Name: three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments
Uploaded: 2023-02-03T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Dr. Acosta støttes af National Institutes of Health tilskud CA148724 og TL1TR002647. Dr. Gonzalez Porras støttes af National Institute of Diabetes og fordøjelses- og nyresygdomme ved National Institutes of Health under tildelingsnummer F32-0DK122754. Dette arbejde blev delvist støttet af National Institutes of Health (5SC1DK122578) og University of Texas i San Antonio Department of Biomedical Engineering. Indholdet er udelukkende forfatternes ansvar og repræsenterer ikke nødvendigvis de officielle synspunkter fra National Institutes of Health. Figurer blev delvist oprettet med Biorender.com.

Denne undersøgelse blev udført i overensstemmelse med dyrevelfærdsloven og gennemførelsesforordningerne om dyrevelfærd i overensstemmelse med principperne i vejledningen om pasning og brug af forsøgsdyr. Alle dyreforsøg blev godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee ved University of Texas i San Antonio.
BEMÆRK: Til nedenstående trin anvendes Lewis-hanrotter. Der skal foretages små protokoljusteringer for en kvindelig såvel som musemikrovaskulært fragment (MVF) samlin...

Området brun / beige fedtvævsteknik er stort set umoden 22,23,24,25,26,27,28, hvor hovedparten af fedtmodeller udvikles til hvidt fedtvæv 8,22,31. Konstrueret brunt / beige mikrovæv består typi...

Målet med denne protokol er at beskrive en tilgang til udvikling af vaskulariseret beige fedtvæv fra en enkelt, potentielt autolog kilde, mikrovaskulært fragment (MVF). Brunt og beige fedtvæv har vist sig at vise gavnlige egenskaber relateret til metabolisk regulering; Den lille mængde af disse fedtvævsdepoter hos voksne begrænser imidlertid den potentielle indvirkning på systemisk metabolisme, især ved syge tilstande som fedme eller type 2-diabetes 1,2,3,4,5,6,7. Der er betydelig interesse for brunt / beige fedt som et terapeutisk mål for forebyggelse af de skadelige metaboliske virkninger forbundet med fedme og dens comorbiditeter 8,9,10,11,12.
MVF'er er karstrukturer, der kan isoleres direkte fra fedtvæv, dyrkes og vedligeholdes i en tredimensionel konfiguration i længere perioder13,14,15. Tidligere arbejde fra vores gruppe og andre er begyndt at udnytte MVF'ernes multicellulære og multipotente kapacitet, specifikt da det vedrører dannelse af fedtvæv16,17,18. Som en opbygning af dette arbejde demonstrerede vi for nylig, at MVF'er afledt af gnavermodeller af sund og type 2-diabetes19 og fra mennesker (voksne over 50 år)20 indeholdt celler, der kunne induceres til dannelse af termogent eller beige fedtvæv.
Heri er en innovativ tilgang, hvorfra en enkelt kilde MVF anvendes, ikke kun i stand til at skabe beige fedtvæv, men også dets tilknyttede og kritiske vaskulære komponent21. Brugen af denne teknik kunne være af stor værdi for undersøgelser på udkig efter en ligetil væv-manipuleret tilgang til termogeniske fedtvæv dannelse. I modsætning til andre metoder, der stræber efter at konstruere beige fedtvæv 22,23,24,25,26,27,28, kræver processen beskrevet i denne undersøgelse ikke anvendelse af flere celletyper eller komplekse induktionsregimer. Vaskulariserede beige og hvide fedtmodeller kan oprettes med MVF'er, der stammer fra gnavere og menneskelige kilder, hvilket viser et stort oversættelsespotentiale. Slutproduktet af denne protokol er en konstrueret beige termogeniske fedtvæv med en struktur og metabolisk funktion kan sammenlignes med brunt fedtvæv. Samlet set præsenterer denne protokol ideen om, at en let tilgængelig og muligvis autolog kilde MVF kan være en værdifuld terapeutisk intervention og værktøj til at studere metaboliske lidelser.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aminocaproic Acid</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2504-100G</td>
			<td>Added in DMEM at the concentration of 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt-Tipped Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-172</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovin Serum Albumin (BSA)</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>126575-10GM</td>
			<td>Diluted in PBS to 4 mg/mL and 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type 1</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9633623</td>
			<td>Diluted to 6 mg/mL in BSA 4 mg/mL, Digestion of minced fat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AC230302500</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 2 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable underpads</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>23-666-062</td>
			<td>For fluid absorption during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>08-951-5</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium (DMEM)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>11885092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham (DMEM/F12)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D8062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>16140089</td>
			<td>Added in DMEM to 20% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibrinogen&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8630-25G</td>
			<td>Solubilized in DMEM at the concentration of 20 mg/mL, Protein found in blood plasma and main component of hydrogel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flask, 250 mL</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>FB500250</td>
			<td>Allows for digestion of fat using a large surface area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-264-21</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For handling of tissue and filters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forskolin</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F6886</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human MVF</td>
			<td>Advanced Solutions Life Scienes, LLC</td>
			<td>https://www.advancedsolutions.com/microvessels</td>
			<td>Human MVFs (hMVFs) isolated from three different patients (52-, 54-, and 56-year old females) were used in the current study.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indomethacine&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I7378</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 12.5 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin from porcine pancreas</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I5523</td>
			<td>Diluted in 0.01 N HCl at a 5 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MycoZap</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9023832</td>
			<td>Added in DMEM to 0.2% w/v, Mycoplasma Prophylactic&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pennycilin/Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Added in DMEM to 1% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (100 mm x 15 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>351029</td>
			<td>3 for removal of blood vessels and mincing, 8 (lid) for presoaking of screens &#38; 8 (dish) for use when filtering with 500 or 37 &#181;M screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (35 mm x 10 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-202-036</td>
			<td>For counting fragments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>14-190-250</td>
			<td>Diluted to 1x with sterile deionized water.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Clippers (Andwin Mini Arco Pet Trimmer)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC0854141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rosiglitazone</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>R0106200MG</td>
			<td>Diluted in DMSO at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14059-11</td>
			<td>1 for initial incision, 1 for epididymal incision, 1 for tip clipping</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen&#160; 37 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222R</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Fragment entrapment and removal of very small fragments/single cells and debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen 500 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222F</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Removes larger fragments/debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serrated Hemostat</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-171</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For clamping of skin before incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steriflip Filter 0.22 &#956;m&#160;</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SE1M179M6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thrombin</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>6051601KU</td>
			<td>Diluted in deionzed water to 10 U/mL, Used as a clotting agent turning fibrinogen to fibrin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thyroid hormone (T3)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T2877</td>
			<td>Diluted in 1N NaOH at a 0.02 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zucker diabetic fatty (ZDF) rats - obese (FA/FA) or lean (FA/+) male&#160;</td>
			<td>Charles River</td>
			<td>https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-lean-fa?region=3611 
			https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-obese?region=3611</td>
			<td>Obtained from Charles River (Wilmington, MA). Rats were acquired at 4 weeks of age and fed Purina 5008 until euthanasia (15-19 weeks of age). Glucose levels (blood from the lateral saphenous vein) were greater than 300 mg/dL in all FA/FA rats used in the study. All animals were housed in a temperature-controlled environment with a 12-h light-dark cycle and fed ad libitum.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments

Engineering termogeniske fedtvæv (fx beige eller brune fedtvæv) er blevet undersøgt som en potentiel terapi for metaboliske sygdomme eller for design af personlige mikrovæv til sundhedsscreening og lægemiddeltestning. Nuværende strategier er ofte ret komplekse og undlader nøjagtigt fuldt ud at skildre de multicellulære og funktionelle egenskaber af termogeniske fedtvæv. Mikrovaskulære fragmenter, små intakte mikrokar bestående af arteriol, venuler og kapillærer isoleret fra fedtvæv, tjener som en enkelt autolog kilde til celler, der muliggør vaskularisering og dannelse af fedtvæv. Denne artikel beskriver metoder til optimering af dyrkningsbetingelser for at muliggøre generering af tredimensionelle, vaskulariserede og funktionelle termogeniske fedtvæv fra mikrovaskulære fragmenter, herunder protokoller til isolering af mikrovaskulære fragmenter fra fedtvæv og dyrkningsbetingelser. Derudover diskuteres bedste praksis, ligesom teknikker til karakterisering af de konstruerede væv, og prøveresultater fra både gnavere og humane mikrovaskulære fragmenter tilvejebringes. Denne tilgang har potentiale til at blive brugt til forståelse og udvikling af behandlinger for fedme og metabolisk sygdom.

Der er et par vigtige fænotypiske morfologiske egenskaber ved beige / brunt fedtvæv: det er multilokulært / indeholder små lipiddråber, besidder et stort antal mitokondrier (årsagen til dets karakteristiske "brunlige" udseende in vivo), har tilsvarende en høj iltforbrugshastighed / mitokondriel bioenergetik, er stærkt vaskulariseret, har øget lipolyse / insulinstimuleret glukoseoptagelse og mest berygtet udtrykker høje niveauer af afkoblingsprotein 1 (UCP1), et mitokondrieprotein involveret i termogen...

Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments

Her præsenterer vi en detaljeret protokol, der skitserer brugen af mikrovaskulære fragmenter isoleret fra gnaver- eller humant fedtvæv som en ligetil tilgang til at konstruere funktionelt, vaskulariseret beige fedtvæv.

Tredimensionel kultur af vaskulariseret termogenisk fedtvæv fra mikrovaskulære fragmenter

Engineering thermogenic adipose tissue (e.g., beige or brown adipose tissues) has been investigated as a potential therapy for metabolic diseases or for ...

Denne protokol beskriver dannelsen af tredimensionelt vaskulariseret og funktionelt termogenisk fedt fra mikrovaskulære fragmenter eller MVF'er. Nuværende strategier for engineering termogeniske fedtvæv er komplekse og skildrer ikke fuldt ud dets multicellulære og funktionelle egenskaber. MVF'er er en enkelt kilde til celler, der muliggør vaskularisering og dannelse af fedtvæv.Da MVF'er er en simpel eneste kildemetode til at skabe biologiske efterligninger af beige fedt, har MVF'er et betydeligt potentiale for at fremme forståelsen eller udviklingen af behandlinger for fedme og metabolisk sygdom. Placer det passende barberede og aflivede dyr behandlet med 70% ethanol i liggende stilling og begynd isolering af lyskefedtet. Løft huden under penis med en saks og udfør snittet, start i midten og skær sideværts og danner en V-form, før du løber til dyrets bagside for at få adgang til hele fedtindskuddet.Under skæring skal du sikre adskillelsen af huden fra fedtet ved at skære det sammenkoblede fasciavæv. Når fascia er korrekt skåret, skal du sikre dig, at lyskefedtet fra begge sider, der strækker sig fra lysken mod ryggen, er synligt. Fjern derefter fedtet fra de to sider i separate koniske rør indeholdende 10 ml BSA i PBS, der har en koncentration på et milligram pr. Milliliter.For at høste det epididymale fedt skal du skære gennem mavehuden efterfulgt af omhyggeligt at skære gennem det tynde lag, der omgiver testiklerne. Træk forsigtigt fedtvævet ved hjælp af tang og skær det ud ved hjælp af en saks, samtidig med at du undgår dissektion af større synlige blodkar. Placer nu det fjernede fedt i et 50 milliliter konisk rør indeholdende 10 ml af et milligram pr. milliliter BSA i PBS.For at isolere det bageste subkutane fedt skal du dreje rotten udsat og bruge en stor saks til at skære den tykke hud på ryggen helt op til hovedbunden, og pas på ikke at skære for dybt under huden. Skær fasciaen, der forbinder huden med vævet. Differentier det subkutane fedt, der ligger i det intrascapulære område, fra det brune fedt placeret tættere på rygsøjlen, før du isolerer og placerer det subkutane fedt i et 50 ml konisk rør indeholdende 10 ml af et milligram pr. milliliter BSA i PBS.Mens du arbejder inde i en biohood, skal du bruge tang til at placere det udskårne fedt i en standard 100 ml petriskål, der indeholder 0,5 ml af et milligram pr. milliliter BSA i PBS. Fjern eventuelle synlige blodkar, muskler eller fremmed væv fra fedtet. Brug en saks til at hakke fedtet i 10 minutter og kontroller for klumper ved at tilføje lidt mere BSA.Fortsæt om nødvendigt med at hakke, inden hakket fedtsuspension overføres til en steril 250 ml kolbe med en 10 ml pipette. Volumenet i kolben gøres op til 20 ml ved at tilsætte nok BSA i PBS. Tilsæt nu BSA i PBS til collagenase, og homogeniser opløsningen ved at ryste den forsigtigt, før den filtreres sterilt gennem et 0,22 mikron nylonnetfilter.Tilsæt straks den nødvendige mængde kollagenaseopløsning til hakket fedtsuspension, og fordøje fedtet ved at ryste kolben i en cirkulær bevægelse i et vandbad ved 37 grader Celsius i den passende tid. Overfør det fordøjede fedt til et 50 ml konisk rør mærket fordøjet fedt eller hakket fedt. Centrifuger røret ved 400 G i fire minutter for at spinde de mikrovaskulære fragmenter eller MVF'er ned i en rød pellet.Supernatanten dekanteres forsigtigt i et 50 ml konisk rør mærket affald uden at forstyrre pelleten. Derefter tilsættes 10 ml milligram pr. milliliter BSA i PBS til røret, der indeholder pelleten, og blandes pelletsuspensionen ved forsigtigt at pipettere den op og ned to gange uden at forstyrre fragmenterne. Tag nu 500 mikron skærmen gennemblødt i en steril petriskål, der indeholder fem milliliter milligram milligram pr. milliliter BSA i PBS, og læg den over plastikskærmholderen, der opbevares på en ny petriskål.Pipette 10 ml suspension fra det fordøjede pillerør på skærmen i koncentriske cirkler. Filteret vaskes med yderligere fem ml af et milligram pr. milliliter BSA i PBS og kasseres det, mens filtratet bevares inde i petriskålen. Placer derefter den gennemblødte 37 mikron skærm over plastikholderen på en ny petriskål.Brug en frisk pipette til at overføre filtratet fra den første filtrering til skærmen i koncentriske cirkler. Som tidligere beskrevet skal du vaske skærmen med BSA i PBS, og denne gang kasseres filtratet, mens du beholder 37-mikron-skærmen. Skub 37-mikron skærmen ind i en ny petriskål, der indeholder fem milliliter et milligram pr. milliliter BSA i PBS.Løsn fragmenterne ved forsigtigt at banke fadet mod en konisk holder uden at spilde væske. Skyl filteret med yderligere fem ml BSA i PBS. Overfør derefter væsken fra petriskålen til et sterilt 50 ml konisk rør.Skyl 37 mikron skærmen flere gange, tilsæt vasken til det koniske rør, indtil det samlede indsamlede volumen er 15 til 20 ml. Kassér skærmen efter den sidste skylning. Klip enden af en 20 mikroliter pipettespids ved hjælp af en saks.Ryst forsigtigt røret med væsken, før du trækker to delprøver på 20 mikroliter ved hjælp af den skårne pipettespids, og pipetter hver af alikvoterne i en ren 35 millimeter petriskål. Antallet af fragmenter i prøven i hver petriskål tælles ved hjælp af et standard lysmikroskop, og ved hjælp af formlen nævnt i manuskriptet opnås det samlede antal isolerede mikrovaskulære fragmenter. Drej den resterende væske i det 50 ml koniske rør ved 400 G i fire minutter for at opsamle MVF.Efter centrifugering dekanteres det meste af supernatanten fra det koniske rør, og den lille mængde væske, der er tilbage på rørets kant, fjernes med en pipette. Derefter tilsættes thrombin i brøndene, der er udpeget til støbning af geler. Skær enden af en 200 mikroliter pipettespids, og brug den til forsigtigt at resuspendere MVF'erne i fibrinogen for at opnå den ønskede slutdensitet.Suspensionen pipetteres i trombinopløsningen i brønden, og blandingen homogeniseres hurtigt ved pipettering op og ned. Når alle gelerne er støbt, placeres brøndpladen i en inkubator ved 37 grader Celsius og 5% kuldioxid i ca. 15 minutter for at muliggøre geltværbinding. Lipiderne og de differentierede adipocytter blev observeret ved konfokal mikroskopibilleddannelse af hydrogelerne ved anvendelse af BODIPY som lipidplet.Dyrkning af ikke-vaskulariseret fedtvæv ved hjælp af hvide adipogene eller beige adipogene medier resulterede i dannelsen af ikke-vaskulariseret hvidt eller beige fedtvæv, henholdsvis fra både magert såvel som diabetisk gnaverafledt MVF'er. Tilsvarende resulterede dyrkning af vaskulariseret fedtvæv ved anvendelse af hvide adipogene eller beige adipogene medier i dannelsen af henholdsvis vaskulariseret hvidt eller beige fedtvæv fra de gnaverafledte MVF'er. Ikke-vaskulariseret hvidt og beige fedtvæv opnået fra humane MVF'er blev også observeret ved konfokal mikroskopi.MVF'ernes evne til at differentiere sig til beige fedtvæv blev genetisk bekræftet ved anvendelse af RT-qPCR. Magre og diabetiske Gnaver-MVF'er udsat for direkte hvide adipogene eller beige adipogene medier blev evalueret for adipogenese, termogenese og angiogenese. Ekspressionen af afkoblingsprotein 1 som forventet var signifikant højere i beige adipogent væv.En lignende tendens blev observeret hos MVF'er hos gnavere udsat for indirekte hvide adipogene eller beige adipogene medier såvel som hos humane MVF'er udsat for direkte hvide adipogene eller beige adipogene medier. Endelig var det fra mitokondriel bioenergetik tydeligt, at det beige fedtvæv funktionelt havde karakteristisk højere iltforbrugshastighed eller OCR-niveau i alle tilfælde. Den enzymatiske fordøjelse af fedtvævet bør optimeres til konsekvent at reproducere MVF'er af samme størrelse og kvalitet.Efter fordøjelsen skal MVF'er håndteres forsigtigt med særlig omhu for at undgå yderligere nedbrydning af fragmenterne. Denne teknik bidrog til at fremme balancen mellem karvækst og adipocytdifferentiering, hvilket viste sig at være afhængigt af de indførte faktorer.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer deaths in women and has a 63% mortality rate in the United States1. The cell type of origin for ...

Planar and Three-Dimensional Printing of Conductive Inks

Planar-og tredimensionelle Udskrivning af ledende blæk

Printed electronics rely on low-cost, large-area fabrication routes to create flexible or multidimensional electronic, optoelectronic, and biomedical ...

Three-dimensional Cell Culture Model for Measuring the Effects of Interstitial Fluid Flow on Tumor Cell Invasion

Tredimensional Cell Culture Model for måling af virkningerne af interstitielvæske Flow på tumorcelleinvasion

The growth and progression of most solid tumors depend on the initial transformation of the cancer cells and their response to stroma-associated signaling ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Menneskelige bruskvæv Fabrication Brug Tre-dimensionel Inkjet Printing Technology

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

Analysis of Cell Migration within a Three-dimensional Collagen Matrix

Analyse af Cell Migration inden for en tre-dimensionel kollagenmatrix

The ability to migrate is a hallmark of various cell types and plays a crucial role in several physiological processes, including&#160;embryonic ...

Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding

Generation af en tre-dimensionel fuld tykkelse Skin Equivalent og Automated Anskydning

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models ...

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Poly(ethylene glycol) Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Polyethylene glycol Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrikation af Inverted Kolloid Crystal Poly (ethylenglycol) Stillads: En Tre-dimensionel Cell Culture Platform for levervæv Engineering

The ability to maintain hepatocyte function in vitro, for the purpose of testing xenobiotics&#39; cytotoxicity, studying virus infection and developing ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Isolering af murine fedtvæv-afledte mikrovaskulær Fragmenter som Vaskularisering Enheder til Tissue Engineering

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Three-dimensional Tissue Engineered Aligned Astrocyte Networks to Recapitulate Developmental Mechanisms and Facilitate Nervous System Regeneration

Tre-dimensionelle Tissue Engineering justeret Astrocyte netværk for at sammenfatte udviklingsmæssige mekanismer og lette nervesystem regenerering

Neurotrauma and neurodegenerative disease often result in lasting neurological deficits due to the limited capacity of the central nervous system (CNS) to ...