Name: bioluminescent monitoring of graft survival in an adoptive transfer model of autoimmune diabetes in mice
Uploaded: 2022-11-18T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Bioluminescent Monitoring of Graft Survival in an Adoptive Transfer Model of Autoimmune Diabetes in Mice at JoVE.com

Agradecemos à Dra. Erica P. Cai e ao Dr. Yuki Ishikawa pelo desenvolvimento do método descrito neste protocolo (ver ref. 11). A pesquisa nos laboratórios de S.K. e P.Y. é apoiada por subsídios dos Institutos Nacionais de Saúde (NIH) (R01DK120445, P30DK036836), JDRF, Instituto de Células-Tronco de Harvard e Fundação Beatson. T.S. foi apoiado por uma bolsa de pós-doutorado do Instituto Nacional de Diabetes e Doenças Digestivas e Renais (NIDDK) (T32 DK007260-45), e K.B. foi apoiado em parte por uma bolsa da Fundação Mary K. Iacocca.

<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64836/64836fig01.jpg"> Figura 1: O fluxo de trabalho para transplante e imagem de enxertos em um modelo de transferência adotiva de diabetes em camundongos. Células NIT-1 expressando o transgene vagalume luciferase (luc2) são transplantadas subcutaneamente em camundongos NOD-scid. Os camundongos são injetados simultaneamente com esplenócitos autorreativos is...

<ol>
	<li>Katsarou, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Type+1+diabetes+mellitus.">Type 1 diabetes mellitus.</a> Nature Reviews Disease Primers. 3, 17016 (2017).</li><li>Shapiro, A. M., Pokrywczynska, M., Ricordi, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+pancreatic+islet+transplantation.">Clinical pancreatic islet transplantation.</a> Nature Reviews Endocrinology. 13 (5), 268-277 (2017).</li><li>Pagliuca, F. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+functional+human+pancreatic+beta+cells+in+vitro.">Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro.</a> Cell. 159 (2), 428-439 (2014).</li><li>Russ, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Controlled+induction+of+human+pancreatic+progenitors+produces+functional+beta-like+cells+in+vitro.">Controlled induction of human pancreatic progenitors produces functional beta-like cells in vitro.</a> EMBO Journal. 34 (13), 1759-1772 (2015).</li><li>Rezania, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversal+of+diabetes+with+insulin-producing+cells+derived+in+vitro+from+human+pluripotent+stem+cells.">Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells.</a> Nature Biotechnology. 32 (11), 1121-1133 (2014).</li><li>Vertex Announces Positive Day 90 Data for the First Patient in the Phase 1_2 Clinical Trial Dosed With VX-880, a Novel Investigational Stem Cell-Derived Therapy for the Treatment of Type 1 Diabetes. Businesswire Available from: <a target="_blank" href="https://www.businesswire.com/news/home/20211018005226/en/Vertex-Announces-Positive-Day-90-Data-for-the-First-Patient-in-the-Phase-12-Clinical-Trial-Dosed-With-VX-880-a-Novel-Investigational-Stem-Cell-Derived-Therapy-for-the-Treatment-of-Type-1-Diabetes">https://www.businesswire.com/news/home/20211018005226/en/Vertex-Announces-Positive-Day-90-Data-for-the-First-Patient-in-the-Phase-12-Clinical-Trial-Dosed-With-VX-880-a-Novel-Investigational-Stem-Cell-Derived-Therapy-for-the-Treatment-of-Type-1-Diabetes</a> (2021)</li><li>Gamble, A., Pepper, A. R., Bruni, A., Shapiro, A. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+journey+of+islet+cell+transplantation+and+future+development.">The journey of islet cell transplantation and future development.</a> Islets. 10 (2), 80-94 (2018).</li><li>Pearson, J. A., Wong, F. 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D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adoptive+transfer+of+diabetes+into+immunodeficient+NOD-scid/scid+mice:+Relative+contribution+of+CD4++and+CD8++T-cells+from+diabetogenic+versus+prediabetic+NOD.NON-Thy1a+donors.">Adoptive transfer of diabetes into immunodeficient NOD-scid/scid mice: Relative contribution of CD4+ and CD8+ T-cells from diabetogenic versus prediabetic NOD.NON-Thy1a donors.</a> Diabetes. 42 (1), 44-55 (1993).</li><li>Cai, E. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome-scale+in+vivo+CRISPR+screen+identifies+RNLS+as+a+target+for+beta+cell+protection+in+type+1+diabetes.">Genome-scale in vivo CRISPR screen identifies RNLS as a target for beta cell protection in type 1 diabetes.</a> Nature Metabolism. 2 (9), 934-945 (2020).</li><li>Parent, A. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+deletion+of+human+leukocyte+antigens+protects+stem+cell-derived+islets+from+immune+rejection.">Selective deletion of human leukocyte antigens protects stem cell-derived islets from immune rejection.</a> Cell Reports. 36 (7), 109538 (2021).</li><li>Brehm, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lack+of+acute+xenogeneic+graft-versus-host+disease,+but+retention+of+T-cell+function+following+engraftment+of+human+peripheral+blood+mononuclear+cells+in+NSG+mice+deficient+in+MHC+class+I+and+II+expression.">Lack of acute xenogeneic graft-versus-host disease, but retention of T-cell function following engraftment of human peripheral blood mononuclear cells in NSG mice deficient in MHC class I and II expression.</a> FASEB Journal. 33 (3), 3137-3151 (2019).</li><li>Abdulreda, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+imaging+of+type+1+diabetes+immunopathology+using+eye-transplanted+islets+in+NOD+mice.">In vivo imaging of type 1 diabetes immunopathology using eye-transplanted islets in NOD mice.</a> Diabetologia. 62 (7), 1237-1250 (2019).</li></ol>

A DM1 é uma doença devastadora para a qual não existe cura atualmente. A terapia de reposição de células beta oferece um tratamento promissor para pacientes com essa doença, mas a barreira crítica a essa estratégia é o potencial de ataque autoimune recorrente contra as células beta transplantadas. A engenharia genética de células SC-beta para reduzir sua visibilidade imunológica ou suscetibilidade é uma solução potencial para este problema. Descrito aqui é um protocolo para imagens não invasivas de cé...

O diabetes tipo 1 (DM1) é causado pela destruição autoimune das células beta produtoras de insulina do pâncreas. A perda de massa da célula beta resulta em deficiência de insulina e hiperglicemia. Os pacientes com DM1 dependem de múltiplas injeções diárias de insulina exógena e experimentam episódios de hiperglicemia grave e hipoglicemia ao longo de suas vidas. As complicações relacionadas a esses episódios incluem retinopatia diabética, diminuição da função renal eneuropatia1.
As injeções de insulina são um tratamento, mas não uma cura para a DM1. A substituição da massa perdida de células beta, no entanto, tem o potencial de reverter a doença, permitindo que os pacientes produzam sua própria insulina. No entanto, a oferta de ilhotas doadoras cadáveres é limitada2. As ilhotas derivadas de células-tronco (ilhotas SC) podem fornecer um suprimento virtualmente ilimitado de células beta para transplante. Vários grupos têm demonstrado que células-tronco embrionárias humanas (CTEs) e células-tronco pluripotentes induzidas (iPSCs) podem ser diferenciadas para gerar células beta-like funcionais 3,4,5. Dados promissores de ensaios clínicos iniciais indicam que essas células mantêm sua função após o transplante e podem permitir que os pacientes se tornem independentes de insulina6. No entanto, a imunossupressão crônica é necessária, aumentando sua suscetibilidade ao câncer e à infecção. Além disso, agentes imunossupressores podem ser citotóxicos para enxertos em longo prazo7. Para eliminar a necessidade de imunossupressão, as ilhotas SC podem ser geneticamente modificadas para protegê-las da autoimunidade recorrente, bem como da aloimunidade após o transplante.
A pesquisa com células-tronco é altamente exigente em custos e mão de obra. Linhagens celulares de camundongos e modelos animais são ferramentas úteis para a identificação inicial e validação experimental de estratégias para proteger células transplantadas da autoimunidade. O camundongo NOD desenvolve diabetes autoimune espontâneo com muitas semelhanças com a DM1 humana8, e a linhagem celular insulinoma NIT-1 compartilha um background genético com essa linhagem de camundongo9. O diabetes pode ser transferido adotivamente para a linhagem de camundongos NOD-scid imunodeficiente relacionada através da injeção de esplenócitos diabéticos de camundongos NOD, a fim de sincronizar temporalmente o início do diabetes em camundongos experimentais replicados10. Este modelo pode ser usado para identificar alvos genéticos de forma relativamente rápida e barata para posterior validação em ilhotas SC. Recentemente, o método foi aplicado para identificar e validar RNLS, um alvo que foi encontrado para proteger ilhotas humanas primárias da autoimunidade in vivo e ilhotas derivadas de iPSC do estresse da célula beta in vitro11. Descrito aqui é um protocolo simples para transplantar células NIT-1 geneticamente modificadas e monitorar de forma não invasiva sua sobrevivência em um modelo de transferência adotivo de diabetes autoimune em camundongos.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.05% Trypsin, 0.53 mM EDTA</td>
			<td>Corning</td>
			<td>25-052-CI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>293FT</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>R70007</td>
			<td>Fast-growing, highly transfectable clonal isolate derived from human embryonal kidney cells transformed with the SV40 large T antigen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACK Lysing Buffer</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A10492-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcohol prep pads, 70% Isopropyl alcohol</td>
			<td>Amazon/Ever Ready First Aid</td>
			<td>B08NWF31DX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD 5ml Syringe Luer-Lok Tip</td>
			<td>BD</td>
			<td>309646</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD PrecisionGlide Needle 26G x 5/8 (0.45 mm x 16 mm) Sub-Q</td>
			<td>BD</td>
			<td>305115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD 1 mL TB Syringe Slip Tip</td>
			<td>BD</td>
			<td>309659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blasticidin S HCl</td>
			<td>Corning</td>
			<td>&#160;30-100-RB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell strainer premium SureStrain, 70 &#181;m, sterile</td>
			<td>Southern Labware</td>
			<td>C4070</td>
			<td>Or use similar sterile strainer with 40-70um pore size</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CellDrop automated cell counter</td>
			<td>Denovix</td>
			<td>CellDrop BF-PAYG</td>
			<td>Or use similar cell counter device</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning 100 mL Penicillin-Streptomycin Solution, 100x</td>
			<td>Corning</td>
			<td>30-002-CI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable Aspirating Pipets, Polystyrene, Sterile, Capacity=2 mL</td>
			<td>VWR</td>
			<td>414004-265</td>
			<td>Or use similar aspirating pipette</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-Luciferin, Potassium Salt , Molecular Biology Grade, Powder, &#62;99%</td>
			<td>Goldbio</td>
			<td>LUCK-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10313039</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon BD tubes, 50 mL</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-959-49A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10437-028</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps premium for tissues, 1 x 2 teeth 5 in, German Steel</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>13-820-074</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose urine test strip</td>
			<td>California Pet Pharmacy</td>
			<td>u-tsg100</td>
			<td>Or use similar test strip for glucose measurments in urine/blood</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GlutaMAX&#8211;1 (100x)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>35050-061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infrared heating lamp</td>
			<td>Cole Parmer</td>
			<td>03057-00</td>
			<td>Or use similar infrared lamp&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin syringe 0.5 mL, U-100 29 G 0.5 in</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>309306</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane, USP</td>
			<td>Piramal Critical Care</td>
			<td>6679401725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVIS Spectrum in vivo imaging system</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>124262</td>
			<td>Instrument for non-invasively collecting bioluminescent images of transplanted cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Image Analysis Software</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>128113</td>
			<td>Software for collecting and quantifying bioluminescent signal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge tubes seal-rite, 1.5 mL</td>
			<td>USA Scientific</td>
			<td>1615-5510</td>
			<td>Or use similar sterile microcentrifuge tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NIT-1</td>
			<td>ATCC</td>
			<td>CRL-2055</td>
			<td>Pancreatic beta-celll line derived from NOD/Lt mice</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NOD.Cg-Prkdcscid/J</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td>001303</td>
			<td>Mice homozygous for the severe combined immune deficiency spontaneous mutation&#160;Prkdcscid, commonly referred to as&#160;scid, are characterized by an absence of functional T cells and B cells, lymphopenia, hypogammaglobulinemia, and a normal hematopoietic microenvironment.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NOD/ShiLtJ</td>
			<td>The Jackson Laboratory</td>
			<td>001976</td>
			<td>The NOD/ShiLtJ strain of mice (commonly called NOD) is a polygenic model for autoimmune type 1 diabetes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS, pH 7.4</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10010031</td>
			<td>No calcium, no magnesium, no phenol red</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pCMV-VSV-G</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>8454</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pLenti-luciferase-blast</td>
			<td>Made in-house</td>
			<td>Plasmid available upon request</td>
			<td>See Supplemental File 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pMD2.G</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>12259</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pMDLg/pRRE</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>12251</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylenimine, Linear, MW 25,000, Transfection Grade (PEI 25K)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>NC1014320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pRSV-Rev</td>
			<td>Addgene</td>
			<td>12253</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Restrainer for rodents, broome-style round 1 in</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>01-288-32A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors, sharp-pointed</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>08-940</td>
			<td>Or use other scissors made of surgical-grade stainless steel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue-culture treated culture dishes</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>CLS430167-20EA</td>
			<td>Or use other sterile cell culture-treated Petri dishes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezers/Forceps, fine precision medium tipped</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-000-157</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

bioluminescent monitoring of graft survival in an adoptive transfer model of autoimmune diabetes in mice

O diabetes tipo 1 é caracterizado pela destruição autoimune das células beta produtoras de insulina do pâncreas. Um tratamento promissor para essa doença é o transplante de células-tronco derivadas de células-tronco. Modificações genéticas, no entanto, podem ser necessárias para proteger as células transplantadas da autoimunidade persistente. Modelos de camundongos diabéticos são uma ferramenta útil para a avaliação preliminar de estratégias para proteger células transplantadas do ataque autoimune. Descrito aqui é um método minimamente invasivo para transplante e imagem de enxertos celulares em um modelo de transferência adotiva de diabetes em camundongos. Neste protocolo, células da linhagem beta pancreática murina NIT-1 expressando o transgene luciferase luciferase luc2 são transplantadas subcutaneamente em camundongos imunodeficientes diabéticos não obesos (NOD)-imunodeficientes combinados graves (scid). Esses camundongos são injetados simultaneamente por via intravenosa com esplenócitos de camundongos NOD espontaneamente diabéticos para transferir autoimunidade. Os enxertos são imageados em intervalos regulares por meio de imagens bioluminescentes não invasivas para monitorar a sobrevivência celular. A sobrevivência das células mutantes é comparada à das células controle transplantadas no mesmo camundongo.

Uma visão geral do protocolo é descrita na Figura 1. A sobrevivência de duas linhagens celulares, como um mutante e um controle não-alvo, pode ser comparada, ou a sobrevivência de uma linhagem celular pode ser medida em vários grupos de camundongos, como camundongos tratados com drogas versus controles tratados com veículo. A Figura 3A mostra três camundongos NOD-scid fêmeas de 8 semanas de idade transplantados com uma linhagem celular não-alvo (esquer...

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Bioluminescent Monitoring of Graft Survival in an Adoptive Transfer Model of Autoimmune Diabetes in Mice

Este protocolo descreve um método simples e minimamente invasivo para transplante e obtenção de imagens de células NIT-1 em camundongos imunodeficientes combinados não-obesos diabéticos (NOD)-graves desafiados com esplenócitos purificados de camundongos NOD espontaneamente diabéticos.

Monitoramento Bioluminescente da Sobrevida do Enxerto em Modelo de Transferência Adotiva de Diabetes Autoimune em Camundongos

Type 1 diabetes is characterized by the autoimmune destruction of the insulin-producing beta cells of the pancreas. A promising treatment for this disease ...

Esse protocolo pode ajudar a entender os mecanismos de proteção contra ataques autoimunes e identificar alvos terapêuticos para a reposição de células beta no diabetes tipo um. A principal vantagem desta técnica é o custo relativamente baixo, a simplicidade dos métodos de cultura de células, transplante e imagem, bem como a mínima invasividade das técnicas em camundongos. Indivíduos que nunca realizaram uma injeção na veia da cauda antes podem ter dificuldades para inserir a agulha na veia.Peça uma demonstração por um especialista antes da primeira injeção. Para começar, pegue o rato anestesiado e remova os pelos de seu lado dorsal usando um barbeador elétrico com um protetor, expondo aproximadamente uma polegada por dois centímetros da pele. Devolva o rato raspado à câmara de knockdown.Antes do transplante, transfira um camundongo de cada vez da câmara para uma superfície limpa equipada com um cone nasal de isoflurano e guie suavemente a cabeça do camundongo para dentro do cone nasal. Limpe a área raspada com uma almofada de preparação de álcool isopropílico para remover os pelos soltos e desinfetar a pele. Em seguida, desenhe mais de 300 microlitros de suspensão celular em uma seringa estéril de um mililitro equipada com uma agulha de calibre 26.Remova as bolhas da seringa e retenha 300 microlitros de suspensão celular enquanto empurra o excesso. Usando um par de pinças curvas seguradas na mão não dominante, levante suavemente a pele de um lado das costas do mouse para permitir um acesso mais fácil ao espaço subcutâneo. Em seguida, usando a mão dominante, posicione a seringa paralelamente às planícies coronal e sagital do corpo do rato.Com a agulha apontada para a cabeça do rato, insira-a na pele perto dos quartos traseiros e guie-a para o espaço subcutâneo, garantindo que toda a agulha permaneça sob a pele e não perfure. Ajuste a pinça para segurar a pele ao redor da base da agulha. Dispense lentamente menos de 50 microlitros da suspensão celular e confirme a formação de uma pequena protuberância sob a pele no local da injeção.Continue injetando até 200 microlitros da suspensão celular por via subcutânea. Em seguida, segurando a pinça no lugar e mantendo a agulha paralela ao corpo do rato, retire a agulha. Uma vez que a agulha é removida, segure a pele fechada com pinça por alguns segundos para evitar que as células vazem para fora da ferida de punção.Após o transplante, transfira cada camundongo para uma gaiola nova e permita que o animal se recupere totalmente da anestesia antes de adicionar mais camundongos à gaiola. Colocando o rato eutanasiado nas costas, use uma tesoura cirúrgica para fazer uma incisão vertical de aproximadamente dois centímetros de comprimento na pele. Abra o lado direito do mouse e localize o baço vermelho brilhante.Corte suavemente o baço longe do pâncreas rosa e transfira-o para uma placa de Petri estéril de 10 centímetros contendo cinco mililitros de PBS estéril. Amasse o baço com a parte superior plana de um êmbolo de seringa estéril. Coloque um filtro de 40 ou 70 mícrons em um tubo cônico de 50 mililitros e marque-o com cinco mililitros de PBS.Transfira a suspensão do baço para o coador e amasse-a suavemente. Lave o prato com 10 mililitros de PBS e transfira a lavagem para o coador. Continue amassando até que nenhuma cor vermelha permaneça no coador.Em seguida, gire o tubo a uma velocidade de 500 G por cinco minutos à temperatura ambiente e remova o sobrenadante com uma pipeta aspiradora antes de ressuspender o pellet de células em cinco mililitros de tampão de lise ACK pré-aquecido à temperatura ambiente para realizar a lise das hemácias à temperatura ambiente por quatro minutos. Apague a reação com cinco mililitros de meio celular NIT-1 por cinco mililitros de tampão de lise e passe a suspensão celular em um tubo de centrífuga de 50 mililitros através de um filtro fresco para remover aglomerações. Gire o tubo a 500 G durante cinco minutos à temperatura ambiente.Em seguida, ressuspenda o pellet de células em 20 mililitros de PBS antes de contar as células. Após a contagem, gire as células a 500 G por cinco minutos à temperatura ambiente. Ressuspenda o pellet de células em PBS estéril em um tubo de reação de bloqueio seguro de 1,5 mililitro.Injete imediatamente ou armazene as células no gelo por no máximo uma hora. Aqueça o corpo dos camundongos adultos receptores NOD SCID usando uma lâmpada de calor por cinco a 10 minutos para vasodilatar as veias. Ressuspenda a solução de esplenócito antes de cada injeção.Para cada rato, retire 100 microlitros da suspensão de esplenócito pré-aquecida na seringa, certifique-se de que não existem bolhas de ar. Em seguida, coloque o mouse no dispositivo de retenção antes de capturar sua cauda com a mão não dominante. Localize uma das duas veias laterais da cauda.Gire suavemente a cauda, se necessário. Limpe a cauda com um lenço de desinfecção contendo álcool isopropílico a 70%. Usando a mão dominante, insira a agulha em um ângulo agudo na região central da cauda.Com o bisel da agulha virado para cima, deslize a agulha alguns milímetros através da pele. Em seguida, aplique uma pressão suave na seringa para injetar a suspensão de esplenócitos. Não permita que a agulha se mova mais para dentro ou para fora durante a injeção.As injeções bem-sucedidas não dão origem a contrapressão durante a injeção e são indicadas por fluxo sanguíneo transparente ou branco imediatamente após a injeção. Após a injeção, solte suavemente a agulha para fora da veia e aplique uma leve pressão na cauda com um lenço de desinfecção até que o sangramento pare. Solte o mouse do dispositivo de retenção e transfira-o suavemente para uma gaiola recém-preparada.Pelo menos cinco minutos antes da aquisição de imagens, injete o camundongo intraperitonealmente com a dosagem apropriada de solução de D-luciferina usando uma seringa de um mililitro e uma agulha calibre 26. Depois de fazer login no software de geração de imagens, no painel de controle, selecione inicializar. Para salvar automaticamente os dados de imagem, clique em aquisição seguida de salvamento automático e crie as pastas apropriadas no computador.Quando o instrumento terminar de inicializar, defina o tempo de exposição para um minuto. Coloque o mouse sobre o instrumento de imagem em decúbito ventral com os membros jogados e guie sua cabeça até o cone do nariz. Achate o mouse suavemente pressionando o centro de suas costas com as duas mãos e, em seguida, espalhe-as para fora e afastadas.Em seguida, no software de imagem, selecione adquirir e registrar quaisquer detalhes relevantes do experimento na janela pop-up. Em dois dos três camundongos estudados, o enxerto controle foi destruído até o 18º dia, como evidenciado pela perda dos respectivos sinais bioluminescentes. No outro camundongo, no entanto, o enxerto mutante foi destruído enquanto o enxerto controle sobreviveu, destacando a variação biológica entre os animais.O sinal bioluminescente foi quantificado e a sobrevida do enxerto foi relatada como a porcentagem do sinal bioluminescente residual em comparação com o sinal no primeiro momento. A razão entre os sinais luminescentes do enxerto mutante e do enxerto controle para cada camundongo foi utilizada para visualizar a variação entre os animais. Antes da transferência da doença, as células transplantadas podem se replicar, resultando em enxertos expandidos visíveis através da pele.Aos exames de imagem, esses enxertos exibiam sinais bioluminescentes saturados que não podiam ser quantificados com precisão. Os enxertos podem ser isolados em vários momentos para caracterização das células imunes infiltrantes por, por exemplo, citometria de fluxo para investigar os mecanismos de ataque autoimune e proteção do enxerto.

Research

JoVE Journal

Biology

Induction and Monitoring of Adoptive Delayed-Type Hypersensitivity in Rats

Indução e Monitoramento de hipersensibilidade tardia-Type Adoptive em Ratos

Delayed type hypersensitivity (DTH) is an inflammatory reaction mediated by CCR7- effector memory T lymphocytes that infiltrate the site of injection of ...

Biologia

In vivo Bioluminescent Imaging of Mammary Tumors Using IVIS Spectrum

In vivo Bioluminescent Imaging of Mammary Tumors Using IVIS Spectrum

In vivo Bioluminescent imagem de tumores mamários Usando Spectrum IVIS

4T1 mouse mammary tumor cells can be implanted sub-cutaneously in nu/nu mice to form palpable tumors in 15 to 20 days. This xenograft tumor model system ...

Quantification of &gamma;H2AX Foci in Response to Ionising Radiation

Quantification of ÃƒÅ½Ã‚Â³H2AX Foci in Response to Ionising Radiation

Quantificação de γH2AX Focos em resposta à radiação ionizante

DNA double-strand breaks (DSBs), which are induced by either endogenous metabolic processes or by exogenous sources, are one of the most critical DNA ...

Evaluation of the Spatial Distribution of &gamma;H2AX following Ionizing Radiation

Evaluation of the Spatial Distribution of ÃƒÅ½Ã‚Â³H2AX following Ionizing Radiation

Avaliação da Distribuição Espacial da γH2AX seguintes Radiação Ionizante

An early molecular response to DNA double-strand breaks (DSBs) is phosphorylation of the Ser-139 residue within the terminal SQEY motif of the histone ...

Long-term Lethal Toxicity Test with the Crustacean Artemia franciscana

Long-term Lethal Toxicity Test with the Crustacean Artemia franciscana

A longo prazo de Teste de toxicidade letal com o crustáceo Artemia franciscana</em

Our research activities target the use of biological methods for the evaluation of environmental quality, with particular reference to saltwater/brackish ...

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Imagem Funcional de gordura marrom em ratos com FDG micro-PET/CT

Brown adipose tissue (BAT) differs from white adipose  tissue (WAT) by its discrete location and a brown-red color due to rich  vascularization and high ...

Autonomously Bioluminescent Mammalian Cells for Continuous and Real-time Monitoring of Cytotoxicity

Células de mamíferos autonomamente bioluminescentes para monitoramento contínuo e em tempo real de citotoxicidade

Mammalian  cell-based in vitro assays have been  widely employed as alternatives to animal testing for toxicological studies but  have been limited due to ...

Measurement of Survival Time in Brachionus Rotifers: Synchronization of Maternal Conditions

Measurement of Survival Time in Brachionus Rotifers: Synchronization of Maternal Conditions

Measurement of Survival Time in<em&gt; Brachionus</em&gt; Rotifers: Sincronização de condições maternas

Rotifers are microscopic cosmopolitan zooplankton used as models in ecotoxicological and aging studies due to their several advantages such as short ...

A Murine Model of a Burn Wound Reconstructed with an Allogeneic Skin Graft

Um modelo murino de uma ferida de queimadura reconstruída com um enxerto de pele aogenética

Trivial superficial wounds heal without complications by primary intention. Deep wounds, such as full thickness burns, heal by secondary intention and ...