Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

تم دعم هذا العمل من خلال منحة المؤسسة الوطنية للبحوث الكورية (NRF) بتمويل من الحكومة الكورية (رقم 2020R1A4A3079570) ، ووزارة التعليم (رقم 2021R1I1A1A01051425) ، وبرنامج تطوير التكنولوجيا الاستراتيجية الصناعية (رقم 20014873) بتمويل من وزارة التجارة والصناعة والطاقة ، جمهورية كوريا.

تمت الموافقة على جميع إجراءات البحوث الحيوانية وتنفيذها وفقا لقانون رعاية المختبر ، ودليل رعاية واستخدام المختبر ، والمبادئ التوجيهية والسياسات الخاصة بالتجارب على الحيوانات المقدمة من اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوان (IACUC) في كلية الطب بالجامعة الكاثوليكية الكورية (رقم الموافق...

<ol>
	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

ويشيع استخدام نماذج AVS الحيوانية لدراسة الجوانب المرضية للمركبات الAVS، بما في ذلك بدء وتطور AVS. يقدم هذا البروتوكول نموذجا جديدا للمركبات الخارقة للدماغ الناجم عن إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري. في هذه الدراسة ، أظهر نموذج إصابة الصمام الأبهري سماكة كبيرة للوريقات وتكلسها. بالمقارنة م?...

من المعترف به بشكل متزايد أن استخدام النماذج الحيوانية المناسبة يمكن أن يساهم في فهم أفضل للآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) بسبب عدم الوصول إلى مصادر موثوقة للصمامات الأبهرية البشرية المريضة المرتبطة بتطور تضيق الأبهر (AS). من بين النماذج الحيوانية المختلفة لدراسة AVS ، تعد الأرانب واحدة من أكثر نماذج AVS للحيوانات الكبيرة شيوعا ، ويتم تحفيز نموذج أرنب AVS إما من خلال مكملات الكوليسترول / فيتامين D2 أو التلاعب الجيني1،2،3،4.
على الرغم من أن نماذج AVS للأرانب قد قدمت نظرة ثاقبة مهمة حول تطوير وتطور AVS ، إلا أنه لا يزال من الصعب تحفيز AVS باستمرار وبشكل قابل للتكرار ، كما رأينا في تجاربنا الأولية.
بالإضافة إلى النماذج الحيوانية التي يسببها النظام الغذائي والحساسة وراثيا ، تم إنشاء نموذج جديد من AVS من خلال الإصابة الميكانيكية المباشرة في الفئران 5,6. ينجح نموذج الإصابة الميكانيكية في تحفيز تضيق الأبهر ويمثل نموذجا بسيطا وقابلا للتكرار AVS في الفئران البرية. على حد علمنا ، لم تكن هناك دراسات سابقة تدرس آثار الإصابة الميكانيكية على الصمام الأبهري في نماذج الأرانب. وبالتالي ، توفر هذه الدراسة إجراء جديدا لتحفيز AVS في ذكور الأرانب البيضاء النيوزيلندية من خلال إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري ، والتي يمكن أن تحاكي بدقة حالة تضيق الأبهر الصمامي. يتضمن هذا البروتوكول أوصافا خطوة بخطوة للتحضير والإجراء الجراحي والرعاية بعد الجراحة ، والتي تكون مفيدة لتحفيز نماذج أرنب AVS القابلة للتكرار.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

تظهر النماذج الحيوانية كأداة مهمة لفهم الآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) بسبب عدم الوصول إلى مصادر موثوقة للصمامات الأبهرية البشرية المريضة. من بين النماذج الحيوانية المختلفة ، تعد نماذج أرنب AVS واحدة من أكثر النماذج استخداما في الدراسات الحيوانية الكبيرة. ومع ذلك ، تتطلب نماذج أرنب AVS التقليدية فترة طويلة الأجل من المكملات الغذائية والتلاعب الجيني للحث على تضيق كبير في الصمام الأبهري ، مما يحد من استخدامها في الدراسات التجريبية. لمعالجة هذه القيود ، تم اقتراح نموذج أرنب AVS جديد ، حيث يحدث التضيق بسبب إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري. يصف البروتوكول الحالي تقنية ناجحة لتحفيز AVS في الأرانب البيضاء النيوزيلندية (NZW) ، مع إجراءات خطوة بخطوة للتحضير والإجراء الجراحي والرعاية بعد الجراحة. يقدم هذا النموذج البسيط والقابل للتكرار نهجا واعدا لدراسة بدء وتطور AVS ويوفر أداة قيمة للتحقيق في الآليات المرضية الأساسية للمرض.

نموذج AVS الأرنب الناجم عن إصابة الصمام الأبهري للحث على نموذج AVS للأرانب ، تم استخدام ذكور الأرانب النيوزيلندية التي تزن 3.5-4.0 كجم لهذه الدراسة. وفقا للإجراءات الجراحية الموضحة في الخطوة 2 (الشكل 2) ، تم إنشاء نموذج AVS عن طريق إصابة الصمام الأبهري ، مما أدى إلى تنكس ا...

Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

هناك حاجة إلى نموذج حيواني مناسب لفهم الآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) وتقييم فعالية التدخلات العلاجية. يصف البروتوكول الحالي إجراء جديدا لتطوير نموذج أرنب AVS عن طريق إصابة بالون مباشرة في الجسم الحي.

نموذج تضيق الصمام الأبهري للأرنب الناجم عن إصابة البالون المباشر

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

تظهر النماذج السنوية كأداة مهمة لفهم الآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري بسبب عدم الوصول إلى مصادر موثوقة للصمامات الأبهرية البشرية المريضة. تتطلب نماذج الأرانب التقليدية لتضيق الصمام الأبهري مكملات غذائية طويلة الأجل وتلاعبا وراثيا للحث على تضيق كبير في الصمام الأبهري ، مما يحد من استخدامها في الدراسات التجريبية. تصف هذه التقنية إجراء جديدا لإحداث تضيق الصمام الأبهري في الأرانب من خلال إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري ، والتي يمكن أن تحاكي بدقة حالة الإنسان المصاب بتضيق الأبهر.سيوضح الإجراء Eun-Hye Park و Jin-Moo Kim و Eunmi Lee ، أخصائيو الأبحاث من منظمتي. ابدأ في تحضير مجموعة قسطرة البالون التوسعي عن طريق توصيل جهاز الانكماش المملوء بمزيج واحد لواحد من المحلول الملحي ووسيط التباين المتاح تجاريا بجزء قفل Luer من قسطرة البالون. بعد ملء البالون بمحلول نفخ ، قم بإزالة الهواء من قسطرة البالون.ابدأ إجراء الجراحة عن طريق إدخال قسطرة وريدية أو IV قياس 24 في الوريد الأذني الهامشي للأرنب المخدر. قم بتوصيل مجموعة التسريب ب 100 وحدة لكل كيلوغرام من محلول ملحي الهيبارين الهيبارين. بعد ذلك ، قم بتوصيل الأرنب بجهاز مراقبة بيطري متعدد المعلمات لمراقبة العلامات الحيوية باستمرار مثل إشارة تشبع الأكسجين أو درجة حرارة SpO2 وضغط الدم.بعد وضع الأرنب في وضع ضعيف على طاولة عمليات مجهزة بتنظير فلوري C-arm ، قم بإزالة الشعر من منطقة الرقبة البطنية باستخدام ماكينات قص شعر الحيوانات. تعقيم منطقة شق مع اليود وتغطية الأرنب مع المناشف الجراحية. لوضع قلب الأرنب ، قم بتشغيل الذراع C وحدد الوضع بالمنظار لتصوير القلب.اضبط موضع الأرنب للتأكد من أن القلب في مركز مجال التصوير. بمجرد ضبط الوضع ، قم بعمل شق طولي يبلغ حوالي ثلاثة سنتيمترات في جلد الرقبة واستخدم المقص الجراحي لقطع اللفافة والأنسجة الدهنية. ثم افصل العضلات بعناية حتى يتعرض ما يقرب من 3 إلى 3.5 سم من الشريان السباتي المشترك الأيسر ، أو LCCA.اربط LCCA بخياطة حريرية 3-0 في الجزء العلوي والنهائي من LCCA المكشوف لوقف تدفق الدم. أدخل قسطرة وريدية قياس 22 في LCCA. ثم أدخل سلك توجيه 0.016 بوصة في البطين الأيسر من خلال القسطرة الوريدية ، مما يضمن وضع طرف القسطرة بشكل صحيح في مجال التصوير في الذراع C.بعد ذلك ، اسحب القسطرة الوريدية ، واترك سلك التوجيه قبل وضع غمد فرنسي 4 فوق سلك التوجيه في LCCA لإدخال قسطرة البالون. أدخل بعناية القسطرة البالونية التي يبلغ قطرها ثمانية ملليمترات فوق سلك التوجيه في الصمام الأبهري تحت التوجيه الفلوري C-arm. ضع طرف القسطرة البالونية على بعد سنتيمتر إلى سنتيمترين تقريبا من الصمام الأبهري وقم بنفخ البالون عن طريق تطهير محلول النفخ باستخدام منفاخ ضغط في ستة أجواء.بعد ذلك ، ادفع البالون إلى البطين الأيسر أو قمة LV واسحبه مرة أخرى إلى مخرج LV. كرر هذا الإجراء خمس مرات قبل تفريغ البالون. اسحب قسطرة البالون وسلك التوجيه ، ثم قم بإزالة الغمد ببطء من LCCA واربط LCCA على الفور بالخيط في الطريق إلى الصمام الأبهري.نظف منطقة الشق بمحلول ملحي لإزالة جلطات الدم. افحص الموقع المثقوب بحثا عن نزيف شرياني قبل إغلاق العضلات والجلد بخياطة 3-0 غير قابلة للامتصاص. بمجرد الانتهاء من ذلك ، تعقيم الجرح باستخدام اليود.بعد الجراحة ، قم بإزالة بقع ومشابك المراقبة واحتفظ بالأرنب في حاضنة العناية المركزة. بعد ثمانية أسابيع من إصابة البالون ، ضع الأرنب المخدر على طاولة صدى في وضع الاستلقاء. ضع جل محول الموجات فوق الصوتية على الصدر بعد حلاقة منطقة الصدر.اضبط الترجام للحصول على عرض المحور الطويل حول القص وعرض المحور القصير المحيطي للصمام الأبهري. استخدم وضع التصوير لتسجيل صور الصمام الأبهري وحفظ الصور لتحليلها لاحقا. كشف تقييم التغير الهيكلي في الصمام الأبهري أنه بعد ثمانية أسابيع من إصابة الصمام الأبهري ، كانت الشرفات سميكة وتم تقييد الحركة في الأرانب المصابة التي تغذت على نظام غذائي عالي الكوليسترول وفيتامين D2 مقارنة بالأرانب الضابطة أو البرية ، وتغذت الأرانب على نظام غذائي عالي الكوليسترول وفيتامين D2 دون إصابة الصمام.تم التضحية بالأرانب وتم استئصال القلوب بعد ثمانية أسابيع من الإصابة للتحليل النسيجي للصمام الأبهري. أظهر الصمام الأبهري الملطخ بثلاثية ماسون زيادة في سمك شرف الصمام الأبهري في المجموعة المصابة مقارنة بالمجموعة الضابطة في المجموعات التي يسببها ارتفاع الكوليسترول وفيتامين D2. تم إجراء تلطيخ اليزارين الأحمر وتلطيخ فون كوسا لمقارنة درجة رواسب الكالسيوم الصمامية المشار إليها رواسب الكالسيوم الضئيلة في وريقات الصمامات في المجموعة التي يسببها ارتفاع الكوليسترول وفيتامين D2.في المقابل ، لوحظت رواسب كلسية كبيرة في المجموعة المصابة بالبالون. يتم عرض تقنية ناجحة لإحداث تضيق الصمام القطبي الشمالي ، في نموذج الأرنب هنا مع شرح خطوة بخطوة لإصابة البالون المباشر للصمام الأبهري. يقدم هذا النموذج البسيط والقابل للتكرار نهجا واعدا لدراسة بدء وتطور تضيق الصمام الأبهري ، ويوفر أداة قيمة للتحقيق في الآليات المرضية الأساسية لتضيق الصمام الأبهري.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

Photothrombosis الناجم عن نقص التروية التنسيق نموذجا من اصابات الحبل الشوكي في الفئران

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

بالون إصابة الفئران السباتي نموذج لاختبار التداوي إعادة عرض لمكافحة الأوعية الدموية

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

استنساخه الشرياني التعرية الإصابات وذلك Infrarenal البطن الأبهري لقط في نموذج الفئران

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

نموذج أرنب من تسارع تصلب الشرايين: منظور منهجية من إصابة شريان حرقفي بالون

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

كامل الجذر استبدال الصمام الأبهري من قبل ستنتليس الأبهر زينوغرافتس في المرضى الذين يعانون من الجذور الأورطي الصغيرة

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

تقنية موحدة لزرع الصمام الابهري إعادة لتجنيب الصمام الابهري الجذر الاستبدال

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

نموذج أرنب من مرض العين الجاف المُقوّل المُسبّب بواسطة Concanavalin حقنة في الغدد اللارِسية: تطبيق على دراسات فعالية الدواء

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

إحداث إصابات الرئة الحادة في الفئران عن طريق التبيل المباشر للكيس الشحمي داخل الرغامى

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

إصابة بالون فئلي من ضغط الشريان السباتي الجرذ مع تطبيق علاجي شامل

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

نموذج إصابة الكلى الحادة الناجمة عن سيسبلاتين في حمار وحشي الكبار

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...