Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

본 연구는 한국산업통상자원부(MSIT)가 지원하는 한국연구재단(NRF) 보조금(제2020R1A4A3079570호), 교육부(제2021R1I1A1A01051425호), 산업통상자원부가 지원하는 산업전략기술개발사업(제20014873호)의 지원을 받았다.

모든 동물연구절차는 실험동물복지법, 실험동물의 관리 및 이용에 관한 지침, 가톨릭대학교 의과대학 동물관리이용위원회(IACUC)에서 제공하는 동물실험에 대한 지침 및 방침(승인번호: CUMC-2021-0176-05)를 참조하십시오. 본 연구는 3.5-4.0kg의 3개월 된 수컷 뉴질랜드 흰토끼(NZW)를 활용했으며, 이 토끼는 개별 케이지에서 표준 조건 하에서 유지되었습니다. 토끼는 일반 식단 또는 50,000U의 비타민 D2가 ?...

<ol>
	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

동물 AVS 모델은 일반적으로 AVS의 시작 및 진행을 포함하여 AVS의 병리학적 측면을 연구하는 데 사용됩니다. 이 프로토콜은 대동맥 판막의 직접적인 풍선 손상으로 인한 새로운 토끼 AVS 모델을 소개합니다. 이 연구에서 대동맥 판막 손상 모델은 상당한 소엽 두꺼움 및 석회화를 보여주었습니다. 식이 보충제에 의해 유도된 경증 AVS 모델과 비교했을 때, 직접 풍선 손상 모델의 대동맥 판막은 선택적?...

대동맥 협착증(AS)의 진행과 관련된 병든 인간 대동맥 판막의 신뢰할 수 있는 출처에 대한 접근이 부족하기 때문에 적절한 동물 모델을 사용하면 대동맥 판막 협착증(AVS)의 기저에 있는 병리학적 메커니즘을 더 잘 이해하는 데 기여할 수 있다는 사실이 점점 더 인식되고 있습니다. AVS를 연구하기 위한 다양한 동물 모델 중에서 토끼는 가장 일반적으로 사용되는 대동물 AVS 모델 중 하나이며, AVS 토끼 모델은 콜레스테롤/비타민 D2 보충 또는 유전자 조작을 통해 유도됩니다 1,2,3,4.
토끼 AVS 모델은 AVS의 개발 및 진행에 대한 중요한 통찰력을 제공했지만, 예비 실험에서 볼 수 있듯이 AVS를 일관되고 재현 가능하게 유도하는 것은 여전히 어려운 과제로 남아 있습니다.
식이요법 유도 및 유전적으로 감수성 동물 모델 외에도 마우스 5,6에서 직접적인 기계적 손상을 통해 AVS의 새로운 모델이 확립되었습니다. 기계적 손상 모델은 대동맥 협착증을 성공적으로 유도하고 야생형 마우스에서 간단하고 재현 가능한 AVS 모델을 나타냅니다. 우리가 아는 한, 토끼 모델에서 대동맥 판막에 대한 기계적 손상의 영향을 조사한 선행 연구는 없었습니다. 따라서 본 연구는 대동맥판막에 대한 직접적인 풍선 손상을 통해 수컷 뉴질랜드 흰토끼에게 AVS를 유도하는 새로운 절차를 제공하며, 이는 판막성 대동맥 협착증의 상태를 정확하게 모방할 수 있습니다. 이 프로토콜에는 준비, 수술 절차 및 수술 후 관리에 대한 단계별 설명이 포함되어 있어 재현 가능한 AVS 토끼 모델을 유도하는 데 유용합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

동물 모델은 질병에 걸린 인간 대동맥 판막의 신뢰할 수 있는 출처에 대한 접근이 부족하기 때문에 대동맥 판막 협착증(AVS)의 기저에 있는 병리학적 메커니즘을 이해하는 중요한 도구로 부상하고 있습니다. 다양한 동물 모델 중에서 AVS 토끼 모델은 대형 동물 연구에서 가장 일반적으로 사용되는 모델 중 하나입니다. 그러나 기존의 AVS 토끼 모델은 대동맥 판막에 심각한 협착을 유발하기 위해 장기간 식이 보충제와 유전자 조작이 필요하므로 실험 연구에서 사용이 제한됩니다. 이러한 한계를 해결하기 위해 대동맥 판막에 대한 직접적인 풍선 손상으로 협착이 유발되는 새로운 AVS 토끼 모델이 제안되었습니다. 본 프로토콜은 뉴질랜드 흰토끼(NZW)에서 AVS를 유도하기 위한 성공적인 기술을 준비, 수술 절차 및 수술 후 관리를 위한 단계별 절차와 함께 설명합니다. 이 간단하고 재현 가능한 모델은 AVS의 시작과 진행을 연구하기 위한 유망한 접근 방식을 제공하며 질병의 근본적인 병리학적 메커니즘을 조사하기 위한 귀중한 도구를 제공합니다.

대동맥 판막 손상으로 인한 토끼 AVS 모델 토끼 AVS 모델을 유도하기 위해 이 연구에는 3.5-4.0kg의 수컷 NZW 토끼가 사용되었습니다. 2단계(그림 2)에서 설명한 수술 절차에 따르면, AVS 모델은 기계적 대동맥 판막 변성 및 석회화를 초래한 대동맥 판막 손상에 의해 확립되었습니다. 대조군에는 0.5% 콜레스테롤이 풍부한 식단(고콜레스테롤, HC)과 50,000U의 비타민 D2(VitD...

Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

대동맥판막협착증(AVS)의 기저에 있는 병리학적 기전을 이해하고 치료적 개입의 효능을 평가하기 위해서는 적절한 동물 모델이 필요하다. 본 프로토콜은 생체 내에서 직접 풍선 손상을 통해 AVS 토끼 모델을 개발하기 위한 새로운 절차를 설명합니다.

직접적인 풍선 손상으로 인한 토끼 대동맥 판막 협착증 모델

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

연간 모델은 질병에 걸린 인간 대동맥 판막의 신뢰할 수 있는 출처에 대한 접근이 부족하기 때문에 대동맥 판막 협착증의 기저에 있는 병리학적 메커니즘을 이해하는 중요한 도구로 부상하고 있습니다. 기존의 대동맥 판막 협착증 토끼 모델은 대동맥 판막에 심각한 협착증을 유발하기 위해 장기간의 식이 보충제와 유전자 조작이 필요하므로 실험 연구에서 사용이 제한됩니다. 이 기술은 대동맥 판막에 대한 직접적인 풍선 손상을 통해 토끼의 대동맥 판막 협착증을 유도하는 새로운 절차를 설명하며, 이는 대동맥 협착증이 있는 인간의 상태를 정확하게 모방할 수 있습니다.이 과정을 시연하는 것은 박은혜, 김진무, 이은미 등 필자의 연구 전문가다. 식염수와 시판되는 조영제의 일대일 혼합물로 채워진 수축 장치를 풍선 카테터의 루어 잠금 부분에 연결하여 팽창 풍선 카테터 세트 준비를 시작합니다. 풍선에 팽창 용액을 채운 후 풍선 카테터에서 공기를 제거합니다.마취된 토끼의 가장자리 귓바퀴 정맥에 24게이지 정맥 주사 또는 IV 카테터를 삽입하여 수술 절차를 시작합니다. 헤파린 헤파린 화 식염수 킬로그램 당 100 단위의 주입 세트를 연결하십시오. 다음으로 토끼를 다중 매개변수 수의학 모니터와 연결하여 산소 포화도 신호 또는 SpO2 온도 및 혈압과 같은 활력 징후를 지속적으로 모니터링합니다.C-arm 형광투시가 설치된 수술대에 토끼를 누운 후 동물 이발기를 사용하여 복부 목 부위의 털을 제거합니다. 절개 부위를 요오드로 소독하고 수술용 수건으로 토끼를 덮습니다. 토끼의 심장을 배치하려면 C-arm을 켜고 심장 이미징을 위한 형광 투시 모드를 선택합니다.심장이 이미징 필드의 중앙에 오도록 토끼의 위치를 조정합니다. 자세가 조정되면 목 피부를 약 3cm 정도 세로로 절개하고 수술 용 가위를 사용하여 근막과 지방 조직을 자릅니다. 그런 다음 좌측 총경동맥(LCCA)의 약 3-3.5cm가 노출될 때까지 근육을 조심스럽게 분리합니다.노출된 LCCA의 상단과 끝에 3-0 실크 봉합사로 LCCA를 결찰하여 혈류를 멈춥니다. 22게이지 IV 카테터를 LCCA에 삽입합니다. 그런 다음 IV 카테터를 통해 좌심실에 0.016인치 가이드 와이어를 삽입하여 카테터 끝이 C-arm의 이미징 필드에 적절하게 위치하도록 합니다.다음으로, IV 카테터를 빼내고 가이드 와이어를 남겨둔 후 가이드 와이어 위에 4개의 프렌치 시스를 LCCA에 배치하여 풍선 카테터를 도입합니다. C-arm 형광 투시 유도 하에 가이드 와이어 위의 8mm 풍선 카테터를 대동맥 판막에 조심스럽게 삽입합니다. 풍선 카테터 팁을 대동맥 판막의 원위부에 약 1-2cm 떨어진 곳에 놓고 6기압의 압력 팽창기로 팽창 용액을 퍼지하여 풍선을 팽창시킵니다.그런 다음 풍선을 좌심실 또는 LV 정점으로 전진시키고 LV 배출구로 다시 당깁니다. 풍선의 공기를 빼기 전에 이 절차를 5번 반복합니다. 풍선 카테터와 가이드 와이어를 빼낸 다음 LCCA에서 칼집을 천천히 제거하고 즉시 대동맥 판막으로 내려가는 길에 LCCA를 봉합사와 묶습니다.혈전을 제거하기 위해 식염수로 절개 부위를 청소하십시오. 3-0 비흡수성 봉합사로 근육과 피부를 봉합하기 전에 천자 부위에 동맥 출혈이 있는지 검사합니다. 완료되면 요오드를 사용하여 상처를 소독하십시오.수술 후 모니터링 패치와 클립을 제거하고 토끼를 중환자실 인큐베이터에 보관합니다. 풍선에 부딪힌 지 8주가 지나면 마취된 토끼를 앙와위 자세의 에코 테이블 위에 올려놓습니다. 가슴 부위를 면도한 후 초음파 변환기 젤을 가슴에 바릅니다.변환기를 조정하여 대동맥 판막의 흉골 주위 장축 보기와 흉골 주위 단축 보기를 얻습니다. 모드 이미징을 사용하여 대동맥 판막의 이미지를 기록하고 나중에 분석할 수 있도록 이미지를 저장합니다. 대동맥 판막의 구조적 변화 평가 결과, 대동맥 판막 손상 후 8주가 지나면 대조군 토끼나 야생형 토끼에 비해 고콜레스테롤과 비타민D2 식단을 먹인 부상당한 토끼에서 교두가 두꺼워지고 움직임이 제한되었으며, 토끼는 판막 손상 없이 고콜레스테롤과 비타민D2 식단을 먹인 것으로 나타났습니다.토끼를 희생시키고 대동맥 판막의 조직학적 분석을 위해 부상 8주 후에 심장을 절제했습니다. Masson's trichrome으로 염색된 대동맥 판막은 고콜레스테롤 및 비타민D2 식이 유도 그룹의 대조군에 비해 부상군의 대동맥 판막 교두의 두께가 증가한 것으로 나타났습니다. Alizarin Red 염색 및 Von Kossa 염색을 수행하여 고콜레스테롤 및 비타민-D2-식이 유도 그룹의 판막 소엽에서 무시할 수 있는 칼슘 침착을 나타내는 판막 칼슘 침착 정도를 비교했습니다.대조적으로, 풍선 손상 그룹에서는 상당한 석회화 침전물이 관찰되었습니다. 토끼 모델에서 북극 판막 협착증을 유도하는 성공적인 기술은 대동맥 판막에 대한 직접적인 풍선 손상에 대한 단계별 설명과 함께 여기에서 시연됩니다. 이 간단하고 재현 가능한 모델은 대동맥 판막 협착증의 시작과 진행을 연구하기 위한 유망한 접근 방식을 제공하며, 대동맥 판막 협착증의 근본적인 병리학적 메커니즘을 조사하기 위한 귀중한 도구를 제공합니다.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

쥐의 척수 손상의 모델로 초점 국소 빈혈을 Photothrombosis는 유도

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

연구

의학

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

생쥐 경동맥 풍선 손상 모델은 반대로 혈관 리모델링의 치료를 테스트하는

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

쥐 모델에서 Infrarenal 복부 대동맥 클램핑에 의해 재현 동맥 발가 벗김 부상

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

가속된 동맥 경화의 토끼 모델: 장 골 동맥 풍선 상해의 방법 론 적 관점

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

작은 대동맥 근위 대동맥을 가진 환자에서 스텐트리스 대동맥 이식편을 이용한 대동맥 판막 치환술

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

대동맥 밸브 밸브 스페어링 대동맥에 다시 주입의 표준화 된 기술 루트 교체

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

코카나발린A에 의해 유도된 수성 결핍 안구 건조증의 토끼 모델: 약물 효능 연구에 적용

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

직접 경포당증 주입에 의해 마우스에 있는 심각한 폐 상해를 유도하는

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

쥐 경동맥 압력 제어 세그먼트 풍선 부상 과식 치료 응용 프로그램

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

성인 얼룩말 피시에 있는 Cisplatin에 의해 유도된 급성 신장 상해 모형

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...