Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

Dette arbeidet ble støttet av et National Research Foundation of Korea (NRF) tilskudd finansiert av den koreanske regjeringen (MSIT) (nr. 2020R1A4A3079570), utdanningsdepartementet (nr. 2021R1I1A1A01051425) og Industrial Strategic Technology Development Program (nr. 20014873) finansiert av departementet for handel, industri og energi, Sør-Korea.

Alle dyreforsøksprosedyrer ble godkjent og utført i samsvar med dyrevelferdsloven, veiledningen for stell og bruk av forsøksdyr, og retningslinjene og retningslinjene for dyreforsøk gitt av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved College of Medicine ved The Catholic University of Korea (godkjenningsnummer: CUMC-2021-0176-05). Denne studien benyttet 3 måneder gamle mannlige New Zealand hvite (NZW) kaniner som veide 3,5-4,0 kg, som ble opprettholdt under standardforhold i individuelle bur. Kaninene bl...

<ol>
	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

Animal AVS-modeller brukes ofte til å studere de patologiske aspektene ved AVS, inkludert initiering og progresjon av AVS. Denne protokollen introduserer en ny kanin AVS-modell indusert av en direkte ballongskade på aortaklaffen. I denne studien viste aortaklaffskademodellen signifikant brosjyrefortykkelse og forkalkning. Sammenlignet med den milde AVS-modellen indusert av kosttilskudd, ble aortaklaffen i modellen for direkte ballongskade selektivt skadet, noe som førte til fortykkede cusps og begrenset bevegelse, sam...

Det er i økende grad anerkjent at bruk av egnede dyremodeller kan bidra til en bedre forståelse av de patologiske mekanismene som ligger til grunn for aortaklaffstenose (AVS) på grunn av manglende tilgang til pålitelige kilder til syke humane aortaklaffer assosiert med progresjon av aortastenose (AS). Blant de ulike dyremodellene for å studere AVS er kaniner en av de mest brukte AVS-modellene for store dyr, og AVS-kaninmodellen induseres enten gjennom kolesterol/vitamin D2-tilskudd eller genetisk manipulasjon 1,2,3,4.
Selv om kanin AVS-modeller har gitt betydelig innsikt i utviklingen og progresjonen av AVS, er det fortsatt utfordrende å indusere AVS konsekvent og reproduserbart, som sett i våre foreløpige eksperimenter.
I tillegg til diettinduserte og genetisk følsomme dyremodeller, er det etablert en ny modell av AVS gjennom direkte mekanisk skade hos mus 5,6. Den mekaniske skademodellen induserer vellykket aortastenose og representerer en enkel og reproduserbar AVS-modell i villtypemus. Så vidt vi vet, har det ikke vært noen tidligere studier som undersøker effekten av en mekanisk skade på aortaklaffen i kaninmodeller. Dermed gir denne studien en ny prosedyre for å indusere AVS hos mannlige New Zealand hvite kaniner gjennom en direkte ballongskade på aortaklaffen, som nøyaktig kan etterligne tilstanden til valvulær aortastenose. Denne protokollen inkluderer trinnvise beskrivelser av preparatet, den kirurgiske prosedyren og den postoperative behandlingen, som er nyttige for å indusere reproduserbare AVS-kaninmodeller.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

Dyremodeller fremstår som et viktig verktøy for å forstå de patologiske mekanismene som ligger til grunn for aortaklaffstenose (AVS) på grunn av mangel på tilgang til pålitelige kilder til syke humane aortaklaffer. Blant de forskjellige dyremodellene er AVS kaninmodeller en av de mest brukte i store dyreforsøk. Imidlertid krever tradisjonelle AVS-kaninmodeller en langsiktig periode med kosttilskudd og genetisk manipulasjon for å indusere signifikant stenose i aortaklaffen, noe som begrenser bruken i eksperimentelle studier. For å løse disse begrensningene foreslås en ny AVS-kaninmodell, der stenose induseres av en direkte ballongskade på aortaklaffen. Den nåværende protokollen beskriver en vellykket teknikk for å indusere AVS hos New Zealand hvite (NZW) kaniner, med trinnvise prosedyrer for forberedelse, kirurgisk prosedyre og postoperativ behandling. Denne enkle og reproduserbare modellen gir en lovende tilnærming for å studere initiering og progresjon av AVS og gir et verdifullt verktøy for å undersøke de underliggende patologiske mekanismene til sykdommen.

Kanin AVS modell indusert av aortaklaffskade For å indusere kanin AVS-modellen ble mannlige NZW-kaniner som veide 3,5-4,0 kg brukt til denne studien. I henhold til de kirurgiske prosedyrene beskrevet i trinn 2 (figur 2) ble AVS-modellen etablert ved aortaklaffskade, som resulterte i mekanisk aortaklaffdegenerasjon og forkalkning. Kontrollgruppen inkluderte kaniner fôret med et 0,5% kolesterolberiket kosthold (høyt kolesterol, HC) og 50.000 U vitamin D2 (VitD2), som er ...

Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

En egnet dyremodell er nødvendig for å forstå de patologiske mekanismene som ligger til grunn for aortaklaffstenose (AVS) og for å evaluere effekten av terapeutiske intervensjoner. Denne protokollen beskriver en ny prosedyre for utvikling av AVS-kaninmodellen via en direkte ballongskade in vivo.

En kanin aortaklaffstenose modell indusert av direkte ballong skade

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

Årlige modeller fremstår som et viktig verktøy for å forstå de patologiske mekanismene som ligger til grunn for aortaklaffstenose på grunn av manglende tilgang til pålitelige kilder til syke humane aortaklaffer. Tradisjonelle aortaklaffstenose kaninmodeller krever langsiktig kosttilskudd og genetisk manipulasjon for å indusere signifikant stenose i aortaklaffen, noe som begrenser bruken i eksperimentelle studier. Denne teknikken beskriver en ny prosedyre for å indusere aortaklaffstenose hos kaniner gjennom en direkte ballonskade på aortaklaffen, som nøyaktig kan etterligne tilstanden til et menneske med aortastenose.Demonstrere prosedyren vil være Eun-Hye Park, Jin-Moo Kim og Eunmi Lee, forskningsspesialister fra min regulatoriske. Begynn å forberede dilatasjonsballongkatetersettet ved å koble deflasjonsanordningen fylt med en-til-en-blandingen av saltvann og kommersielt tilgjengelig kontrastmedium til Luer-låsedelen av ballongkateteret. Etter å ha fylt ballongen med en inflasjonsløsning, fjern luften fra ballongkateteret.Begynn operasjonsprosedyren ved å sette inn et 24 gauge intravenøst eller IV kateter inn i den marginale ørevenen til den bedøvede kaninen. Koble til et infusjonssett med 100 enheter per kilo heparin, heparinisert saltvann. Deretter kobler du kaninen til en veterinærmonitor med flere parametere for kontinuerlig å overvåke vitale tegn som oksygenmetningssignalet eller SpO2-temperatur og blodtrykk.Etter å ha plassert kaninen i liggende stilling på et operasjonsbord utstyrt med en C-arm fluoroskopi, fjern håret fra det ventrale nakkeområdet ved hjelp av dyrehårklippere. Steriliser snittområdet med jod og dekk kaninen med kirurgiske håndklær. For å plassere kaninens hjerte, slå på C-armen og velg fluoroskopisk modus for hjerteavbildning.Juster kaninens posisjon for å sikre at hjertet er i sentrum av bildefeltet. Når stillingen er justert, gjør du et langsgående snitt på omtrent tre centimeter i nakkens hud og bruker kirurgisk saks for å kutte fascia og fettvev. Deretter separerer musklene forsiktig til ca. 3 til 3,5 centimeter av venstre halspulsåre, eller LCCA, er utsatt.Ligate LCCA med en 3-0 silkesutur på toppen og enden av den eksponerte LCCA for å stoppe blodstrømmen. Sett inn et 22 gauge IV kateter i LCCA. Deretter introdusere en 0,016 tommers ledning inn i venstre ventrikkel gjennom IV kateter, slik at spissen av kateteret er riktig plassert i bildefeltet av C-armen.Deretter trekker du IV-kateteret, forlater føringstråden før du plasserer en 4 fransk kappe over ledningstråden inn i LCCA for å introdusere ballongkateteret. Sett forsiktig det åtte millimeter ballongkateteret over ledningstråden inn i aortaklaffen under C-arm fluoroskopisk veiledning. Plasser ballongkateterspissen omtrent en til to centimeter distalt for aortaklaffen og blås opp ballongen ved å rense oppblåsingsløsningen med en trykkoppblåser ved seks atmosfærer.Deretter fremmer ballongen inn i venstre ventrikkel eller LV-apex og trekker den tilbake i LV-utløpet. Gjenta denne prosedyren fem ganger før du tømmer ballongen. Trekk ut ballongkateteret og føringstråden, fjern deretter langsomt kappen fra LCCA og bind umiddelbart LCCA med suturen på vei ned til aortaklaffen.Rengjør snittområdet med saltvann for å fjerne blodproppene. Inspiser det punkterte stedet for arteriell blødning før du lukker muskel og hud med en 3-0 ikke-absorberbar sutur. Når du er ferdig, steriliser såret ved hjelp av jod.Etter operasjonen, fjern overvåkingsplaster og klips og hold kaninen i en intensiv inkubator. Etter åtte uker med ballongskaden, plasser den bedøvede kaninen på et ekkobord i den bakre posisjonen. Påfør ultralydtransdusergel på brystet etter barbering av brystområdet.Juster svingeren for å få peristernal langaksevisning og peristernal kortaksevisning av aortaklaffen. Bruk modusavbildning til å ta bilder av aortaklaffen og lagre bildene for senere analyse. Strukturendringsvurderingen i aortaklaffen viste at åtte uker etter aortaklaffskaden var cusps tykkere og bevegelsen begrenset hos de skadde kaninene som fikk dietten høyt kolesterol og vitamin D2 sammenlignet med kontroll- eller villtypekaninene, og kaninene fôret med høykolesterol- og vitamin D2-dietten uten ventilskade.Kaninene ble ofret og hjertene ble skåret ut åtte uker etter skaden for histologisk analyse av aortaklaffen. Aortaklaffen farget med Massons trichrome viste økt tykkelse på aortaklaffcuspene i den skadde gruppen sammenlignet med kontrollen i grupper med høyt kolesterol og vitamin-D2-diett. Alizarinrødfarging og Von Kossa-farging ble utført for å sammenligne graden av valvulære kalkavleiringer indikerte ubetydelige kalkavleiringer i klaffebrosjyrene i gruppen indusert av høyt kolesterol og vitamin D2-diett.Derimot ble det observert betydelige kalkavsetninger i den ballongskadde gruppen. Vellykket teknikk for å indusere arktisk klaffstenose, i kaninmodellen er her demonstrert med en trinnvis forklaring av en direkte ballongskade på aortaklaffen. Denne enkle og reproduserbare modellen gir en lovende tilnærming for å studere initiering og progresjon av aortaklaffstenose, og gir et verdifullt verktøy for å undersøke de underliggende patologiske mekanismene for aortaklaffstenose.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

Photothrombosis-indusert Focal iskemi som en modell av ryggmargsskader i Mus

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

En rotte Carotis Balloon Injury Modell Test Anti-vaskulær remodelle Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Reproduserbar Arteriell denudasjon Injury av infrarenale Abdominal aortic Klem i en murine modell

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

Kanin modell av akselerert aterosklerose: et metodisk perspektiv iliaca arterien ballong skaden

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

Full-rot Aortic Valve Replacement av Stentless Aortic Xenografts hos pasienter med små Aortic røtter

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

Standardisert teknikk av Aortaklaff re implantasjon for ventil-sparing aorta roten erstatning

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

En kaninmodell av vandig-mangelfull tørrøyesykdom indusert av Concanavalin A Injection in the Lacrimal Glands: Søknad til legemiddeleffektstudier

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Inducing akutt lungeskade i mus ved direkte Intratrakeal lipopolysakkarid drypping

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

En rotte carotis arterie trykkkontrollert segmental ballong skade med periadventitial terapeutisk applikasjon

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Akutt nyreskademodell indusert av Cisplatin i voksen sebrafisk

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...