Name: three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments
Uploaded: 2023-02-03T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Dr. Acosta støttes av National Institutes of Health tilskudd CA148724 og TL1TR002647. Dr. Gonzalez Porras støttes av National Institute of Diabetes og fordøyelses- og nyresykdommer ved National Institutes of Health, under prisnummer F32-0DK122754. Dette arbeidet ble delvis støttet av National Institutes of Health (5SC1DK122578) og University of Texas i San Antonio Department of Biomedical Engineering. Innholdet er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til National Institutes of Health. Figurene ble delvis laget med Biorender.com.

Denne studien ble gjennomført i henhold til dyrevelferdsloven og gjennomføringsforskriften for dyrevelferd i henhold til prinsippene i veilederen for stell og bruk av forsøksdyr. Alle dyreprosedyrer ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved University of Texas i San Antonio.
MERK: For trinnene beskrevet nedenfor brukes mannlige Lewis-rotter. Små protokolljusteringer må gjøres for en kvinnelig, så vel som musens mikrovaskulære fragmentsamling (MVF)<sup class="xref"...

Feltet brun/beige fettvevsteknikk er stort sett umodent 22,23,24,25,26,27,28, med hovedtyngden av fettmodeller utviklet for hvitt fettvev 8,22,31. Konstruerte brune / beige mikrovev består vanligvi...

Målet med denne protokollen er å beskrive en tilnærming for å utvikle vaskularisert beige fettvev fra en enkelt, potensielt autolog kilde, mikrovaskulært fragment (MVF). Brunt og beige fettvev har vist seg å vise fordelaktige egenskaper knyttet til metabolsk regulering; Det lille volumet av disse fettvevsdepotene hos voksne begrenser imidlertid den potensielle effekten på systemisk metabolisme, spesielt ved syke tilstander som fedme eller type 2 diabetes 1,2,3,4,5,6,7. Det er betydelig interesse for brunt/beige fett som terapeutisk mål for å forebygge skadelige metabolske effekter knyttet til fedme og dets komorbiditeter 8,9,10,11,12.
MVFer er fartøystrukturer som kan isoleres direkte fra fettvev, dyrkes og opprettholdes i en tredimensjonal konfigurasjon i lengre perioder13,14,15. Tidligere arbeid fra vår gruppe, og andre, har begynt å utnytte den multicellulære og multipotente kapasiteten til MVFer, spesielt når det gjelder fettvevdannelse16,17,18. Som en oppbygging av dette arbeidet demonstrerte vi nylig at MVFer avledet fra gnagermodeller av sunn og type 2 diabetes19 og fra mennesker (voksne over 50 år)20 inneholdt celler som kunne induseres til å danne termogent eller beige fettvev.
Her er en innovativ tilnærming hvorfra en enkelt kilde MVF benyttes, ikke bare i stand til å skape beige fettvev, men også den tilhørende og kritiske vaskulære komponenten21. Bruken av denne teknikken kan være av stor verdi for studier som leter etter en enkel vevskonstruert tilnærming for termogen fettvevdannelse. I motsetning til andre metoder som aspirerer til å konstruere beige fettvev 22,23,24,25,26,27,28, krever prosessen beskrevet i denne studien ikke bruk av flere celletyper eller komplekse induksjonsregimer. Vaskulariserte beige og hvite fettmodeller kan opprettes med MVF-er som stammer fra gnagere og menneskelige kilder, noe som viser stort oversettelsespotensial. Sluttproduktet av denne protokollen er et konstruert beige termogent fettvev med en struktur og metabolsk funksjon som kan sammenlignes med brunt fettvev. Samlet sett presenterer denne protokollen ideen om at en lett tilgjengelig og muligens autolog kilde MVF kan være et verdifullt terapeutisk inngrep og verktøy for å studere metabolske forstyrrelser.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aminocaproic Acid</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2504-100G</td>
			<td>Added in DMEM at the concentration of 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt-Tipped Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-172</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovin Serum Albumin (BSA)</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>126575-10GM</td>
			<td>Diluted in PBS to 4 mg/mL and 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type 1</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9633623</td>
			<td>Diluted to 6 mg/mL in BSA 4 mg/mL, Digestion of minced fat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AC230302500</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 2 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable underpads</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>23-666-062</td>
			<td>For fluid absorption during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>08-951-5</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium (DMEM)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>11885092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham (DMEM/F12)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D8062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>16140089</td>
			<td>Added in DMEM to 20% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibrinogen&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8630-25G</td>
			<td>Solubilized in DMEM at the concentration of 20 mg/mL, Protein found in blood plasma and main component of hydrogel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flask, 250 mL</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>FB500250</td>
			<td>Allows for digestion of fat using a large surface area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-264-21</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For handling of tissue and filters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forskolin</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F6886</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human MVF</td>
			<td>Advanced Solutions Life Scienes, LLC</td>
			<td>https://www.advancedsolutions.com/microvessels</td>
			<td>Human MVFs (hMVFs) isolated from three different patients (52-, 54-, and 56-year old females) were used in the current study.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indomethacine&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I7378</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 12.5 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin from porcine pancreas</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I5523</td>
			<td>Diluted in 0.01 N HCl at a 5 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MycoZap</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9023832</td>
			<td>Added in DMEM to 0.2% w/v, Mycoplasma Prophylactic&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pennycilin/Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Added in DMEM to 1% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (100 mm x 15 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>351029</td>
			<td>3 for removal of blood vessels and mincing, 8 (lid) for presoaking of screens &#38; 8 (dish) for use when filtering with 500 or 37 &#181;M screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (35 mm x 10 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-202-036</td>
			<td>For counting fragments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>14-190-250</td>
			<td>Diluted to 1x with sterile deionized water.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Clippers (Andwin Mini Arco Pet Trimmer)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC0854141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rosiglitazone</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>R0106200MG</td>
			<td>Diluted in DMSO at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14059-11</td>
			<td>1 for initial incision, 1 for epididymal incision, 1 for tip clipping</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen&#160; 37 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222R</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Fragment entrapment and removal of very small fragments/single cells and debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen 500 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222F</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Removes larger fragments/debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serrated Hemostat</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-171</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For clamping of skin before incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steriflip Filter 0.22 &#956;m&#160;</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SE1M179M6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thrombin</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>6051601KU</td>
			<td>Diluted in deionzed water to 10 U/mL, Used as a clotting agent turning fibrinogen to fibrin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thyroid hormone (T3)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T2877</td>
			<td>Diluted in 1N NaOH at a 0.02 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zucker diabetic fatty (ZDF) rats - obese (FA/FA) or lean (FA/+) male&#160;</td>
			<td>Charles River</td>
			<td>https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-lean-fa?region=3611 
			https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-obese?region=3611</td>
			<td>Obtained from Charles River (Wilmington, MA). Rats were acquired at 4 weeks of age and fed Purina 5008 until euthanasia (15-19 weeks of age). Glucose levels (blood from the lateral saphenous vein) were greater than 300 mg/dL in all FA/FA rats used in the study. All animals were housed in a temperature-controlled environment with a 12-h light-dark cycle and fed ad libitum.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments

Engineering termogenic fettvev (f.eks beige eller brunt fettvev) har blitt undersøkt som en potensiell terapi for metabolske sykdommer eller for utforming av personlige mikrovev for helse screening og narkotika testing. Nåværende strategier er ofte ganske komplekse og klarer ikke å nøyaktig skildre de multicellulære og funksjonelle egenskapene til termogent fettvev. Mikrovaskulære fragmenter, små intakte mikrofartøyer som består av arteriol, venuler og kapillærer isolert fra fettvev, tjener som en enkelt autolog kilde til celler som muliggjør vaskularisering og fettvevdannelse. Denne artikkelen beskriver metoder for å optimalisere kulturforhold for å muliggjøre generering av tredimensjonale, vaskulariserte og funksjonelle termogene fettvev fra mikrovaskulære fragmenter, inkludert protokoller for isolering av mikrovaskulære fragmenter fra fettvev og kulturforhold. I tillegg diskuteres beste praksis, som er teknikker for å karakterisere de konstruerte vevene, og prøveresultater fra både gnagere og humane mikrovaskulære fragmenter er gitt. Denne tilnærmingen har potensial til å bli utnyttet for forståelse og utvikling av behandlinger for fedme og metabolsk sykdom.

Det er noen viktige fenotypiske morfologiske egenskaper ved beige/brunt fettvev: det er multilokulært / inneholder små lipiddråper, har et stort antall mitokondrier (årsaken til det karakteristiske "brunlige" utseendet in vivo), har tilsvarende høyt oksygenforbruk / mitokondriell bioenergetikk, er sterkt vaskularisert, har økt lipolyse / insulinstimulert glukoseopptak, og mest notorisk, uttrykker høye nivåer av frakoblingsprotein 1 (UCP1), et mitokondrielt protein involvert i termogen respirasjon<sup cl...

Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments

Her presenterer vi en detaljert protokoll som beskriver bruken av mikrovaskulære fragmenter isolert fra gnagere eller humant fettvev som en enkel tilnærming til å konstruere funksjonelt, vaskularisert beige fettvev.

Tredimensjonal kultur av vaskularisert termogent fettvev fra mikrovaskulære fragmenter

Engineering thermogenic adipose tissue (e.g., beige or brown adipose tissues) has been investigated as a potential therapy for metabolic diseases or for ...

Denne protokollen beskriver genereringen av tredimensjonalt vaskularisert og funksjonelt termogent fett fra mikrovaskulære fragmenter, eller MVFer. Nåværende strategier for prosjektering av termogent fettvev er komplekse og skildrer ikke fullt ut dets multicellulære og funksjonelle egenskaper. MVFer er en enkelt kilde til celler som muliggjør vaskularisering og fettvevdannelse.Å være en enkel eneste kildemetode for å skape biologiske imitasjoner av beige fett, har MVFs betydelig potensial for å fremme forståelsen eller utviklingen av behandlinger for fedme og metabolsk sykdom. Plasser det passende barberte og avlivede dyret behandlet med 70% etanol i liggende stilling og begynn isolering av lyskefettet. Løft huden under penis med en saks og utfør snittet, start i midten og kutt sideveis, danner en V-form, før du sløyfer til dyrets bakside for å få tilgang til hele fettavsetningen.Mens du skjærer, må du sørge for separasjon av huden fra fettet ved å kutte det sammenkoblede fasciavevet. Når fascia er riktig kuttet, sørg for at inngangsfettet fra begge sider, som strekker seg fra lysken mot baksiden, er synlig. Fjern deretter fettet fra de to sidene i separate koniske rør som inneholder 10 ml BSA i PBS, med en konsentrasjon på ett milligram per milliliter.For å høste det epididymale fettet, kutt gjennom bukhuden, etterfulgt av forsiktig å kutte gjennom det tynne laget som omgir testiklene. Trekk forsiktig fettvevet med tang og klipp det ut med saks, samtidig som du unngår disseksjon av store synlige blodkar. Plasser nå det fjernede fettet i et 50 milliliter konisk rør som inneholder 10 milliliter ett milligram per milliliter BSA i PBS.For å isolere det bakre subkutane fettet, snu rotten utsatt og bruk stor saks for å kutte den tykke huden på ryggen helt opp til hodebunnen, pass på at du ikke kutter for dypt under huden. Klipp fascia som forbinder huden til vevet. Differensiere det subkutane fettet, som ligger i det intrascapulære området, fra det brune fettet som ligger nærmere ryggraden før du isolerer og plasserer det subkutane fettet i et 50 milliliter konisk rør inneholdende 10 ml ett milligram per milliliter BSA i PBS.Mens du arbeider inne i en biohood, bruk tang for å plassere det utskårne fettet i en standard 100 milliliter petriskål som inneholder 0,5 milliliter ett milligram per milliliter BSA i PBS. Fjern eventuelle synlige blodkar, muskler eller fremmed vev fra fettet. Bruk saks, hakk fettet i 10 minutter og sjekk for klumper ved å legge til litt mer BSA.Fortsett å hakke, om nødvendig, før du overfører hakket fettsuspensjon til en steril 250 milliliter kolbe med en 10 milliliter pipette. Gjør volumet i kolben opptil 20 milliliter ved å legge til nok BSA i PBS. Legg nå BSA i PBS til kollagenase, og homogeniser løsningen ved å riste den forsiktig før du filtrerer den steril gjennom et 0,22-mikron nylonnettfilter.Tilsett umiddelbart den nødvendige mengden kollagenaseoppløsning til hakket fettsuspensjon, og fordøy fettet ved å riste kolben i en sirkulær bevegelse i et vannbad ved 37 grader Celsius i riktig tid. Overfør det fordøyde fettet til et 50 milliliter konisk rør merket fordøyd fett eller hakket fett. Sentrifuger røret ved 400 G i fire minutter for å spinne ned de mikrovaskulære fragmentene, eller MVFene, til en rød pellet.Dekanter supernatanten forsiktig inn i et 50 milliliter konisk rør merket avfall uten å forstyrre pelleten. Deretter tilsettes 10 ml av en milligram per milliliter BSA i PBS til røret som inneholder pelleten, og bland pelletssuspensjonen ved å pipette den forsiktig opp og ned to ganger uten å forstyrre fragmentene. Ta nå 500-mikron skjermen som er gjennomvåt i en steril petriskål som inneholder fem milliliter ett milligram per milliliter BSA i PBS og legg den over plastskjermholderen som er oppbevart på en ny petriskål.Pipett 10 ml suspensjon fra fordøyd pelletsrør på skjermen i konsentriske sirkler. Vask filteret med ytterligere fem milliliter av en milligram per milliliter BSA i PBS og kast det, mens du beholder filtratet inne i petriskålen. Plasser deretter den forsugede 37-mikronskjermen over plastskjermholderen på en ny petriskål.Bruk en ny pipette til å overføre filtratet fra den første filtreringen til skjermen i konsentriske sirkler. Som beskrevet tidligere, vask skjermen med BSA i PBS, og denne gangen kaster du filtratet mens du beholder 37-mikronskjermen. Skyv 37-mikron skjermen inn i en ny petriskål som inneholder fem milliliter ett milligram per milliliter BSA i PBS.Fjern fragmentene ved å banke fatet forsiktig mot en konisk holder, uten å søle væske. Skyll filteret med ytterligere fem milliliter BSA i PBS. Deretter overfører væsken fra petriskålen til et sterilt 50 milliliter konisk rør.Skyll 37-mikronskjermen flere ganger, og legg vasken til det koniske røret til det totale oppsamlede volumet er 15 til 20 milliliter. Kast skjermen etter siste skylling. Klipp enden av en 20 mikroliters pipettespiss med en saks.Rist forsiktig røret som inneholder væsken før du trekker to alikoter på 20 mikroliter ved hjelp av den kuttede pipettespissen, og pipett hver av alikotene til en ren 35 millimeter petriskål. Tell antall fragmenter i prøven i hver petriskål ved hjelp av et standard lysmikroskop, og bruk formelen nevnt i manuskriptet, oppnå totalt antall isolerte mikrovaskulære fragmenter. Spinn den gjenværende væsken i 50 milliliter konisk rør ved 400 G i fire minutter for å samle MVF.Etter spinning, dekanter det meste av supernatanten fra det koniske røret og bruk en pipette for å fjerne det lille volumet av væske som er igjen på randen av røret. Deretter tilsettes trombin i brønnene som er utpekt for støping av geler. Klipp enden av en 200 mikroliters pipettespiss, og bruk den til å resuspendere MVF-ene forsiktig i fibrinogen for å oppnå ønsket slutttetthet.Pipett suspensjonen i trombinoppløsningen i brønnen og homogeniser blandingen raskt ved å pipettere opp og ned. Når alle gelene er støpt, plasser brønnplaten i en inkubator ved 37 grader Celsius og 5% karbondioksid i ca. 15 minutter for å tillate gel-tverrbinding. Lipidene og de differensierte adipocytter ble observert ved konfokal mikroskopiavbildning av hydrogelene med BODIPY som lipidflekk.Dyrking av ikke-vaskularisert fettvev ved bruk av hvite adipogene eller beige adipogene medier resulterte i dannelse av henholdsvis ikke-vaskularisert hvitt eller beige fettvev fra både magert og diabetisk gnageravledet MVF. På samme måte resulterte dyrking av vaskularisert fettvev ved bruk av hvitt adipogent eller beige adipogent medium i dannelsen av henholdsvis vaskularisert hvitt eller beige fettvev fra gnageravledede MVFer. Ikke-vaskularisert hvitt og beige fettvev oppnådd fra humane MVFer ble også observert ved konfokal mikroskopi.MVFs evne til å differensiere til beige fettvev ble genetisk bekreftet ved bruk av RT-qPCR. Magre og diabetikere MVFer med gnagere eksponert for direkte hvite adipogene eller beige adipogene medier ble evaluert for adipogenese, termogenese og angiogenese. Ekspresjonen av frakoblingsprotein 1, som forventet, var signifikant høyere i beige adipogent vev.En lignende trend ble observert hos gnager-MVFer eksponert for indirekte hvite adipogene eller beige adipogene medier, så vel som i humane MVFer eksponert for direkte hvite adipogene eller beige adipogene medier. Til slutt, fra mitokondriell bioenergetikk, var det tydelig at funksjonelt hadde det beige fettvevet karakteristisk høyere oksygenforbruk, eller OCR, nivå i alle tilfeller. Den enzymatiske fordøyelsen av fettvevet bør optimaliseres for konsekvent å reprodusere MVFer av tilsvarende størrelse og kvalitet.Etter fordøyelsen bør MVFer håndteres forsiktig, med spesiell forsiktighet for å unngå ytterligere oppbrytning av fragmentene. Denne teknikken bidro til å fremme balansen mellom karvekst og adipocytdifferensiering, som viste seg å være avhengig av faktorene som ble introdusert.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer deaths in women and has a 63% mortality rate in the United States1. The cell type of origin for ...

Planar and Three-Dimensional Printing of Conductive Inks

Planar og tredimensjonale Trykking av Conductive blekk

Printed electronics rely on low-cost, large-area fabrication routes to create flexible or multidimensional electronic, optoelectronic, and biomedical ...

Three-dimensional Cell Culture Model for Measuring the Effects of Interstitial Fluid Flow on Tumor Cell Invasion

Tredimensjonal Cell Kultur Modell for å måle effekten av interstitiell væske Flow på Tumor Cell Invasion

The growth and progression of most solid tumors depend on the initial transformation of the cancer cells and their response to stroma-associated signaling ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Menneskelig bruskvev Fabrication Bruke Tredimensjonal Inkjet Printing Technology

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

Analysis of Cell Migration within a Three-dimensional Collagen Matrix

Analyse av celle migrasjon innenfor en tre-dimensjonal Kollagen Matrix

The ability to migrate is a hallmark of various cell types and plays a crucial role in several physiological processes, including&#160;embryonic ...

Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding

Generering av en Tredimensjonal Full Tykkelse hudekvivalent og Automated såret

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models ...

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Poly(ethylene glycol) Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Polyethylene glycol Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrikasjon av invertert Kolloidalt Crystal Poly (etylenglykol) Stillas: En Tredimensjonal Cell Culture plattform for Liver Tissue Engineering

The ability to maintain hepatocyte function in vitro, for the purpose of testing xenobiotics&#39; cytotoxicity, studying virus infection and developing ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Isolering av Murine fettvev-avledet mikrovaskulær Fragmenter som vaskularisering Enheter for Tissue Engineering

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Three-dimensional Tissue Engineered Aligned Astrocyte Networks to Recapitulate Developmental Mechanisms and Facilitate Nervous System Regeneration

Tredimensjonale vev utvikling justert astrocytter nettverk å Recapitulate utviklingsmessige mekanismer og tilrettelegge nervesystemet gjenfødelse

Neurotrauma and neurodegenerative disease often result in lasting neurological deficits due to the limited capacity of the central nervous system (CNS) to ...