Name: cell culture techniques and practices to avoid contamination by fungi and bacteria in the research cell culture laboratory
Uploaded: 2023-07-07T13:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cell Culture Techniques and Practices to Avoid Contamination by Fungi and Bacteria in the Research Cell Culture Laboratory at JoVE.com

この作業は、ハワードヒューズ医学研究所(HHMI)からの資金提供のおかげで可能になりました。原稿を読んでくださった研究室長のJue Chen氏、有益な編集とコメントをくださったDonna Tallent氏、そしてこの原稿のビデオコンポーネントを手伝ってくれたロックフェラー大学情報技術学部のJeff Hennefeld氏に感謝いたします。

1. 事前準備 
<ol><li>全般<ol><li>細胞培養室でのみ着用するように指定された清潔な白衣を着用し、実験室の他の部分は着用しないでください。 注意: 白衣は無菌である必要はありません。</li>
		<li>他の表面に触れていない新しい手袋を着用してください。手袋がしっかりとフィットしていることを確認してください。ニトリル、パウダーフリーの手袋が最適です。 注意: 手袋...

<ol>
	<li>Johnson, Z. L., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+basis+of+substrate+recognition+by+the+multidrug+resistance+protein+MRP1.">Structural basis of substrate recognition by the multidrug resistance protein MRP1.</a> Cell. 168 (6), 1075-1085 (2017).</li><li>Capes-Davis, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+lines+as+biological+models:+practical+steps+for+more+reliable+research.">Cell lines as biological models: practical steps for more reliable research.</a> Chemical Research in Toxicology. 32 (9), 1733-1736 (2019).</li><li>Segeritz, C. 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P. J. M., Halffman, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ghosts+of+HeLa:+How+cell+line+misidentification+contaminates+the+scientific+literature.">The ghosts of HeLa: How cell line misidentification contaminates the scientific literature.</a> PLoS One. 12 (10), 0186281 (2017).</li><li>Why 70% isopropyl alcohol is a better disinfectant than 99% isopropyl alcohol when it comes to Covid-19. MunGlobal Available from: <a target="_blank" href="https://munglobal.com.au/resources/knowledge-base/pathogens/why-70-isopropyl-alcohol-is-a-better-disinfectant-than-99-isopropyl-alcohol/#:~:text=Due%20to%20the%20concentration%20difference">https://munglobal.com.au/resources/knowledge-base/pathogens/why-70-isopropyl-alcohol-is-a-better-disinfectant-than-99-isopropyl-alcohol/#:~:text=Due%20to%20the%20concentration%20difference</a> (2023)</li><li>United States Department of Agriculture. 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汚染は細胞培養作業を行う際の主な懸念事項の1つですが、この原稿で概説されている実践と技術はリスクを軽減するのに役立ちます。重要なステップには、細胞培養室でのみ使用される清潔な白衣の着用、70%EtOHを頻繁に噴霧し、細胞株を切り替えるときに交換される清潔で粉末を含まない手袋の使用、各個人に培地ボトルを共有しないように促すこと、作業終了の前後にキャビネットを徹?...

細胞培養は研究室で多くの用途があります。20世紀初頭の細胞培養の起源以来、細胞株は科学の進歩に貢献してきました。細胞株にはいくつかの利点があります。さまざまな細胞株は、研究者が細胞生物学を研究したり、さらなる研究のためにバキュロウイルスを産生したり、目的のタンパク質を大量に産生したりするのに役立ちます。その他の用途には、組織成長の研究、ワクチン開発の進歩の支援、毒物学研究、健康な生物および疾患モデルにおける遺伝子の役割の研究、ハイブリッド細胞株の製造などがあります2,3。細胞株は医薬品製造も可能にします3。細胞株を扱う際には、適切な無菌技術が必要です。この原稿で概説されている実践と技術は、細胞培養作業が行われる研究所に適用できます。他の実験室の設定については説明しません。
細胞培養作業を行う際には、汚染が主な懸念事項であることがよくあります。この論文の文脈では、汚染は一般的に真菌とバクテリアを指します。このホワイト ペーパーで概説されている方法の全体的な目標は、汚染を回避するためのベスト プラクティスを徹底的に説明することです。すべてのラボメンバーは、ラボの細胞培養室で作業する際にこれらの慣行を遵守する必要があります。研究所は、すべての労働者が汚染を防ぐためにこれらのベストプラクティスを使用することに積極的に参加していることを確認する必要があります。正しい実践と技術の知識は、細胞培養が生存可能で健康であり、汚染のない状態を維持するのに役立ちます。この技術の開発は、文献の研究、細胞培養での7年の経験、および初心者と経験豊富な細胞培養労働者の両方が毎年参照できる方法の必要性に基づいています。
すべての研究細胞培養ラボが従うべき明確で標準化された技術が必要です。細胞培養汚染に関する文献の多くは、マイコプラズマの検出、無菌技術、汚染源、汚染物質の除去、抗生物質の使用による予防、および定期的な検査について説明しています4,5,6,7,8。この情報は役に立ちますが、従うべき適切な細胞培養技術を示すビデオは文献に存在しません。代替技術よりも提示された慣行の利点は、後で間違いを検出して修正するのではなく、汚染が発生する前に防止することに重点を置いていることです。さらに、無菌技術の徹底的なデモンストレーション、真菌や細菌の増殖防止に関する議論、およびバイオセーフティキャビネットの気流に関する情報は、初心者と経験豊富な細胞培養作業員の両方にとって貴重です。
細菌と真菌は、最も一般的な2種類の汚染物質です。細菌のカテゴリーの中で、マイコプラズマは、そのサイズが小さく、気付かれずに増殖する能力があるため、大きな懸念事項です。それらは、真核細胞に依存して成長する硬い細胞壁を持たない自己複製生物です。透過型電子顕微鏡はマイコプラズマ9,10を検出できますが、それらは代謝能力を低下させ、細胞培養の日常的な目視検査および定期的な顕微鏡分析では認識されないまま大きく増殖する可能性があります。また、微生物学的フィルター10を通過できる。細胞培養培地はマイコプラズマに栄養素を提供しますが、残念ながら培地に抗生物質を補給してもマイコプラズマ10には影響しません。一般に、培地に抗生物質を補給する必要はないことに注意する必要があります。汚染を寄せ付けないようにするには、適切な技術で十分です。マイコプラズマの感染は即時の細胞死にはつながりませんが、データの再現性と品質に影響を与えるため、研究者にとっては懸念事項です。
すべてのラボ担当者は、適切な細胞培養慣行を厳守する必要があります。培養物は、新たに購入した後、現在栽培中、凍結保存前、および液体窒素2,10から解凍したときに、マイコプラズマについてテストする必要があります。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)、または免疫染色を使用したさまざまな検査が市場で入手可能です。3文献は、「ヒト分離株は、細胞培養で見つかったマイコプラズマ汚染物質の大部分を占める」ことを示しています5。200種以上のマイコプラズマ種が記載されているが、そのうち約6種がほとんどの感染症を占めている。これらの6種は、M. arginini、M. fermentans、M. hominis、M. hyorhinis、M. orale、およびAcholeplasma laidlawii10です。他の種類の汚染と同様に、空気とエアロゾルはこれらを細胞培養物に持ち込みます5。これは、「人間のオペレーターは実験室で潜在的に最大の危険である」7ため、他の論文にも反映されています。これは人為的ミスによって行われますが、標準的な手順に従えばリスクを排除できます。人員からの脱落は、マイコプラズマ汚染だけに限定されません。あるラボでの細胞培養は通常、同じマイコプラズマ種に感染しており、不適切な細胞培養技術のために汚染がフラスコから別のフラスコに広がっていることを示しています10。
交差汚染の防止も、適切な細胞培養技術に従うべきもう一つの理由です。世界中の細胞株の少なくとも15%〜18%が交差汚染または誤認されている可能性があることに注意してください11,12。マイコプラズマ汚染について細胞株をテストすることに加えて、それらは交差汚染についてもテストする必要があります10。ヒト細胞株の場合、ショートタンデムリピート(STR)プロファイリングと呼ばれる安価なDNAベースの技術による細胞株認証は、細胞株の同一性を確認する簡単な方法であるため、現在の国際標準です2,10,13,14。STRは、誤ってラベル付けされた細胞株や交差汚染された細胞株を識別できますが、誤った組織起源を検出することはできません10、13、14。細胞株が誤ってラベル付けされたり、誤って識別されたり、汚染されたりすると、研究データの妥当性が損なわれる可能性があります13。他のタイプのコンタミネーションと同様に、クロスコンタミネーションは、エアロゾルの拡散を引き起こす不十分な技術、フラスコに入る誤った細胞タイプにつながる誤った接触、または異なる細胞株を有する同じ培地ボトルおよび試薬の使用によって起こり得る10。メディアボトルの共有は行われません。2つの異なる細胞株間で1本の培地を共有することで、これらの細胞集団を混合することができ、成長の速い細胞タイプがフラスコを完全に引き継ぐことができます。この交換は目立たず、誤ったラベル付けと誤認につながります2。細胞株は、取り扱いまたは標識中に培養物が混同された場合、別の細胞株と間違われる可能性もあります10。試薬、培地、フラスコを互いに分離しておくことに細心の注意を払う必要があります。各ラボメンバーは、独自のメディアボトルを持っている必要があります。ラボ メンバー間での共有は行われません。細胞株自体は、資格のある細胞バンクおよびプロバイダーから購入する必要があります。実験室は細胞を共有するべきではありません。研究によると、STRおよびマイコプラズマ検査は定期的に使用されていますが、文献の多くの研究論文はすでに誤認または汚染された細胞株を使用しています15。これらの問題のある論文を見つけ、この問題について読者に遡及的に知らせるために研究をふるいにかけるのは面倒です。予防は、この問題が最初に発生しないようにするための最良の方法です。
アイテムに70%のEtOHをスプレーするという単純なアクションは、生物を殺すことができます。70%のEtOHは、細菌や真菌を含む最も一般的に汚染されている生物のタンパク質を変性させ、脂質を溶解することによって機能します16。研究によると、70%が最も効果的な濃度です。表面タンパク質は70%のEtOHで急速に凝固しないため、細胞に入ることができますが、表面タンパク質に含まれる水はタンパク質の変性プロセスに必要です。細胞壁の両側の水とアルコールの濃度差により、70%のEtOHが細胞に入り、酵素タンパク質と構造タンパク質の両方を変性させます。フラスコ内でカビの成長が観察された場合は、最初に70%EtOHを噴霧して拭いて乾かし、次に60°Cで16時間一晩インキュベートすることにより、インキュベーター全体を除染する必要があります17。これはほとんどのカビとバクテリアを殺します。
汚染発生後に汚染を除去する代替技術に対する予防慣行の主な利点は、汚染を早期に防止することにより、実験室の労働者は細胞培養が健康であることを確信でき、インキュベーターの除染や細胞培養物の廃棄に関連する高額なコストがかからないことです。たとえば、マイコプラズマ汚染物質の除去は効率的ではありません7。ラボ担当者が適切に訓練されていることを確認するために早い段階で時間をかけると、細胞培養室は自己完結型であり、標準的な手順が使用されるため、時間とお金を節約できます。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>DPBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14-190-144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM F-12 Media</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>30-2006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Baffled Flask</td>
			<td>Pyrex&#160;</td>
			<td>09-552-40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Pipettes</td>
			<td>Fisher&#160;</td>
			<td>13-678-6B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette Aid</td>
			<td>Drummond</td>
			<td>13-681-15A&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Serological Pipette</td>
			<td>Corning</td>
			<td>07-200-573</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T75 flask</td>
			<td>Corning</td>
			<td>07-202-004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25-300-054</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>*Items may vary because this video is about general cell culture techniques</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

cell culture techniques and practices to avoid contamination by fungi and bacteria in the research cell culture laboratory

細胞培養は、制御された環境でヒト、動物、昆虫の細胞、またはその他の組織を成長させるために必要な繊細なスキルです。プロトコルの目的は、真菌や細菌による汚染を防ぐために研究室で使用される正しい技術を強調することです。特に、サイズが小さいため、細胞培養室で大きな懸念事項であるマイコプラズマ汚染の回避に重点が置かれており、細胞培養に使用されるほとんどの抗生物質に対する耐性があります。これらの同じ技術は、継続的な成長を保証し、健康な細胞を維持します。新規および経験豊富な細胞培養ユーザーにとって、汚染のリスクを軽減するために、これらのベストプラクティスを一貫して遵守することが重要です。年に一度、ラボは細胞培養のベストプラクティスを確認し、必要に応じてディスカッションまたは追加のトレーニングでフォローアップする必要があります。そもそも汚染を防ぐための早期の行動を取ることは、汚染が発生した後のクリーンアップと比較して、時間とお金を節約できます。普遍的なベストプラクティスは、細胞培養を健康に保ち、それによって新しい細胞を絶えず解凍し、高価な細胞培養培地を購入する必要性を減らし、インキュベーターの除染とダウンタイムの量を減らします。

この論文で概説されている適切な細胞培養技術と慣行に従わないと、研究用細胞培養実験室で真菌や細菌による汚染が発生する可能性があります。 図2 は、懸濁培養物および付着培養物の両方における汚染を含むフラスコを示す。
無菌技術に従わない場合、カビの汚染は2〜3日後に発生する可能性があります。培地に浮遊する丸いぼやけたボールは...

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Cell Culture Techniques and Practices to Avoid Contamination by Fungi and Bacteria in the Research Cell Culture Laboratory

このプロトコルは、真菌や細菌による汚染を避けるために研究細胞培養ラボで使用される重要な細胞培養技術と実践を提示します。細菌のカテゴリー内では、マイコプラズマ汚染の防止に特に重点が置かれます。

研究細胞培養実験室における真菌や細菌による汚染を回避するための細胞培養技術と実践

Cell culture is a delicate skill necessary for growing human, animal, and insect cells, or other tissues, in a controlled environment. The goal of the ...

細胞培養は、管理された実験室環境でさまざまな種類の細胞や組織を増殖させるために必要な繊細なスキルです。細胞培養作業を行う際の主な関心事は汚染です。この汚染は、細菌、カビ、またはマイコプラズマの形で発生する可能性があります。このビデオで概説されているすべての技術と実践は、細胞が生存可能で健康で汚染のない状態を維持することを保証します。これらの慣行は厳守されるべきであり、すべてのラボ担当者は少なくとも年に一度トレーニングを受ける必要があります。作業を開始する前に、細胞培養室でのみ使用するように指定された清潔な白衣を着用してください。他の表面に触れていない新しい手袋を着用してください。手袋がしっかりとフィットしていることを確認してください。ニトリルパウダーフリーの手袋が最適です。白衣と手袋は無菌である必要はありません。作業の準備として、手袋、白衣の袖、生物学的安全キャビネットの内部に70%エタノールをスプレーします。作業面、側面、背面、キャビネット内のアイテム、前面ガラスパネルを内側と外側の両方からスプレーします。作業面とガラスパネルを糸くずの出ないペーパータオルで拭いて乾かします。キャビネット内にワークスペースを配置するのに少し時間がかかります。細胞培養室内に水浴を保管し、培地の加温や細胞の解凍などの細胞培養目的にのみ使用してください。水浴は週に一度排水して洗うべきです。キャビネットに持ち込まれるアイテムの量を制限し、前面または背面のグリルを塞いで生物学的安全キャビネット内の空気の流れを妨げないでください。キャビネット内に置かれたすべてのアイテムに70%エタノールをスプレーし、拭いて乾かします。メディアボトルの上部にスプレーすることから始めて、下に向かって作業します。清潔なペーパータオルで、メディアボトルの上から始めて拭いて乾かし、徐々に下に向かって進んでいきます。キャップに向かって戻らないでください。これらのキャビネットの仕組みは、部屋とキャビネット自体からフロントグリルとバックグリルから空気を引き出すことです。空気はキャビネットの背面に向かって上部に移動します。そこでは、汚染された空気がフィルターの山を通過し、ろ過された清浄な空気の一部がキャビネット内の作業領域に押し下げられます。キャビネットが血清学的ピペットを収容するのに十分な大きさである場合、それらは内部に配置することができ、そうでなければ、キャビネットの外側に取り付けられたレセプタクルに保管することができる。使用前に、包装されたピペットの両側に穴、裂け目、または穴がないか確認することをお勧めします。ラッピングをはがさないでください。代わりに、ラッピングの端をそっとはがします。血清学的ピペットをピペットエイドに挿入し、1回の流体動作でラッピングを取り外します。開いたボトルやフラスコの上にカーソルを合わせないでください。開いたボトルやフラスコの上に手を伸ばしたり、開いたフラスコの上で作業することはお勧めしません。キャビネット内の空気の流れは、内部のものを押し下げます。手を伸ばすと、スリーブや手袋がアイテムの上に置かれ、スリーブに存在する汚染物を細胞培養に押し込む可能性があります。可能な限り、液体を注がないでください。代わりに、血清学的ピペットを使用して追加してください。内容物を完全に混合し、ボトルを初期化します。メディアが補足されているものを書き留めます。付着培養物を使用していて、プラスチックフラスコが必要な場合は、パッケージ全体にスプレーして中に入れます。手袋が乾いたら、もう一度エタノールをスプレーしてください。接着性細胞株を扱う場合は、オートクレーブ滅菌ガラスピペットまたは使い捨て滅菌プラスチックピペットを使用して、培地または洗浄液を吸引します。保管容器から金属キャップを慎重に取り外します。容器を斜めに静かに振って、1つのガラスピペットを分離します。容器に手を伸ばすときは、他のピペットに触れないでください。選択したピペットを片端からのみ取り扱ってください。ボトルとフラスコのキャップをできるだけ早く交換してください。リムが作業面に触れないように、作業面にキャップを逆さまに置きます。キャップを上または下からつかまないでください。代わりに、側面からキャップに触れます。液体を吸引するときは、キャビネットの外側にある真空トラップフラスコを床の二次容器に入れます。キャビネット内での作業中に廃棄物が発生します。キャビネットに手を出し入れする頻度が高すぎると空気の流れが妨げられるため、キャビネット内に廃棄物を一時的に残しても問題ありません。作業を中断しないように、横に置いてください。手袋が乾いたらいつでも70%エタノールをたっぷりとスプレーしてください。濡れないように手をこすり合わせます。血清学的ピペットについての簡単なメモ。彼らが誤ってフード内の何か他のものに触れた場合は、遠慮なく捨ててください。汚染されている可能性のあるピペットを使用するのではなく、清潔な血清学的ピペットで新たに始めるのが最善です。細胞をインキュベーターに入れる前に、顕微鏡でどのように見えるかを確認してください。単一細胞を観察する必要があります。これは、細胞が完全に再懸濁されたことを示しています。インキュベーターに話したり、くしゃみをしたり、咳をしたり、激しく吸い込んだりしないでください。インキュベーターのドアをすばやく開閉します。必要以上に長く開いたままにしておくと、空気中に存在する汚染物質がインキュベーターに入る可能性があります。キャビネットから取り外す前に、すべてのボトルのキャップが完全に閉じていることを確認してください。メディアは光に敏感です。使用しないときは、摂氏4度の暗所で保管する必要があります。細胞培養作業が終了したら、キャビネットの内部に70%エタノールを再度スプレーし、ペーパータオルで表面を拭いて乾かします。バイオハザード廃棄物バッグを空にします。このプロセスを繰り返し、別の細胞株に切り替えるときに手袋を交換してください。ガラスフラスコで培養した浮遊培養物を扱うときは、手袋が濡れていることを確認してください。濡れた手袋でアルミホイルに触れてから、フラスコの底にのみスプレーしてから、生物学的安全キャビネット内に置きます。細胞計数用のサンプルを採取する場合は、容器から1.5 mlチューブを1本だけ取り出してください。他のチューブには触れないでください。キャップを逆さまにして作業面に置きます。内側の縁には触れないでください。側面から注意して取り扱い、完了したら交換してください。懸濁セルとガラスフラスコを取り扱うときは、フラスコの首全体を覆う二重に折り畳まれたアルミホイルを慎重に取り外してください。四隅すべてをそっと引っ張り、ホイルを逆さまにして作業面に置きます。ガラスフラスコは下からのみ取り扱ってください。ホイルが外れたら首から触れないでください。1 mlの血清学的ピペットを使用して、細胞計数用のサンプルを採取します。フラスコの側面にメディアが滴り落ちないようにしてください。もしそうなら、ペーパータオルに70%エタノールをスプレーし、すぐにきれいにしてください。生物学的安全キャビネットからボトルまたはフラスコを取り外す前に、キャップまたはアルミホイルが締められていることを確認してください。細胞の種類ごとに別々のインキュベーターを使用してください。これにより、異なる細胞タイプの交差汚染を防ぐことができます。キャビネット外の床に液体廃棄物を収集するための真空トラップフラスコを、廃棄物とラベル付けされた二次容器に配置することをお勧めします。ホースはフィルターに接続されており、毎月交換されます。ホースはキャビネットの側面から入ります。作業が完了したら、バイオハザードのゴミを取り除きます。シンクのそばの壁にガラス洗浄プロトコルを保管してください。まず、廃棄した細胞を10%漂白剤で約5分間浸します。次に、漂白剤混合物を廃棄し、フラスコを水で十分にすすいでください。石鹸を水で加え、ブラシでよくこすり、さらに水ですすいでください。そして最後のステップは、右側の蛇口にあるDI水でガラス製品をすすぐことです。ガラスフラスコをできるだけ早く洗い、ガラス製品をよくこすります。Sf9細胞は、適切にスクラブされていない場合、この死んだ細胞の縁を残します。これらのフラスコは、ガラス洗浄施設に送るのではなく、細胞培養、オートクレーブ細胞培養ガラス器具にのみ使用してください。オートクレーブの真空サイクルを40分の滅菌時間と40分の乾燥時間で使用します。ラボのメインエリアのガラス製品とは別に保管してください。すべての消耗品が1つのエリアに配置されるように細胞培養室を整理することで、ラボメンバーが消耗品を求めて細胞培養室を出る必要性を最小限に抑えます。細胞を回収するために使用され、その後細胞培養で再利用されるペットボトルには、細胞培養専用のラベルを付けてください。特定の細胞タイプに指定された細胞培養ボトルを使用してください。これらのボトルは、簡単にアクセスできるように細胞培養室に保管してください。懸濁液で育てられた培養物の場合、カビは培地中の浮遊ボールとして認識されます。細菌汚染に関しては、それはメディアを白くそして曇らせるでしょう。同様に、接着細胞の場合、カビの汚染はファジーパッチとして簡単に認識できます。細菌汚染は、通常は透明な培地、白と曇りに変わります。マイコプラズマの多くの種は、PCRベースのアッセイを使用して確実に同定できます。左側のバンドはDNAの分子量基準を示しています。右側の4つのバンドはポジティブコントロールです。マイコプラズマが検出されなかったため、テストした細胞タイプにバンドは現れません。細胞培養培地は、pHインジケーターが存在する場合、色が赤から黄色に変わります。黄色はpHが低く、培地を交換する必要があることを示します。細胞カウントの実行中に光学顕微鏡で他の増殖または細胞形状が観察される場合、これは汚染の指標である可能性があります。このタイプの破片は血球計算盤にのみ存在し、細胞培養自体には存在しない可能性があるため、血球計算盤の徹底的な洗浄は細胞計数の前に行う必要があることに注意してください。汚染は細胞培養作業を行う際の主な懸念事項の1つですが、これらのリスクは、このビデオで概説されている慣行と技術に従うことで軽減できます。毎月マイコプラズマ検査を実施し、ラボ担当者が毎年トレーニングを受け、これらの慣行を厳守すれば、細胞は健康で汚染のない状態を保ちます。これは、高価な細胞培養培地の購入、新しい細胞の購入に関連するコストの削減にも役立ち、インキュベーターの除染ダウンタイムを削減します。細胞培養を成功させる鍵は、そもそも汚染を防ぐための早期の行動であることを忘れないでください。

Research

JoVE Journal

Biology

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