Name: three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments
Uploaded: 2023-02-03T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Dr Acosta stöds av National Institutes of Health-bidragen CA148724 och TL1TR002647. Dr. Gonzalez Porras stöds av National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases vid National Institutes of Health, under prisnummer F32-0DK122754. Detta arbete stöddes delvis av National Institutes of Health (5SC1DK122578) och University of Texas at San Antonio Department of Biomedical Engineering. Innehållet är enbart författarnas ansvar och representerar inte nödvändigtvis de officiella åsikterna från National Institutes of Health. Siffror skapades delvis med Biorender.com.

Undersökningen genomfördes i enlighet med djurskyddslagen och tillämpningsföreskrifterna för djurskydd i enlighet med principerna i Vägledning för vård och användning av försöksdjur. Alla djurförsök godkändes av Institutional Animal Care and Use Committee vid University of Texas i San Antonio.
OBS: För de steg som beskrivs nedan används Lewis-råttor av hankön. Små protokolljusteringar måste göras för en insamling av hona, såväl som musmikrovaskulärt fragment (MVF)<sup ...

Området brun/beige fettvävnadsteknik är till stor del omoget 22,23,24,25,26,27,28, med huvuddelen av fettmodeller som utvecklas för vit fettvävnad 8,22,31. Konstruerade bruna / beige mikrovävn...

Målet med detta protokoll är att beskriva ett tillvägagångssätt för att utveckla vaskulariserad beige fettvävnad från en enda, potentiellt autolog källa, mikrovaskulärt fragment (MVF). Bruna och beige fettvävnader har visat sig visa fördelaktiga egenskaper relaterade till metabolisk reglering; Den lilla volymen av dessa fettvävnadsdepåer hos vuxna begränsar dock den potentiella effekten på systemisk metabolism, särskilt vid sjuka tillstånd som fetma eller typ 2-diabetes 1,2,3,4,5,6,7. Det finns ett betydande intresse för brunt/beige fett som ett terapeutiskt mål för att förebygga de skadliga metaboliska effekterna i samband med fetma och dess samsjuklighet 8,9,10,11,12.
MVF är kärlstrukturer som kan isoleras direkt från fettvävnad, odlas och underhållas i en tredimensionell konfiguration under längretidsperioder 13,14,15. Tidigare arbete från vår grupp och andra har börjat utnyttja MVF: s multicellulära och multipotenta kapacitet, särskilt när det gäller fettvävnadsbildning16,17,18. Som en uppbyggnad av detta arbete visade vi nyligen att MVF härrörande från gnagarmodeller av frisk och typ 2-diabetes19 och från försökspersoner (vuxna över 50 år)20 innehöll celler som kunde induceras för att bilda termogen eller beige fettvävnad.
Häri är ett innovativt tillvägagångssätt från vilket en enda källa MVF används, inte bara kapabel att skapa beige fettvävnad utan också dess associerade och kritiska vaskulära komponent21. Användningen av denna teknik kan vara av stort värde för studier som letar efter en enkel vävnadskonstruerad metod för termogena fettvävnadsbildning. Till skillnad från andra metoder som strävar efter att konstruera beige fettvävnad 22,23,24,25,26,27,28, kräver processen som beskrivs i denna studie inte användning av flera celltyper eller komplexa induktionsregimer. Vaskulariserade beige och vita fettmodeller kan skapas med MVF som härrör från gnagare och mänskliga källor, vilket visar stor översättningspotential. Slutprodukten av detta protokoll är en konstruerad beige termogena fettvävnad med en struktur och metabolisk funktion jämförbar med brun fettvävnad. Sammantaget presenterar detta protokoll tanken att en lättillgänglig och eventuellt autolog källa MVF kan vara ett värdefullt terapeutiskt ingrepp och verktyg för att studera metaboliska störningar.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aminocaproic Acid</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A2504-100G</td>
			<td>Added in DMEM at the concentration of 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt-Tipped Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-172</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovin Serum Albumin (BSA)</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>126575-10GM</td>
			<td>Diluted in PBS to 4 mg/mL and 1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase Type 1</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9633623</td>
			<td>Diluted to 6 mg/mL in BSA 4 mg/mL, Digestion of minced fat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>AC230302500</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 2 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable underpads</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>23-666-062</td>
			<td>For fluid absorption during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Scissors</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>08-951-5</td>
			<td>Sterilize in autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium (DMEM)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>11885092</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8242;s Modified Eagle&#8242;s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham (DMEM/F12)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>D8062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum&#160;</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>16140089</td>
			<td>Added in DMEM to 20% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fibrinogen&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8630-25G</td>
			<td>Solubilized in DMEM at the concentration of 20 mg/mL, Protein found in blood plasma and main component of hydrogel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flask, 250 mL</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>FB500250</td>
			<td>Allows for digestion of fat using a large surface area</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-264-21</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For handling of tissue and filters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forskolin</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F6886</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human MVF</td>
			<td>Advanced Solutions Life Scienes, LLC</td>
			<td>https://www.advancedsolutions.com/microvessels</td>
			<td>Human MVFs (hMVFs) isolated from three different patients (52-, 54-, and 56-year old females) were used in the current study.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indomethacine&#160;</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I7378</td>
			<td>Diluted in ethanol at a 12.5 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin from porcine pancreas</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>I5523</td>
			<td>Diluted in 0.01 N HCl at a 5 mg/ml stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MycoZap</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC9023832</td>
			<td>Added in DMEM to 0.2% w/v, Mycoplasma Prophylactic&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pennycilin/Streptomycin (10,000 U/mL)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>15140122</td>
			<td>Added in DMEM to 1% v/v.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (100 mm x 15 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>351029</td>
			<td>3 for removal of blood vessels and mincing, 8 (lid) for presoaking of screens &#38; 8 (dish) for use when filtering with 500 or 37 &#181;M screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes, polystyrene (35 mm x 10 mm).</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>50-202-036</td>
			<td>For counting fragments</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>14-190-250</td>
			<td>Diluted to 1x with sterile deionized water.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rat Clippers (Andwin Mini Arco Pet Trimmer)</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>NC0854141</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rosiglitazone</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>R0106200MG</td>
			<td>Diluted in DMSO at a 10 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14059-11</td>
			<td>1 for initial incision, 1 for epididymal incision, 1 for tip clipping</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen&#160; 37 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222R</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Fragment entrapment and removal of very small fragments/single cells and debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screen 500 &#181;M&#160;</td>
			<td>Carolina Biological Supply Company</td>
			<td>652222F</td>
			<td>Cut into 3&#34; rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Removes larger fragments/debris</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serrated Hemostat</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>12-000-171</td>
			<td>Sterilize in autoclave, For clamping of skin before incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steriflip Filter 0.22 &#956;m&#160;</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>SE1M179M6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thrombin</td>
			<td>Fisher scientific</td>
			<td>6051601KU</td>
			<td>Diluted in deionzed water to 10 U/mL, Used as a clotting agent turning fibrinogen to fibrin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thyroid hormone (T3)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>T2877</td>
			<td>Diluted in 1N NaOH at a 0.02 mM stock concentration</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zucker diabetic fatty (ZDF) rats - obese (FA/FA) or lean (FA/+) male&#160;</td>
			<td>Charles River</td>
			<td>https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-lean-fa?region=3611 
			https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-obese?region=3611</td>
			<td>Obtained from Charles River (Wilmington, MA). Rats were acquired at 4 weeks of age and fed Purina 5008 until euthanasia (15-19 weeks of age). Glucose levels (blood from the lateral saphenous vein) were greater than 300 mg/dL in all FA/FA rats used in the study. All animals were housed in a temperature-controlled environment with a 12-h light-dark cycle and fed ad libitum.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

three-dimensional culture of vascularized thermogenic adipose tissue from microvascular fragments

Teknisk termogen fettvävnad (t.ex. beige eller brun fettvävnad) har undersökts som en potentiell terapi för metaboliska sjukdomar eller för design av personliga mikrovävnader för hälsoscreening och drogtestning. Nuvarande strategier är ofta ganska komplexa och misslyckas med att korrekt fullständigt skildra de multicellulära och funktionella egenskaperna hos termogena fettvävnad. Mikrovaskulära fragment, små intakta mikrokärl bestående av arteriole, venuler och kapillärer isolerade från fettvävnad, fungerar som en enda autolog källa till celler som möjliggör vaskularisering och fettvävnadsbildning. Denna artikel beskriver metoder för att optimera odlingsförhållanden för att möjliggöra generering av tredimensionella, vaskulariserade och funktionella termogena fettvävnader från mikrovaskulära fragment, inklusive protokoll för att isolera mikrovaskulära fragment från fettvävnad och odlingsförhållanden. Dessutom diskuteras bästa praxis, liksom tekniker för att karakterisera de konstruerade vävnaderna, och provresultat från både gnagare och humana mikrovaskulära fragment tillhandahålls. Detta tillvägagångssätt har potential att användas för förståelse och utveckling av behandlingar för fetma och metabola sjukdomar.

Det finns några viktiga fenotypiska morfologiska egenskaper hos beige/brun fettvävnad: den är multilokulär/innehåller små lipiddroppar, har ett stort antal mitokondrier (orsaken till dess karakteristiskt "brunaktiga" utseende in vivo), har på motsvarande sätt en hög syreförbrukningshastighet/mitokondriell bioenergetik, är starkt vaskulariserad, har ökat lipolys / insulinstimulerat glukosupptag, och, mest notoriskt, uttrycker höga nivåer av frikopplingsprotein 1 (UCP1), ett mitokondriellt protein i...

Watch this Scientific Journal Video about Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments at JoVE.com

Three-Dimensional Culture of Vascularized Thermogenic Adipose Tissue from Microvascular Fragments

Här presenterar vi ett detaljerat protokoll som beskriver användningen av mikrovaskulära fragment isolerade från gnagare eller mänsklig fettvävnad som ett enkelt tillvägagångssätt för att konstruera funktionell, vaskulariserad beige fettvävnad.

Tredimensionell kultur av vaskulär termogen fettvävnad från mikrovaskulära fragment

Engineering thermogenic adipose tissue (e.g., beige or brown adipose tissues) has been investigated as a potential therapy for metabolic diseases or for ...

Detta protokoll beskriver genereringen av tredimensionellt vaskulärt och funktionellt termogent fett från mikrovaskulära fragment, eller MVF. Nuvarande strategier för teknik termogena fettvävnad är komplexa och inte helt skildra dess multicellulära och funktionella egenskaper. MVF är en enda källa till celler som möjliggör vaskularisering och fettvävnadsbildning.Att vara en enkel enda källmetod för att skapa biologiska imitationer av beige fett, MVF har betydande potential för att främja förståelsen eller utvecklingen av behandlingar för fetma och metabolisk sjukdom. Placera det lämpligt rakade och avlivade djuret behandlat med 70% etanol i ryggläge och börja isolera inguinalfettet. Lyft huden under penis med en sax och utför snittet, börja i mitten och skär i sidled, bilda en V-form innan du slingrar till djurets baksida för att komma åt hela fettdepån.Under skärning, se till att huden separeras från fettet genom att skära den sammankopplade fasciavävnaden. När fascian är korrekt skuren, se till att inguinalfettet från båda sidor, som sträcker sig från ljumsken mot baksidan, är synligt. Ta sedan bort fettet från de två sidorna i separata koniska rör innehållande 10 ml BSA i PBS, med en koncentration av ett milligram per milliliter.För att skörda epididymalfettet, skär genom bukhuden, följt av att försiktigt skära igenom det tunna skiktet som omger testiklarna. Dra försiktigt i fettvävnaden med pincett och klipp ut den med sax, samtidigt som du undviker dissektion av några större synliga blodkärl. Placera nu det borttagna fettet i ett 50-milliliter koniskt rör innehållande 10 milliliter av ett milligram per milliliter BSA i PBS.För att isolera det bakre subkutana fettet, vänd råttan benägen och använd en stor sax för att skära den tjocka huden på ryggen hela vägen upp till hårbotten, var försiktig så att du inte skär för djupt under huden. Skär fascia som förbinder huden med vävnaden. Differentiera det subkutana fettet, som ligger i det intraskapulära området, från det bruna fettet som ligger närmare ryggraden innan du isolerar och placerar det subkutana fettet i ett 50-milliliter koniskt rör innehållande 10 ml av ett milligram per milliliter BSA i PBS.När du arbetar inuti en biohood, använd pincett för att placera det utskurna fettet i en standard 100-milliliter petriskål innehållande 0,5 ml av ett milligram per milliliter BSA i PBS. Ta bort alla synliga blodkärl, muskler eller främmande vävnad från fettet. Hacka fettet med sax i 10 minuter och kontrollera om det finns klumpar genom att tillsätta lite mer BSA.Fortsätt vid behov att hacka innan fettfärssuspensionen överförs till en steril 250 ml-kolv med en 10-ml-pipett. Gör volymen i kolven upp till 20 ml genom att tillsätta så mycket BSA i PBS. Tillsätt nu BSA i PBS till kollagenas och homogenisera lösningen genom att skaka den försiktigt innan du filtrerar den steril genom ett 0,22 mikron nylonnätfilter.Tillsätt omedelbart erforderlig mängd kollagenaslösning till fettfärssuspensionen och smält fettet genom att skaka kolven i en cirkelrörelse i ett vattenbad vid 37 grader Celsius under lämplig tid. Överför det smälta fettet till ett 50 ml koniskt rör märkt smält fett eller malet fett. Centrifugera röret vid 400 G i fyra minuter för att snurra ner de mikrovaskulära fragmenten, eller MVF, till en röd pellet.Dekantera försiktigt supernatanen i ett 50 ml koniskt rör märkt avfall utan att störa pelleten. Tillsätt sedan 10 ml av ett milligram per milliliter BSA i PBS till röret som innehåller pelleten och blanda pelletssuspensionen genom att försiktigt pipettera den upp och ner två gånger utan att störa fragmenten. Ta nu 500-mikronskärmen fördränkt i en steril petriskål som innehåller fem milliliter ett milligram per milliliter BSA i PBS och placera den över plastskärmhållaren som hålls på en ny petriskål.Pipettera 10 ml suspension från det smälta pelletsröret på skärmen i koncentriska cirklar. Tvätta filtret med ytterligare fem milliliter av ett milligram per milliliter BSA i PBS och kassera det, samtidigt som filtratet behålls inuti petriskålen. Placera sedan den förblötlagda 37-mikronskärmen ovanför plastskärmhållaren på en ny petriskål.Använd en ny pipett och överför filtratet från den första filtreringen till skärmen i koncentriska cirklar. Som beskrivits tidigare, tvätta skärmen med BSA i PBS, och den här gången, kassera filtratet medan du behåller 37-mikronskärmen. Skjut 37-mikron skärmen i en ny petriskål som innehåller fem milliliter av ett milligram per milliliter BSA i PBS.Lossa fragmenten genom att försiktigt knacka skålen mot en konisk hållare utan att spilla någon vätska. Skölj filtret med ytterligare fem milliliter BSA i PBS. Överför sedan vätskan från petriskålen till ett sterilt 50 ml koniskt rör.Skölj 37-mikronskärmen flera gånger till, tillsätt tvätten till det koniska röret tills den totala uppsamlade volymen är 15 till 20 ml. Kassera skärmen efter den sista sköljningen. Skär änden av en 20-mikroliters pipettspets med sax.Skaka försiktigt röret som innehåller vätskan innan du drar två alikvoter på 20 mikroliter med den skurna pipettspetsen och pipettera var och en av alikvoterna till en ren 35-millimeter petriskål. Räkna antalet fragment i provet i varje petriskål med hjälp av ett vanligt ljusmikroskop och använd formeln som nämns i manuskriptet, få det totala antalet isolerade mikrovaskulära fragment. Snurra den återstående vätskan i 50-milliliter koniska röret vid 400 G i fyra minuter för att samla MVF.Efter centrifugering, dekantera det mesta av supernatanten från det koniska röret och använd en pipett för att avlägsna den lilla volymen vätska som finns kvar på rörets kant. Tillsätt sedan trombin i brunnarna avsedda för gjutgeler. Skär änden av en 200-mikroliters pipettspets och använd den, försiktigt resuspendera MVF: erna i fibrinogen för att erhålla önskad slutlig densitet.Pipettera suspensionen i trombinlösningen i brunnen och homogenisera snabbt blandningen genom pipettering upp och ner. När alla geler är gjutna, placera brunnplattan i en inkubator vid 37 grader Celsius och 5% koldioxid i cirka 15 minuter för att möjliggöra geltvärbindning. Lipiderna och de differentierade adipocyterna observerades genom konfokalmikroskopiavbildning av hydrogelerna med BODIPY som lipidfläck.Odling av icke-vaskulariserad fettvävnad med användning av vita adipogenic eller beige adipogenic media resulterade i bildandet av icke-vaskulariserad vit respektive beige fettvävnad från både mager och diabetisk gnagare-härledd MVF. På liknande sätt resulterade odling av vaskulariserad fettvävnad med användning av vita adipogenic eller beige adipogenic media i bildandet av vaskulariserad vit respektive beige fettvävnad från gnagare-härledda MVF. Icke-vaskulariserad vit och beige fettvävnad erhållen från humana MVF observerades också genom konfokalmikroskopi.MVF: s förmåga att differentiera till beige fettvävnad bekräftades genetiskt med RT-qPCR. Mager och diabetiker gnagare MVF exponerade för direkt vit adipogenic eller beige adipogenic media utvärderades för adipogenesis, thermogenesis och angiogenesis. Uttrycket av frikopplingsprotein 1 var som förväntat signifikant högre i beige adipogenic vävnad.En liknande trend observerades hos MVF hos gnagare som exponerats för indirekta vita adipogena eller beige adipogenic medier, liksom hos humana MVF som exponerats för direkta vita adipogenic eller beige adipogenic media. Slutligen, från mitokondriell bioenergetik, var det uppenbart att den beige fettvävnaden funktionellt hade karakteristiskt högre syreförbrukningshastighet, eller OCR, nivå i alla fall. Den enzymatiska nedbrytningen av fettvävnaden bör optimeras för att konsekvent reproducera MVF av liknande storlek och kvalitet.Efter digestion bör MVF hanteras försiktigt, med särskild försiktighet för att undvika ytterligare nedbrytning av fragmenten. Denna teknik bidrog till att främja balansen mellan kärltillväxt och adipocytdifferentiering, som visat sig vara beroende av de införda faktorerna.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy

Tredimensionell optisk upplösning photoacoustic Mikroskopi

Optical microscopy, providing valuable insights at the cellular and organelle levels, has been widely recognized as an enabling biomedical technology. As ...

Alginate Hydrogels for Three-Dimensional Organ Culture of Ovaries and Oviducts

Alginat Hydrogeler för tredimensionella Organ Kultur äggstockarna och äggledarna

Ovarian cancer is the fifth leading cause of cancer deaths in women and has a 63% mortality rate in the United States1. The cell type of origin for ...

Planar and Three-Dimensional Printing of Conductive Inks

Plana och tredimensionella Tryckning av ledande bläck

Printed electronics rely on low-cost, large-area fabrication routes to create flexible or multidimensional electronic, optoelectronic, and biomedical ...

Three-dimensional Cell Culture Model for Measuring the Effects of Interstitial Fluid Flow on Tumor Cell Invasion

Tredimensionell cellkulturmodell för mätning av effekterna av interstitialvätska Flow på Tumörcellinvasion

The growth and progression of most solid tumors depend on the initial transformation of the cancer cells and their response to stroma-associated signaling ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Human Brosk Tissue Fabrication Använda Tredimensionell Inkjet Printing Technology

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

Analysis of Cell Migration within a Three-dimensional Collagen Matrix

Analys av Cell Migration inom en tredimensionell kollagenmatris

The ability to migrate is a hallmark of various cell types and plays a crucial role in several physiological processes, including&#160;embryonic ...

Generation of a Three-dimensional Full Thickness Skin Equivalent and Automated Wounding

Generering av ett tredimensionellt Full Tjocklek hudekvivalent och automatiserade sårar

In vitro models are a cost effective and ethical alternative to study cutaneous wound healing processes. Moreover, by using human cells, these models ...

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Poly(ethylene glycol) Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Fabrication of Inverted Colloidal Crystal Polyethylene glycol Scaffold: A Three-dimensional Cell Culture Platform for Liver Tissue Engineering

Tillverkning av Inverted kolloidalt Crystal Poly (etylenglykol) Scaffold: En tredimensionell cellkultur plattform för levervävnad Engineering

The ability to maintain hepatocyte function in vitro, for the purpose of testing xenobiotics&#39; cytotoxicity, studying virus infection and developing ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Isolering av murina adipos vävnad Microvascular Fragment som Vaskularisering Aggregat för Tissue Engineering

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Three-dimensional Tissue Engineered Aligned Astrocyte Networks to Recapitulate Developmental Mechanisms and Facilitate Nervous System Regeneration

Tredimensionella vävnadstekniska justerad Astrocyten nätverk att Recapitulate utvecklingsmässiga mekanismer och underlätta nervsystemet regenerering

Neurotrauma and neurodegenerative disease often result in lasting neurological deficits due to the limited capacity of the central nervous system (CNS) to ...