Name: a piglet perinatal asphyxia model to study cardiac injury and hemodynamics after cardiac arrest, resuscitation, and the return of spontaneous circulation
Uploaded: 2023-01-13T13:20:00
Duration: 10 min 55 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Piglet Perinatal Asphyxia Model to Study Cardiac Injury and Hemodynamics after Cardiac Arrest, Resuscitation, and the Return of Spontaneous Circulation at J

Tesislerimizde perinatal asfiksi ve kalp durmasının bu domuz yavrusu modelinin oluşturulmasına, geliştirilmesine ve rafine edilmesine yardımcı olan tüm araştırma görevlilerine ve araştırmacılara teşekkür ederiz. Norveç'teki Oslo Üniversitesi, Cerrahi Araştırma Enstitüsü ve Karşılaştırmalı Tıp Enstitüsü'ndeki hayvan araştırma tesislerindeki personele ve Kanada'nın Edmonton kentindeki Alberta Üniversitesi'ndeki araştırma teknisyenlerine yıllar boyunca yaptıkları işbirliği için teşekkür ederiz. Oslo Üniversitesi Tıp Öğrencisi Araştırma Programı'na, Norveç Araştırma Konseyi'ne ve Norveç SIDS ve Ölü Doğum Derneği'ne bu yayına verdikleri ekonomik destek için teşekkür ederiz.

Yazarların bu makale ile ilgili açıklayacakları herhangi bir çıkar çatışması yoktur.

Bu domuz yavrusu modeli, birkaç kritik adımla zaman alıcı ve teknik olarak zorlayıcıdır. İlaçlarda, cerrahi müdahalelerde ve kalp durmasını indükleme yönteminde iyi bir denge, makul bir sağkalım oranını sağlamak için gereklidir. Protokol nispeten uzun süreli olduğundan ve birkaç kritik adım içerdiğinden, deneylerin yürütülmesi kapsamlı bir hazırlık ve özel ve iyi işleyen bir ekip gerektirir ve deneyler büyük hayvan araştırmaları konusunda deneyime sahip tesislerde yapılmalıdır. Araştırma ekiplerimiz paralel olarak bir ila üç domuz yavrusu üzerinde deneyler gerçekleştirdi. Deneyler sırasında her zaman en az iki kişinin bulunması ve deneylerin aynı anda üç domuz yavrusu ile yapılması gerekiyorsa en az üç kişinin bulunması önerilir.
Deneylerin özellikle kritik ve teknik açıdan zorlayıcı kısımları şunları içerir: 1) tüm ekipmanın çalıştığından ve tüm veri örnekleme araçlarının mevcut, çalışır durumda ve kalibre edildiğinden emin olmak; 2) özellikle asfiksi öncesi ve CPR sırasında iyi ve tatmin edici mekanik ventilasyon; 3) cerrahi müdahale; 4) asfiksinin indüksiyonu; 5) kardiyak arrestin belirlenmesi; 6) CPR; ve 7) özellikle kalp durması ve ROSC gibi zaman açısından kritik noktalarda örneklerin örneklenmesi. Protokoldeki en kritik adımlar asfiksinin indüklenmesi ve kalp durmasının belirlenmesidir. İlk deneylerde, perinatal asfiksinin karışık solunum ve metabolik asidozunu yakından taklit etmek için asfiksi gazına CO2 eklendi 10,11,13,14,15,16,20. Bununla birlikte, CO2 gazının bulunmadığıdaha sonraki 7,21,22 deneylerinde, mekanik ventilasyon hızının azalması ve ardından 20-30 dakika sonra ETT'nin kelepçelenmesinin de karışık solunum ve metabolik asidoza neden olduğu gözlenmiştir. Kardiyak arrestte yüksek CO2 seviyeleri sadece klinik durumu taklit etmek için önemli değildir, aynı zamanda ROSC'yi de etkileyebilir. Bunun nedeni, kalp durmasının belirli bir pH'da meydana gelmesi ve pH'ın hem laktat hem de CO2'ye bağlı olması olabilir. Hiperkapni laktik asidozdan daha kolay tersine çevrildiğinden, ağırlıklı olarak solunum ve metabolik asidoz, domuz yavrularının asfiksiden ne kadar çabuk iyileştiğini belirleyebilir. Perinatal asfiksi veya HIE'nin diğer domuz yavrusu modelleri, tipik olarak MAP değerlerine veya asfiksinin süresine göre kalp durmasından önce reoksijenasyon / resüsitasyona başlar (örneğin, 45 dakika asfiksi 29, 2 saat asfiksi 30, MAP 20 mmHg 31, MAP 30-35 mmHg 30, MAP taban çizgisi29,32'nin %70 altındadır). Bu modelin avantajı, kardiyak arresti indükleyerek, yenidoğan CPR'sini ve örnek verileri kalp durmasından önce, sırasında ve hemen sonrasında incelemek mümkün olmasıdır. Özellikle, domuz yavrularının önemli bir kısmının kalp durması sırasında PEA 7,33'e sahip olduğu tesadüfi bulgusu, modelin perinatoloji alanının ötesinde uygulanabilirliğini artırabilir 34.
Yıllar geçtikçe, model domuz yavrularının yatıştırıcılara ve cerrahi müdahaleye maruz kalmasını en aza indirmek ve veri örneklemesini ve kayıtlarını iyileştirmek için rafine edilmiştir. Önceki protokoller 10,11,13,14,15,16,20 sevofluran ile anestezi indüksiyonunu içeriyordu. Mevcut protokol doğrudan bir kulak damarı ve IV ilaçları yoluyla IV erişiminin kurulmasını içerdiğinden, bu şimdi terk edilmiştir. Bu, domuz yavrusu sıkıntısının, eğitimli bir sağlayıcı tarafından periferik intravenöz kateter yerleştirilmeden önce domuz yavrusunu bir havlu içinde kundaklayarak önlendiği için mümkündür. Midazolam ilk deneysel protokollerde de kullanılmıştır; Bununla birlikte, otopsilerin büyük çoğunluğunu gerçekleştiren araştırmacının (RS) öznel değerlendirmesi, midazolamın sürekli bir infüzyon olarak kullanılması durumunda, otopsi sırasında beynin daha kötü bir durumda olduğu yönündeydi. Bu nedenle, şimdi anesteziyi sürdürmek için sadece fentanil IV kullanıyoruz. Midazolam, domuz yavrusu sıkıntı belirtileri gösteriyorsa ve fentanil ve / veya pentobarbital etki göstermiyorsa, bolus dozlarında kullanılabilir; ancak, neredeyse hiç bir zaman onu yönetmek zorunda kalmadık.
Diğer iyileştirmeler açısından, önceki deneylerde, domuz yavruları, subglottik bir insizyondan sıkıca sabitlenmiş bir endotrakeal tüp ile trakeostomi edildi. Bu prosedür sızdırmaz bir hava yolu sağlar, ancak domuz yavrusu için cerrahi strese neden olur. Öte yandan, domuz yavrusunun daha büyük üst solunum yolları nedeniyle, endotrakeal entübasyon, kelepçesiz ETT'ler kullanıldığında önemli sızıntı ile ilişkilidir. Bu nedenle, trakeostomili domuz yavruları ile yapılan deneylerle karşılaştırıldığında sıfır sızıntı ve önemli ölçüde daha yüksek ROSC oranları ile sonuçlanan kelepçeli ETT'leri kullanmaya başladık. Ayrıca, veri örneklemesi ile ilgili bazı ayarlamalar yapılmıştır. Önceki deneylerden bazıları 7,19,22,33,35,36, sol ortak karotis arterin etrafına yerleştirilmiş bir akış probunun kullanılmasını içeriyordu. Bu akış probu son yıllarda Oslo'daki enstitümüzde hazır bulunmamaktadır. Edmonton'daki laboratuvarımız hala bir karotis akış probu kullanıyor ve kullanımı modele değerli ek hemodinamik veriler sağlayabilir. Önceki birkaç deney, sol ventriküle yerleştirilen ve karotidlerden birinden geçirilerek yönlendirilen basınç-hacimli bir kateterin kullanılmasını da içeriyordu. Göğüs kompresyonlarının uygulanması basınç-hacim kateter kayıtlarını karıştırdı ve hatta bazı durumlarda kateter yetmezliğine ve kırılmasına neden oldu. Böylece, tutuklama modelinde kullanımı terk edildi. Son zamanlarda, protokole non-invaziv CO monitörleri eklenmiştir ve EKG morfolojisi ve PEA hakkında değerli bilgiler verebileceğinden, kardiyak arrest ve CPR sırasında EKG sinyallerini optimize etmeye odaklanıyoruz. Son olarak, ROSC sonrası gözlem süresi 4 saatten 9.5 saate uzatıldı, çünkü 4 saat histopatolojik değişiklikleri, hücre ölümünü ve bazı biyobelirteçlerdeki değişiklikleri tespit etmek için çok kısa.
Bu modelin en önemli sınırlamalarından biri ve genel olarak domuz yavrularının translasyonel bir model olarak kullanılması, doğum odası CPR'sinden farklı olarak, doğum sonrası kardiyo-pulmoner geçişin domuz yavrularında zaten gerçekleşmiş olmasıdır. Domuz yavrularının, boğulmuş bir yenidoğanda olduğu gibi, açık fetal kardiyovasküler şantlara ve yüksek pulmoner basınçlara sahip olmaları olası değildir. Bu domuz yavrusu asfiksi modelinin önceki bir versiyonunu (kalp durması değil) kullanan Fugelseth ve ark.37 tarafından yapılan bir çalışma, vasküler şantların asfiksi sırasında domuz yavrularında yeniden açılmasının muhtemel olduğunu göstermesine rağmen, ventilasyon ve hemodinamik desteğe verdikleri yanıtlar farklı olabilir. Bu nedenle, fizyolojik ölçümler her zaman geçiş yapan bir insan yenidoğanını temsil etmeyebilir. Domuz yavruları ve yenidoğanlar arasındaki bazı anatomik farklılıklar da mevcuttur, örneğin domuz yavrularındaki daha büyük üst solunum yolları, ETT sızıntısına neden olur (kelepçeli ETT'lerin kullanılması önemlidir) ve daha yüksek bazal sıcaklığa neden olur.
Bu sınırlamalara rağmen, küresel araştırma topluluğunda domuz yavrularını perinatal asfiksi için translasyonel bir model olarak kullanma konusunda uzun bir gelenek vardır. Domuz, anatomisi, fizyolojisi, histolojisi, biyokimyası ve inflamasyonu38 açısından insanlara benzer ve termde (1.5-2.5 kg) düşük doğum ağırlıklarının yanı sıra, yeni doğan domuz yavrusu insan yenidoğanına oldukça benzer bir boyuta sahiptir. Boyut ve anatomi, enstrümantasyon, izleme, görüntüleme ve insan yenidoğanıyla karşılaştırılabilir biyolojik örneklerin toplanmasını sağlar. Bu model aynı zamanda resüsitasyon çalışmalarına da izin verir, çünkü göğüs kompresyonlarının insan yenidoğanlarda olduğu gibi gerçekleştirilmesi nispeten kolaydır ve domuzlar koroner kan dağılımı, iletim sistemine kan temini, miyokardın histolojik görünümü ve iskemik hasara karşı biyokimyasal ve metabolik yanıtlar dahil olmak üzere insanlarınkine benzeyen kardiyak anatomi ve fizyolojiye sahiptir39. Bir diğer önemli faktör, yenidoğan domuz yavrusunun insan yenidoğan41 ile karşılaştırılabilir perinatal beyin gelişimine sahip olmasıdır ve asfiksi, hiperkapni ve boğulmuş yenidoğanınkine benzeyen karışık solunum ve metabolik asidoz ile biyokimyasal bir tepkiye neden olur.
Sonuç olarak, bu perinatal asfiksi modeli teknik olarak zor ve zaman alıcıdır. Bununla birlikte, perinatal asfiksi sırasındaki fizyolojik ve hemodinamik değişiklikler hakkında değerli bilgiler sağlar, yenidoğan resüsitasyon çalışmalarına izin verir ve perinatoloji dışında tıptaki diğer araştırma alanlarının da ilgisini çekebilecek kalp durması öncesi, sırası ve sonrası fizyolojik değişiklikler hakkında değerli bilgiler sağlar.

Perinatal asfiksi, doğumdan önce, sırasında ve / veya sonrasında bozulmuş gaz değişiminden (hipoksemi ve hiperkapni) kaynaklanır. Hayati organlara kan akışının azalmasına (iskemi) ve ardından karışık solunum ve metabolik asidoza neden olur. Perinatal asfiksi, dünya çapında her yıl 580.000 bebek ölümüne neden olan yaygın bir doğum komplikasyonudur1. Bu sayının azaltılması, Birleşmiş Milletler'in 3.2 numaralı Sürdürülebilir Kalkınma Hedefi'nde belirtildiği gibi yenidoğanlarda ve 5 yaşın altındaki çocuklarda ölümleri azaltmak için esastır (yani, yenidoğan ölümleri 1.000 canlı doğumda 12 < ve 5 yaşın altındaki ölüm oranı <1.000 canlı doğumda 25)2.
Klinik olarak asfiksi, yenidoğan bebekte hipoksik-iskemik ensefalopati (HIE), solunum depresyonu ve dolaşım yetmezliği olarak ortaya çıkar3 (yani, vital organ hipoksi-iskemi semptom ve bulguları)4. Sonuç olarak, boğulmuş bir bebeğin nöbetler de dahil olmak üzere ensefalopati tedavisine ve ileri solunum ve dolaşım desteğine ihtiyacı olabilir. Küresel olarak, her yıl, 10 milyon kadar bebek dokunsal stimülasyon gibi bir tür müdahaleye ihtiyaç duymaktadır ve 6-7 milyon bebek doğumda yardımlı ventilasyona ihtiyaç duymaktadır5. Bu nedenle, perinatal asfiksi, ilişkili sosyoekonomik etkilerle birlikte sağlık sistemi üzerinde büyük bir baskı oluşturmaktadır. Perinatal asfiksiye atfedilen küresel hastalık yükünü azaltmak için, araştırma gruplarımız bilimsel çalışmalarda aşağıdaki odak alanlarının araştırılması gerektiğine inanmaktadır: doğum öncesi ve obstetrik bakım ve takibin iyileştirilmesi de dahil olmak üzere önleme; prognostik biyobelirteçler; ve optimize edilmiş doğum odası resüsitasyon ve stabilizasyonu6.
Yenidoğan domuz yavruları ve yakın gebelikteki insan bebekleri benzer anatomi ve patofizyolojiye sahiptir7. Perinatal asfiksi ve kardiyak arrestin hiçbir hayvan modeli, asfiksi ve kalp durmasına yol açan başarısız perinatal geçişin tüm yönünü yaratamasa da, domuz yavruları iyi translasyonel modellerdir.
1970'lerin başlarında, yetişkin domuzlarda bir hipoksi modeli geliştirdik8. Araştırma grupları 9 tarafından başarılı bir şekilde rafine edildi, böylece perinatal asfiksinin bir domuz yavrusu modeli10,11,12,13,14,15,16,17,18 sağlandı. 2007 yılında, domuz yavrularında kalp durması ile ilgili ilk deneyler Oslo Üniversitesi Hastanesi Cerrahi Araştırma Enstitüsü'nde 11,13,15,16 yapıldı. Tutuklama modeli, kılavuz geliştirme 10,13,15,16,19,20 için kanıtların yanı sıra fizyolojik çalışmalar ve ekipman / tanı araçlarının test edilmesi için geniş fırsatlar sağlamıştır 14,21, resüsitasyon protokolleri (randomize kontrollü çalışmalar)13,15,16,22 ve kan ve doku biyobelirteçleri 10,12,20. Böylece, modelin çok yönlü olduğu kanıtlanmıştır ve geleneksel olarak birkaç araştırma sorusunu cevaplamak için tek bir deneysel seri kullanılmıştır. Bu önemlidir ve deneysel hayvan araştırmalarının üç R'si (azaltma, değiştirme ve arıtma) ile uyumludur23 (yani, bilimsel amaçlar için kurban edilen hayvan sayısını azaltma ilkesi).
Aşağıdaki protokolde, perinatal asfiksinin domuz yavrusu modeli, kalp durmasının nasıl indükleneceği, tanımlanacağı ve tespit edileceği de dahil olmak üzere ayrıntılı olarak açıklanmaktadır. Model, yatıştırıcılara ve cerrahi müdahalelere maruz kalmayı en aza indirgemek için rafine edilmiştir ve mekanik ventilasyon, boğulma, resüsitasyon, resüsitasyon sonrası gözlem ve kan, idrar ve beyin omurilik sıvısı örneklerinin toplanmasını içerir. Gruplarımız ayrıca geleneksel olarak postmortem hayati organlardan doku toplar, ancak doku toplama prosedürü bu protokolde ayrıntılı olarak açıklanmamıştır. Model, boğulmuş insan yenidoğanlarının biyokimyasını yansıtan karışık solunum ve metabolik asidoz ile hipoksik bir hakareti simüle eder. İnvaziv kan basıncı (BP) ve kalp atış hızı (HR), nabız oksimetresi (PO), elektrokardiyogram (EKG), empedans kardiyografisi (ICG) ve yakın kızılötesi spektroskopi (NIRS) değerlendirmeleri ile domuz yavrularının yakından izlenmesiyle, özellikle kalbe odaklanan perinatal asfiksinin fizyolojisi ayrıntılı olarak incelenebilir.
Model teknik olarak zordur, çünkü ilaçlarda, cerrahi müdahalelerde çok ince bir denge ve makul bir hayatta kalma oranını sağlamak için kalp durmasını indükleme yöntemi gereklidir. Deneylerin yürütülmesi, kapsamlı bir hazırlık ve özel ve iyi işleyen bir ekip gerektirir. Deney hayvanlarının seçimi de başarılı deneylerin sağlanmasında önemli bir rol oynamaktadır. Bu yazıda, protokolü ve onunla ilgili deneyimlerimizi ayrıntılı olarak açıklayacağız.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acid-base machine (ABL 800 Flex)</td>
			<td>Radiometer Medical ApS, Br&#248;nsh&#248;j, Denmark</td>
			<td>989-963</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AcqKnowledge 4.0 software for PC</td>
			<td>Biopac Systems Inc., Goleta, CA, USA</td>
			<td>ACK100W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adhesive aperture drape</td>
			<td>OneMed Group Oy, Helsinki, Finland</td>
			<td>1505-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline (1 mg/mL)</td>
			<td>Takeda AS, Asker, Norway</td>
			<td>Vnr 00 58 50</td>
			<td>Dilute 1:10 in normal saline to 0.1 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial cannula 20 G 1,10 mm x 45 mm</td>
			<td>Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden</td>
			<td>682245</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial forceps</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Asphyxia gas, 8% oxygen in nitrogen</td>
			<td>Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway</td>
			<td>110093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Benelyte, 500 mL</td>
			<td>Fresenius Kabi, Norge AS, Halden, Norway</td>
			<td>79011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biopac ECG and invasive blood pressure modules, Model MP 150</td>
			<td>Biopac Systems Inc., Goleta, CA 93117, USA</td>
			<td>ECG100C, MP150WSW</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Box of cardboard for sample storage</td>
			<td>Syhehuspartner HF, Oslo, Norway</td>
			<td>2000076</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannula , 23G x 1 1/4&#34;- Nr.14</td>
			<td>Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain</td>
			<td>300700</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannula, 18G x 2&#34;</td>
			<td>Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain</td>
			<td>301900</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cannula, 21G x 1 1/2&#34;- Nr.2</td>
			<td>Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain</td>
			<td>304432</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge (Megafuge 1.0R)&#160;</td>
			<td>Heraeus instruments, Kendro Laboratory Products GmbH, Hanau, Germany</td>
			<td>75003060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidin colored 5 mg/mL</td>
			<td>Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway</td>
			<td>00 73 24</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Combi-Stopper</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4495101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CRF form</td>
			<td>Self-made</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Desmarres eyelid retractor 13 cm x 18 mm</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Thermometer ama-digit ad 15 th</td>
			<td>Amarell, Kreuzwertheim, Germany</td>
			<td>9243101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECG electrodes, Skintact</td>
			<td>Leonhard Lang, Innsbruck, Austria</td>
			<td>FS-TC1 /10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electric heating mattress</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Extension set</td>
			<td>Codan Medizinische Ger&#228;te GmbH &#38; Co KG, Lensahn, Germany</td>
			<td>71.4021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fentanyl (50 &#181;g/mL)</td>
			<td>Hameln, Saksa, Germany</td>
			<td>00 70 16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine wood chips</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Finnpipette F1, 100-1000 &#181;L</td>
			<td>VWR, PA, USA</td>
			<td>613-5550</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fully equipped surgical room</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas hose</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze swabs 5 cm x 5 cm</td>
			<td>Bastos Viegas,.a., Penafiel, Portugal</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin, heparinnatium 5000 IE/a.e./mL</td>
			<td>LEO Pharma AS, Ballerup, Denmark</td>
			<td>46 43 27</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HighClean Nonwoven Swabs, 10 cm x 10 cm</td>
			<td>Selefa, OneMed Group Ay, Helsinki, Finland</td>
			<td>223003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ICON&#160;</td>
			<td>Osypka Medical GmbH, Berlin, Germany</td>
			<td></td>
			<td>Portable non-invasive cardiometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ICON electrodes/ECG electrodes, Ambu WhiteSensor WSP25</td>
			<td>Ambu A/S, Ballerup, Denmark</td>
			<td>WsP25-00-S/50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusomat Space medical pump</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>8713050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Invasive blood pressure monitoring system</td>
			<td>Codan pvb Critical Care GmbH, Forstinning, Germany</td>
			<td>74.6604</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laryngoscope SunMed Greenlinen blade No 2&#160;</td>
			<td>KaWe Medical, Asperg, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leoni plus mechanical ventilator&#160;</td>
			<td>L&#246;wenstein Medical SE &#38; Co. KG, Bad Ems, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid nitrogen 230 L</td>
			<td>Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway</td>
			<td>102730</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge tubes, 1.5 ml</td>
			<td>Forsyningssenteret, Trondheim, Norway</td>
			<td>72.690.001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcuff endotracheal tube, size 3.5</td>
			<td>Avanos, GA, USA</td>
			<td>35162</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle holder</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neoflon, peripheral venous catheter, 24 G 0.7 mm x 19 mm</td>
			<td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB, Helsingborg, Sweden</td>
			<td>391350</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neonatal piglets 12-36 h of age</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>As young as possible</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIRS electrodes,&#160;FORE-SIGHT Single Non-Adhesive Sensor Kit Small</td>
			<td>Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA</td>
			<td>01-07-2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIRS machine, FORE-SIGHT Universal, Cerebral Oximeter MC-202, Benchtop regional oximeter&#160;FORE-SIGHT</td>
			<td>Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA</td>
			<td>01-06-2020</td>
			<td>May also use INVOS, Covidien</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL.</td>
			<td>Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway</td>
			<td>Vare nr. 141387</td>
			<td>Unmixed</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL.</td>
			<td>Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway</td>
			<td>141388</td>
			<td>For IV blood pressure monitoring, add heparin (0.2 ml heparin 5000 IE/a.e./mL in 500 mL of 0.9% NaCl)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nunc Cryogenic Tubes 1.8 mL</td>
			<td>VWR, PA, USA</td>
			<td>479-6847</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Original Perfusor Line, I Standard PE</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>8723060</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oxygen saturation monitor, MasimoSET, Rad 5</td>
			<td>Masimo, Neuch&#226;tel, Switzerland</td>
			<td>9196</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oxygen saturation monitor, OxiMax N-65</td>
			<td>Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA</td>
			<td>N65-PDN1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentobarbital (100 mg/mL)</td>
			<td>Norges Apotekerforening, Oslo, Norway</td>
			<td>Pnr 811602</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette tips</td>
			<td>VWR, PA, USA</td>
			<td>732-2383</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic container with holes</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td>Has to allow for circulation of air</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Printer labels B-492, hvit, 25 mm x 9 mm, 3000 labels</td>
			<td>VWR, PA, USA</td>
			<td>BRDY805911</td>
			<td>For nunc tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Razor, single use disposable</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber gloves</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber hot water bottles</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Self-inflating silicone pediatric bag 500 ml</td>
			<td>Laerdal Medical, Stavanger, Norway</td>
			<td>86005000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smallbore T-Port Extension Set</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>471954</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile surgical gloves latex, Sempermed supreme</td>
			<td>Semperit Technische Produkte Ges.m.b.H., Vienna, Austria</td>
			<td>size 7: 822751701</td>
			<td>Different sizes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stethoscope&#160;</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stopcocks, 3-way, Discofix</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>16494C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stylet size 3.5&#160;</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SunMed Greenlinen laryngoscope blade No 2&#160;</td>
			<td>KaWe Medical, Asperg, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical blade, size 15</td>
			<td>Swann Morton LTD, Sheffield England</td>
			<td>205</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical forceps</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical scissors</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical sponges, sterile</td>
			<td>M&#246;lnlycke Health Care, G&#246;teborg, Sweden</td>
			<td>C0130-3025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical swabs</td>
			<td>M&#246;lnlycke Health Care, G&#246;teborg, Sweden</td>
			<td>159860-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical tape Micropore 2.5 cm x 9.1 m&#160;</td>
			<td>3M Norge AS, Lillestr&#248;m, Norway</td>
			<td>153.5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture, Monsoft Monofilament Nylon 3-0</td>
			<td>Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA</td>
			<td>SN653</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture, Polysorb Braided Absorbable</td>
			<td>Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA</td>
			<td>GL884</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 0.01-1 mL Omnifix F Luer Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>9161406V</td>
			<td>Used for acid base blood sampling. Flush with heparin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL Omnifix Luer Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4616103V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 2.5 mL BD Plastipak</td>
			<td>Beckton Dickinson S.A., Madrid, Spain</td>
			<td>300185</td>
			<td>Used for blood sampling. Flush with heparinized NaCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 20 mL Omnifix Luer Loc Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4617207V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 20 mL Omnifix Luer Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4616200V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 5 mL Omnifix Luer Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4616057V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 50 mL Omnifix Luer Lock Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4617509F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 50 mL Omnifix Luer Solo</td>
			<td>B. Braun Melsungen AG,&#160; Melsungen, Germany</td>
			<td>4616502F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Table drape sheet, asap drytop</td>
			<td>Asap Norway AS, Skien, Norway</td>
			<td>83010705</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tape Tensoplast 2.5 cm x 4.5 m&#160;</td>
			<td>BSN Medical, Essity Medical Solutions, Charlotte, NC, USA</td>
			<td>66005305, 72067-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Timer</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Towels</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transparent IV-fixation</td>
			<td>Mediplast AB, Malm&#246;, Sweden</td>
			<td>60902106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound gel</td>
			<td>Optimu Medical Solutions Ltd. Leeds, UK</td>
			<td>1157</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound machine, LOGIQ e</td>
			<td>GE Healthcare, GE Medical Systems, WI, USA</td>
			<td>5417728-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Utility drape, sterile</td>
			<td>OneMed Group Oy, Helsinki, Finland</td>
			<td>1415-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vacuette K3E K3EEDTA 2mL</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH, Kremsm&#252;nster, Austria</td>
			<td>454222</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Venflon Pro Safety 22 G 0.9 mm x 25 mm</td>
			<td>Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden</td>
			<td>393222</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilation mask made to fit tightly around a piglet snout</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td>Typically cone shaped</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight</td>
			<td>Any</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a piglet perinatal asphyxia model to study cardiac injury and hemodynamics after cardiac arrest, resuscitation, and the return of spontaneous circulation

Yenidoğan domuz yavruları, perinatal asfiksi için translasyonel modeller olarak yaygın olarak kullanılmaktadır. 2007 yılında, kalp durmasını tanıtarak köklü bir domuz yavrusu asfiksi modelini uyarladık. Bu, şiddetli asfiksinin spontan dolaşımın (ROSC) geri dönüşü için geçen süre ve kardiyopulmoner resüsitasyon için alternatif protokollere göre göğüs kompresyonlarının etkisi de dahil olmak üzere kilit sonuçlar üzerindeki etkisini incelememizi sağladı. Domuz yavruları ve insan yenidoğanlar arasındaki anatomik ve fizyolojik benzerlikler nedeniyle, domuz yavruları kardiyopulmoner resüsitasyon ve hemodinamik monitörizasyon çalışmalarında iyi modeller olarak hizmet vermektedir. Aslında, bu kardiyak arrest modeli, resüsitasyon protokolleri, patofizyoloji, biyobelirteçler ve hemodinamik izleme için yeni yöntemler üzerine yapılan araştırmalar yoluyla kılavuz geliştirme için kanıt sağlamıştır. Özellikle, domuz yavrularının önemli bir kısmının kalp durması sırasında nabızsız elektriksel aktiviteye (PEA) sahip olduğu tesadüfi bulgusu, modelin uygulanabilirliğini artırabilir (yani, perinatal dönemin ötesine uzanan patofizyolojiyi incelemek için kullanılabilir). Bununla birlikte, model üretimi teknik olarak zordur ve makul bir hayatta kalma oranı sağlamak için çeşitli beceri setleri, özel personel ve cerrahi protokoller ve yatıştırıcı / analjezik kullanımı da dahil olmak üzere önlemlerin iyi bir dengesini gerektirir. Bu yazıda, protokol ayrıntılı olarak anlatılmakta ve yıllar içinde protokole adaptasyonlarla ilgili deneyimler anlatılmaktadır.

Domuz yavruları aletli hale getirildikten ve stabilize edildikten sonra, EKG ve BP ölçümleri bir veri toplama ve analiz yazılımı kullanılarak sürekli olarak toplanır. Asfiksi sırasındaki hemodinamik değişiklikler yazılımda kolayca görülebilir (Şekil 5). BP, BP = 0 olduğunda kalp durmasına kadar asfiksi sırasında kademeli olarak düşer. ROSC elde edildikten sonra, BP artar ve bir süre sonra tekrar normalleşir. BP ve EKG verileri, CPR sırasında koroner perfüzyon basıncının hesaplanması ve asfiksi öncesinde, sırasında ve / veya sonrasında BP ve EKG ritmi ve morfolojisindeki değişiklikler gibi farklı analiz türleri için kullanılabilir.
Kardiyak inme hacmi ve kardiyak indeks, empedans kardiyografisi (non-invaziv kardiyak debi ölçümü)21 ile sürekli olarak izlenir. Kardiyak hasarı incelemek için, oksidatif stres ve anaerobik metabolizmanın miyokard belirteçleri ölçülür19. Ek olarak, kardiyak troponin T de dahil olmak üzere kardiyak enzimler plazmada ölçülebilir (sonuçlar henüz yayınlanmamıştır).
Asfiksi domuz yavrusu fizyolojisini değiştirir. Şekil 6, HR (Şekil 6A), MAP (Şekil 6B), pH (Şekil 6C), pCO2 (Şekil 6D), baz fazlalığı (Şekil 6E) ve laktatın (Şekil 6F) deney boyunca nasıl değiştiğine dair bir örnek göstermektedir. Beklendiği gibi, asfiksi sırasında MAP, pH ve baz fazlalığı azalırken, pCO2 ve laktat artar (karışık solunum ve metabolik asidoz). Denemenin sonuna doğru değerler normalleşir.
Tarihsel olarak, deneyler trakeostomili domuz yavruları 11,13,15,16,19 (yani sızdırmaz bir hava yolu ile) ile gerçekleştirilmiştir. Cerrahi stresi sınırlamak için, domuz yavruları 2019'dan itibaren yapılan deneylerde kelepçeli ETT'lerle endotrakeal olarak entübe edildi. Bu deneylerde21, önemli ölçüde daha düşük ROSC oranları gözlenmiştir. Bu nedenle, son deneylerde, kelepçeli ve kelepçeli ETT'leri kullanarak ROSC oranlarını karşılaştırdık. Manşetsiz ETT'ler kullanıldığında, 7/19 domuz yavrusu ROSC'ye ulaştı ve kelepçeli ETT'ler kullanıldığında, 5/5 domuz yavrusu ROSC'ye ulaştı (p = 0.012) (yayınlanmamış sonuçlar). Bu bulgu, bu modelde sızdırmaz bir hava yolunun önemini desteklemektedir.
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64788/64788fig05.jpg"> Şekil 5: Veri toplama ve analiz yazılımı kullanılarak sürekli veri örneklemesi. Sürekli veri örneklemesinin veri toplama ve analiz yazılımında nasıl göründüğüne bir örnek. (A) Tüm deney için BP. (B) BP ve EKG'nin atımdan atıma kompleksleri. Deneyin farklı bölümleri panel (A)'da işaretlenmiştir: 1) asfiksinin başlangıcı, 2) kalp durması ve CPR, 3) ROSC. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64788/64788fig05large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64788/64788fig06.jpg"> Şekil 6: Deney boyunca kardiyovasküler ve metabolik değişkenlerdeki değişiklikler. Deney boyunca farklı değişkenlerin nasıl değiştiğinin bir gösterimi. Gösterilen altı zaman noktası aşağıdaki gibidir: hipoksi başlangıcından hemen önce (başlangıç), 10 dakika hipoksi, kalp durması, ROSC, ROSC'den 120 dakika sonra ve çalışmanın sonunda (ROSC'den 570 dakika sonra). (A) Kalp atış hızı (HR), (B) ortalama arteriyel basınç (MAP), (C) pH, (D) kısmi CO 2 basıncı (pCO2), (E) baz fazlalığı ve (F) laktat. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64788/64788fig06large.jpg" target="_blank">Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.</a>

Watch this Scientific Journal Video about A Piglet Perinatal Asphyxia Model to Study Cardiac Injury and Hemodynamics after Cardiac Arrest, Resuscitation, and the Return of Spontaneous Circulation at J

A Piglet Perinatal Asphyxia Model to Study Cardiac Injury and Hemodynamics after Cardiac Arrest, Resuscitation, and the Return of Spontaneous Circulation

Bu domuz yavrusu modeli, cerrahi enstrümantasyon, kalp durmasına kadar boğulma, resüsitasyon ve resüsitasyon sonrası gözlemi içerir. Model, hayvan başına çoklu örneklemeye izin verir ve sürekli invaziv arteriyel kan basıncı, EKG ve non-invaziv kardiyak debi monitörizasyonu kullanarak, perinatal asfiksi ve yenidoğan kardiyopulmoner resüsitasyonunda hemodinamik ve kardiyak patofizyoloji hakkında bilgi sağlar.

Kardiyak Arrest, Resüsitasyon ve Spontan Dolaşımın Geri Dönüşü Sonrası Kardiyak Hasar ve Hemodinamiği İncelemek İçin Bir Domuz Yavrusu Perinatal Asfiksi Modeli

Neonatal piglets have been extensively used as translational models for perinatal asphyxia. In 2007, we adapted a well-established piglet asphyxia model ...

Bu protokol, perinatal asfiksi ve kalp durması öncesinde, sırasında ve sonrasında hemodinamik ve fizyolojik değişikliklerin incelenmesini sağladığı için önemlidir. Bu model kardiyak arrest içerdiğinden, yenidoğan kardiyopulmoner resüsitasyonu ile ilgili faktörleri ve bunların fizyoloji ve hemodinamiği nasıl etkilediğini incelememizi sağlar. Bu model, boğulmuş yenidoğanlar hakkında değerli bilgiler sağlar.Gözlemler, nabızsız elektriksel aktivite de dahil olmak üzere kardiyak arrestin patofizyolojisine ışık tutmaktadır. Bu, diğer hasta gruplarına uygulanabilirliğini genişletir. Bu model teknik olarak zordur ve deneyler büyük ve uzun araştırmalarla deneyimli tesislerde, tercihen büyük alt peletlerde yapılmalıdır.Protokol ayrıntılı olarak incelenmelidir. Bu prosedürü göstermek için bana katılanlar, Oslo Üniversitesi'ndeki araştırma tesislerimizden Ronnaug Solberg, Anne Lee Solevag ve ameliyathane hemşiresi Sera Sebastian olacak. Cerrahi müdahaleye başlamadan önce gerekli tüm ekipmanları hazırlayın ve tüm kateterleri normal salinle doldurun.Ameliyatın başladığı zamanı vaka kayıt formuna veya CRF'ye not edin. Anestezi uygulanan domuz yavrusunun cildini, üç ila beş cerrahi sünger kullanarak mililitre renkli klorheksidin başına beş miligram ile sterilize edin ve yapışkan bir açıklık örtüsü ile örtün. Domuz yavrusu boynunun sağ tarafında 2,5 santimetre uzunluğunda bir cilt kesisi yapın ve göz kapağı retraktörlerini kullanarak insizyonun her iki tarafındaki cildi geri çekin.Daha sonra, arter forsepslerinin yardımıyla, iç juguler veni disseke edin ve açığa çıkarın ve sabit tutmak için juguler venin altına iki-üç-sıfır naylon dikiş ipliği yerleştirin. Dikişlerden birini bir elinde, santral venöz kateteri diğerinde tutarak, kateteri yerleştirin ve iğneyi geri çekin. Kateterin doğru yerleştirildiğini doğrulamak için bir mililitre normal salin ile yıkayın.Şimdi damarı damarın etrafında tutmak için kullanılan dikiş ipliklerinden birini ve kateterin damarın içinde olduğu bölgedeki kateteri bağlayın. Cildi emilebilir dört-sıfır sütürlerle kapatın ve Fentanil IV'ü ve dengeli bir karbonhidrat elektrolit çözeltisini merkezi venöz katetere bağlayın. Bir neşter kullanarak, domuz yavrusu boynunun sol tarafında, sağ taraftaki önceki insizyondan biraz daha medial olan 2,5 santimetre uzunluğunda bir cilt kesisi yapın.Daha sonra göz kapağı retraktörlerini kullanarak insizyonun her iki tarafındaki cildi geri çekin. Arter forsepslerinin yardımıyla, ortak karotis arter mediali'ni sternokleidomastoid kasına diseke edin ve maruz bırakın. Ortak karotis arteri, altına bir çift naylon üç sıfır dikiş ipliği yerleştirerek stabilize edin.Dikişlerden birini bir elinizde ve merkezi arteriyel kateteri diğer elinizde tutarak, merkezi arteriyel kateteri yerleştirin ve iğneyi geri çekin. Daha sonra arteri arter etrafında tutan dikiş ipliklerinden birini ve kateterin arterin içinde olduğu bölgedeki kateteri bağlayın. Kateterin doğru yerleştirildiğini bir mililitre normal salin ile yıkayarak onayladıktan sonra, kateter kanatlarını emilebilir dört-sıfır dikişlerle cilde sabitleyin ve cildi kapatın.Daha sonra, domuz yavrusunu invaziv arteriyel kan basıncı izleme sistemine bağlayın. Kateteri şeffaf bir pansumanla örtün ve veri toplamaya başlayın. Merkezi arteriyel kateter yerleştirildikten sonra, CRF'deki ameliyat bitiş zamanını not edin.Domuz yavrusunun fizyolojik ölçümleri ile birlikte CRF'de asfiksinin başlama zamanını not edin. Asfiksiye başlamadan hemen önce, domuz yavrusundan kan örnekleri toplayın ve Fentanyl IV uygulamasını durdurun. Asfiksiye başlamak için, mekanik ventilatördeki oksijen kadranını% 100'e çevirin ve ventilatör oranını dakikada 10 şişirme azaltın.Vantilatördeki oksijen hortumunu asfiksi gazına geçirirken, asfiksinin başarılı bir şekilde indüklenmesini sağlamak için domuz yavrusunun oksijen doygunluğunun azaltıldığından emin olun. Asfiksiye 10 dakika devam ettikten sonra ventilatör oranını dakikada 10 şişirme daha azaltın. Bu noktadan itibaren, 10 dakika sonra ve daha sonra her beş dakikada bir kalp durmasına kadar.Asit bazlı durumu izleyin ve domuz yavrusu CRF'nin fizyolojik ölçümlerini not edin. Kalp durmasına kadar asfiksiye devam edin. Ventilatör hızını her 10 dakikada bir dakikada 10 şişirme azaltın ve 30 dakikalık asfiksiden sonra endotrakeal tüpü veya ETT'yi arteriyel forseps ile sıkıştırın.Ortalama arteriyel basınç 20 milimetre cıvanın altına düştüğünde, kalbin sürekli oskültasyonunu başlatın. Kalbi oskülte edin ve kalp atışı duyulmaz hale geldiğinde ekibi bilgilendirin. Ardından, varsa ETT kelepçesini çıkarın ve protokole göre ilham verilen oksijenin ve ventilatör ayarlarının uygun fraksiyonunu ayarlayın.Aynı zamanda, vantilatördeki asfiksi gaz hortumunu oksijen çıkışına geri getirin. Son olarak, kardiyopulmoner resüsitasyona hazırlanırken kalp durması zaman noktasına karşılık gelen kan örneklerini çizin. Uluslararası Resüsitasyon İrtibat Komitesi'ni takiben üç ila bir CPR önerildiyse, domuz yavrusunu kalp durmasından sonra 30 saniye boyunca mekanik olarak havalandırın.Daha sonra göğüs kompresyonlarına başlayın ve göğüs kompresyonunun ventilasyona oranının üçe bir olmasını hedefleyin. Göğsü torasik ve posterior çapın üçte biri derinliğine sıkıştırmak ve tam göğüs geri tepmesine izin vermek için iki başparmak ve dairesel el tekniğini kullanın. 20 milimetreden daha büyük bir sistolik arteriyel basınç üretmeyi hedefleyin.30 saniyelik göğüs kompresyonlarından sonra adrenalin IV uygulayın ve her üç dakikalık CPR'den sonra maksimum dört doz için tekrarlayın. Her adrenalin uygulamasından sonra kateteri bir mililitre normal salin ile yıkayın. Arteriyel kan basıncı takiplerini ve EKG'yi gözlemleyerek spontan dolaşımın veya ROSC'nin geri dönüşünü belirleyin ve aynı şeyi kardiyak oskültasyon ile onaylayın.Resüsitasyon çabalarına ROSC'ye kadar veya en fazla 15 dakika devam edin. Resüsitasyon başarılı olursa, ROSC'nin zamanını, saniye cinsinden CPR süresini ve CRF'de uygulanan adrenalin dozlarının sayısını not edin. CPR 15 dakika içinde başarılı olmazsa, resüsitasyon çabalarını durdurun ve ölüm zamanını kaydedin.Son olarak, ROSC'den sonra, mümkün olan en kısa sürede kan örneklerini ve CRF kayıtlarını alın ve kayıtlara makalede açıklandığı gibi 9,5 saat daha devam edin. Domuz yavrusunun kan basıncı, asfiksinin başlangıcından bu yana kademeli olarak düştü ve kalp durması meydana geldiğinde sıfır oldu. BP, ROSC elde edildikten sonra tekrar normalleşmesi biraz zaman almadan önce artmıştır.Asfiksi sırasında domuz yavrusu fizyolojisindeki değişiklikler, kalp atış hızı, ortalama arteriyel basınç, pH, kısmi karbondioksit basıncı, baz fazlalığı ve laktattaki değişikliklerle açıkça gösterilmiştir. Beklendiği gibi, asfiksi sırasında ortalama arteriyel basınç, pH ve baz fazlalığı azalırken, karışık solunum ve metabolik asidozu gösteren karbondioksit ve laktatın kısmi basıncı artmıştır. Ancak, değerler denemenin sonuna doğru normalleştirildi.Kardiyopulmoner resüsitasyon sırasında iyi ventilasyonun korunması ve doğru veri örneklemesi bu protokolün özellikle kritik parçalarıdır. Bu yenidoğan modeli, ek oksijen ve resüsitasyon protokollerinin kullanımı üzerine yapılan araştırmalar yoluyla kılavuz geliştirme için kanıt sağlamıştır. Ayrıca patofizyoloji, biyobelirteçler ve hemodinamik monitörizasyon için yeni yöntemler araştırılmıştır.

Research

JoVE Journal

Medicine

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Normotermik Kardiyak Arrest ve Kardiyopulmoner Resusitasyon: İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

A Piglet Model of Neonatal Hypoxic-Ischemic Encephalopathy

Yenidoğan Hipoksik-İskemik Ensefalopati A Piglet Modeli

Birth asphyxia, which causes hypoxic-ischemic encephalopathy (HIE), accounts for 0.66 million deaths worldwide each year, about a quarter of the ...

The Perinatal Asphyxiated Lamb Model: A Model for Newborn Resuscitation

Perinatal kuzu modeli oksijensiz: Yenidoğan Resusitasyon için bir Model

Birth asphyxia accounts for nearly one million deaths worldwide each year, and is one of the primary causes of early neonatal morbidity and mortality. ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

HiPSC elde edilen kalp kası yamalar implantasyonu eskiden şiling şimdi domuz modelinde miyokardiyal yaralanma sonra

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...

Pre-clinical Model of Cardiac Donation after Circulatory Death

Dolaşım ölümünden sonra kardiyak bağış öncesi klinik model

Cardiac transplantation demand is on the rise; nevertheless, organ availability is limited due to a paucity of suitable donors. Organ donation after ...

A Rat Lung Transplantation Model of Warm Ischemia/Reperfusion Injury: Optimizations to Improve Outcomes

Sıcak iskemi / reperfüzyon hasarının bir sıçan akciğer transplantasyon modeli: sonuçları iyileştirmek için optimizasyonlar

From our experience with rat lung transplantation, we have found several areas for improvement. Information in the existing literature regarding methods ...

Transthoracic Echocardiography to Assess Post-Resuscitation Left Ventricular Dysfunction After Acute Myocardial Infarction and Cardiac Arrest in Pigs

Domuzlarda Akut Miyokard Enfarktüsü ve Kardiyak Arrest Sonrası Resüsitasyon Sonrası Sol Ventrikül Disfonksiyonunu Değerlendirmek İçin Transtorasik Ekokardiyografi

One of the main causes of out-of-hospital cardiac arrest is acute myocardial infarction (AMI). After successful resuscitation from cardiac arrest, ...

Large-Animal Model of Donation after Circulatory Death and Normothermic Regional Perfusion for Cardiac Assessment

The increase in demand for cardiac transplantation throughout the years has fueled interest in donation after circulatory death (DCD) to expand the organ ...

Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation in Animal Model After Cardiac Arrest

Pediatric Animal Model of Extracorporeal Cardiopulmonary Resuscitation After Prolonged Circulatory Arrest

Author Spotlight: Simulating Pediatric Cardiac Surgery Using a Neonatal Piglet Model

Congenital heart disease (CHD) is the most prevalent congenital malformation, with about one million births impacted worldwide per year. Comprehensive ...

Modified Heterotopic Abdominal Heart Transplantation and a Novel Aortic Regurgitation Model in Rats

Modifiye Heterotopik Abdominal Kalp Transplantasyonu ve Sıçanlarda Yeni Bir Aort Yetersizliği Modeli

Over the past 50 years, many researchers have reported heterotopic abdominal heart transplantation in mice and rats, with some variations in the surgical ...