Name: three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments
Uploaded: 2023-02-03T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Доктор Акоста поддерживается грантами Национального института здравоохранения CA148724 и TL1TR002647. Доктор Гонсалес Поррас поддерживается Национальным институтом диабета, болезней органов пищеварения и почек Национального института здравоохранения под номером F32-0DK122754. Эта работа была частично поддержана Национальными институтами здравоохранения (5SC1DK122578) и Техасским университетом в Сан-Антонио. Содержание является исключительной ответственностью авторов и не обязательно отражает официальную точку зрения Национальных институтов здравоохранения. Фигуры были частично созданы с помощью Biorender.com.

Это исследование было проведено в соответствии с Законом о благополучии животных и Положениями о благополучии животных в соответствии с принципами Руководства по уходу за лабораторными животными и их использованию. Все процедуры для животных были одобрены Институциональным комитет?...

Область коричнево-бежевой жировой тканевой инженерии в значительной степени незрелая 22,23,24,25,26,27,28, при этом основная часть жировых моделей разрабатывается для белой жировой ткани 8,22,31</su...

Целью этого протокола является описание подхода к развитию васкуляризированной бежевой жировой ткани из одного, потенциально аутологичного источника, микрососудистого фрагмента (MVF). Было продемонстрировано, что коричневые и бежевые жировые ткани проявляют полезные свойства, связанные с метаболической регуляцией; Однако небольшой объем этих депо жировой ткани у взрослых ограничивает потенциальное влияние на системный метаболизм, особенно при таких болезненных состояниях, как ожирение или диабет 2 типа 1,2,3,4,5,6,7. Существует значительный интерес к коричнево-бежевому жиру как терапевтической мишени для предотвращения вредных метаболических эффектов, связанных с ожирением и сопутствующими заболеваниями 8,9,10,11,12.
MVF представляют собой сосудистые структуры, которые могут быть непосредственно изолированы от жировой ткани, культивированы и поддерживаться в трехмерной конфигурации в течение длительных периодов времени13,14,15. Предыдущая работа нашей группы и других ученых начала использовать многоклеточную и мультипотентную способность MVF, особенно в том, что касается образования жировой ткани16,17,18. В качестве наращивания этой работы мы недавно продемонстрировали, что MVF, полученные из моделей грызунов здорового диабета и диабета 2 типа19 и от людей (взрослых старше 50 лет)20, содержат клетки, способные индуцироваться для образования термогенной или бежевой жировой ткани.
Здесь представлен инновационный подход, в котором используется MVF из одного источника, способный не только создавать бежевую жировую ткань, но и связанный с ней и критический сосудистый компонент21. Использование этого метода может иметь большое значение для исследований, ищущих простой тканеинженерный подход к образованию термогенной жировой ткани. В отличие от других методов, направленных на создание бежевой жировой ткани 22,23,24,25,26,27,28, процесс, описанный в этом исследовании, не требует использования нескольких типов клеток или сложных схем индукции. Васкуляризированные модели бежевого и белого жира могут быть созданы с помощью MVF, происходящих от грызунов и людей, демонстрируя большой потенциал перевода. Конечным продуктом этого протокола является сконструированная бежевая термогенная жировая ткань со структурой и метаболической функцией, сравнимыми с бурой жировой тканью. В целом, этот протокол представляет идею о том, что легкодоступный и, возможно, аутологичный источник MVF может быть полезным терапевтическим вмешательством и инструментом для изучения метаболических нарушений.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aminocaproic Acid</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2504-100G</td>
			<td>Added in DMEM at the concentration of 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt-Tipped Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-172</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovin Serum Albumin (BSA)</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>126575-10GM</td>
			<td>Diluted in PBS to 4 mg/mL and 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type 1</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9633623</td>
			<td>Diluted to 6 mg/mL in BSA 4 mg/mL, Digestion of minced fat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AC230302500</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 2 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable underpads</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>23-666-062</td>
			<td>For fluid absorption during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>08-951-5</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium (DMEM)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>11885092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham (DMEM/F12)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D8062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>16140089</td>
			<td>Added in DMEM to 20% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibrinogen&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8630-25G</td>
			<td>Solubilized in DMEM at the concentration of 20 mg/mL, Protein found in blood plasma and main component of hydrogel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flask, 250 mL</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>FB500250</td>
			<td>Allows for digestion of fat using a large surface area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-264-21</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For handling of tissue and filters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forskolin</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F6886</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human MVF</td>
			<td>Advanced Solutions Life Scienes, LLC</td>
			<td>https://www.advancedsolutions.com/microvessels</td>
			<td>Human MVFs (hMVFs) isolated from three different patients (52-, 54-, and 56-year old females) were used in the current study.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indomethacine&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I7378</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 12.5 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin from porcine pancreas</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I5523</td>
			<td>Diluted in 0.01 N HCl at a 5 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MycoZap</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9023832</td>
			<td>Added in DMEM to 0.2% w/v, Mycoplasma Prophylactic&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pennycilin/Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Added in DMEM to 1% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (100 mm x 15 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>351029</td>
			<td>3 for removal of blood vessels and mincing, 8 (lid) for presoaking of screens &#38; 8 (dish) for use when filtering with 500 or 37 &#181;M screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (35 mm x 10 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-202-036</td>
			<td>For counting fragments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>14-190-250</td>
			<td>Diluted to 1x with sterile deionized water.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Clippers (Andwin Mini Arco Pet Trimmer)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC0854141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rosiglitazone</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>R0106200MG</td>
			<td>Diluted in DMSO at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14059-11</td>
			<td>1 for initial incision, 1 for epididymal incision, 1 for tip clipping</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen&#160; 37 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222R</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Fragment entrapment and removal of very small fragments/single cells and debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen 500 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222F</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Removes larger fragments/debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serrated Hemostat</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-171</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For clamping of skin before incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steriflip Filter 0.22 &#956;m&#160;</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SE1M179M6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thrombin</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>6051601KU</td>
			<td>Diluted in deionzed water to 10 U/mL, Used as a clotting agent turning fibrinogen to fibrin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thyroid hormone (T3)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T2877</td>
			<td>Diluted in 1N NaOH at a 0.02 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zucker diabetic fatty (ZDF) rats - obese (FA/FA) or lean (FA/+) male&#160;</td>
			<td>Charles River</td>
			<td>https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-lean-fa?region=3611 
			https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-obese?region=3611</td>
			<td>Obtained from Charles River (Wilmington, MA). Rats were acquired at 4 weeks of age and fed Purina 5008 until euthanasia (15-19 weeks of age). Glucose levels (blood from the lateral saphenous vein) were greater than 300 mg/dL in all FA/FA rats used in the study. All animals were housed in a temperature-controlled environment with a 12-h light-dark cycle and fed ad libitum.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments

Инженерная термогенная жировая ткань (например, бежевые или коричневые жировые ткани) была исследована в качестве потенциальной терапии метаболических заболеваний или для разработки персонализированных микротканей для скрининга здоровья и тестирования лекарств. Современные стратегии часто довольно сложны и не могут точно полностью отразить многоклеточные и функциональные свойства термогенной жировой ткани. Микрососудистые фрагменты, небольшие интактные микрососуды, состоящие из артериол, венул и капилляров, выделенных из жировой ткани, служат единым аутологичным источником клеток, которые обеспечивают васкуляризацию и образование жировой ткани. В данной статье описываются методы оптимизации условий культивирования для получения трехмерных, васкуляризированных и функциональных термогенных жировых тканей из микрососудистых фрагментов, включая протоколы выделения микрососудистых фрагментов из жировой ткани и условий культивирования. Кроме того, обсуждаются лучшие практики, а также методы характеристики сконструированных тканей, а также приводятся результаты образцов микрососудистых фрагментов как грызунов, так и человека. Этот подход может быть использован для понимания и разработки методов лечения ожирения и метаболических заболеваний.

Существует несколько ключевых фенотипических морфологических характеристик бежевой/бурой жировой ткани: она многолопастная/содержит мелкие липидные капли, обладает большим количеством митохондрий (причина ее характерного «коричневатого» вида in vivo), соответственно имеет высок?...

Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments

Здесь мы представляем подробный протокол, описывающий использование микрососудистых фрагментов, выделенных из жировой ткани грызунов или человека, в качестве простого подхода к созданию функциональной, васкуляризированной бежевой жировой ткани.

Трехмерная культура васкуляризированной термогенной жировой ткани из микрососудистых фрагментов

Engineering thermogenic adipose tissue (e.g., beige or brown adipose tissues) has been investigated as a potential therapy for metabolic diseases or for ...

Этот протокол описывает генерацию трехмерного васкуляризированного и функционального термогенного жира из микрососудистых фрагментов или MVF. Современные стратегии инженерии термогенной жировой ткани сложны и не полностью отражают ее многоклеточные и функциональные свойства. MVF являются единственным источником клеток, которые обеспечивают васкуляризацию и образование жировой ткани.Будучи простым методом создания биологических имитаций бежевого жира, MVF обладают значительным потенциалом для содействия пониманию или разработке методов лечения ожирения и метаболических заболеваний. Поместите надлежащим образом выбритое и усыпленное животное, обработанное 70% этанолом, в положение лежа на спине и начните изоляцию пахового жира. Поднимите кожу ниже полового члена ножницами и выполните разрез, начиная с центра и разрезая сбоку, образуя V-образную форму, прежде чем перейти к задней части животного, чтобы получить доступ ко всему жировому отложению.Во время резки обеспечьте отделение кожи от жира, разрезав взаимосвязанную ткань фасции. После того, как фасция будет соответствующим образом разрезана, убедитесь, что паховый жир с обеих сторон, простирающийся от паха к спине, виден. Затем удалите жир с двух сторон в отдельные конические трубки, содержащие 10 миллилитров BSA в PBS, имеющих концентрацию один миллиграмм на миллилитр.Чтобы собрать жир из придатка яичка, разрежьте кожу живота, а затем осторожно прорежьте тонкий слой, окружающий яички. Аккуратно потяните жировую ткань с помощью щипцов и вырежьте ее ножницами, избегая при этом рассечения каких-либо основных видимых кровеносных сосудов. Теперь поместите удаленный жир в коническую трубку объемом 50 миллилитров, содержащую 10 миллилитров одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS.Чтобы изолировать заднюю подкожно-жировую клетчатку, переверните крысу на спину и используйте большие ножницы, чтобы разрезать толстую кожу спины до самой головы, стараясь не резать слишком глубоко под кожей. Разрежьте фасцию, соединяющую кожу с тканями. Дифференцируйте подкожный жир, расположенный во внутрилопаточной области, от бурого жира, расположенного ближе к позвоночнику, прежде чем изолировать и поместить подкожный жир в 50-миллилитровую коническую трубку, содержащую 10 миллилитров одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS.Работая внутри биокапюшона, используйте щипцы, чтобы поместить вырезанный жир в стандартную 100-миллилитровую чашку Петри, содержащую 0,5 миллилитра одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS. Удалите из жира любые видимые кровеносные сосуды, мышцы или посторонние ткани. С помощью ножниц измельчите жир в течение 10 минут и проверьте, нет ли комочков, добавив еще немного BSA.При необходимости продолжайте фарш перед тем, как переложить суспензию измельченного жира в стерильную 250-миллилитровую колбу с помощью 10-миллилитровой пипетки. Увеличьте объем в колбе до 20 миллилитров, добавив достаточное количество BSA в PBS. Теперь добавьте BSA в PBS к коллагеназе и гомогенизируйте раствор, осторожно встряхивая его, прежде чем фильтровать его стерильно через 0,22-микронный нейлоновый сетчатый фильтр.Немедленно добавьте необходимое количество раствора коллагеназы в суспензию измельченного жира и переварите жир, встряхивая колбу круговыми движениями на водяной бане при температуре 37 градусов Цельсия в течение соответствующего количества времени. Переложите переваренный жир в коническую трубку объемом 50 миллилитров с надписью «Переваренный жир или измельченный жир». Центрифугируйте пробирку при 400 г в течение четырех минут, чтобы микрососудистые фрагменты, или MVF, превратились в красную гранулу.Аккуратно сцедите надосадочную жидкость в 50-миллилитровую коническую трубку с маркировкой отходов, не нарушая гранулы. Затем добавьте 10 миллилитров одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS в пробирку, содержащую гранулы, и перемешайте суспензию гранул, осторожно пипетируя ее вверх и вниз дважды, не разрушая фрагменты. Теперь возьмите 500-микронный экран, предварительно замоченный в стерильной чашке Петри, содержащей пять миллилитров одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS, и поместите его на пластиковый держатель экрана, хранящийся на новой чашке Петри.Пипеткой 10 миллилитров суспензии из переваренной грануляторной трубки на сито концентрическими кругами. Промойте фильтр дополнительными пятью миллилитрами по одному миллиграмму на миллилитр BSA в PBS и выбросьте его, сохранив фильтрат внутри чашки Петри. Затем поместите предварительно пропитанный 37-микронный экран над пластиковым держателем экрана на новую чашку Петри.С помощью свежей пипетки перенесите фильтрат из первой фильтрации на сито концентрическими кругами. Как описано ранее, промойте сито BSA в PBS и на этот раз выбросьте фильтрат, сохранив 37-микронное сито. Вставьте 37-микронный экран в новую чашку Петри, содержащую пять миллилитров одного миллиграмма на миллилитр BSA в PBS.Удалите фрагменты, осторожно постучав посудой по коническому держателю, не проливая жидкости. Промойте фильтр дополнительными пятью миллилитрами BSA в PBS. Далее перелейте жидкость из чашки Петри в стерильную коническую трубку объемом 50 миллилитров.Промойте 37-микронное сито еще несколько раз, добавляя смывку в коническую трубку, пока общий собранный объем не составит от 15 до 20 миллилитров. Выбросьте экран после окончательного полоскания. Отрежьте конец наконечника пипетки объемом 20 микролитров с помощью ножниц.Осторожно встряхните пробирку с жидкостью, прежде чем набрать две аликвоты по 20 микролитров с помощью разрезанного наконечника пипетки, и поместите каждую из аликвот в чистую 35-миллиметровую чашку Петри. Подсчитайте количество фрагментов в образце в каждой чашке Петри с помощью стандартного светового микроскопа и, используя формулу, приведенную в рукописи, получите общее количество изолированных микрососудистых фрагментов. Открутите оставшуюся жидкость в 50-миллилитровой конической трубке при 400 G в течение четырех минут, чтобы собрать MVF.После отжима сцедите большую часть надосадочной жидкости из конической трубки и с помощью пипетки удалите небольшой объем жидкости, оставшийся на ободке трубки. Далее добавляют тромбин в лунки, предназначенные для литья гелей. Отрежьте конец наконечника пипетки объемом 200 микролитров и, используя его, осторожно ресуспендируйте MVF в фибриногене, чтобы получить желаемую конечную плотность.Пипеткой вводят суспензию в раствор тромбина в лунке и быстро гомогенизируют смесь путем пипетки вверх и вниз. После того, как все гели отлиты, поместите луночную пластину в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа примерно на 15 минут, чтобы обеспечить сшивание геля. Липиды и дифференцированные адипоциты наблюдали с помощью конфокальной микроскопии гидрогелей с использованием BODIPY в качестве липидного окрашивания.Культивирование неваскуляризированной жировой ткани с использованием белых адипогенных или бежевых адипогенных сред привело к образованию неваскуляризированной белой или бежевой жировой ткани, соответственно, как из худых, так и из диабетических грызунов. Аналогичным образом, культивирование васкуляризированной жировой ткани с использованием белых адипогенных или бежевых адипогенных сред приводило к образованию васкуляризированной белой или бежевой жировой ткани, соответственно, из MVF, полученных от грызунов. Неваскуляризированная белая и бежевая жировая ткань, полученная из MVF человека, также наблюдалась с помощью конфокальной микроскопии.Способность MVF дифференцироваться в бежевую жировую ткань была генетически подтверждена с помощью ОТ-кПЦР. Худые и диабетические MVF грызунов, подвергшихся воздействию прямых белых адипогенных или бежевых адипогенных сред, оценивали на предмет адипогенеза, термогенеза и ангиогенеза. Экспрессия разъединяющего белка 1, как и ожидалось, была значительно выше в бежевой адипогенной ткани.Аналогичная тенденция наблюдалась у грызунов, подвергшихся воздействию непрямых белых адипогенных или бежевых адипогенных сред, а также у людей, подвергшихся воздействию прямых белых адипогенных или бежевых адипогенных сред. Наконец, из митохондриальной биоэнергетики было очевидно, что функционально бежевая жировая ткань имела характерно более высокий уровень потребления кислорода, или OCR, во всех случаях. Ферментативное переваривание жировой ткани должно быть оптимизировано для последовательного воспроизведения MVF аналогичного размера и качества.После переваривания с MVF следует обращаться осторожно, с особой осторожностью, чтобы избежать дальнейшего разрушения фрагментов. Этот метод способствовал дальнейшему балансу роста сосудов и дифференцировки адипоцитов, который, как было доказано, зависел от введенных факторов.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Трехмерная оптическая разрешением Фотоакустическая микроскопии

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

Альгинат гидрогелей для трехмерных органной культуры яичников и Яйцеводы

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer deaths in women and has a 63% mortality rate in the United States1. The cell type of origin for ...

Planar and Three-Dimensional Printing of Conductive Inks

Плоские и трехмерной печати проводящей краски

Printed electronics rely on low-cost, large-area fabrication routes to create flexible or multidimensional electronic, optoelectronic, and biomedical ...

Three-dimensional Cell Culture Model for Measuring the Effects of Interstitial Fluid Flow on Tumor Cell Invasion

Трехмерные модели культуры клеток для измерения действию тканевой жидкости потока на опухолевой инвазии сотовых

The growth and progression of most solid tumors depend on the initial transformation of the cancer cells and their response to stroma-associated signaling ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Человека хрящевой ткани Изготовление с использованием трехмерных струйных технологии печати

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

Analysis of Cell Migration within a Three-dimensional Collagen Matrix

Анализ миграции клеток в трехмерном коллагеновой матрице

The ability to migrate is a hallmark of various cell types and plays a crucial role in several physiological processes, including&#160;embryonic ...

Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding

Генерация трехмерной всю толщину кожи Эквивалент техники и автоматизированных Ранение

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models ...

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Poly(ethylene glycol) Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Polyethylene glycol Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Изготовление Перевернутый коллоидный кристалл поли (этиленгликоль) строительные леса: трехмерная Cell Culture платформа для печени тканевой инженерии

The ability to maintain hepatocyte function in vitro, for the purpose of testing xenobiotics&#39; cytotoxicity, studying virus infection and developing ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Выделение мышиных полученных из жировой ткани микрососудистых Фрагментов как васкуляризация единицы для тканевой инженерии

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Three-dimensional Tissue Engineered Aligned Astrocyte Networks to Recapitulate Developmental Mechanisms and Facilitate Nervous System Regeneration

Трехмерные ткани спроектированы в соответствие экзоцитоз сетей для пилки развития механизмов и содействия регенерации нервной системы

Neurotrauma and neurodegenerative disease often result in lasting neurological deficits due to the limited capacity of the central nervous system (CNS) to ...