Name: manipulation of rhythmic food intake in mice using a custom-made feeding system
Uploaded: 2022-12-16T13:55:00
Duration: 7 min 34 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Manipulation of Rhythmic Food Intake in Mice Using a Custom-Made Feeding System at JoVE.com

Este trabalho foi financiado pela bolsa R01DK128133 do NIH/NIDDK (para J.S.M) e fundos de startups da Texas A&M University.

Todos os animais são utilizados de acordo com as diretrizes estabelecidas pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Texas A&M University (AUP #2022-0050). Camundongos C57BL/6 machos e fêmeas entre 2-4 meses de idade são usados aqui. O procedimento para a construção do sistema de alimentação é descrito abaixo, e as matérias-primas necessárias para a construção do aparelho estão referenciadas na Tabela de Materiais.
1. Construção do sistema de alimentação
<ol><li>Construção de uma base de policloreto de vinila (PVC)<ol><li>Adquira quatro peças de chapas de PVC de 0,25 polegadas cortadas de acordo com as seguintes dimensões: 4,875 polegadas x 4,5 polegadas; 4,875 polegadas x 2,125 polegadas; 9,5 polegadas x 2,125 polegadas (duas peças). Faça quatro furos na base de 4,875 polegadas x 4,5 polegadas para fixar um temporizador de 24 horas usando as medidas fornecidas na Figura 1A. Cole as quatro peças de PVC para obter a base como na Figura 1A.</li>
	</ol></li>
	<li>Fixação do temporizador na base de PVC<ol><li>Abra o temporizador para remover o plugue. Faça uma conexão usando uma extensão/cabo elétrico padrão (Figura 1B).</li>
		<li>Coloque o temporizador na base de PVC para alinhá-lo com os orifícios perfurados na base no passo 1.1.1. Use parafusos de 1,5 polegadas para fixar o temporizador na base de PVC. Certifique-se de que o temporizador está plano e estável na base de PVC.</li>
		<li>Faça quatro furos na parte superior do temporizador e fixe parafusos de 0,75 polegadas para segurar o recipiente de alimentos de oito compartimentos (Figura 1B). A base do sistema está completa e se parece com a Figura 1C. CUIDADO: Não faça furos em todo o temporizador.</li>
	</ol></li>
	<li>Configuração da gaiola<ol><li>Corte um tubo de PVC de 4 polegadas (diâmetro externo de 4,5 polegadas) a uma altura de 3,125 polegadas. Faça um furo de cerca de 0,5 polegada na parte inferior do tubo para deixar o cabo elétrico passar.</li>
		<li>Lixe a parte superior do tubo (por exemplo, com um roteador ou uma ferramenta giratória) para permitir que a tampa seja removida facilmente ao trocar o recipiente de alimentos.</li>
		<li>Use uma gaiola de mouse com largura maior que 4,5 polegadas e corte um furo de 4,5 polegadas no fundo da gaiola usando uma serra de furo. NOTA: A localização do orifício depende da configuração da gaiola (por exemplo, localização do topo da gaiola e da garrafa de água, adição de uma roda de corrida, etc.).</li>
	</ol></li>
	<li>Configuração do recipiente de alimentação<ol><li>Faça um dispensador de alimentos com um organizador de joias de oito compartimentos de 4 polegadas, conforme mostrado na Figura 1D. Corte a borda do recipiente de forma que ele se encaixe bem no tubo.</li>
		<li>Use uma tampa de tubo de PVC de 4 polegadas e corte um orifício correspondente ao tamanho de um único compartimento dispensador (por exemplo, com uma ferramenta giratória) para criar uma abertura que exponha apenas um dos oito compartimentos por vez. À medida que o temporizador se move, a abertura expõe um novo compartimento a cada 3 h. Os componentes do sistema de alimentação agora estão prontos para serem usados. Uma vez que todas as gaiolas são ajustadas, o arranjo final se assemelha ao mostrado na Figura 1E.</li>
		<li>O transporte de muitos recipientes de alimentos ao mesmo tempo pode ser complicado. Para facilitar o transporte, leve três peças de cano de PVC de 0,25 polegada. Faça um furo de 0,625 polegadas no centro de duas peças e cole-as. Em seguida, use um tubo de PVC estreito de 0,625 polegadas que se encaixe no orifício e através do centro dos copos de comida para empilhar copos de alimentos para facilitar seu transporte, como mostrado na Figura 1F.</li>
		<li>Teste os temporizadores antes de introduzir os mouses conectando a configuração em tomadas elétricas, colocando um pedaço de nestlet em um compartimento em um tempo registrado e monitorando a posição do ninho 12 h depois para garantir que o temporizador gire imediatamente.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Aplicação do sistema de alimentação
<ol><li>Medição contínua da ingestão alimentar em camundongos<ol><li>Transfira os camundongos para a sala experimental e aclimate-os ao ciclo claro-escuro (LD) estabelecido na sala por pelo menos 1 semana, e por 2 semanas se o ciclo claro-escuro for deslocado por mais de 3 h. Para este experimento, são coletados dados de camundongos C57BL/6 machos e fêmeas entre 2-4 meses de idade expostos à DL 12:12 (n = 7 machos e 4 fêmeas).</li>
		<li>Registrar o peso dos camundongos antes de alojá-los individualmente nas gaiolas de alimentação (os pesos foram registrados às 15:00 horas, ou seja, no momento em que as trocas alimentares foram realizadas). Certifique-se de que os ratos têm acesso ad libitum à água e roupas de cama e ninhos suficientes.</li>
		<li>Adicione 1,5 g de alimento (usado rotineiramente 45 mg de pellets de precisão sem poeira) a todos os oito compartimentos do copo alimentador. Coloque o copo alimentador no temporizador. Em seguida, coloque a tampa no copo comedouro de forma que apenas um compartimento fique exposto e observe o horário de apresentação do alimento. Quatro compartimentos representam pontos noturnos e os outros quatro representam pontos diurnos. OBS: Devido ao comportamento de colecionismo observado na apresentação do excesso de alimento, 1,5 g foi otimizado como peso inicial do alimento. Os ratos tendem a acumular pellets em cima das tampas dos copos de comida ou na cama dentro da gaiola. Isso distorce os dados, levando a sua interpretação equivocada. Camundongos machos não acumulam pellets quando alimentados com 1,5 g ou menos por compartimento. As fêmeas tendem a acumular mais alimentos do que os machos, mas isso é específico do rato e pode ser atenuado se fornecer 1 g de pellet por compartimento.</li>
		<li>Troque os alimentos todos os dias no mesmo horário e conte o número de pellets restantes em cada compartimento para calcular a quantidade de alimento consumido. Monitore o perfil alimentar por uma semana para obter um perfil alimentar basal de camundongos alimentados ad libitum.</li>
		<li>Com base nos alimentos consumidos em cada compartimento, calcule o consumo alimentar médio diário de cada camundongo (Figura 2).</li>
	</ol></li>
	<li>Tratamento com dieta rica em gordura (DHH) NOTA: Este sistema de alimentação também pode ser usado para estudar o efeito da DH em doenças metabólicas e, eventualmente, ser usado para horários de alimentação com restrição de tempo. O HFD não está disponível comercialmente como pellets precisos de tamanho e peso, e os pellets para alimentação são geralmente obtidos como pellets de 0,5 polegada.<ol><li>Coloque os pellets de HFD em uma superfície limpa ou filme transparente e corte-os em 6-7 pedaços menores de tamanho uniforme usando uma lâmina de barbear. Cortar os pellets suficientemente pequenos para que se assemelhem aos pellets de ração normais, tal como utilizados no ponto 2.1 acima. NOTA: Os ratos tendem a acumular pelotas maiores em suas gaiolas, levando a erros de cálculo dos alimentos consumidos.</li>
		<li>Pesar 1,5 g de pedaços de HFD cortados e colocar em cada um dos 8 compartimentos de alimentos. Para a troca de alimentos a cada dois dias, 1,5 g de HFD por compartimento é suficiente.</li>
		<li>Troque o alimento todos os dias ou em dias alternados de acordo com as necessidades experimentais e registre o peso do alimento que resta.</li>
		<li>Calcule a quantidade de alimento consumido subtraindo o peso restante do alimento da quantidade inicial de alimento dado. Repita esse processo por um período de 1 semana para obter uma linha de base da ingestão alimentar de DH (Figura 2).</li>
	</ol></li>
	<li>Aclimatando camundongos machos a uma dieta noturna restrita (NR)<ol><li>Siga as etapas 2.1.1-2.1.4 para obter uma linha de base da alimentação ad libitum . Para este experimento, são coletados dados de camundongos machos C57BL/6 entre 2-4 meses de idade expostos à DL 12:12 (n = 18 machos).</li>
		<li>Após 3-7 dias de dieta ad libitum , coloque os ratos em uma dieta de transição, reduzindo gradualmente o número de pellets nos compartimentos do dia. Para fazer isso, tenha cinco pellets por compartimento no dia 1 de transição (0,225 g por compartimento), 3 pellets no dia 2 (0,135 g por compartimento), 1 pellet no dia 3 (0,045 g por compartimento) e nenhum depois disso para fazer a transição completa dos camundongos em uma dieta noturna restrita. NOTA: Certifique-se de que os ratos não têm restrição calórica. Calcule a média do consumo diário de alimentos de ratos por compartimento com base na linha de base ad libitum e dê-lhes a mesma quantidade de alimento, distribuindo-o apenas pelos compartimentos de quatro noites.</li>
		<li>Continue monitorando a ingestão de alimentos por 2 semanas após os camundongos terem se adaptado ao regime noturno restrito. Durante esse período, ajustar a quantidade de alimento dada a cada camundongo para melhor adequar seu consumo alimentar total (Figura 3A). Normalmente, adicione pellets de comida (1 pellet para cada um dos quatro compartimentos noturnos) quando os ratos comem todos os seus alimentos por duas noites consecutivas.</li>
		<li>Pese os ratos no final do período de 2 semanas para monitorar qualquer mudança de peso devido ao regime de alimentação. Ao final desse período, anestesiar os camundongos com isoflurano e eutanasiá-los por decapitação. Coletar tecidos e analisá-los para mudanças diárias devido ao paradigma alimentar.</li>
	</ol></li>
	<li>Aclimatando camundongos machos a uma dieta arrítmica (AR)<ol><li>Siga as etapas 2.1.1-2.1.4 para obter uma linha de base da alimentação ad libitum . Para este experimento, são coletados dados de camundongos machos C57BL/6 entre 2-4 meses de idade expostos à DL 12:12 (n = 18 machos).</li>
		<li>Após uma semana de dieta ad libitum , calcule o consumo alimentar médio por dia e divida esse número por 8 para obter a quantidade de alimento a ser fornecida em cada compartimento. Consiga a alimentação de RA garantindo que os ratos recebam uma quantidade igual de alimento em todos os oito compartimentos ao longo do dia.</li>
		<li>Em seguida, coloque os camundongos em uma dieta de transição, reduzindo gradualmente, ao longo de 3-5 dias, a quantidade de alimento dado por compartimento para, finalmente, abolir qualquer ritmo de ingestão de alimentos (como mostrado na Figura 3B). Quando em uma dieta AR, certifique-se de que os camundongos tenham acesso a 1/8 de sua ingestão diária de alimentos em cada um dos oito compartimentos e, portanto, acesso aos alimentos a cada 3 h. Certifique-se de que os ratos não têm restrição calórica.</li>
		<li>Manter os camundongos em dieta de RA por 2 semanas ou mais (Figura 3B).</li>
		<li>Durante a dieta AR, ajuste o alimento todos os dias para garantir que os ratos deixem apenas algumas pelotas para trás (normalmente menos de 5). Isso garante que os ratos estejam recebendo a quantidade certa de alimento e não tenham restrição calórica. Faça ajustes reduzindo ou adicionando pellets em todos os oito compartimentos ou reduzindo ou adicionando pellets em dois compartimentos opostos, para não induzir nenhum ritmo de ingestão de alimentos. NOTA: Ratos alimentados sob uma dieta AR deixam comida quase exclusivamente entre ZT3 e ZT9 (entre 3 h e 9 h após a luz acender), mas estão com fome à noite e mordem o dispensador de alimentos para acessar o próximo compartimento. No entanto, os camundongos alimentados com RA não têm restrição calórica e, de fato, ganham mais peso do que os camundongos alimentados com NR ao longo do tempo.</li>
		<li>Pese os ratos no final do período de 2 semanas para monitorar qualquer mudança de peso devido ao regime de alimentação. Ao final desse período, anestesiar os camundongos com isoflurano e eutanasiá-los por decapitação. Coletar tecidos e analisá-los para mudanças diárias devido ao paradigma alimentar.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Boothroyd, C. E., Wijnen, H., Naef, F., Saez, L., Young, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integration+of+light+and+temperature+in+the+regulation+of+circadian+gene+expression+in+Drosophila.">Integration of light and temperature in the regulation of circadian gene expression in Drosophila.</a> PLoS Genetics. 3 (4), 0492-0507 (2007).</li><li>Brown, S. A., Zumbrunn, G., Fleury-Olela, F., Preitner, N., Schibler, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rhythms+of+mammalian+body+temperature+can+sustain+peripheral+circadian+clocks.">Rhythms of mammalian body temperature can sustain peripheral circadian clocks.</a> Current Biology. 12 (18), 1574-1583 (2002).</li><li>Buhr, E. D., Yoo, S. H., Takahashi, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature+as+a+universal+resetting+cue+for+mammalian+circadian+oscillators.">Temperature as a universal resetting cue for mammalian circadian oscillators.</a> Science. 330 (6002), 379-385 (2010).</li><li>Kawamoto, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+fasting+and+re-feeding+on+the+expression+of+Dec,+Per1,+and+other+clock-related+genes.">Effects of fasting and re-feeding on the expression of Dec, Per1, and other clock-related genes.</a> Journal of Biochemistry. 140 (3), 401-408 (2006).</li><li>Lamia, K. A., Storch, K. F., Weitz, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+significance+of+a+peripheral+tissue+circadian+clock.">Physiological significance of a peripheral tissue circadian clock.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (39), 15172-15177 (2008).</li><li>Oosterman, J. E., Kalsbeek, A., La Fleur, S. E., Belsham, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+nutrients+on+circadian+rhythmicity.">Impact of nutrients on circadian rhythmicity.</a> American Journal of Physiology - Regulatory Integrative and Comparative Physiology. 308 (5), 337-350 (2015).</li><li>Pitts, S. N., Perone, E., Silver, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Food-entrained+circadian+rhythms+are+sustained+in+arrhythmic+Clk/Clk+mutant+mice.">Food-entrained circadian rhythms are sustained in arrhythmic Clk/Clk mutant mice.</a> American Journal of Physiology - Regulatory Integrative and Comparative Physiology. 285, 57-67 (2003).</li><li>Sheward, W. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Entrainment+to+feeding+but+not+to+light:+Circadian+phenotype+of+VPAC+2+receptor-null+mice.">Entrainment to feeding but not to light: Circadian phenotype of VPAC 2 receptor-null mice.</a> Journal of Neuroscience. 27 (16), 4351-4358 (2007).</li><li>Gekakis, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+the+CLOCK+protein+in+the+mammalian+circadian+mechanism.">Role of the CLOCK protein in the mammalian circadian mechanism.</a> Science. 280 (5369), 1564-1569 (1998).</li><li>King, D. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Positional+cloning+of+the+mouse+circadian+Clock+gene.">Positional cloning of the mouse circadian Clock gene.</a> Cell. 89 (4), 641-653 (1997).</li><li>Kume, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=mCRY1+and+mCRY2+are+essential+components+of+the+negative+limb+of+the+circadian+clock+feedback+loop.">mCRY1 and mCRY2 are essential components of the negative limb of the circadian clock feedback loop.</a> Cell. 98 (2), 193-205 (1999).</li><li>Shearman, L. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interacting+molecular+loops+in+the+mammalian+circadian+clock.">Interacting molecular loops in the mammalian circadian clock.</a> Science. 288 (5468), 1013-1019 (2000).</li><li>Beytebiere, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-specific+BMAL1+cistromes+reveal+that+rhythmic+transcription+is+associated+with+rhythmic+enhancer-enhancer+interactions.">Tissue-specific BMAL1 cistromes reveal that rhythmic transcription is associated with rhythmic enhancer-enhancer interactions.</a> Genes and Development. 33 (5-6), 294-309 (2019).</li><li>Menet, J. S., Pescatore, S., Rosbash, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CLOCK:+BMAL1+is+a+pioneer-+like+transcription+factor.">CLOCK: BMAL1 is a pioneer- like transcription factor.</a> Genes and Development. 28 (1), 8-13 (2014).</li><li>Koike, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcriptional+architecture+and+chromatin+landscape+of+the+core+circadian+clock+in+mammals.">Transcriptional architecture and chromatin landscape of the core circadian clock in mammals.</a> Science. 338 (6105), 349-354 (2012).</li><li>Mure, L. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diurnal+transcriptome+atlas+of+a+primate+across+major+neural+and+peripheral+tissues.">Diurnal transcriptome atlas of a primate across major neural and peripheral tissues.</a> Science. 359 (6381), (2018).</li><li>Ruben, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+database+of+tissue-specific+rhythmically+expressed+human+genes+has+potential+applications+in+circadian+medicine.">A database of tissue-specific rhythmically expressed human genes has potential applications in circadian medicine.</a> Science Translational Medicine. 10 (458), 1-8 (2018).</li><li>Zhang, R., Lahens, N. F., Ballance, H. I., Hughes, M. E., Hogenesch, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+circadian+gene+expression+atlas+in+mammals:+Implications+for+biology+and+medicine.">A circadian gene expression atlas in mammals: Implications for biology and medicine.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (45), 16219-16224 (2014).</li><li>Menet, J. S., Rodriguez, J., Abruzzi, K. C., Rosbash, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nascent-Seq+reveals+novel+features+of+mouse+circadian+transcriptional+regulation.">Nascent-Seq reveals novel features of mouse circadian transcriptional regulation.</a> eLife. 2012 (1), 1-25 (2012).</li><li>Miller, B. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circadian+and+CLOCK-controlled+regulation+of+the+mouse+transcriptome+and+cell+proliferation.">Circadian and CLOCK-controlled regulation of the mouse transcriptome and cell proliferation.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (9), 3342-3347 (2007).</li><li>Cailotto, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+suprachiasmatic+nucleus+controls+the+daily+variation+of+plasma+glucose+via+the+autonomic+output+to+the+liver:+Are+the+clock+genes+involved.">The suprachiasmatic nucleus controls the daily variation of plasma glucose via the autonomic output to the liver: Are the clock genes involved.</a> European Journal of Neuroscience. 22 (10), 2531-2540 (2005).</li><li>Eckel-Mahan, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coordination+of+the+transcriptome+and+metabolome+by+the+circadian+clock.">Coordination of the transcriptome and metabolome by the circadian clock.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (14), 5541-5546 (2012).</li><li>Damiola, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Restricted+feeding+uncouples+circadian+oscillators+in+peripheral+tissues+from+the+central+pacemaker+in+the+suprachiasmatic+nucleus.">Restricted feeding uncouples circadian oscillators in peripheral tissues from the central pacemaker in the suprachiasmatic nucleus.</a> Genes and Development. 14 (23), 2950-2961 (2000).</li><li>Saini, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real-time+recording+of+circadian+liver+gene+expression+in+freely+moving+mice+reveals+the+phase-setting+behavior+of+hepatocyte+clocks.">Real-time recording of circadian liver gene expression in freely moving mice reveals the phase-setting behavior of hepatocyte clocks.</a> Genes and Development. 27 (13), 1526-1536 (2013).</li><li>Stokkan, K. A., Yamazaki, S., Tei, H., Sakaki, Y., Menaker, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Entrainment+of+the+circadian+clock+in+the+liver+by+feeding.">Entrainment of the circadian clock in the liver by feeding.</a> Science. 291 (5503), 490-493 (2001).</li><li>Atger, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circadian+and+feeding+rhythms+differentially+affect+rhythmic+mRNA+transcription+and+translation+in+mouse+liver.">Circadian and feeding rhythms differentially affect rhythmic mRNA transcription and translation in mouse liver.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (47), 6579-6588 (2015).</li><li>Greenwell, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rhythmic+food+intake+drives+rhythmic+gene+expression+more+potently+than+the+hepatic+circadian+clock+in+mice.">Rhythmic food intake drives rhythmic gene expression more potently than the hepatic circadian clock in mice.</a> Cell Reports. 27 (3), 649-657 (2019).</li><li>Izumo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effects+of+light+and+feeding+on+circadian+organization+of+peripheral+clocks+in+a+forebrain+Bmal1+mutant.">Differential effects of light and feeding on circadian organization of peripheral clocks in a forebrain Bmal1 mutant.</a> eLife. 3, 04617 (2014).</li><li>Mange, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diurnal+regulation+of+RNA+polymerase+III+transcription+is+under+the+control+of+both+the+feeding-fasting+response+and+the+circadian+clock.">Diurnal regulation of RNA polymerase III transcription is under the control of both the feeding-fasting response and the circadian clock.</a> Genome Research. 27 (6), 973-984 (2017).</li><li>Van Der Veen, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+behavior+on+central+and+peripheral+circadian+clocks+in+the+common+vole+Microtus+arvalis,+a+mammal+with+ultradian+rhythms.">Impact of behavior on central and peripheral circadian clocks in the common vole Microtus arvalis, a mammal with ultradian rhythms.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (9), 3393-3398 (2006).</li><li>Vollmers, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time+of+feeding+and+the+intrinsic+circadian+clock+drive+rhythms+in+hepatic+gene+expression.">Time of feeding and the intrinsic circadian clock drive rhythms in hepatic gene expression.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106 (50), 21453-21458 (2009).</li><li>Chaix, A., Lin, T., Le, H. D., Chang, M. W., Panda, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-Restricted+feeding+prevents+obesity+and+metabolic+syndrome+in+mice+lacking+a+circadian+clock.">Time-Restricted feeding prevents obesity and metabolic syndrome in mice lacking a circadian clock.</a> Cell Metabolism. 29 (2), 303-319 (2019).</li><li>Hatori, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-restricted+feeding+without+reducing+caloric+intake+prevents+metabolic+diseases+in+mice+fed+a+high-fat+diet.">Time-restricted feeding without reducing caloric intake prevents metabolic diseases in mice fed a high-fat diet.</a> Cell Metabolism. 15 (6), 848-860 (2012).</li><li>Acosta-Rodr&#237;guez, V. A., de Groot, M. H. M., Rijo-Ferreira, F., Green, C. B., Takahashi, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mice+under+caloric+restriction+self-impose+a+temporal+restriction+of+food+intake+as+revealed+by+an+automated+feeder+system.">Mice under caloric restriction self-impose a temporal restriction of food intake as revealed by an automated feeder system.</a> Cell Metabolism. 26 (1), 267-277 (2017).</li><li>Chung, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-restricted+feeding+improves+insulin+resistance+and+hepatic+steatosis+in+a+mouse+model+of+postmenopausal+obesity.">Time-restricted feeding improves insulin resistance and hepatic steatosis in a mouse model of postmenopausal obesity.</a> Metabolism: Clinical and Experimental. 65 (12), 1743-1754 (2016).</li><li>Sen, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultradian+feeding+in+mice+not+only+affects+the+peripheral+clock+in+the+liver,+but+also+the+master+clock+in+the+brain.">Ultradian feeding in mice not only affects the peripheral clock in the liver, but also the master clock in the brain.</a> Chronobiology International. 34 (1), 17-36 (2017).</li><li>Xie, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Natural+food+intake+patterns+do+not+synchronize+peripheral+clocks.">Natural food intake patterns do not synchronize peripheral clocks.</a> BMC Biology. 18 (160), 1-11 (2020).</li><li>Swamy, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circadian+disruption+of+food+availability+significantly+reduces+reproductive+success+in+mice.">Circadian disruption of food availability significantly reduces reproductive success in mice.</a> Hormones and Behavior. 105, 177-184 (2018).</li><li>Xin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protocol+for+setup+and+circadian+analysis+of+inverted+feeding+in+mice.">Protocol for setup and circadian analysis of inverted feeding in mice.</a> STAR Protocols. 2 (3), 100701 (2021).</li></ol>

Todos os autores declaram não haver conflitos de interesse.

Extensas pesquisas têm sido realizadas nas últimas décadas sobre a manipulação dos ritmos alimentares e seu efeito na fisiologia. A construção e utilização do sistema de alimentação aqui descrito podem ser utilizadas como um método eficiente para manipular a ingestão alimentar. O protocolo utiliza um temporizador comum de 24 horas e um copo de comida projetado como um organizador de oito compartimentos como componentes-chave do sistema. As gaiolas podem ser construídas com facilidade usando apenas algumas ferramentas de fácil acesso, e o manuseio do sistema é fácil de usar. Alguns dos principais aspectos do protocolo de adaptação do sistema para manipular a ingestão rítmica de alimentos incluem a troca diária de copos de alimentos desde que o temporizador gira em um período de 24 horas, contagem manual ou pesagem de alimentos remanescentes e ajuste diário do número de pastilhas para alimentação de RA. Normalmente, as aparas de plástico são vistas quando os ratos estão com fome e não recebem comida adequada. Esse problema pode ser corrigido adicionando mais alguns pellets de comida respeitando o regime de alimentação até que nenhuma maravalha de plástico seja vista. No caso da alimentação por RA, em que a alimentação diária necessita ser ajustada, deve-se tomar cuidado para não induzir o ritmo de ingestão alimentar (Figura 3B). Assim, é preferível adicionar ou subtrair pellets em compartimentos opostos para manter os camundongos alimentados arritmicamente.
Este sistema pode ser melhorado revestindo os copos de comida com uma camada de epóxi para evitar que os ratos mordam o plástico e, assim, ajudar a prolongar a vida útil dos copos de alimentos. A superfície do temporizador para a colocação do copo de comida também pode ser modificada para ajudar o copo de comida a ficar plano e estável no temporizador. Isso poderia evitar a parada acidental do temporizador causada por um temporizador colocado de forma desigual. Alguns dos componentes da gaiola, como copos de comida, também podem ser impressos em 3D para reduzir custos e feitos sob medida ao gosto do pesquisador. Isso pode incluir copos de comida com mais de oito compartimentos, o que pode dar uma resolução de tempo melhor do que a janela atual de 3 horas.
Apesar de muito eficiente, esse sistema apresenta algumas limitações, como ser trabalhoso, sendo que o pesquisador ainda precisa trocar copos de alimentos a cada 24 h e exige que eles contem/pesem manualmente os alimentos restantes. Além disso, os temporizadores precisam ser monitorados de tempos em tempos para identificar possíveis problemas e/ou se eles pararam de funcionar. Isso pode ser conseguido durante a contagem dos pellets de alimento restantes após a alimentação (por exemplo, determinando se alguns camundongos comeram comida apenas em alguns compartimentos e deixaram alguns compartimentos intocados). Outra limitação desse sistema é que ele pode não funcionar tão bem com camundongos fêmeas, já que os poucos experimentos realizados com fêmeas mostraram que elas tendem a acumular alimentos e mastigar o plástico mais do que os camundongos machos.
No entanto, este sistema de alimentação é muito eficaz na manipulação da ingestão de alimentos, é fácil de construir, operar, manter e é barato em comparação com os caros alimentadores automatizados existentes no mercado. Pode ser facilmente adaptado e modificado para atender às necessidades do pesquisador e não necessita de nenhum treinamento especial para operar o sistema. É importante ressaltar que os temporizadores produzem apenas uma baixa quantidade de ruído branco constante, o que impede que os ratos associem qualquer som à disponibilidade de alimentos.
Em resumo, este artigo descreve um sistema de alimentação inovador que pode ser usado para monitorar o consumo diário de alimentos em camundongos e pode ser adaptado para alimentar camundongos em diferentes paradigmas, como alimentação com restrição de tempo, alimentação arrítmica e alimentação com dieta rica em gordura. Esse sistema se soma à lista de ferramentas que podem ser utilizadas para abordar questões importantes no campo da ingestão rítmica de alimentos e seu efeito na fisiologia.

O relógio circadiano é encontrado de forma onipresente em todas as espécies e fornece um mecanismo de cronometragem que ajuda os organismos a se adaptarem ao seu ambiente em mudança rítmica. O marcapasso circadiano mestre está localizado no núcleo supraquiasmático (NSC) do hipotálamo. O SCN é primariamente arrastado pelo ciclo claro-escuro ambiental e sincroniza relógios periféricos presentes em quase todas as células do corpo por meio de múltiplas pistas, incluindo sinais neuronais e hormonais, alimentação e temperatura corporal 1,2,3,4,5,6,7,8 . Em mamíferos, o relógio circadiano molecular depende do fator de transcrição heterodimérico CLOCK: BMAL1 9,10, que controla a expressão dos genes core clock denominados Period (Per1, Per2 e Per3) e Cryptochrome (Cry1 e Cry2) para iniciar um ciclo de feedback transcricional crítico para a geração de ritmos circadianos 9,11,12 . O relógio molecular também regula a transcrição rítmica de milhares de genes que controlam a ritmicidade de praticamente todas as funções biológicas13,14,15. Mais de 50% do genoma em mamíferos é ritmicamente expresso em pelo menos um tipo de tecido 16,17,18, e tecidos como o fígado em camundongos têm cerca de 25%-30% de seu transcriptoma expresso ritmicamente18,19. A expressão gênica rítmica é crucial para ativar processos biológicos importantes, como o controle do ciclocelular20, a homeostase daglicose21 e o metabolismo deaminoácidos22, na hora certa do dia, a fim de aumentar a aptidão do organismo.
Nas últimas décadas, têm sido crescentes as evidências sugerindo que a ingestão alimentar pode atuar como uma potente pista sincronizadora para estimular ritmos de expressão gênica em múltiplos tecidos, incluindo o fígado23,24. É importante ressaltar que a alimentação tem demonstrado introduzir ritmos no fígado independentemente do NSC ou do ciclo claro-escuro25, e a alimentação rítmica pode conduzir a expressão gênica rítmica sem envolver o relógio molecular 26,27,28,29,30,31. A alimentação restrita ao período inativo de camundongos (diurno) inverte a fase de expressão dos genes core clock e de muitos genes rítmicos31. A alimentação com restrição de tempo (TRF), que é uma intervenção nutricional em que a ingestão calórica diária é restrita a um período de 8-10 h, demonstrou proteger contra obesidade, hiperinsulinemia, esteatose hepática e síndrome metabólica32,33. Todos os experimentos acima envolvendo manipulação da ingestão de alimentos exigem que o experimentador faça uso de métodos eficazes para entregar alimentos na hora certa do dia.
Diferentes métodos de entrega de alimentos têm sido desenvolvidos, apresentando diversas vantagens e desvantagens 29,34,35,36,37,38,39 (Tabela 1). Alguns alimentadores automatizados foram projetados para operar com base em um software que controla a quantidade, a duração e o tempo de disponibilidade de alimentos enquanto registra a alimentação e a atividade voluntária de corrida de rodas em camundongos34. Alguns outros métodos envolvem camundongos sendo colocados em gaiolas diferentes para diferentes condições de alimentação, com o experimentador adicionando manualmente pastilhas de alimento no tempo pré-requisito38,39. Outro sistema utiliza um sistema alimentador automatizado controlado por um computador onde um escudo acionado pneumático impede o acesso aos alimentos e que pode ser controlado por intervalos de tempo ou massa de alimentos35. Todos esses métodos ou requerem a utilização e configuração de um software computadorizado que pode ser caro e requer algum treinamento para o funcionamento adequado do instrumento ou são trabalhosos porque o experimentador precisa estar presente em momentos específicos para alterar manualmente as condições de alimentação. Os sistemas informatizados também vêm com sua parcela de problemas, incluindo mau funcionamento de alavancas ou portas que deixam o alimento sair, pelotas de comida ficando presas nas tomadas e quebra de software. Além disso, o som que pode ser produzido durante a abertura de portas ou alavancas apresenta o risco de condicionar camundongos a associá-los à entrega de alimentos, comprometendo a interpretação dos efeitos da manipulação alimentar como sendo estritamente devido ao acesso ao alimento ou devido a efeitos sobre outros ritmos comportamentais, como o ciclo sono/vigília. O objetivo geral deste estudo foi desenvolver um sistema acessível e eficiente para manipular a ingestão de alimentos rítmicos a longo prazo que ajudasse a aliviar muitos desses problemas mencionados anteriormente. Em primeiro lugar, o aparelho de alimentação que foi desenvolvido e é descrito abaixo pode ser construído a um custo muito mínimo em comparação com as máquinas automatizadas (Tabela 2) e não requer treinamento sofisticado para manuseio, operação e manutenção. Em segundo lugar, o sistema de alimentação produz apenas um ruído branco de fundo e nenhum som alto durante a entrega de alimentos, evitando assim o condicionamento pavloviano. Em conjunto, esse sistema de alimentação é econômico, mais acessível e confiável para os pesquisadores, ao mesmo tempo em que é eficiente na manipulação da ingestão rítmica de alimentos.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>#6 x 0.75 inch Phillips Pan Head Stainless Steel Sheet Metal Screw (50-Pack)</td>
			<td>Everbilt</td>
			<td>#800172</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>#8 x 1.5 inch Phillips Pan Head Zinc Plated Sheet Metal Screw (100-Pack)</td>
			<td>Everbilt&#160;</td>
			<td>#801622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25 inch gray PVC sheet (24 inch x 48 inch)</td>
			<td>USPlastic</td>
			<td>#45088</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4 inch PVC pipe (10 ft)</td>
			<td>Home Depot</td>
			<td>#531103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>45 mg dustless precision pellets</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>#F0165</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6 ft. Extension Cord</td>
			<td>HDX</td>
			<td>HD#145-017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Food container (eight-compartment jewelry organizer)&#160;</td>
			<td>JewelrySupply</td>
			<td>#PB8301</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indoor Basic Timer</td>
			<td>General Electric</td>
			<td>#15119</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oatey 4 inch ABS Pipe Test Cap with Knockout</td>
			<td>Home Depot</td>
			<td>#39103D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rodent Diet with 45 kcal% fat (with red dye)</td>
			<td>Research Diets</td>
			<td>#D12451</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

manipulation of rhythmic food intake in mice using a custom-made feeding system

A expressão gênica rítmica é uma marca do ritmo circadiano e é essencial para conduzir a ritmicidade das funções biológicas no momento apropriado do dia. Estudos nas últimas décadas têm mostrado que a ingestão rítmica de alimentos (ou seja, o momento em que os organismos comem alimentos durante as 24 horas do dia), contribui significativamente para a regulação rítmica da expressão gênica em vários órgãos e tecidos do corpo. Os efeitos da ingestão rítmica de alimentos sobre a saúde e a fisiologia têm sido amplamente estudados desde então e têm revelado que a restrição alimentar por 8 h durante a fase ativa atenua doenças metabólicas decorrentes de uma variedade de dietas obesogênicas. Esses estudos muitas vezes requerem o uso de métodos controlados para cronometrar a entrega de alimentos aos animais. Este manuscrito descreve o projeto e o uso de um sistema eficiente e de baixo custo, construído internamente para medir o consumo diário de alimentos, bem como manipular a ingestão rítmica de alimentos em camundongos. Este sistema implica a utilização de matérias-primas a preços acessíveis para construir gaiolas adequadas para a entrega de alimentos, seguindo um procedimento de manuseamento fácil de utilizar. Esse sistema pode ser usado eficientemente para alimentar camundongos em diferentes regimes alimentares, como horários ad libitum, com restrição de tempo ou arrítmicos, e pode incorporar uma dieta rica em gordura para estudar seu efeito no comportamento, fisiologia e obesidade. Uma descrição de como camundongos selvagens (WT) se adaptam aos diferentes regimes de alimentação é fornecida.

O sistema de alimentação descrito acima pode ser usado para manipulação a longo prazo da ingestão rítmica de alimentos em camundongos. Este sistema essencialmente expõe um novo compartimento alimentar ao rato a cada 3 h, permitindo ao investigador manipular especificamente os alimentos em cada compartimento. Uma das aplicações foi analisar o perfil de consumo alimentar no período de 24 horas. Os dados indicam que camundongos WT alimentados com ração normal ad libitum comem cerca de 75% de sua comida durante a noite (Figura 2A). Além disso, a maioria dos alimentos ingeridos durante o dia ocorre dentro das 3 h antes do apagar da luz.
Camundongos alimentados com HFD ad libitum consumiram mais alimento nos primeiros 2 dias de exposição, provavelmente devido à novidade da HFD (Figura 2A). Após 2 dias, a ingestão de DH permaneceu rítmica, porém com amplitude diminuída em relação à alimentação normal ad libitum. Enquanto machos e fêmeas de camundongos WT foram alimentados com HFD, verificou-se que camundongos fêmeas acumulavam uma grande quantidade de alimento na tampa do aparelho de alimentação e na gaiola, enquanto os machos não apresentavam nenhum colecionismo perceptível. Como mencionado acima, o açambarcamento de alimentos pode resultar em erros de cálculo do consumo de alimentos e levar a uma interpretação equivocada dos dados. Além disso, camundongos fêmeas mordiam as bordas de plástico dos copos de comida com mais frequência, especialmente nos compartimentos noturnos. Camundongos machos apresentaram ganho de peso significativo após 1 semana de ração normal ad libitum e após 1 semana de DH (Figura 2E). Uma tendência semelhante foi observada com camundongos fêmeas, mas não atingiu valores de p significativos, provavelmente devido ao menor número de fêmeas usadas em comparação com os machos.
Os camundongos que fizeram a transição para uma dieta NR ingerem suas calorias totais diárias apenas à noite, sem uma diminuição significativa na ingestão calórica nas primeiras 3-5 semanas (Figura 3A). A exposição mais prolongada ao esquema de NR diminui a ingestão calórica média diária em 10%-15% em comparação com camundongos alimentados ad libitum, como descrito em outro artigo34. Os ratos que fizeram a transição para uma dieta de RA consumiram suas calorias totais diárias em quantidades iguais ao longo do dia, levando a um amortecimento dramático do ritmo diário de ingestão alimentar (Figura 3B). Quanto ao horário alimentar do RN, a média diária de ingestão calórica não é afetada pelo horário alimentar de RA nas primeiras 3-5 semanas de exposição, mas diminui com o maior tempo de exposição. Os camundongos apresentaram ganho de peso após os esquemas de NR (Figura 3C) e RA (Figura 3C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64624/64624fig01.jpg"> Figura 1: Projeto e construção do sistema do aparelho de alimentação. (A) As dimensões da base de PVC para o sistema de alimentação e a descrição de onde devem ser feitos furos para a fixação do temporizador. (B) Temporizador de 24 h antes e após reaproveitamento do fio e perfuração com parafusos para colocação do copo alimentício. (C) A base cinza montada e temporizador juntamente com um tubo de PVC de 4 polegadas. (D) O copo de alimento de oito compartimentos após o corte das bordas externas. (E) A configuração final das gaiolas com o copo de comida coberto com uma tampa de 4 polegadas de modo que apenas um compartimento seja acessível por vez. (F) O transporte de vários copos de alimentos durante um experimento. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64624/64624fig01large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64624/64624fig02.jpg"> Figura 2: Perfis alimentares sob diferentes regimes alimentares . (A) Perfil alimentar de camundongos WT machos alimentados ad libitum com ração normal (NC) por 7 dias e dieta hiperlipídica (DH) por mais 7 dias. As linhas coloridas representam perfis individuais de camundongos (n = 7) e a linha preta indica a média ± MEV de sete camundongos. (B) A dieta rica em gordura antes e depois do fatiamento. (C) A média diária de consumo alimentar a cada 3 h ± EPM (n = 7). A média foi calculada nos últimos 5 dias do horário de alimentação da CP ou do DF. (D) A média (esquerda) e a porcentagem (direita) de ingestão alimentar durante o dia e a noite para camundongos alimentados com NC ou DH. Os valores representam a média de sete camundongos ± EPM e foram calculados usando os dados de consumo alimentar nos últimos 5 dias dos horários de alimentação de CN ou DHL. * p < 0,05 entre os dois grupos (teste t pareado). (E) O peso corporal médio dos camundongos utilizados no experimento após 1 semana de CN e 1 semana de DH. Os dados para homens (esquerda) e mulheres (direita) são mostrados com * p < 0,05 entre os dois grupos (teste t pareado). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64624/64624fig02large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64624/64624fig03.jpg"> Figura 3: Manipulação do ritmo diário de ingestão alimentar. (A) Perfil alimentar de camundongos WT machos alimentados com ração normal ad libitum por 2 dias, transferidos para um regime de alimentação com restrição noturna (NR) por 3 dias e mantidos sob alimentação NR por 8 noites. As linhas coloridas representam perfis individuais de camundongos (n = 18) e a linha preta indica a média ± MEV de 18 camundongos. O asterisco cinza indica o mau funcionamento do temporizador para aquele mouse naquele único dia em que o temporizador parou de girar. (B) Perfil alimentar de camundongos WT machos alimentados com ração normal ad libitum por 2 dias, transferidos para um regime de alimentação arrítmica (AR) por 1 dia e mantidos sob alimentação AR por 8 noites. As linhas coloridas representam perfis individuais de camundongos (n = 18) e a linha preta indica a média ± MEV dos 18 camundongos. (C) O peso corporal médio dos camundongos utilizados no experimento após 2 semanas de exposição às dietas NR e AR. Os dados são apresentados com * p < 0,05 entre os dois grupos (teste t pareado). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64624/64624fig03large.jpg" target="_blank">Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>
Tabela 1: Vantagens e desvantagens dos sistemas de alimentação existentes. Uma tabela destacando os diferentes sistemas de alimentação utilizados para manipulação da ingestão alimentar, com uma breve descrição dos prós e contras de cada sistema. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64624/Table1_JoVE_Sahasrabudhe%20et%20al_R1_RE.xlsx" target="_blank">Clique aqui para baixar esta tabela.</a>
Tabela 2: Custo dos materiais necessários para a construção do sistema de alimentação. Uma tabela listando o custo dos itens necessários para a construção do sistema de alimentação descrito neste trabalho, juntamente com uma estimativa do custo de construção por gaiola. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64624/Table2_JoVE_Sahasrabudhe%20et%20al_RE.xls" target="_blank">Clique aqui para baixar esta tabela.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Manipulation of Rhythmic Food Intake in Mice Using a Custom-Made Feeding System at JoVE.com

Manipulation of Rhythmic Food Intake in Mice Using a Custom-Made Feeding System

A restrição do tempo de ingestão alimentar tem emergido como uma intervenção promissora para atenuar doenças metabólicas induzidas pela dieta. Este manuscrito detalha a construção e o uso de um eficiente sistema construído internamente para medir e manipular a ingestão rítmica de alimentos em camundongos.

Manipulação da Ingestão Rítmica de Alimentos em Camundongos Utilizando um Sistema de Alimentação Customizado

Rhythmic gene expression is a hallmark of the circadian rhythm and is essential for driving the rhythmicity of biological functions at the appropriate ...

A restrição do tempo de ingestão alimentar tem emergido como uma intervenção promissora para atenuar doenças metabólicas induzidas pela dieta. Este protocolo detalha a construção e o uso de um sistema eficiente, construído internamente, para medir e manipular a ingestão rítmica de alimentos em camundongos. A principal vantagem do sistema é que é um sistema eficiente e de baixo custo que pode ser construído usando materiais acessíveis, ao mesmo tempo em que é fácil de usar.Esse sistema pode ser usado para alimentar camundongos em diferentes regimes alimentares, como horários ad libitum, com restrição de tempo ou arrítmicos, e pode incorporar dieta rica em gordura para estudar seus efeitos na fisiologia. Para começar, adquira quatro peças de chapas de PVC de 0,25 polegada. Corte e cole as quatro peças de PVC para obter a base.Em seguida, abra o temporizador para remover o plugue e faça uma conexão usando uma extensão padrão ou cabo elétrico. Coloque o temporizador na base de PVC para alinhá-lo com os furos perfurados nele e fixe usando parafusos de 1,5 polegada. Faça quatro furos na parte superior do temporizador e fixe parafusos de 0,75 polegada para segurar o recipiente de comida de oito compartimentos.Use uma gaiola de mouse com largura maior que 4,5 polegadas e corte um furo de 4,5 polegadas no fundo da gaiola, usando uma serra de furo. Em seguida, faça um dispensador de alimentos usando um organizador de joias de quatro polegadas e oito compartimentos. Corte a borda do recipiente, de modo que ele se encaixe bem no tubo.Use uma tampa de tubo de PVC de quatro polegadas e corte um orifício correspondente ao tamanho de um único compartimento dispensador para criar uma abertura que exponha apenas um dos oito compartimentos por vez. Uma vez que todas as gaiolas estão configuradas, a configuração final está pronta. Para facilitar o transporte, pegue três peças de tubo de PVC de 0,25 polegada, faça um furo de 0,625 polegada no centro de duas peças e cole-as.Em seguida, passe um tubo de PVC de 0,625 polegadas através deles. Os copos de comida podem então ser empilhados nesta montagem. Avalie os temporizadores antes de introduzir os mouses conectando a configuração às tomadas elétricas.Coloque um pedaço de ninho em um compartimento em um horário registrado e monitore a posição do ninho seis horas depois para garantir que o temporizador gire imediatamente. Transfira o camundongo para a sala experimental e aclimate-o ao conjunto de ciclos claro-escuro, conforme descrito no manuscrito. Registre o peso do mouse antes de abrigá-lo individualmente nas gaiolas do alimentador e certifique-se de que o mouse tenha acesso ad libitum à água, roupa de cama e ninhos.Adicione 1,5 gramas de alimento a todos os oito compartimentos do copo alimentador e coloque o copo alimentador no temporizador. Em seguida, coloque a tampa no copo alimentador, de modo que apenas um compartimento fique exposto. Quatro compartimentos representam pontos diurnos e os outros quatro representam pontos noturnos.Troque os alimentos todos os dias, no mesmo horário, e conte o número de pellets restantes em cada compartimento para calcular a quantidade de alimento consumido. Monitorar o perfil alimentar por uma semana para obter um perfil alimentar basal de camundongos alimentados ad libitum e para a dieta com restrição noturna. Após três a sete dias de dieta ad libitum, coloque o rato em uma dieta de transição, reduzindo gradualmente o número de pellets nos compartimentos do dia.Monitorar a ingestão de alimentos por duas semanas após o camundongo ter se adaptado ao regime de restrição noturna. Durante este período, ajuste a quantidade de alimento dada a cada rato para melhor se adequar ao seu consumo total de alimentos. Pesar o rato no final das duas semanas para monitorizar qualquer alteração de peso devido ao regime de alimentação.Após uma semana de dieta ad libitum, calcular o consumo alimentar médio diário e a quantidade de alimentos a serem fornecidos em cada compartimento, conforme descrito no manuscrito. Consiga uma alimentação arrítmica garantindo que os ratos recebam uma quantidade igual de alimento em todos os oito compartimentos ao longo do dia. Em seguida, coloque os ratos em uma dieta de transição, reduzindo gradualmente a quantidade de comida dada por compartimento, ao longo de três a cinco dias, para abolir qualquer ritmo de ingestão de alimentos.Durante a dieta arrítmica, ajuste a comida diariamente para garantir que os ratos deixem apenas algumas pelotas para trás e obtenham a quantidade certa de alimento. Faça os ajustes descritos no manuscrito. Para monitorar qualquer mudança de peso devido ao regime de alimentação, pese o camundongo no final das duas semanas.O perfil alimentar indica que camundongos selvagens alimentados com ração normal ad libitum comem cerca de 75% de sua comida durante a noite. Camundongos alimentados com dieta rica em gordura ad libitum comeram mais alimentos nos dois primeiros dias de exposição, provavelmente por causa da novidade da dieta rica em gordura. A ingestão média diária de alimentos a cada três horas.A média e a porcentagem de ingestão alimentar durante o dia e a noite para camundongos alimentados com ração normal ou dieta hiperlipídica foram comparáveis. Camundongos machos apresentaram ganho de peso significativo após uma semana de ração normal ad libitum e dieta hiperlipídica. Os ratos que fizeram a transição para uma dieta com restrição noturna comeram suas calorias diárias totais apenas à noite, sem diminuir significativamente a ingestão de calorias nas primeiras três a cinco semanas.Os ratos que fizeram a transição para uma dieta arrítmica consumiram suas calorias diárias totais em quantidades iguais ao longo do dia, diminuindo drasticamente seu ritmo diário de ingestão de alimentos. Os camundongos apresentaram ganho de peso após o regime de restrição noturna e alimentação arrítmica. A coisa mais importante a lembrar ao usar este sistema de alimentação é garantir que os temporizadores funcionem adequadamente durante todo o experimento.Usando esse sistema de alimentação, os pesquisadores podem personalizar a entrega de alimentos de acordo com suas necessidades, o que poderia eventualmente ajudá-los a responder a perguntas sobre os efeitos de horários variados de refeições na saúde e na doença.

Research

JoVE Journal

Biology

Visualization of Caenorhabditis elegans Cuticular Structures Using the Lipophilic Vital Dye DiI

Visualization of Caenorhabditis elegans Cuticular Structures Using the Lipophilic Vital Dye DiI

Visualização de Caenorhabditis elegans Estruturas cutícula Usando o Dye lipofílicos Vital, DII

The cuticle of C. elegans is a highly resistant structure that surrounds the exterior of the animal1-4. The cuticle not only protects the animal from the ...

Biologia

Detection of Protein Interactions in Plant using a Gateway Compatible Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) System

Detection of Protein Interactions in Plant using a Gateway Compatible Bimolecular Fluorescence Complementation BiFC System

Detecção de interações proteína na planta através de um gateway de Complementação de fluorescência Compatível Bimolecular (BiFC) Sistema

We have developed a BiFC technique to test the interaction between two proteins in vivo. This is accomplished by splitting a yellow fluorescent protein ...

Evaluation of Respiratory System Mechanics in Mice using the Forced Oscillation Technique

Avaliação da mecânica respiratória em ratos usando a técnica de oscilações forçadas

The  forced oscillation technique (FOT) is a powerful, integrative and translational  tool permitting the experimental assessment of lung function in mice ...

A High-throughput Method for Measurement of Glomerular Filtration Rate in Conscious Mice

Um Método de alta capacidade para medição de Taxa de filtração glomerular em ratos conscientes

The measurement of  glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard in kidney function  assessment. Currently, investigators determine GFR by ...

Using Caenorhabditis elegans as a Model System to Study Protein Homeostasis in a Multicellular Organism

Using Caenorhabditis elegans as a Model System to Study Protein Homeostasis in a Multicellular Organism

The folding and assembly of proteins is essential for protein function, the long-term health of the cell, and longevity of the organism. Historically, the ...

Detection of Live Escherichia coli O157:H7 Cells by PMA-qPCR

Detection of Live Escherichia coli O157:H7 Cells by PMA-qPCR

Detecção de Vivo<em&gt; Escherichia coli</em&gt; O157: H7 Células por PMA-qPCR

A unique open reading frame (ORF) Z3276 was identified as a specific genetic marker for E. coli O157:H7. A qPCR assay was developed for detection of E. ...

Measuring Glutathione-induced Feeding Response in Hydra

Medindo alimentação resposta induzida por glutationa em Hydra

Hydra is among the most primitive organisms possessing a nervous system and chemosensation for detecting reduced glutathione (GSH) for capturing the prey. ...

High-fat Feeding Paradigm for Larval Zebrafish: Feeding, Live Imaging, and Quantification of Food Intake

Alto teor de gordura Alimentação Paradigma para larval Zebrafish: Alimentação, Imagens ao vivo, e quantificação da ingestão de alimentos

Zebrafish are emerging as a model of dietary lipid processing and metabolic disease. This protocol describes how to feed larval zebrafish a lipid-rich ...

A Method to Assess Bacteriocin Effects on the Gut Microbiota of Mice

Um método para avaliar os efeitos da bacteriocina na microbiota intestinal de ratos

Very intriguing questions arise with our advancing knowledge on gut microbiota composition and the relationship with health, particularly relating to the ...

Real-time In Vivo Recording of Arabidopsis Calcium Signals During Insect Feeding Using a Fluorescent Biosensor

Real-time In Vivo Recording of Arabidopsis Calcium Signals During Insect Feeding Using a Fluorescent Biosensor

Gravação em tempo real na Vivo de Arabidopsis sinais de cálcio durante a alimentação de insetos usando um biossensor fluorescente

Calcium ions are predicted to be key signaling entities during biotic interactions, with calcium signaling forming an established part of the plant ...