Name: standardization of transfer across labs between flow cytometers for detection of lymphocytes in japanese encephalitis vaccinated children
Uploaded: 2023-02-10T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children at JoVE.com

RW blev støttet af Beijing Natural Science Foundation, Kina (nr. 7222059), National Natural Science Foundation of China (nr. 82002130), XZ blev støttet af CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (nr. 2019-I2M-5-026).

Undersøgelsen blev godkendt af den etiske komité for Beijing Children's Hospital, Capital Medical University (godkendelsesnummer: 2020-k-85). Informeret samtykke fra forsøgspersoner blev frafaldet, da kun restprøver efter klinisk test blev anvendt i denne undersøgelse. To laboratorier er involveret i denne undersøgelse. Det overførende laboratorium er, hvor den standardiserede metode blev udviklet ved hjælp af et flowcytometer. Cytometeret i dette laboratorium kaldes i det følgende cytom...

<ol>
	<li>Cabanski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flow+cytometric+method+transfer:+Recommendations+for+best+practice.">Flow cytometric method transfer: Recommendations for best practice.</a> Cytometry Part B. Clinical Cytometry. 100 (1), 52-62 (2021).</li><li>Le Lann, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+procedure+for+flow+cytometry+data+harmonization+in+prospective+multicenter+studies.">Standardization procedure for flow cytometry data harmonization in prospective multicenter studies.</a> Scientific Reports. 10 (1), 11567 (2020).</li><li>Linskens, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+standardization+of+flow+cytometry+diagnostic+screening+of+primary+immunodeficiency+by+software-based+automated+gating.">Improved standardization of flow cytometry diagnostic screening of primary immunodeficiency by software-based automated gating.</a> Frontiers in Immunology. 11, 584646 (2020).</li><li>Glier, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+of+8-color+flow+cytometry+across+different+flow+cytometer+instruments:+A+feasibility+study+in+clinical+laboratories+in+Switzerland.">Standardization of 8-color flow cytometry across different flow cytometer instruments: A feasibility study in clinical laboratories in Switzerland.</a> Journal of Immunological Methods. 475, 112348 (2019).</li><li>Wang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+epidemiology+and+disease+burden+of+children+hospitalized+for+viral+infections+within+the+family+Flaviviridae+in+China:+A+national+cross-sectional+study.">The epidemiology and disease burden of children hospitalized for viral infections within the family Flaviviridae in China: A national cross-sectional study.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 16 (7), e0010562 (2022).</li><li>Ding, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reference+values+for+peripheral+blood+lymphocyte+subsets+of+healthy+children+in+China.">Reference values for peripheral blood lymphocyte subsets of healthy children in China.</a> The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 142 (3), 970-973 (2018).</li><li>Zhang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+polyfunctional+T+cells+in+children+vaccinated+with+Japanese+encephalitis+vaccine+via+the+flow+cytometry+technique.">Detection of polyfunctional T cells in children vaccinated with Japanese encephalitis vaccine via the flow cytometry technique.</a> Journal of Visualized Experiments. (187), e64671 (2022).</li><li>Yu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4(+)+CD25+(+)+CD127+(low/-)+T+cells:+a+more+specific+Treg+population+in+human+peripheral+blood.">CD4(+) CD25 (+) CD127 (low/-) T cells: a more specific Treg population in human peripheral blood.</a> Inflammation. 35 (6), 1773-1180 (2012).</li><li>Kalina, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducibility+of+flow+cytometry+through+standardization:+opportunities+and+challenges.">Reproducibility of flow cytometry through standardization: opportunities and challenges.</a> Cytometry Part A. 97 (2), 137-147 (2020).</li><li>Sommer, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implementation+of+highly+sophisticated+flow+cytometry+assays+in+multicenter+clinical+studies:+considerations+and+guidance.">Implementation of highly sophisticated flow cytometry assays in multicenter clinical studies: considerations and guidance.</a> Bioanalysis. 7 (10), 1299-1311 (2015).</li><li>Glier, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comments+on+EuroFlow+standard+operating+procedures+for+instrument+setup+and+compensation+for+BD+FACS+Canto+II,+Navios+and+BD+FACS+Lyric+instruments.">Comments on EuroFlow standard operating procedures for instrument setup and compensation for BD FACS Canto II, Navios and BD FACS Lyric instruments.</a> Journal of Immunological Methods. 475, 112680 (2019).</li></ol>

Immunofænotypning af perifere blodlymfocytundergrupper kan hjælpe med at forstå ændringerne i cellemedieret adaptiv immunitet efter vaccination hos børn. I kliniske applikationer opstår der uventede situationer, såsom manglende detektering af prøver rettidigt eller udskiftning af et flowcytometer; Derfor er der brug for hurtige standardiserede metoder, der letter overførsler mellem flowcytometre i forskellige laboratorier 9,10,11.<sup class="x...

Standardiseringen af flowcytometri er nyttig til sammenlignelighed af resultater opnået fra forskellige cytometre på tværs af forskellige laboratorier og studiecentre og bidrager til gensidig anerkendelse af resultater for at forbedre arbejdseffektiviteten. Et stigende antal scenarier kræver standardisering. Under lægemiddeludviklingsprocessen er flowcytometristandardisering vigtig, da et udviklet og valideret assay vil understøtte hele lægemiddeludviklingsprocessen fra præklinisk til klinisk analyse. Flowcytometriske metoder overføres ofte mellem medicinalindustrien og samarbejdende laboratorier1. Desuden er det vigtigt at indhente sammenlignelige data fra multicentriske kliniske undersøgelser. For eksempel blev der udviklet en standardiseringsarbejdsgang i det systemiske autoimmune sygdomme Multicenter Clinical Research Project for at opnå sammenlignelige data fra multicentrisk flowcytometri2.
Standardiseringen af flowcytometrimetoder er udfordrende. De udfordringer, der opleves på tværs af laboratorier, tilskrives manglen på standardiserede materialer, softwarekompatibilitetsproblemer, uoverensstemmelser i instrumentopsætning og brugen af forskellige konfigurationer blandt forskellige flowcytometre og divergerende gatingstrategier mellem centrene 3,4. Derfor er det vigtigt at foretage en gap-analyse mellem laboratorier. Adgang til prøver, kvalitetssystemer, personalekvalifikationer og instrumentkonfiguration skal gennemgås for at sikre, at kravene er opfyldt.
På nuværende tidspunkt har børn, der er vaccineret med den japanske encefalitis (JE) vaccine, en signifikant reduceret forekomst af JE5. Overvågning af perifere blodimmunceller kan hjælpe med at forstå ændringerne i cellemedieret adaptiv immunitet efter vaccination og sammenhængen mellem ændringerne i perifere blodlymfocytundergrupper og virkningerne af vaccination. På grund af den begrænsede stabilitet af fuldblodsprøver udføres evalueringer af vaccineeffektivitet ofte i flere centre. Til denne analyse definerede vi naive CD8+- eller CD4+ T-celler som CD27+ CD45RA+, T-celler med central hukommelse (TCM) som CD27+ CD45RA-, effektorhukommelses-T-celler (TEM) som CD27- CD45RA- og terminalt differentierede effektorhukommelses-T-celler (TEMRA) som CD27- CD45RA+. CD19+ B-celler kan opdeles i populationer, der udtrykker CD27 versus IgD 6,7, naive B-celler udtrykker CD27n-hukommelse B-celler (mBC'er) kan identificeres baseret på ekspressionen af IgD 6, og regulatoriske T-celler (Tregs) kan identificeres som CD4+CD25++CD127lav 8. For at etablere et standardiseret flowcytometrieksperiment for at opnå konsistens og sammenlignelighed af eksperimentelle resultater i flere centre blev der etableret en hurtig og gennemførlig standardiseringsmetode for at lette overførslen af protokoller på tværs af forskellige flowcytometre til påvisning af lymfocytter i fuldblod hos JE-vaccinerede børn. Seks raske børn (2 år) blev rekrutteret fra Beijing Children's Hospital, Capital Medical University. Efter at have modtaget en prime og boost vaccination med en levende svækket JE SA14-14-2 vaccine mindre end 6 måneder før, blev perifere blodprøver indsamlet fra de frivillige. Meget sammenlignelige data blev opnået fra forskellige instrumenter efter standardiserede procedurer, hvilket er nyttigt for multicentervurderinger.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>BD CompBeads Anti-Mouse Ig, &#954;/Negative Control Compensation Particles Set</td>
			<td>BD</td>
			<td>552843</td>
			<td>compensation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSCanto</td>
			<td>BD</td>
			<td>FACSCanto</td>
			<td>flow Cytometry A in the transferring lab</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSDiva CS&#38;T Research Beads</td>
			<td>BD</td>
			<td>655051</td>
			<td>define flow cytometer baseline and track cytometer performance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon BV421 Mouse Anti-Human CD127</td>
			<td>BD</td>
			<td>562436</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon BV605 Mouse Anti-Human CD27</td>
			<td>BD</td>
			<td>562656</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon V500 Mouse Anti-Human CD45</td>
			<td>BD</td>
			<td>560777</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD LSRFortessa</td>
			<td>BD</td>
			<td>LSRFortessa</td>
			<td>flow Cytometry B in the test method lab</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD OptiBuild BB700 Mouse Anti-Human CD19</td>
			<td>BD</td>
			<td>745907</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD OptiBuild R718 Mouse Anti-Human CD8</td>
			<td>BD</td>
			<td>751953</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen APC Mouse Anti-Human CD45RA</td>
			<td>BD</td>
			<td>550855</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen APC-H7 Mouse Anti-Human CD3</td>
			<td>BD</td>
			<td>560176</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen FITC Mouse Anti-Human CD4</td>
			<td>BD</td>
			<td>566320</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen PE Mouse Anti-Human CD25</td>
			<td>BD</td>
			<td>555432</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen PE-Cy7 Mouse Anti-Human IgD</td>
			<td>BD</td>
			<td>561314</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brilliant Staining Buffer Plus</td>
			<td>BD</td>
			<td>566385</td>
			<td>Staining Buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810</td>
			<td>Cell centrifugation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge Tube</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>BD-35209715</td>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CS&#38;T IVD Beads</td>
			<td>BD</td>
			<td>662414</td>
			<td>standard beads to setup cytometer settings in different flow cytometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysing Solution 10x Concentrate</td>
			<td>BD</td>
			<td>349202</td>
			<td>lysing red blood cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td>PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Round-bottom test tube</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>352235</td>
			<td>5 mL test tube</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

standardization of transfer across labs between flow cytometers for detection of lymphocytes in japanese encephalitis vaccinated children

Et stigende antal laboratorier har brug for at indsamle data fra flere flowcytometre, især til forskningsprojekter udført på tværs af flere centre. Udfordringerne ved at bruge to flowcytometre i forskellige laboratorier inkluderer manglen på standardiserede materialer, softwarekompatibilitetsproblemer, uoverensstemmelser i instrumentopsætning og brugen af forskellige konfigurationer til forskellige flowcytometre. For at etablere et standardiseret flowcytometrieksperiment for at opnå konsistens og sammenlignelighed af eksperimentelle resultater på tværs af flere centre blev der etableret en hurtig og gennemførlig standardiseringsmetode til overførsel af parametre på tværs af forskellige flowcytometre. 
Metoderne udviklet i denne undersøgelse tillod overførsel af eksperimentelle indstillinger og analyseskabeloner mellem to flowcytometre i forskellige laboratorier til påvisning af lymfocytter hos japanske encefalitis (JE) -vaccinerede børn. En konsistent fluorescensintensitet blev opnået mellem de to cytometre ved anvendelse af fluorescensstandardperler til at etablere cytometerindstillingerne. Sammenlignelige resultater blev opnået i to laboratorier med forskellige typer instrumenter. Ved hjælp af denne metode kan vi standardisere analyse til evaluering af immunfunktionen hos JE-vaccinerede børn i forskellige laboratorier med forskellige instrumenter, mindske forskellene i data og resultater blandt flowcytometre i flere centre og give en gennemførlig tilgang til gensidig akkreditering af laboratorieresultater. Standardiseringsmetoden for flowcytometereksperimenter vil sikre effektiv udførelse af forskningsprojekter på tværs af flere centre.

Figur 1 viser et globalt regneark med målværdiskabelonen for CST's lyse perler. Ved hjælp af et FSC / SSC-plot tegnes en polygonport for at vælge CST-lyse perler. Histogramplots af 10 fluorescenskanaler blev opnået for CST lyse perler: FITC, PE, BB700, PE-Cy7, APC, R718, APC-H7, BV421, V500 og BV605. Målværdien for hver parameter vises ved at vise medianen inden for histogramportene i tabel 2. Skærmbillederne af skabeloner og parameterindstillinger i softwaren til cy...

Watch this Scientific Journal Video about Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children at JoVE.com

Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children

I denne undersøgelse blev der udviklet en metode til at lette overførslen af eksperimentelle indstillinger og analyseskabeloner mellem to flowcytometre i to laboratorier til påvisning af lymfocytter hos japanske encefalitisvaccinerede børn. Standardiseringsmetoden til flowcytometereksperimenterne gør det muligt at gennemføre forskningsprojekter effektivt i flere centre.

Standardisering af overførsel på tværs af laboratorier mellem flowcytometre til påvisning af lymfocytter hos japanske encefalitisvaccinerede børn

An increasing number of laboratories need to collect data from multiple flow cytometers, especially for research projects performed across multiple ...

Flowcytometerets standardiseringsmetode giver en gennemførlig tilgang til gensidig akkreditering af laboratorieresultater og sikrer resultaternes konsistens med forskningsprojekter på tværs af flere centre. Metoden minimerer tidsforbruget er let at udføre, er udstyret til at automatisere, analysere skabelon og kan dramatisk reducere kravet til dataanalyse. Begynd at oprette en ny konfiguration i softwaren til cytometer A fra det overførende laboratorium ved at klikke på cytometerknappen og vælge visningskonfigurationer.Højreklik på mappen med basiskonfigurationer på konfigurationslisten, vælg ny mappe og omdøb den. Opret derefter en ny konfiguration ved at højreklikke på basiskonfigurationen og kopiere den. Højreklik på den nye mappe, og indsæt basiskonfigurationen, før du omdøber den nye konfiguration, Standardiseret metodeoverførsel"Træk parameternavnet, f.eks. FETC fra parameterlisten, til den relevante detektor 530/30, rediger også yderligere parametre til den nye konfiguration.For at standardisere eksperimentet i det overførende laboratorium skal du køre en præstationskontrol ved hjælp af denne cytometer A-opsætning og spore perlerne for at kontrollere, at cytometeret A fungerer godt. Højreklik på cytometer A-indstillinger i softwarebrowservinduet, og opret et regneark ved at vælge applikationsindstillingerne. Brug derefter en ufarvet prøve til at justere fotomultiplikatorrøret eller PMT-spændingerne i det fremadrettede spredningsområde eller FSC og sidespredningsområdet eller SSC og alle fluorescensparametre.Gem applikationsindstillingerne ved at højreklikke på eksperimentcytometerindstillingerne og vælge applikationsindstillinger. Hvis du vil tilføje kompensationskontrolelementer automatisk, skal du klikke på eksperimentknappen og vælge menuen til opsætning af kompensation, før du vælger Opret kompensationskontrolelementer. Optag data for alle kompensationskontrolperler.Når du er færdig, skal du klikke på eksperimentet og vælge kompensationsopsætning, beregne kompensationen automatisk, før du registrerer dataene for enkeltcellefarvede kontroller. Brug CD45 RAA APC til at ændre kompensationsværdien for R7-18 til 15 % APC, brug CD19 BB700 til at ændre kompensationsværdien for APC H7 til 14 %BB700, og brug CD8 R7-18 til at ændre kompensationsværdien for APC H7 til 60 % R7-18. Når du har registreret dataene for CST-perlerne, skal du oprette et globalt regneark med målværdiskabelonen for CST-lyse perler, når du er færdig, køre prøverne på flowcytometerarrayet og indsamle 25.000 lymfocytter.Opret et globalt regneark med analyseskabelonen til prøverne, og gem den eksperimentelle skabelon på cytometer A.Eksporter den eksperimentelle skabelon ved hjælp af cd-rom'en. For at overføre den eksperimentelle skabelon til cytometer B i testlaboratoriet skal du udføre en præstationskontrol ved hjælp af CST-perler for at kontrollere, at cytometer B fungerer godt. Importer den eksperimentelle skabelon fra cytometer A, og opret et eksperiment for cytometer B ved hjælp af skabelonen.Ved hjælp af det samme parti CST-perler justeres fluorescerende parameterspændinger for hver fluorescenskanal, så de matcher det tidligere MFI-instrument. Juster om nødvendigt FSC-spændingen ved hjælp af den ubejdsede prøve. Højreklik på de eksperimentelle cytometerindstillinger, og vælg applikationsindstillinger for at gemme applikationsindstillingerne.Rediger derefter kompensationsværdien for R7-18 til 15% APC ved hjælp af CD45 RA APC. Brug CD19 BB700 til at ændre kompensationsværdien for APC H7 til 24 % BB700. Og brug CD8 R7-18 til at ændre kompensationsværdien for APC H7 til 60 % R7-18.Efter kompensationsværdiændring køres prøverne på flowcytometeret B og samler 25.000 lymfocytter. I et globalt regneark med målværdiskabelonen til cytometeropsætning og sporing eller CST lyse perler blev histogramplottene for 10 fluorescenskanaler opnået, målværdien for hver parameter blev vist ved at vise medianen inden for histogramportene. prikplottene af prøven opnået ved anvendelse af cytometeret A og B efter instrumentstandardisering demonstrerede konsistensen af data mellem forskellige instrumenter ved hjælp af en automatisk analyseskabelon.Der blev ikke observeret nogen signifikant forskel, når resultaterne fra seks prøver blev sammenlignet på tværs af to forskellige instrumentmodeller. Resultaterne af 15 lymfoide undergrupper opnået fra forskellige instrumenter ved anvendelse af den standardiserede metode erhvervede meget sammenlignelige data. Det samme konfigurationsnavn, oprettelse af skabelonen og oprettelse af økoteknologiske værdier for sikkerhedsperler i forskellige instrumenter er kritiske trin i denne protokol.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

This protocol describes a simple approach for adhesive-tape-based sampling of tomato and other fresh produce surfaces, followed by on-tape fluorescence in ...

Locked Nucleic Acid Flow Cytometry-fluorescence in situ Hybridization (LNA flow-FISH): a Method for Bacterial Small RNA Detection

Locked Nucleic Acid Flow Cytometry-fluorescence in situ Hybridization LNA flow-FISH: a Method for Bacterial Small RNA Detection

Locked Nucleic Acid Flowcytometri-fluorescens In situ Hybridisering (LNA flow-FISH): En metode til bakteriel små RNA Detection

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a powerful technique that is used to detect and localize specific nucleic acid sequences in the cellular ...

Total Protein Extraction and 2-D Gel Electrophoresis Methods for Burkholderia Species

Total Protein Extraction and 2-D Gel Electrophoresis Methods for Burkholderia Species

Total protein Udvinding og 2-D gelelektroforese Metoder til<em&gt; Burkholderia</em&gt; Arter

The investigation of  the intracellular protein levels of bacterial species is of importance to  understanding the pathogenic mechanisms of diseases ...

Detection of Fluorescent Nanoparticle Interactions with Primary Immune Cell Subpopulations by Flow Cytometry

Påvisning af fluorescerende Nanopartikel Interaktioner med Primary Immune cellesubpopulationer ved flowcytometri

Engineered nanoparticles are endowed with very promising properties for therapeutic and diagnostic purposes. This work describes a fast and reliable ...

A Simple and Rapid Protocol to Non-enzymatically Dissociate Fresh Human Tissues for the Analysis of Infiltrating Lymphocytes

En enkel og hurtig protokol til ikke-enzymatisk dissociere frisk humant væv til analyse af lymfocytter

The ability of malignant cells to evade the immune system, characterized by tumor escape from both innate and adaptive immune responses, is now accepted ...

Isolation and Flow Cytometric Characterization of Murine Small Intestinal Lymphocytes

Isolering og Flowcytometrisk karakterisering af murine Lille Intestinal Lymfocytter

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both ...

Visualizing the Effects of Sputum on Biofilm Development Using a Chambered Coverglass Model

Visualisere virkningerne af sputum på Biofilm Development Ved hjælp af en Chambered dækglas Model

Biofilms consist of groups of bacteria encased in a self-secreted matrix. They play an important role in industrial contamination as well as in the ...

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

Isolation and In Vitro Culture of Murine and Human Alveolar Macrophages

Isolation og In Vitro kultur af Murine og menneskelige alveolær makrofager

Alveolar macrophages are terminally differentiated, lung-resident macrophages of prenatal origin. Alveolar macrophages are unique in their long life and ...

A High-throughput Platform for the Screening of Salmonella spp./Shigella spp.

A High-throughput Platform for the Screening of Salmonella spp./Shigella spp.

En høj overførselshastighed Platform for Screening af Salmonella spp. /Shigella spp.

Fecal-oral transmission of acute gastroenteritis occurs from time to time, especially when people who handled food and water are infected by Salmonella ...