Name: measuring embryonic viability and brood size in caenorhabditis elegans
Uploaded: 2023-02-24T13:50:00
Duration: 6 min 24 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Measuring Embryonic Viability and Brood Size in Caenorhabditis elegans at JoVE.com

يتم دعم العمل في مختبر جاراميلو لامبرت من قبل المعاهد الوطنية للصحة NIGMS R35GM142524. تم توفير جميع سلالات C. elegans من قبل مركز Caenorhabditis Genetics ، الذي تموله المعاهد الوطنية للصحة ، P40 OD010440. تم إنشاء الشكل 1D باستخدام Biorender.com.

ملاحظة: راجع جدول المواد للحصول على تفاصيل حول جميع المواد المستخدمة في هذا البروتوكول.
1. إعداد اللوحات التجريبية
<ol><li>قم بإعداد أطباق بتري بقطر 35 مم باستخدام وسائط Youngren's المعدلة ، فقط Bacto-peptone (MYOB). لعمل ألواح MYOB ، أضف 20 جم من باكتو أجار ، 2 جم من كلوريد الصوديوم ، 0.55 جم من تريزما-حمض الهيدروكلوريك ، 0.24 جم من تريزما-أوه ، 3.1 جم من ببتون باكتو ، و 1.6 مل من الكوليسترول إلى 1 لتر من ddH2O والأوتوكلاف لمدة 40 دقيقة عند 121 درجة مئوية. اتركه يبرد إلى 55 درجة مئوية وباستخدام تقنية معقمة ، صب 4 مل من الوسائط المنصهرة في كل طبق بتري 35 مم. ملاحظة: لتر من MYOB يصنع ~ 250 لوحة ، والتي يمكن تخزينها في 4 °C لمدة تصل إلى 6 أشهر. نوصي بما لا يقل عن 10 أفراد لكل نسخة مكررة مع ثلاث مجموعات مكررة لكل سلالة.</li>
	<li>باستخدام تقنية معقمة ، قم بزرع الألواح ببقعة صغيرة (حوالي 50 ميكرولتر) من بكتيريا OP50 في منتصف اللوحة. ملاحظة: تعتبر المروج الصغيرة مهمة بشكل خاص لتقييم الإخصاب المتبادل حيث تؤدي البقعة الأصغر إلى زيادة اللقاءات بين الذكور والخنثى ، مما يزيد من فرصة التزاوج.</li>
</ol>2. مقايسات الجدوى الجنينية (الإخصاب الذاتي للخنثى)
<ol><li>اليوم 1<ol><li>قم بتسمية الجزء الخلفي من كل لوحة. تأكد من تتبع كل لوحة والديدان الخاصة بها طوال التجربة. ملاحظة: تقنية وضع العلامات المفضلة - اليوم 1: الدودة 1 ، اليوم 1: الدودة 2 ، ... الخ.</li>
		<li>نقل خنثى المرحلة L4 الفردية على كل لوحة. تأكد من عدم نقل أي أجنة أو ديدان أخرى إلى اللوحة. السماح للديدان بالتطور إلى بالغين ووضع ذرية ذاتية لمدة 24 ساعة عند درجة حرارة الاستزراع القياسية البالغة 20 درجة مئوية. سجل هذه اللوحات في اليوم 3. ملاحظة: يمكن تغيير درجة حرارة التجارب في حالة الطفرات الحساسة لدرجة الحرارة. بالنسبة للطفرات الحساسة لدرجة الحرارة ، يجب إجراء فحوصات الجدوى الجنينية في كل من درجات الحرارة المسموح بها (15-16 درجة مئوية) وغير المسموح بها (24-26 درجة مئوية).</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 2<ol><li>قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة - اليوم 2: الدودة 1 ، اليوم 2: الدودة 2 ، ... الخ.</li>
		<li>نقل اليوم 1 الديدان الفردية على لوحات جديدة. ملاحظة: يجب أن تكون هذه الديدان قد وصلت إلى مرحلة البلوغ ، ويجب أن تكون الديدان البرية قد بدأت بالفعل في وضع الأجنة.</li>
		<li>السماح للديدان بوضع الأجنة لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية أو درجة حرارة مناسبة أخرى. سجل هذه اللوحات في اليوم 4.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 3<ol><li>قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة. اليوم 3: الدودة 1 ، اليوم 3: الدودة 2 ، ... الخ.</li>
		<li>نقل اليوم 2 الديدان الفردية على لوحات جديدة. اسمح لهم بوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية أو درجة حرارة مناسبة أخرى. سجل هذه اللوحات في اليوم 5. ملاحظة: في حالات انخفاض درجات الحرارة ، سيتم زيادة أوقات الفقس. اضبط وفقا لذلك.</li>
		<li>ارسم نقشا شبكيا على غطاء مقاس 35 مم باستخدام علامة دقيقة. ضع الغطاء الشبكي أسفل لوحة الاختبار للعد لتتبع الديدان التي تم عدها مسبقا (الشكل 1A-B).<ol><li>باستخدام عداد الخلايا التفاضلية ، سجل لوحات اليوم 1 لوجود أو عدم وجود ذرية. عد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة. ملاحظة: في هذه المرحلة ، يكون قد انقضى وقت كاف بحيث يجب أن تفقس أي أجنة قابلة للحياة. يفترض أن أي أجنة غير مفقسة ميتة.</li>
			<li>داخل مربع فردي ، عد الأجنة غير المفقسة واليرقات الحية الموجودة بالكامل داخل المربع (الشكل 1C-F).</li>
			<li>بالنسبة للديدان الموجودة على الحدود المربعة ، عد بناء على موقع رأس الدودة. عد الديدان ذات الرؤوس التي تلامس الحواف العلوية واليسرى للمربع (لا تحسب تلك التي تلامس الحواف السفلية أو اليمنى ؛ الشكل 1 د). لا تحسب البويضات غير المخصبة لهذا الفحص (الشكل 1F).</li>
		</ol></li>
		<li>سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 4<ol><li>سجل صفيحتين لليوم عن طريق عد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة ، كما هو موضح في الخطوة 2.3.3.1. سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 5<ol><li>سجل اليوم 3 لوحات عن طريق عد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة ، كما هو موضح في الخطوة 2.3.3.1. سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر. تحليل البيانات التي تم الحصول عليها باستخدام الطريقة الموضحة في تحليل البيانات. ملاحظة: قد يكون لبعض الطفرات الجينية إما دورة إنجابية متأخرة أو موسعة. مراقبة السلالات الفردية لاستمرار وضع الأجنة بعد اليوم 3 لوحات. إذا لم يتوقف إنتاج الجنين بحلول اليوم 4 ، فاستمر في نقل البالغين إلى لوحات جديدة.</li>
	</ol></li>
</ol>3. مقايسات الجدوى الجنينية (الإخصاب المتبادل للذكور / الخنثى)
<ol><li>اليوم 1<ol><li>قم بتسمية الجزء الخلفي من كل لوحة. تأكد من تتبع كل لوحة والديدان الخاصة بها طوال التجربة.</li>
		<li>نقل دودة خنثى L4 الفردية على كل لوحة. تأكد من عدم نقل أي أجنة أو ديدان أخرى إلى اللوحة. ملاحظة: يمكن استخدام السلالات المؤنثة ، مثل طفرات فقدان الوظيفة الضبابية -2 ، والتي لا تنتج الحيوانات المنوية ، بدلا من الخنثى.</li>
		<li>انقل دودة ذكر L4 واحدة إلى كل لوحة تحمل علامة تحتوي على خنثى L4. تأكد من عدم نقل أي أجنة أو ديدان أخرى إلى اللوحة. ملاحظة: يمكن استخدام سلالات مثل الذكور المتغيرة plg-1 لتحديد ما إذا كان التزاوج قد حدث ، حيث يودع هؤلاء الذكور سدادة جماعية على فرج الخنثى بعد التزاوج.</li>
		<li>اسمح للديدان بالتزاوج ووضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية ، أو درجة حرارة مناسبة أخرى. سجل هذه اللوحات لليرقات الحية مقابل الأجنة غير المفقسة في اليوم 3.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 2<ol><li>قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة وانقل الديدان ، كما في اليوم 2 أعلاه. في هذه الحالة ، تأكد من نقل كل من الخنثى والذكور إلى لوحات جديدة. تأكد من أن الخنثى قد وصل إلى مرحلة البلوغ.</li>
		<li>اسمح للخنثى بوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية ، أو درجة حرارة مناسبة أخرى. سجل هذه اللوحات لليرقات الحية مقابل الأجنة غير المفقسة في اليوم 4.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 3<ol><li>قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة وانقل الديدان ، كما في اليوم 3 أعلاه. تأكد من نقل كل من الخنثى والذكور إلى أطباق جديدة.</li>
		<li>السماح لوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية ، أو درجة حرارة أخرى مناسبة. سجل هذه اللوحات للأجنة الحية مقابل الأجنة غير المفرغة في اليوم 5.</li>
		<li>باستخدام عداد الخلايا التفاضلية ، عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة من لوحات اليوم الأول ، كما هو موضح في الخطوة 2.3.3.1. ملاحظة: لا تتخلص من الأطباق ، لأنها مطلوبة لليوم 4.</li>
		<li>سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 4<ol><li>عد النسل الحي والأجنة غير المفقسة من صفيحتي اليوم الثاني، كما هو موضح في الخطوة 2-3-3-1. سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر.</li>
		<li>تحقق من لوحات اليوم 1 للذكور. إذا حدث التزاوج ، يجب أن تكون النسبة الوراثية المتوقعة للخنثى للذكور 50:50. إذا كانت لوحات اليوم 1 لا تحتوي على أي ذكور ، لم يحدث التزاوج بين الذكور والخنثى. تجاهل زوج التزاوج هذا وسجل هذه الملاحظة في دفتر ملاحظات المختبر.</li>
	</ol></li>
	<li>اليوم 5<ol><li>عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة من لوحات اليوم 3 ، كما هو موضح في الخطوة 2.3.3.1. سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر. تحليل البيانات التي تم الحصول عليها باستخدام الطرق الموضحة في تحليل البيانات.</li>
	</ol></li>
</ol>4. تحليل البيانات
<ol><li>احسب نسبة الصلاحية الجنينية لتكرار بيولوجي معين لسلالة باستخدام المعادلة (1). ملاحظة: يتم الحصول على أعداد النسل الحي والأجنة غير المفرغة عن طريق جمع العدد اليومي عبر الفترة التجريبية. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/65064/65064eq01.jpg" style="margin: auto;">(1)</li>
	<li>احسب حجم الحضنة لكل دودة من سلالة معينة عن طريق جمع عدد النسل (الأجنة واليرقات غير المفرغة) التي تنتجها الخنثى الأم. احسب متوسط حجم الحضنة باستخدام المعادلة (2). <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/65064/65064eq02.jpg" style="margin: auto;">(2)</li>
	<li>الإبلاغ عن نسبة الصلاحية الجنينية ومتوسط حجم الحضنة مع متوسط الانحراف المعياري بين النسخ البيولوجية. إجراء اختبار t للطالب لمقارنة البيانات الضابطة والتجريبية.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Hillers, K., Jantsch, V., Martinez-Perez, E., Yanowitz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meiosis.">Meiosis.</a> WormBook: the Online Review of C. elegans Biology. , (2017).</li><li>O'Connor, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chromosomal+abnormalities:+aneuploidies.">Chromosomal abnormalities: aneuploidies.</a> Nature Education. 1 (1), 172 (2008).</li><li>Marcello, M. R., Singaravelu, G., Fertilization Singson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fertilization.">Fertilization.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 757, 321-350 (2013).</li><li>Marcello, M. R., Singson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fertilization+and+the+oocyte-to-embryo+transition+in+C.+elegans.">Fertilization and the oocyte-to-embryo transition in C. elegans.</a> BMB Reports. 43 (6), 389-399 (2010).</li><li>Robertson, S., Lin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+oocyte-to-embryo+transition.">The oocyte-to-embryo transition.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 757, 351-372 (2013).</li><li>Corsi, A. K., Wightman, B., Chalfie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+transparent+window+into+biology:+A+primer+on+Caenorhabditis+elegans.">A transparent window into biology: A primer on Caenorhabditis elegans.</a> WormBook: the Online Review of C. elegans Biology. , 1-31 (2015).</li><li>Hodgkin, J., Horvitz, H., Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nondisjunction+mutants+of+the+nematode+CAENORHABDITIS+ELEGANS.">Nondisjunction mutants of the nematode CAENORHABDITIS ELEGANS.</a> Genetics. 91 (1), 67-94 (1979).</li><li>Chu, D. S., Shakes, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spermatogenesis.">Spermatogenesis.</a> Advances in Experimental Medicine and Biology. 757, 171-203 (2013).</li><li>Dernburg, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meiotic+recombination+in+C.+elegans+initiates+by+a+conserved+mechanism+and+is+dispensable+for+homologous+chromosome+synapsis.">Meiotic recombination in C. elegans initiates by a conserved mechanism and is dispensable for homologous chromosome synapsis.</a> Cell. 94 (3), 387-398 (1998).</li><li>Bhandari, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+suppressors+of+top-2+embryonic+lethality+in+Caenorhabditis+elegans.">Identification of suppressors of top-2 embryonic lethality in Caenorhabditis elegans.</a> G3. 3 (4), 1183-1191 (2020).</li><li>Jaramillo-Lambert, A., Fabritius, A. S., Hansen, T. J., Smith, H. E., Golden, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+identification+of+a+novel+mutant+allele+of+topoisomerase+II+in+Caenorhabditis+elegans+reveals+a+unique+role+in+chromosome+segregation+during+spermatogenesis.">The identification of a novel mutant allele of topoisomerase II in Caenorhabditis elegans reveals a unique role in chromosome segregation during spermatogenesis.</a> Genetics. 204 (4), 1407-1422 (2016).</li><li>Jaramillo-Lambert, A., Golden, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+C-terminus+of+SPE-11+is+required+for+proper+embryonic+development+in+C.+elegans.">The C-terminus of SPE-11 is required for proper embryonic development in C. elegans.</a> microPublication Biology. , (2020).</li><li>Stiernagle, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+of+C.+elegans.">Maintenance of C. elegans.</a> WormBook: the Online Review of C. elegans Biology. , 1-11 (2006).</li></ol>

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

يتطلب تكاثر الأنواع التي تتكاثر جنسيا تكوين جاميتات أحادية الصيغة الصبغية (أي البويضات والحيوانات المنوية) من خلال الانقسام الميوزي، والتي تتحد بعد ذلك عند الإخصاب، واستعادة عدد الكروموسومات الثنائية الصيغة الصبغية وبدء التطور الجنيني. يمكن أن تؤدي الأخطاء في أي من هذه العمليات إلى العقم و / أو الفتك الجنيني و / أو العيوب الخلقية. C. elegans هو نظام نموذجي قوي لدراسة التكاثر الجنسي. يمكن تقييم آثار الطفرات الجينية أو ضربة قاضية للتعبير الجيني (على سبيل المثال ، تداخل الحمض النووي الريبي) بسرعة وسهولة نسبيا باستخدام مقايسات الجدوى الجنينية وتحجيم الحضنة الموصوفة أعلاه. لقد استخدمنا هذه الطرق للتوصيف الأولي للجينات المشاركة في فصل الكروموسومات الاختزالية والإخصاب / تنشيط البويضة10،11،12. يشير الانخفاض الملحوظ في الصلاحية الجنينية أو حجم الحضنة إلى حدوث اضطراب في الانقسام الاختزالي أو تكوين الأمشاج أو الإخصاب أو التطور الجنيني.
نظرا لأن الجدوى الجنينية وحجم الحضنة يتم تقييمهما بسهولة نسبية من خلال عد النسل وحساب رياضي بسيط ، فهذه تجارب تمهيدية مثالية للمبتدئين في البحث سواء في المختبر أو الفصل الدراسي. سهولة تربية C. elegans والمزايا الاقتصادية تجعلها مناسبة بشكل خاص لفصول البيولوجيا التجريبية. يكتسب الطلاب خبرة بحثية قيمة من خلال تربية C. elegans ، ويتعلمون استخدام المجاهر التشريحية ، ويمكنهم طرح أسئلة بيولوجية في نظام تنموي يمكن الإجابة عليه في فترة زمنية قصيرة نسبيا (حوالي 5 أيام مع البروتوكول الموضح في هذه الورقة).
توقيت تعداد النسل مهم جدا لمقايسات الصلاحية الجنينية. عند 20 درجة مئوية ، يستغرق التطور الجنيني حوالي 16 ساعة ، ويبدأ البالغون الناضجون تناسليا في وضع البيض بعد حوالي 60 ساعة من الفقس على شكل يرقات L1. نظرا لأن دورة الحياة سريعة ، فمن المهم حساب النسل ضمن النافذة المناسبة ، مما يتيح وقتا كافيا لفقس الأجنة ولكن قبل أن يبدأ النسل نفسه في وضع البيض. من المهم أيضا ملاحظة أن فترات النمو تختلف حسب درجة الحرارة. النمو أسرع بحوالي 2.1 مرة عند 24-25 درجة مئوية من 15-16 درجة مئوية ، وحوالي 1.3 مرة أسرع عند 20 درجة مئوية من 15-16 درجة مئوية13. في هذا البروتوكول ، نوصي بأن تحدث الأعداد بعد 48 ساعة من وضع البالغين على طبق جديد. يضمن هذا الإطار الزمني أن جميع الأجنة ذات التطور البري لديها الوقت الكافي للفقس (>16 ساعة) ، ولكنها لا تتقدم في العمر إلى درجة القدرة الإنجابية. قد يلزم تمديد المقايسات التي يتم إجراؤها في درجات حرارة أقل من 20 درجة مئوية (نقل الحيوانات لمدة 4 أيام) حتى تفقس الأجنة ولكي تصل ذرية الفقس إلى مراحل اليرقات التي يسهل ملاحظتها بين البكتيريا الموجودة على ألواح MYOB (مراحل L3-L4).
من القيود المفروضة على مقايسات الجدوى الجنينية وتحجيم الحضنة أن عملية النمو المحددة المضطربة ليست واضحة بسهولة. ومع ذلك ، يمكن متابعة هذه المقايسات الأولية بتقنيات خلوية لتحديد العملية المتأثرة. على سبيل المثال ، يمكن أن يكشف تشريح الديدان البالغة لإطلاق الغدد التناسلية متبوعا بتلطيخ 4 '، 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) والتحليل الدقيق لمورفولوجيا الحمض النووي داخل الخط الجرثومي ما إذا كانت العمليات الاختزالية قد تعطلت. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن يكشف تلطيخ الأجنة DAPI عن المرحلة التي يتوقف فيها التطور الجنيني.
في الختام ، وصفنا بروتوكولا لفحص عدد الأجنة المنتجة (الحضنة) والنسبة المئوية للأجنة القابلة للحياة لمختلف طفرات C. elegans. يمكن استخدام هذا الاختبار لكل من الخنثى ذاتية الإخصاب والصلبان الذكرية / الخنثى. مع دورة حياة قصيرة من C. elegans ، يمكن إكمال هذا البروتوكول في أقل من 1 أسبوع. يمكن استخدام مقايسات الجدوى الجنينية وأحجام الحضنة كتحليلات أولية للجينات المشاركة في الانقسام الاختزالي أو الإخصاب أو التطور الجنيني ، وهي بروتوكولات مناسبة للباحثين والمبتدئين في البحث الأكثر تقدما (طلاب الدراسات العليا في المرحلة الجامعية والسنة الأولى) على حد سواء.

يتطلب التكاثر الجنسي في الكائنات الحقيقية النوى إنتاج جاميتات وظيفية تندمج لتكوين جنين من خلال عملية الإخصاب. يتم إنشاء الأمشاج الأم والأب والبويضة (البويضات) والحيوانات المنوية من خلال عمليات الانقسام الخلوي والتمايز المتخصصة للانقسام الميوزيوتكوين الأمشاج 1. يبدأ الانقسام الميوزي بخلية واحدة ثنائية الصيغة الصبغية، وينتهي بتكوين خلايا بنوية تحتوي على نصف عدد كروموسومات الخلية الأبوية الأصلية. من الحد من الصيغة الصبغية إلى خلط المواد الوراثية عبر تشكيلة مستقلة وإعادة التركيب المتقاطع ، يخدم الانقسام الاختزالي وظائف مهمة متعددة1. يمكن أن تؤدي الأخطاء داخل الانقسام الميوزي إلى اختلال الصيغة الصبغية، حيث يوجد عدد كبير جدا أو قليل جدا من الكروموسومات داخل الجاميت. حالات اختلال الصيغة الصبغية لها تأثيرات هائلة على صحة الإنسان ، حيث أن اختلالات الكروموسومات هي سبب رئيسي للإجهاض واضطرابات النمو مثل متلازمة داون ومتلازمة إدواردز2.
الإخصاب هو العملية التي تندمج بها الأمشاج الأم والأب لتوليد كائن حي جديد3. يتم تسهيل التعرف على الأمشاج بواسطة البروتينات الموجودة على سطح الأمشاج3. تؤدي أخطاء توافق الأمشاج إلى العقم لأن اندماج الحيوانات المنوية والبويضات غير قادر على المضي قدما. يؤدي اندماج الحيوانات المنوية مع البويضة إلى مجموعة من الأحداث التي تؤدي إلى التكوين الصحيح للجنين النشط الذي يمكن أن يبدأ رحلة النمو من جنين وحيد الخلية إلى كائن متعدد الخلايا يعمل بكامل طاقته عبر الانقساماتالانقسامية 4. خلال التطور الجنيني ، يجب تنظيم الأحداث الجزيئية التي تنظم التطور بإحكام وتوقيتها بدقة لتمكين النمو السليم للكائن الحي5. يعد التمايز الخلوي السليم أثناء التطور المبكر أمرا بالغ الأهمية حيث ينتقل الكائن الحي من جنين متعدد القدرات إلى كائن حي كامل. بسبب تعقيدات هذه الأحداث ، يمكن أن تؤدي الاضطرابات إلى عيوب في النمو تؤدي إلى الفتك الجنيني.
Caenorhabditis elegans هو كائن نموذجي ممتاز لدراسة الانقسام الاختزالي والإخصاب والتطور الجنيني. C. elegans هي نيماتودا شفافة لها جنسان ، ذكور وخثى. C. elegans خنثى ، والتي هي قادرة على الإخصاب الذاتي ، هي الجنس السائد 6,7. تنتج الغدد التناسلية الأنثوية الحيوانات المنوية أولا خلال المرحلة اليرقية الرابعة (L4) ، والتي يتم تخزينها في الحيوانات المنوية. في الانتقال من L4 إلى مرحلة البلوغ ، يتحول الخط الجرثومي إلى إنتاج البويضات ، والتي يتم تخصيبها بعد ذلك عن طريق الحيوانات المنوية المخزنة. الذكور ، التي تنشأ في الخنثى بمعدل أقل من 0.2 ٪ ، تنتج فقط الحيوانات المنوية ويمكن أن تتزاوج مع الخنثى. عند الإخصاب المتبادل ، تتفوق الحيوانات المنوية الذكرية على الحيوانات المنوية الخنثى في إخصاب البويضات8. وهذا يسمح بالحفاظ بسهولة نسبية على الطفرات متماثلة الزيجوت من خلال مخزونات الإخصاب الذاتي والتلاعب الجيني من خلال التهجين الجيني. يسمح الجنسان بإجراء دراسات تستكشف الاختلافات بين الانقسام الاختزالي في خطوط الجراثيم الذكرية والأنثوية. علاوة على ذلك ، نظرا للطبيعة الشفافة ل C. elegans وبيضها ، يمكن دراسة عمليات الانقسام الاختزالي ، وتكوين الأمشاج ، والإخصاب ، والتطور الجنيني في الحيوانات الحية السليمة باستخدام تقنيات التصوير الفلوري.
عند تحليل الطفرات الجديدة في الجينات التي قد تلعب دورا في الانقسام الاختزالي والإخصاب و / أو التطور الجنيني في C. elegans ، فإن الخطوة الأولى الحاسمة هي تحديد الصلاحية الجنينية وحجم الحضنة لأن الأخطاء في هذه العمليات غالبا ما تؤدي إلى فشل أو انخفاض في إنتاج ذرية قابلة للحياة. تصف هذه الورقة بروتوكولا لتقييم الخصوبة ، والصلاحية الجنينية ، وحجم الحضنة إما من خنثى ذاتية الإخصاب أو تهجين بين الخنثى والذكور. بينما تم استخدام هذا الفحص الكلاسيكي في العديد من دراسات C. elegans ، فإننا نقدم بروتوكولا موحدا للإعداد والقياس الكمي الدقيق. في هذا البروتوكول ، يتم عزل الديدان الفردية أو أزواج الذكور / الخنثى للسماح بالتزاوج وإنتاج النسل. تتم ملاحظة إنتاج النسل وصلاحيته على مدى سلسلة من الأيام لتحديد عدد النسل القابل للحياة والأجنة غير القابلة للحياة. في ختام التجربة ، يتم تحليل الحضنة الفردية لحساب نسبة الصلاحية الجنينية والحجم الكلي للحضنة.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Materials</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>35 mm Petri dishes</td>
			<td>Tritech research</td>
			<td>T3501</td>
			<td>Semi-stackable, non-vented.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacto Agar</td>
			<td>Becton, Dickinson and Company</td>
			<td>214010</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bacto-Peptone</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>211677</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cholestrol</td>
			<td>Sigma&#160;</td>
			<td>C8503</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Chloride</td>
			<td>J.T. Baker</td>
			<td>FW 58.440</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trizma Base</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T1503</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trizma hydrochloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3253</td>
			<td>For MYOB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Strains</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C. elegans wild type strain</td>
			<td>Caenorhabditis Genetics Center</td>
			<td>N2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Escherichia coli</td>
			<td>Caenorhabditis Genetics Center</td>
			<td>OP50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>him-5(e1490)</td>
			<td>Caenorhabditis Genetics Center</td>
			<td>DR466</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>spo-11(ok79)</td>
			<td>Caenorhabditis Genetics Center</td>
			<td>AV106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipment/software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Differential cell counter</td>
			<td>Fischer Scientific</td>
			<td>02-670-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MicroSoft Excel or Prism</td>
			<td>MicroSoft or GraphPad</td>
			<td></td>
			<td>For recording and creating graphical representations of data.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>platinum wire</td>
			<td>Tritech research</td>
			<td>PT9901</td>
			<td>For making worm picks. 99.5% Platinum, 0.5% Iridium. This comes as 3 ft/pack, which is sufficient for making 36 worm picks (~1 inch platinum wire per pick).</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ-745</td>
			<td>Diascopic base with focus mount, integrated LED module, power cord, 6.7x to 50x Zoom range [WD 115 mm], Widefield Eyepiece C-15x/17 (Note: equivalent stereomicroscopes are available from other manufacturers.)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>worm pick handle</td>
			<td>Tritech research</td>
			<td>TWPH1</td>
			<td>For making worm picks. Mount ~1 in platinum wire into worm pick handle. Alternatively, worm picks can be made by mounting platinum wire in a glass Pasteur pipette.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measuring embryonic viability and brood size in caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans هو كائن نموذجي ممتاز لدراسة الانقسام الاختزالي والإخصاب والتطور الجنيني. توجد C. elegans كخنثى ذاتية الإخصاب ، والتي تنتج حضنات كبيرة من النسل - عندما يكون الذكور موجودين ، يمكنهم إنتاج حضنات أكبر من ذرية متقاطعة. يمكن تقييم الأخطاء في الانقسام الميوزي والإخصاب والتطور الجنيني بسرعة على أنها أنماط ظاهرية للعقم أو انخفاض الخصوبة أو الفتك الجنيني. توضح هذه المقالة طريقة لتحديد الصلاحية الجنينية وحجم الحضنة في C. elegans. نوضح كيفية إعداد هذا الفحص عن طريق اختيار دودة على لوحة فردية معدلة من Youngren ، فقط Bacto-peptone (MYOB) ، وتحديد الإطار الزمني المناسب لحساب النسل القابل للحياة والأجنة غير القابلة للحياة ، وشرح كيفية حساب عينات الدودة الحية بدقة. يمكن استخدام هذه التقنية لتحديد الجدوى في خنثى الإخصاب الذاتي وكذلك الإخصاب المتبادل عن طريق أزواج التزاوج. هذه التجارب البسيطة نسبيا يمكن تبنيها بسهولة للباحثين الجدد ، مثل طلاب البكالوريوس وطلاب الدراسات العليا في السنة الأولى.

أجرينا فحوصات الجدوى الجنينية وتحجيم الحضنة على N2 (النوع البري) وعلى سلالتين تؤويان طفرات في الجينات المشاركة في الانقسام الاختزالي ، him-5 (e1490) و spo-11 (ok79). وبما أن كلا من he-5 و spo-11 يلعبان دورا في تكوين التقاطع الميوتي، فإن الطفرات في هذين الجينين تؤدي إلى تكوين جاميتات اختلال الصيغة الصبغية. أسفرت مقايسة الصلاحية الجنينية هذه ل N2 عن نسبة صلاحية تبلغ 98.9٪ ، بينما أظهر كل من he-5 (e1490) و spo-11 (ok79) انخفاضا في صلاحية النسل بنسبة 74.9٪ و 0.8٪ على التوالي (الشكل 2A; ص < 0.0005). تتوافق هذه النتائج مع النتائج المنشورة سابقا 7,9. تم تحديد متوسط حجم الحضنة N2 و him-5 (e1490) و spo-11 (ok79) ليكون 217 و 105 و 219 على التوالي (الشكل 2 ب). تمشيا مع المنشورات السابقة ، فإن حجم الحضنة him-5 (e1490) لديه حجم حضنة منخفض بشكل كبير مقارنة بالنوع البري ، في حين أن spo-11 (ok79) لا يحتوي على 7,9.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65064/65064fig01.jpg"> الشكل 1: عرض توضيحي لإعداد العد ومورفولوجيا الجنين على الألواح . (أ) صورة لغطاء بنمط شبكي متقاطع مرسوم باستخدام شارب ناعم. (B) صفيحة MYOB مقاس 35 مم مع غطاء منقوش تحتها للعد. ( C) صورة توضح مجال رؤية منخفض التكبير (10x) يعرض مربعات متعددة من الشبكة. تشير رؤوس الأسهم البيضاء إلى العديد من اليرقات في مجال الرؤية هذا. يجب أن يتم العد بتكبير أعلى (مربع واحد فقط في الحقل) لمراقبة كل من اليرقات والأجنة. شريط المقياس = 1000 ميكرومتر. (د) رسم كاريكاتوري للغطاء مع وضع نمط شبكي تحت لوحة 35 مم. يشير الجزء الداخلي إلى التقنية المناسبة لتحديد اليرقات التي يتم حسابها في مربع معين. عد من أعلى إلى أسفل ، من اليسار إلى اليمين. عد أي ديدان موجودة بالكامل داخل المربع. يجب حساب الديدان التي تلامس الحدود بناء على موضع رأس الدودة ، وليس الذيل. عد الفيروسات المتنقلة التي تواجه الشبكة الحالية أو الشبكات التي تم عدها مسبقا (أي الحواف العلوية واليسرى). لا تحسب الديدان ذات الرؤوس التي تلامس الحواف السفلية أو اليمنى. من الجزء الداخلي ، سيتم حساب الديدان الزرقاء بينما لن يتم حساب الديدان الحمراء. (ه) صورة تمثيلية ليرقات N2 L1 السليمة (رأس السهم الأبيض). (F) صورة تمثيلية لبويضة غير مخصبة (رأس سهم أسود) وجنين غير فقس (رأس سهم أحمر). لا ينبغي حساب البويضات غير المخصبة لهذا الفحص. قضبان المقياس (E ، F) = (100 ميكرومتر). ملاحظة: تم التقاط الصور في C و E و F باستخدام مجهر Zeiss AxioZoom ، مع كاميرا متصلة لغرض إظهار مظهر اليرقات والأجنة والبويضات على ألواح الديدان. بالنسبة لمقايسات الصلاحية الجنينية ، يتم إجراء العد أثناء مراقبة اللوحات باستخدام مجهر مجسم (بدون كاميرا). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65064/65064fig01large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65064/65064fig02.jpg"> الشكل 2: الرسوم البيانية التمثيلية التي تصور النتائج من مقايسات الصلاحية الجنينية وأحجام الحضنة. (أ) نسبة الصلاحية الجنينية ل N2 و him-5 (e1490) و spo-11 (ok79) عند 20 درجة مئوية. (ب) أحجام الحضنة من N2 و him-5 (e1490) و spo-11 (ok79) عند 20 درجة مئوية . تم تسجيل ذرية ما لا يقل عن 28 خنثى لكل سلالة. كان العدد الإجمالي للأجنة غير المفقسة بالإضافة إلى اليرقات المسجلة N2 = 6302 ، و him-5 (e1490) = 2,945 ، و spo-11 (ok79) = 7,230. تشير أشرطة الخطأ إلى الانحراف المعياري عبر ثلاث نسخ متماثلة فردية منفصلة. الإحصائيات المحسوبة باستخدام اختبار t للطالب ، n.s. = غير معنوي ، * p < 0.0005. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65064/65064fig02large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Measuring Embryonic Viability and Brood Size in Caenorhabditis elegans at JoVE.com

Measuring Embryonic Viability and Brood Size in Caenorhabditis elegans

هنا ، نقدم طريقة عامة لتحديد الصلاحية الجنينية والعدد الإجمالي للأجنة المنتجة (الحضنة) باستخدام الكائن الحي النموذجي C. elegans.

قياس الصلاحية الجنينية وحجم الحضنة في Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is an excellent model organism for the study of meiosis, fertilization, and embryonic development. C. elegans exist as ...

يتم استخدام هذا البروتوكول لتحديد حجم الحضنة والصلاحية الجنينية من قبل العديد من مختبرات C.elegans. يمكن أن يشير الانخفاض في الحجم الغاشم والصلاحية الجنينية إلى وجود عيوب في العمليات التنموية المهمة مثل العضل والإخصاب والتطور الجنيني. توفر هذه التقنية تعليمات واضحة للباحثين المبتدئين في C.elegans.من السهل نسبيا إعداده وتنفيذه ، وهو نقطة انطلاق رائعة عند العمل مع سلالات متحولة جديدة. التحدي الأكبر لهذه التقنية هو تحديد الجنين مقابل تحديد الجنين غير المخصب. يجب على الباحثين الجدد التدرب على تحديد الأجنة والبويضات ومراحل اليرقات المختلفة قبل البدء في هذه التجارب.للبدء ، قم بتسمية الجزء الخلفي من اللوحة ، وانقل خنثى مرحلة L4 الفردية إلى اللوحة. تأكد من عدم نقل أي أجنة أو ديدان أخرى إلى اللوحة. اسمح للديدان بالتطور إلى بالغين ووضع ذرية ذاتية لمدة 24 ساعة عند درجة حرارة الاستزراع القياسية البالغة 20 درجة مئوية.سجل اللوحة في اليوم الثالث. في اليوم التالي ، قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة وانقل اليوم دودة فردية واحدة إلى اللوحة الجديدة. اسمح للديدان بوضع الأجنة لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية.سجل اللوحة في اليوم الرابع. في اليوم الثالث ، قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة وانقل الديدان الفردية في اليوم الثاني إلى اللوحة الجديدة. اسمح للديدان بوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة.سجل اللوحة في اليوم الخامس. ارسم نمطا شبكيا على غطاء 35 ملم باستخدام علامة دقيقة. ضع الغطاء الشبكي أسفل لوحة الاختبار للعد لتتبع الديدان التي تم عدها مسبقا.باستخدام عداد الخلايا التفاضلية ، عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة داخل المربع الفردي. بالنسبة للديدان على الحدود المربعة ، عد على أساس موقع رأس الدودة. عد الديدان برؤوس تلامس الحواف العلوية واليسرى للمربع.سجل عدد اليرقات الحية والأجنة غير المفرغة في دفتر ملاحظات المختبر. في اليوم الرابع ، سجل لوحة اليوم الثاني عن طريق عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة وسجلها في دفتر ملاحظات في المختبر. في اليوم الخامس ، سجل لوحة اليوم الثالث عن طريق عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة ، وسجلها في دفتر ملاحظات في المختبر.بعد وضع العلامات على الجزء الخلفي من اللوحة ، قم بنقل دودة خنثى L4 فردية إلى اللوحة. تأكد من عدم نقل أي أجنة أو ديدان أخرى إلى اللوحة. انقل دودة ذكر L4 واحدة على اللوحة التي تحتوي على خنثى L أربعة.اسمح للديدان بالتزاوج ووضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية. سجل الصفيحة لليرقات الحية مقابل الأجنة غير المفقسة في اليوم الثالث. في اليوم التالي ، قم بتسمية مجموعة من اللوحات الجديدة ونقل الخنثى والذكور إلى اللوحة الجديدة.تأكد من أن الخنثى قد وصل إلى مرحلة البلوغ. اسمح للخنثى بوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة مئوية. سجل الصفيحة لليرقات الحية مقابل الأجنة غير المفقسة في اليوم الرابع.في اليوم الثالث ، قم بتسمية مجموعة من الأطباق الجديدة وانقل الخنثى والذكر إلى اللوحة الجديدة. اسمح للديدان بوضع ذرية لمدة 24 ساعة عند 20 درجة. سجل اللوحة للأجنة الحية مقابل الأجنة غير المفرغة في اليوم الخامس.باستخدام عداد الخلايا التفاضلية ، عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة من لوحة اليوم الواحد وسجلها في دفتر ملاحظات في المختبر. في اليوم الرابع ، عد النسل الحي والأجنة غير المفقسة من لوحة اليوم الثاني وسجلها في دفتر ملاحظات في المختبر. تحقق من لوحة يوم واحد للذكور.إذا حدث التزاوج ، فإن النسبة الوراثية المتوقعة للخنثى إلى الذكور هي 50 إلى 50. إذا كان اليوم الواحد لا يحتوي على أي ذكور ، فلن يحدث التزاوج بين الذكر والخنثى. تجاهل زوج التزاوج هذا وسجل الملاحظة في دفتر ملاحظات المختبر.في اليوم الخامس ، عد اليرقات الحية والأجنة غير المفقسة من لوحة اليوم الثالث وسجلها في دفتر ملاحظات في المختبر. أسفرت مقايسة الصلاحية الجنينية ل N2 عن نسبة صلاحية 98.9٪ بينما أظهر كل من he-5 (e1490) و spo-11 (ok79) انخفاضا في الصلاحية الجنينية بنسبة 74.9٪ و 0.8٪ على التوالي. تم تحديد متوسط حجم الحضنة N2 و him-5 (e1490) و spo-11 (ok79) ليكون 217 و 105 و 219 على التوالي.يعد التعرف على المراحل المختلفة لتطوير C.elegans أمرا مهما للحصول على بيانات دقيقة وقابلة للتكرار. نوصي بالتعرف على تطور الدودة باستخدام الصور والمجهر التشريحي. يعد هذا الإجراء خطوة أولى رائعة لتحديد ما إذا كان الجين متورطا في عملية تنموية ويمكن أن تتبعه تحليلات خلوية لتحديد العملية التي تعطلت.

Research

JoVE Journal

Genetics

Measuring Embryonic Viability and Brood Size in Caenorhabditis elegans

Optogenetic Random Mutagenesis Using Histone-miniSOG in C. elegans

Optogenetic Random Mutagenesis Using Histone-miniSOG in C. elegans

علم البصريات الوراثي الطفرات عشوائية عن طريق هيستون-miniSOG في<em&gt; C. ايليجانس</em

Forward genetic screening in model organisms is the workhorse to discover functionally important genes and pathways in many biological processes. In most ...

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) Protocol for Low-abundance Embryonic Samples

Chromatin Immunoprecipitation ChIP Protocol for Low-abundance Embryonic Samples

الكروماتين إيمونوبريسيبيتيشن (رقاقة) بروتوكول لعينات جنينية وفرة منخفضة

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a widely-used technique for mapping the localization of post-translationally modified histones, histone variants, ...

The Nematode Caenorhabditis Elegans - A Versatile In Vivo Model to Study Host-microbe Interactions

The Nematode Caenorhabditis Elegans - A Versatile In Vivo Model to Study Host-microbe Interactions

ايليجانس كاينورهابديتيس السلكية-نموذج تنوعاً في فيفو لدراسة التفاعلات بين الميكروبات والمضيف

We demonstrate a method using Caenorhabditis elegans as a model host to study microbial interaction. Microbes are introduced via the diet making the ...

Manipulation of Ploidy in Caenorhabditis elegans

Manipulation of Ploidy in Caenorhabditis elegans

التلاعب في بلويدي في ايليجانس كاينورهابديتيس

Mechanisms that involve whole genome polyploidy play important roles in development and evolution; also, an abnormal generation of tetraploid cells has ...

The Replica Set Method: A High-throughput Approach to Quantitatively Measure Caenorhabditis elegans Lifespan

The Replica Set Method: A High-throughput Approach to Quantitatively Measure Caenorhabditis elegans Lifespan

طريقة تعيين النسخة متماثلة: نهج الفائق "قياس كمي" ايليجانس كاينورهابديتيس عمر

The Replica Set method is an approach to quantitatively measure lifespan or survival of Caenorhabditis elegans nematodes in a high-throughput manner, thus ...

Culture and Assay of Large-Scale Mixed-Stage Caenorhabditis elegans Populations

Culture and Assay of Large-Scale Mixed-Stage Caenorhabditis elegans Populations

الثقافة و المقايسة من السكان على نطاق واسع Caenorhabditis النخبوية المختلطة

Caenorhabditis elegans (C. elegans) has been and remains a valuable model organism to study developmental biology, aging, neurobiology, and genetics. The ...

Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data

Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size LEfSe in Microbiome Data

المساعدة في اختيار المؤشرات الحيوية بواسطة حجم تأثير التحليل التمييزي الخطي (LEfSe) في بيانات الميكروبيوم

There is growing attention toward closed biological genomes in the environment and in health. To explore and reveal the intergroup differences among ...

Measuring Caenorhabditis elegans Sensitivity to the Acetylcholine Receptor Agonist Levamisole

Measuring Caenorhabditis elegans Sensitivity to the Acetylcholine Receptor Agonist Levamisole

قياس حساسية Caenorhabditis elegans لمستقبلات الأسيتيل كولين ناهض ليفاميزول

At the neuromuscular junction (NMJ), the binding of the excitatory neurotransmitter acetylcholine (ACh) to postsynaptic receptors leads to muscle ...

Surveying Low-Cost Methods to Measure Lifespan and Healthspan in Caenorhabditis elegans

Surveying Low-Cost Methods to Measure Lifespan and Healthspan in Caenorhabditis elegans

طرق المسح منخفضة التكلفة لقياس العمر الافتراضي والمدى الصحي في Caenorhabditis elegans

The discovery and development of Caenorhabditis elegans as a model organism was influential in biology, particularly in the field of aging. Many ...

Epigenetic Inheritance and ChIP in Caenorhabditis elegans

Analysis of Transgenerational Epigenetic Inheritance in C. elegans Using a Fluorescent Reporter and Chromatin Immunoprecipitation (ChIP)

RNAi Inheritance and ChIP in C. elegans (Video) | JoVE

تحليل الوراثة اللاجينية عبر الأجيال في C. elegans باستخدام مراسل الفلورسنت والترسيب المناعي للكروماتين (ChIP)

Transgenerational epigenetic inheritance (TEI) allows the transmission of information through the germline without changing the genome sequence, through ...