare un filmato premendo F5. Pesare il pellet alimentare prima di darlo a ciascun animale per calcolare l'assunzione di cibo. Lasciare che l'animale mangi per 30 minuti nella sua gabbia e pesare nuovamente il pellet di cibo dopo il pasto. Ripetere le misurazioni IR 30 minuti, un'ora e due ore dopo l'inizio di un pasto.Dopo l'esperimento, testare la fase del ciclo estrale negli animali femmina, come mostrato in precedenza. Per ogni filmato, inserisci le variabili nel software della fotocamera, ad esempio l'emissività della pelle, la temperatura ambiente riflessa, la temperatura dell'aria, l'umidità relativa e la distanza dall'oggetto. Selezionare il fotogramma adatto dal filmato spostando l'indicatore di riproduzione nella parte inferiore dello schermo o premendo il pulsante Pausa.Seleziona la regione di interesse scegliendo la forma desiderata dell'area sul lato sinistro della finestra principale. Scegli la forma che meglio corrisponde alla zona della pelle tra le scapole. Dopo aver scelto la regione di interesse, le temperature minima, massima e media verranno visualizzate sulla destra.Nell'immagine, il triangolo rosso rappresenta il punto di temperatura massima registrata e il triangolo blu rappresenta la temperatura minima registrata. Ripetete questo passaggio per diversi fotogrammi per assicurarvi che la temperatura misurata sia stabile durante alcuni secondi della registrazione. Sottrarre le temperature massime della pelle sopra il tessuto adiposo bruno prima di un pasto dalle temperature massime dopo un pasto per determinare l'aumento dell'attività postprandiale.L'attività del tessuto adiposo bruno è stata determinata analizzando due aree cutanee: una sopra il tessuto adiposo bruno e la seconda nell'area interclavicolare come punto di riferimento. L'attività del tessuto adiposo bruno è stata calcolata come 1,8 gradi Celsius dalle differenze tra le temperature massime in entrambe le aree della pelle. Ma l'attività non può essere presentata dalle temperature massime della pelle sopra il tessuto adiposo bruno poiché non vi è alcuna diminuzione della temperatura cutanea anche dopo tre ore dal pasto.Nei topi, i cambiamenti nell'attività dopo un pasto sono stati misurati nelle femmine di estro misurando la temperatura media della pelle sopra il tessuto adiposo bruno. Cambiamenti significativi nell'attività sono stati determinati 30 minuti dopo un pasto solo quando è stata misurata la temperatura massima. La corretta selezione dei soggetti di controllo corrispondenti è la parte più difficile degli studi clinici poiché i controlli sani e i partecipanti con condizioni patologiche dovrebbero essere il più simili possibile e differire solo nella malattia studiata.Oltre a questo protocollo, è possibile misurare la concentrazione di glucosio nel sangue e la temperatura corporea, il che consente l'analisi di correlazione tra cattiva attività e utilizzo del glucosio o aumento della temperatura corporea. Questa tecnica sensibile e non invasiva apre numerose possibilità nel determinare i cambiamenti fisiologici e fisiopatologici dell'attività del tessuto adiposo bruno in altri contesti e studi sperimentali.

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