Name: standardization of transfer across labs between flow cytometers for detection of lymphocytes in japanese encephalitis vaccinated children
Uploaded: 2023-02-10T13:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children at JoVE.com

RW stöddes av Beijing Natural Science Foundation, Kina (nr 7222059), National Natural Science Foundation of China (nr 82002130), XZ stöddes av CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (nr 2019-I2M-5-026).

Studien godkändes av etikkommittén vid Beijing Children's Hospital, Capital Medical University (godkännandenummer: 2020-k-85). Informerat samtycke från försökspersoner avstod från eftersom endast restprover efter kliniska tester användes i denna studie. Två labb är involverade i denna studie. Det överförande labbet är där den standardiserade metoden utvecklades med hjälp av en flödescytometer. Cytometern i detta laboratorium kallas nedan cytometer A. Testmetodlabo...

<ol>
	<li>Cabanski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flow+cytometric+method+transfer:+Recommendations+for+best+practice.">Flow cytometric method transfer: Recommendations for best practice.</a> Cytometry Part B. Clinical Cytometry. 100 (1), 52-62 (2021).</li><li>Le Lann, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+procedure+for+flow+cytometry+data+harmonization+in+prospective+multicenter+studies.">Standardization procedure for flow cytometry data harmonization in prospective multicenter studies.</a> Scientific Reports. 10 (1), 11567 (2020).</li><li>Linskens, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+standardization+of+flow+cytometry+diagnostic+screening+of+primary+immunodeficiency+by+software-based+automated+gating.">Improved standardization of flow cytometry diagnostic screening of primary immunodeficiency by software-based automated gating.</a> Frontiers in Immunology. 11, 584646 (2020).</li><li>Glier, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+of+8-color+flow+cytometry+across+different+flow+cytometer+instruments:+A+feasibility+study+in+clinical+laboratories+in+Switzerland.">Standardization of 8-color flow cytometry across different flow cytometer instruments: A feasibility study in clinical laboratories in Switzerland.</a> Journal of Immunological Methods. 475, 112348 (2019).</li><li>Wang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+epidemiology+and+disease+burden+of+children+hospitalized+for+viral+infections+within+the+family+Flaviviridae+in+China:+A+national+cross-sectional+study.">The epidemiology and disease burden of children hospitalized for viral infections within the family Flaviviridae in China: A national cross-sectional study.</a> PLOS Neglected Tropical Diseases. 16 (7), e0010562 (2022).</li><li>Ding, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reference+values+for+peripheral+blood+lymphocyte+subsets+of+healthy+children+in+China.">Reference values for peripheral blood lymphocyte subsets of healthy children in China.</a> The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 142 (3), 970-973 (2018).</li><li>Zhang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection+of+polyfunctional+T+cells+in+children+vaccinated+with+Japanese+encephalitis+vaccine+via+the+flow+cytometry+technique.">Detection of polyfunctional T cells in children vaccinated with Japanese encephalitis vaccine via the flow cytometry technique.</a> Journal of Visualized Experiments. (187), e64671 (2022).</li><li>Yu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD4(+)+CD25+(+)+CD127+(low/-)+T+cells:+a+more+specific+Treg+population+in+human+peripheral+blood.">CD4(+) CD25 (+) CD127 (low/-) T cells: a more specific Treg population in human peripheral blood.</a> Inflammation. 35 (6), 1773-1180 (2012).</li><li>Kalina, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reproducibility+of+flow+cytometry+through+standardization:+opportunities+and+challenges.">Reproducibility of flow cytometry through standardization: opportunities and challenges.</a> Cytometry Part A. 97 (2), 137-147 (2020).</li><li>Sommer, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implementation+of+highly+sophisticated+flow+cytometry+assays+in+multicenter+clinical+studies:+considerations+and+guidance.">Implementation of highly sophisticated flow cytometry assays in multicenter clinical studies: considerations and guidance.</a> Bioanalysis. 7 (10), 1299-1311 (2015).</li><li>Glier, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comments+on+EuroFlow+standard+operating+procedures+for+instrument+setup+and+compensation+for+BD+FACS+Canto+II,+Navios+and+BD+FACS+Lyric+instruments.">Comments on EuroFlow standard operating procedures for instrument setup and compensation for BD FACS Canto II, Navios and BD FACS Lyric instruments.</a> Journal of Immunological Methods. 475, 112680 (2019).</li></ol>

Immunofenotypning av undergrupper av perifera lymfocyter kan hjälpa till att förstå förändringarna i cellmedierad adaptiv immunitet efter vaccination hos barn. I kliniska tillämpningar uppstår oväntade situationer, såsom underlåtenhet att upptäcka prover i tid eller ersättning av en flödescytometer; Därför behövs snabba standardiserade metoder som underlättar överföringar mellan flödescytometrar i olika laboratorier 9,10,11.<sup cla...

Standardiseringen av flödescytometri är användbar för jämförbarheten av resultat erhållna från olika cytometrar över olika laboratorier och studiecentra och bidrar till ömsesidigt erkännande av resultat för att förbättra arbetseffektiviteten. Allt fler scenarier kräver standardisering. Under läkemedelsutvecklingsprocessen är standardisering av flödescytometri viktig, eftersom en utvecklad och validerad analys kommer att stödja hela läkemedelsutvecklingsprocessen från preklinisk till klinisk analys. Flödescytometriska metoder överförs ofta mellan läkemedelsindustrin och samarbetande laboratorier1. Dessutom är det viktigt att få jämförbara data från multicentriska kliniska studier. Till exempel utvecklades ett standardiseringsarbetsflöde i Systemic Autoimmune Diseases Multicenter Clinical Research Project för att erhålla jämförbara data från multicentrisk flödescytometri2.
Standardiseringen av flödescytometrimetoder är utmanande. De utmaningar som upplevs i laboratorier tillskrivs bristen på standardiserade material, programvarukompatibilitetsproblem, inkonsekvenser i instrumentinställningar och användningen av olika konfigurationer mellan olika flödescytometrar och divergerande grindstrategier mellan centren 3,4. Därför är det viktigt att göra en gapanalys mellan laboratorier. Provåtkomst, kvalitetssystem, personalkvalifikationer och instrumentkonfiguration måste granskas för att säkerställa att kraven uppfylls.
För närvarande har barn som vaccinerats med vaccinet mot japansk encefalit (JE) en signifikant minskad förekomst av JE5. Övervakning av perifera blodimmunceller kan hjälpa till att förstå förändringarna i cellmedierad adaptiv immunitet efter vaccination och korrelationen mellan förändringarna i perifera blodlymfocytundergrupper och effekterna av vaccination. På grund av den begränsade stabiliteten hos helblodprover utförs ofta utvärderingar av vaccinets effektivitet i flera centra. För denna analys definierade vi naiva CD8 + eller CD4 + T-celler som CD27 + CD45RA +, centrala minnes-T-celler (T CM) som CD27 + CD45RA-, effektorminnes-T-celler (TEM) som CD27- CD45RA-, och terminalt differentierade effektorminnes-T-celler (TEMRA) som CD27- CD45RA +. CD19 + B-celler kan separeras i populationer som uttrycker CD27 kontra IgD 6,7, naiva B-celler uttrycker CD27n-minne B-celler (mBC) kan identifieras baserat på uttrycket av IgD6 och regulatoriska T-celler (Tregs) kan identifieras som CD4 + CD25 + + CD127låg 8. För att etablera ett standardiserat flödescytometriexperiment för att uppnå konsistens och jämförbarhet av experimentella resultat i flera centra etablerades en snabb och genomförbar standardiseringsmetod för att underlätta överföringen av protokoll över olika flödescytometrar för detektion av lymfocyter i helblod hos JE-vaccinerade barn. Sex friska barn (2 år) rekryterades från Beijing Children's Hospital, Capital Medical University. Efter att ha fått en prime- och boost-vaccination med ett levande försvagat JE SA14-14-2-vaccin mindre än 6 månader tidigare samlades perifera blodprover från volontärerna. Mycket jämförbara data erhölls från olika instrument efter standardiserade procedurer, vilket är till hjälp för multicenterbedömningar.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>BD CompBeads Anti-Mouse Ig, &#954;/Negative Control Compensation Particles Set</td>
			<td>BD</td>
			<td>552843</td>
			<td>compensation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSCanto</td>
			<td>BD</td>
			<td>FACSCanto</td>
			<td>flow Cytometry A in the transferring lab</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSDiva CS&#38;T Research Beads</td>
			<td>BD</td>
			<td>655051</td>
			<td>define flow cytometer baseline and track cytometer performance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon BV421 Mouse Anti-Human CD127</td>
			<td>BD</td>
			<td>562436</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon BV605 Mouse Anti-Human CD27</td>
			<td>BD</td>
			<td>562656</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Horizon V500 Mouse Anti-Human CD45</td>
			<td>BD</td>
			<td>560777</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD LSRFortessa</td>
			<td>BD</td>
			<td>LSRFortessa</td>
			<td>flow Cytometry B in the test method lab</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD OptiBuild BB700 Mouse Anti-Human CD19</td>
			<td>BD</td>
			<td>745907</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD OptiBuild R718 Mouse Anti-Human CD8</td>
			<td>BD</td>
			<td>751953</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen APC Mouse Anti-Human CD45RA</td>
			<td>BD</td>
			<td>550855</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen APC-H7 Mouse Anti-Human CD3</td>
			<td>BD</td>
			<td>560176</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen FITC Mouse Anti-Human CD4</td>
			<td>BD</td>
			<td>566320</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen PE Mouse Anti-Human CD25</td>
			<td>BD</td>
			<td>555432</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Pharmingen PE-Cy7 Mouse Anti-Human IgD</td>
			<td>BD</td>
			<td>561314</td>
			<td>Fluorescent antibody&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brilliant Staining Buffer Plus</td>
			<td>BD</td>
			<td>566385</td>
			<td>Staining Buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810</td>
			<td>Cell centrifugation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge Tube</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>BD-35209715</td>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CS&#38;T IVD Beads</td>
			<td>BD</td>
			<td>662414</td>
			<td>standard beads to setup cytometer settings in different flow cytometer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysing Solution 10x Concentrate</td>
			<td>BD</td>
			<td>349202</td>
			<td>lysing red blood cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td>PBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Round-bottom test tube</td>
			<td>BD Falcon</td>
			<td>352235</td>
			<td>5 mL test tube</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

standardization of transfer across labs between flow cytometers for detection of lymphocytes in japanese encephalitis vaccinated children

Ett ökande antal laboratorier behöver samla in data från flera flödescytometrar, särskilt för forskningsprojekt som utförs över flera centra. Utmaningarna med att använda två flödescytometrar i olika laboratorier inkluderar bristen på standardiserade material, programvarukompatibilitetsproblem, inkonsekvenser i instrumentinställningar och användningen av olika konfigurationer för olika flödescytometrar. För att etablera ett standardiserat flödescytometriexperiment för att uppnå konsistens och jämförbarhet av experimentella resultat över flera centra etablerades en snabb och genomförbar standardiseringsmetod för att överföra parametrar över olika flödescytometrar. 
Metoderna som utvecklades i denna studie möjliggjorde överföring av experimentella inställningar och analysmallar mellan två flödescytometrar i olika laboratorier för detektion av lymfocyter hos japanska encefalit (JE)-vaccinerade barn. En konsekvent fluorescensintensitet erhölls mellan de två cytometrarna med hjälp av fluorescensstandardpärlor för att fastställa cytometerinställningarna. Jämförbara resultat erhölls i två laboratorier med olika typer av instrument. Med hjälp av denna metod kan vi standardisera analys för utvärdering av immunfunktionen hos JE-vaccinerade barn i olika laboratorier med olika instrument, minska skillnaderna i data och resultat mellan flödescytometrar i flera centra och ge ett genomförbart tillvägagångssätt för ömsesidig ackreditering av laboratorieresultat. Standardiseringsmetoden för flödescytometerexperiment kommer att säkerställa ett effektivt utförande av forskningsprojekt över flera centra.

Bild 1 visar ett globalt kalkylblad för målvärdesmallen för CST-ljusa pärlor. Med hjälp av ett FSC/SSC-diagram ritas en polygongrind för att välja CST-ljuspärlor. Histogramdiagram med 10 fluorescenskanaler erhölls för CST-ljuspärlorna: FITC, PE, BB700, PE-Cy7, APC, R718, APC-H7, BV421, V500 och BV605. Målvärdet för varje parameter visas genom att medianen visas inom histogramgrindarna i tabell 2. Skärmdumparna av mallar och parameterinställningar i programva...

Watch this Scientific Journal Video about Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children at JoVE.com

Standardization of Transfer across Labs between Flow Cytometers for Detection of Lymphocytes in Japanese Encephalitis Vaccinated Children

I denna studie utvecklades en metod för att underlätta överföring av experimentella inställningar och analysmallar mellan två flödescytometrar i två laboratorier för detektion av lymfocyter hos japanska encefalitvaccinerade barn. Standardiseringsmetoden för flödescytometerexperimenten gör det möjligt att effektivt genomföra forskningsprojekt i flera centra.

Standardisering av överföring mellan laboratorier mellan flödescytometrar för detektion av lymfocyter hos japanska encefalitvaccinerade barn

An increasing number of laboratories need to collect data from multiple flow cytometers, especially for research projects performed across multiple ...

Flödescytometerns standardiseringsmetod ger ett genomförbart tillvägagångssätt för ömsesidig ackreditering av laboratorieresultat och säkerställer överensstämmelse av resultat med forskningsprojekt över flera centra. Metoden minimera tidsåtgången är enkel att utföra, är utrustad för att automatisera, analyserar mall och kan dramatiskt minska behovet av dataanalys. Börja skapa en ny konfiguration i programvaran för cytometer A, från det överförande labbet, genom att klicka på cytometerknappen och välja visa konfigurationer.Högerklicka på baskonfigurationsmappen i konfigurationslistan, välj ny mapp och byt namn på den. Skapa sedan en ny konfiguration genom att högerklicka på baskonfigurationen och kopiera den. Högerklicka på den nya mappen och klistra in baskonfigurationen innan du byter namn på den nya konfigurationen, Standardiserad metodöverföring"Dra parameternamnet, till exempel FETC från parameterlistan, till lämplig detektor 530/30, redigera också ytterligare parametrar till den nya konfigurationen.För att standardisera experimentet i det överförande labbet, kör en prestandakontroll med denna cytometer A-inställning och spåra pärlorna för att verifiera att cytometer A fungerar bra. Högerklicka på cytometer A-inställningar i programvarans webbläsarfönster och skapa ett kalkylblad genom att välja programinställningar. Använd sedan ett ofärgat prov för att justera fotomultiplikatorröret, eller PMT-spänningarna, för det främre spridningsområdet, eller FSC, och sidospridningsområdet, eller SSC, och alla fluorescensparametrar.Spara programinställningarna genom att högerklicka på experimentets cytometerinställningar och välja programinställningar. Om du vill lägga till kompensationskontroller automatiskt klickar du på experimentknappen och väljer menyn för kompensationsinställningar innan du väljer skapa kompensationskontroller. Registrera data för alla kompensationskontrollpärlor.När du är klar klickar du på experimentet och väljer kompensationsinställning, beräknar kompensationen automatiskt innan du registrerar data för enstaka cellfärgade kontroller. använd CD45 RAA APC för att ändra kompensationsvärdet för R7-18 till 15 % APC, använd CD19 BB700 för att ändra kompensationsvärdet för APC H7 till 14 % BB700 och använd CD8 R7-18 för att ändra kompensationsvärdet för APC H7 till 60 % R7-18. Efter inspelning av data för CST-pärlorna, skapa ett globalt kalkylblad av målvärdesmallen för CST-ljuspärlorna, när du är klar, kör proverna på flödescytometermatrisen och samla 25 000 lymfocyter.Skapa ett globalt kalkylblad för analysmallen för exemplen och spara experimentmallen på cytometer A.Exportera experimentmallen med hjälp av CD-ROM-skivan. För att överföra den experimentella mallen till cytometer B i testlabbet, utför en prestandakontroll med CST-pärlor för att verifiera att cytometer B fungerar bra. Importera experimentmallen från cytometer A och skapa ett experiment för cytometer B med hjälp av mallen.Använd samma parti CST-pärlor och justera de fluorescerande parameterspänningarna för varje fluorescenskanal för att matcha det tidigare MFI-instrumentet. Justera vid behov FSC-spänningen med hjälp av det ofärgade provet. Högerklicka på de experimentella cytometerinställningarna och välj applikationsinställningar för att spara applikationsinställningarna.Ändra sedan kompensationsvärdet för R7-18 till 15% APC med CD45 RA APC. Använd CD19 BB700 för att ändra kompensationsvärdet för APC H7 till 24 % BB700. Och använd CD8 R7-18 för att ändra kompensationsvärdet för APC H7 till 60% R7-18.Efter kompensationsvärdemodifiering, kör proverna på flödescytometer B och samla 25 000 lymfocyter. I ett globalt kalkylblad i målvärdesmallen för cytometerinställning och spårning, eller CST-ljusa pärlor, erhölls histogramplottarna med 10 fluorescenskanaler, målvärdet för varje parameter visades genom att visa medianen inom histogramgrindarna. punktdiagrammen i provet som erhölls med användning av cytometern A och B efter instrumentstandardisering visade konsistensen av data mellan olika instrument med hjälp av en automatisk analysmall.Ingen signifikant skillnad observerades när resultaten från sex prover jämfördes mellan två olika instrumentmodeller. Resultaten av 15 lymfoida undergrupper erhållna från olika instrument med hjälp av den standardiserade metoden förvärvade mycket jämförbara data. Samma konfigurationsnamn, skapa mallen och göra de ekotekniska värdena för säkerhetspärlor i olika instrument är kritiska steg i detta protokoll.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

Combination of Adhesive-tape-based Sampling and Fluorescence in situ Hybridization for Rapid Detection of Salmonella on Fresh Produce

Kombination av självhäftande tejp grundad på provtagning och fluorescens På plats Hybridisering för snabb upptäckt av Salmonella På färskvaror

This protocol describes a simple approach for adhesive-tape-based sampling of tomato and other fresh produce surfaces, followed by on-tape fluorescence in ...

Locked Nucleic Acid Flow Cytometry-fluorescence in situ Hybridization (LNA flow-FISH): a Method for Bacterial Small RNA Detection

Locked Nucleic Acid Flow Cytometry-fluorescence in situ Hybridization LNA flow-FISH: a Method for Bacterial Small RNA Detection

Låst nukleinsyra Flödescytometri-fluorescens På plats Hybridisering (LNA flow-FISH): En metod för bakteriell små RNA-detektering

Fluorescence in situ hybridization (FISH) is a powerful technique that is used to detect and localize specific nucleic acid sequences in the cellular ...

Total Protein Extraction and 2-D Gel Electrophoresis Methods for Burkholderia Species

Total Protein Extraction and 2-D Gel Electrophoresis Methods for Burkholderia Species

Total Protein Extraction och 2-D-gelelektrofores Metoder för<em&gt; Burkholderia</em&gt; Arter

The investigation of  the intracellular protein levels of bacterial species is of importance to  understanding the pathogenic mechanisms of diseases ...

Detection of Fluorescent Nanoparticle Interactions with Primary Immune Cell Subpopulations by Flow Cytometry

Upptäckt av fluorescerande nanopartiklar Interaktion med Primär Immun cellsubpopulationer med flödescytometri

Engineered nanoparticles are endowed with very promising properties for therapeutic and diagnostic purposes. This work describes a fast and reliable ...

Static Adhesion Assay for the Study of Integrin Activation in T Lymphocytes

Statisk vidhäftning analys för studier av Grin Aktivering i T-lymfocyter

T lymphocyte adhesion is required for multiple T cell functions, including migration to sites of inflammation and formation of immunological synapses with ...

A Simple and Rapid Protocol to Non-enzymatically Dissociate Fresh Human Tissues for the Analysis of Infiltrating Lymphocytes

En enkel och snabb protokoll till icke enzymatiskt dissociera Färska mänskliga vävnader för analys av lymfocyter

The ability of malignant cells to evade the immune system, characterized by tumor escape from both innate and adaptive immune responses, is now accepted ...

Isolation and Flow Cytometric Characterization of Murine Small Intestinal Lymphocytes

Isolering och Flödescytometriska karakterisering av murina tunntarms lymfocyter

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both ...

Visualizing the Effects of Sputum on Biofilm Development Using a Chambered Coverglass Model

Visualisera effekterna av Sputum på Biofilm Development Använda en Chambered coverglass Model

Biofilms consist of groups of bacteria encased in a self-secreted matrix. They play an important role in industrial contamination as well as in the ...

A High-throughput Platform for the Screening of Salmonella spp./Shigella spp.

A High-throughput Platform for the Screening of Salmonella spp./Shigella spp.

En hög genomströmning plattform för Screening av Salmonella spp. /Shigella spp.

Fecal-oral transmission of acute gastroenteritis occurs from time to time, especially when people who handled food and water are infected by Salmonella ...