Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

Dit werk werd ondersteund door een subsidie van de National Research Foundation of Korea (NRF), gefinancierd door de Koreaanse regering (MSIT) (nr. 2020R1A4A3079570), het ministerie van Onderwijs (nr. 2021R1I1A1A01051425) en het Industrial Strategic Technology Development Program (nr. 20014873), gefinancierd door het ministerie van Handel, Industrie en Energie, Republiek Korea.

Alle procedures voor dierproeven zijn goedgekeurd en uitgevoerd in overeenstemming met de Laboratory Animals Welfare Act, de Guide for the Care and Use of Laboratory Animals en de Guidelines and Policies for Animal Experiments van de Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van het College of Medicine van de Katholieke Universiteit van Korea (goedkeuringsnummer: CUMC-2021-0176-05). De huidige studie maakte gebruik van 3 maanden oude mannelijke Nieuw-Zeelandse witte (NZW) konijnen met een gewicht van 3,5-4,0 k...

<ol>
	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

Dierlijke AVS-modellen worden vaak gebruikt om de pathologische aspecten van AVS te bestuderen, inclusief de initiatie en progressie van AVS. Dit protocol introduceert een nieuw AVS-model voor konijnen dat wordt geïnduceerd door een directe ballonverwonding aan de aortaklep. In deze studie vertoonde het aortaklepletselmodel een significante verdikking en verkalking van de blaadjes. Vergeleken met het milde AVS-model geïnduceerd door voedingssupplementen, was de aortaklep in het model met directe ballonbeschadiging sele...

Het wordt steeds meer erkend dat het gebruik van geschikte diermodellen kan bijdragen aan een beter begrip van de pathologische mechanismen die ten grondslag liggen aan aortaklepstenose (AVS) vanwege het gebrek aan toegang tot betrouwbare bronnen van zieke menselijke aortakleppen die verband houden met de progressie van aortastenose (AS). Van de verschillende diermodellen voor het bestuderen van AVS zijn konijnen een van de meest gebruikte AVS-modellen voor grote dieren, en het AVS-konijnenmodel wordt geïnduceerd door cholesterol/vitamine D2-suppletie of genetische manipulatie 1,2,3,4.
Hoewel AVS-modellen bij konijnen veel inzicht hebben gegeven in de ontwikkeling en progressie van AVS, blijft het nog steeds een uitdaging om AVS consistent en reproduceerbaar te induceren, zoals te zien is in onze voorlopige experimenten.
Naast door voeding geïnduceerde en genetisch gevoelige diermodellen, is een nieuw model van AVS vastgesteld door direct mechanisch letsel bij muizen 5,6. Het mechanische verwondingsmodel induceert met succes aortastenose en vertegenwoordigt een eenvoudig en reproduceerbaar AVS-model bij wildtype muizen. Voor zover wij weten, zijn er geen eerdere studies geweest die de effecten van een mechanisch letsel op de aortaklep in konijnenmodellen onderzochten. Deze studie biedt dus een nieuwe procedure voor het induceren van AVS bij mannelijke witte konijnen in Nieuw-Zeeland door middel van een directe ballonverwonding aan de aortaklep, die de toestand van klepvormige aortastenose nauwkeurig kan nabootsen. Dit protocol bevat stapsgewijze beschrijvingen van de voorbereiding, de chirurgische ingreep en de postoperatieve zorg, die nuttig zijn voor het induceren van reproduceerbare AVS-konijnenmodellen.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

Diermodellen zijn in opkomst als een belangrijk hulpmiddel om de pathologische mechanismen te begrijpen die ten grondslag liggen aan aortaklepstenose (AVS) vanwege het gebrek aan toegang tot betrouwbare bronnen van zieke menselijke aortakleppen. Van de verschillende diermodellen zijn AVS-konijnenmodellen een van de meest gebruikte in grote dierstudies. Traditionele AVS-konijnenmodellen vereisen echter een langdurige periode van voedingssuppletie en genetische manipulatie om significante stenose in de aortaklep te induceren, waardoor het gebruik ervan in experimentele studies wordt beperkt. Om deze beperkingen aan te pakken, wordt een nieuw AVS-konijnenmodel voorgesteld, waarbij stenose wordt geïnduceerd door een directe ballonverwonding aan de aortaklep. Dit protocol beschrijft een succesvolle techniek voor het induceren van AVS bij Nieuw-Zeelandse witte (NZW) konijnen, met stapsgewijze procedures voor de voorbereiding, de chirurgische ingreep en de postoperatieve zorg. Dit eenvoudige en reproduceerbare model biedt een veelbelovende benadering voor het bestuderen van de initiatie en progressie van AVS en biedt een waardevol hulpmiddel voor het onderzoeken van de onderliggende pathologische mechanismen van de ziekte.

Konijn AVS-model geïnduceerd door aortaklepletsel Om het AVS-model van het konijn te induceren, werden mannelijke NZW-konijnen met een gewicht van 3,5-4,0 kg gebruikt voor dit onderzoek. Volgens de chirurgische ingrepen beschreven in stap 2 (Figuur 2) werd het AVS-model tot stand gebracht door aortaklepletsel, wat resulteerde in mechanische aortaklepdegeneratie en verkalking. De controlegroep omvatte konijnen die werden gevoed met een 0,5% cholesterolverrijkt dieet (hoog...

Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

Een geschikt diermodel is nodig om de pathologische mechanismen die ten grondslag liggen aan aortaklepstenose (AVS) te begrijpen en om de werkzaamheid van therapeutische interventies te evalueren. Dit protocol beschrijft een nieuwe procedure voor de ontwikkeling van het AVS-konijnenmodel via een directe ballonverwonding in vivo.

Een konijnen aortaklepstenosemodel geïnduceerd door direct ballonletsel

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

Jaarlijkse modellen zijn in opkomst als een belangrijk hulpmiddel om de pathologische mechanismen te begrijpen die ten grondslag liggen aan aortaklepstenose vanwege het gebrek aan toegang tot betrouwbare bronnen van zieke menselijke aortakleppen. Traditionele konijnenmodellen voor aortaklepstenose vereisen langdurige voedingssuppletie en genetische manipulatie om significante stenose in de aortaklep te induceren, waardoor het gebruik ervan in experimentele studies wordt beperkt. Deze techniek beschrijft een nieuwe procedure voor het induceren van aortaklepstenose bij konijnen door middel van een directe ballonverwonding aan de aortaklep, die de toestand van een mens met aortastenose nauwkeurig kan nabootsen.De procedure zal worden gedemonstreerd door Eun-Hye Park, Jin-Moo Kim en Eunmi Lee, onderzoeksspecialisten van mijn regelgevende instantie. Begin met het voorbereiden van de dilatatieballonkatheterset door het leegloopapparaat gevuld met het één-op-één mengsel van zoutoplossing en in de handel verkrijgbaar contrastmiddel aan te sluiten op het Luer-lock-gedeelte van de ballonkatheter. Nadat u de ballon hebt gevuld met een opblaasoplossing, verwijdert u de lucht uit de ballonkatheter.Begin de operatieprocedure door een 24 gauge intraveneuze of IV-katheter in de marginale auriculaire ader van het verdoofde konijn in te brengen. Sluit een infusieset aan met 100 eenheden per kilogram heparine gehepariniseerde zoutoplossing. Verbind het konijn vervolgens met een veterinaire monitor met meerdere parameters om continu de vitale functies te bewaken, zoals het zuurstofverzadigingssignaal of de SpO2-temperatuur en bloeddruk.Nadat u het konijn in rugligging op een operatietafel hebt geplaatst die is uitgerust met een fluoroscopie met C-boog, verwijdert u het haar uit het ventrale nekgebied met behulp van een tondeuse van dierenhaar. Steriliseer het incisiegebied met jodium en bedek het konijn met chirurgische handdoeken. Om het hart van het konijn te positioneren, zet u de C-boog aan en selecteert u de fluoroscopische modus voor cardiale beeldvorming.Pas de positie van het konijn aan om ervoor te zorgen dat het hart zich in het midden van het beeldvormingsveld bevindt. Zodra de positie is aangepast, maakt u een longitudinale incisie van ongeveer drie centimeter in de huid van de nek en gebruikt u een chirurgische schaar om de fascia en het vetweefsel te knippen. Scheid vervolgens voorzichtig de spieren totdat ongeveer 3 tot 3,5 centimeter van de linker gemeenschappelijke halsslagader, of LCCA, bloot komt te liggen.Maak de LCCA vast met een 3-0 zijden hechting aan de boven- en achterkant van de blootgestelde LCCA om de bloedstroom te stoppen. Breng een 22 gauge IV-katheter in de LCCA in. Breng vervolgens een voerdraad van 0.016 inch in de linker hartkamer via de IV-katheter en zorg ervoor dat de punt van de katheter goed in het beeldvormingsveld van de C-boog wordt geplaatst.Trek vervolgens de IV-katheter terug en laat de voerdraad achter voordat u een 4 Franse huls over de voerdraad in de LCCA plaatst om de ballonkatheter in te brengen. Steek de ballonkatheter van acht millimeter voorzichtig over de voerdraad in de aortaklep onder fluoroscopische geleiding van de C-boog. Plaats de tip van de ballonkatheter ongeveer één tot twee centimeter distaal van de aortaklep en blaas de ballon op door de opblaasoplossing te spoelen met een drukinflator op zes atmosfeer.Schuif vervolgens de ballon in de linker hartkamer of LV-apex en trek deze terug in de LV-uitlaat. Herhaal deze procedure vijf keer voordat u de ballon laat leeglopen. Trek de ballonkatheter en voerdraad terug, verwijder vervolgens langzaam de huls van de LCCA en bind de LCCA onmiddellijk vast met de hechting op weg naar beneden naar de aortaklep.Reinig het incisiegebied met zoutoplossing om de bloedstolsels te verwijderen. Inspecteer de doorboorde plaats op arteriële bloedingen voordat u de spier en huid sluit met een 3-0 niet-resorbeerbare hechting. Als u klaar bent, steriliseert u de wond met jodium.Verwijder na de operatie de controlepleisters en clips en bewaar het konijn in een intensive care-couveuse. Plaats het verdoofde konijn na acht weken ballonletsel op een echotafel in rugligging. Breng ultrasone transducergel aan op de borst na het scheren van de borst.Pas de transducer aan om het peristernale lange-asbeeld en het peristernale korte-asbeeld van de aortaklep te verkrijgen. Gebruik modusbeeldvorming om beelden van de aortaklep op te nemen en de beelden op te slaan voor latere analyse. Uit de beoordeling van de structurele verandering in de aortaklep bleek dat acht weken na het letsel aan de aortaklep de knobbels verdikt waren en de beweging beperkt was bij de gewonde konijnen die werden gevoed met het dieet met hoog cholesterol en vitamine D2 in vergelijking met de controle- of wildtype konijnen, en de konijnen die het dieet met hoog cholesterol en vitamine D2 kregen zonder klepletsel.De konijnen werden geofferd en de harten werden acht weken na de verwonding weggesneden voor histologische analyse van de aortaklep. De aortaklep gekleurd met Masson's trichroom vertoonde een verhoogde dikte van de aortaklepknobbels in de gewonde groep in vergelijking met de controle in groepen met een hoog cholesterolgehalte en vitamine D2-dieet. Alizarin Red-kleuring en Von Kossa-kleuring werden uitgevoerd om de mate van calciumafzettingen van de kleppen te vergelijken, wat wees op verwaarloosbare calciumafzettingen in de klepblaadjes in de groep met een hoog cholesterolgehalte en vitamine D2-dieet.Daarentegen werden significante verkalkte afzettingen waargenomen in de groep met ballonverwondingen. Succesvolle techniek voor het induceren van arctische klepstenose, in het konijnenmodel, wordt hier gedemonstreerd met een stapsgewijze uitleg van een directe ballonverwonding aan de aortaklep. Dit eenvoudige en reproduceerbare model biedt een veelbelovende benadering voor het bestuderen van de initiatie en progressie van aortaklepstenose, en biedt een waardevol hulpmiddel voor het onderzoeken van de onderliggende pathologische mechanismen van aortaklepstenose.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

Photothrombosis-geïnduceerde focale ischemie als een model van Spinal Cord Injury in Muizen

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

Een Rat Carotis Balloon Injury Model te testen Anti-vasculaire remodeling Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Reproduceerbare Arteriële ontbossing en erosie Letsel door infrarenale abdominale aorta vastklemmen in een Murine Model

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

Het konijn-Model van versnelde atherosclerose: een methodologische perspectief van de schade van de ballon Iliac slagader

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

Vervanging van de aorta-klep met volledige wortel door stentloze aorta-xenografen bij patiënten met kleine aorta-wortels

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

Gestandaardiseerde techniek aortaklep opnieuw innesteling voor ventiel-sparend aorta Root vervanging

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

Een konijn model van waterige-deficiënte droge oogziekte geïnduceerd door Concanavalin Een injectie in de lacrimal klieren: Toepassing op drug werkzaamheid Studies

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Inducerende acute Long blessure bij muizen door directe Intratracheal lipopolysaccharide instillatie

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Een Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury met Periadventitial Therapeutic Application

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Acuut nierletselmodel geïnduceerd door Cisplatine bij volwassen zebravissen

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...