Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
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Este trabalho foi apoiado por uma bolsa da National Research Foundation of Korea (NRF) financiada pelo governo coreano (MSIT) (No. 2020R1A4A3079570), pelo Ministério da Educação (No. 2021R1I1A1A01051425) e pelo Programa de Desenvolvimento Tecnológico Estratégico Industrial (No. 20014873) financiado pelo Ministério do Comércio, Indústria e Energia, República da Coreia.

Todos os procedimentos de pesquisa com animais foram aprovados e realizados de acordo com a Lei de Bem-Estar dos Animais de Laboratório, o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório e as Diretrizes e Políticas para Experimentação Animal fornecidas pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) na Faculdade de Medicina da Universidade Católica da Coreia (número de aprovação: CUMC-2021-0176-05). O presente estudo utilizou coelhos machos da raça Nova Zelândia (NZW), com 3 meses de idade...

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	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

Modelos animais de SVA são comumente usados para estudar os aspectos patológicos da SVA, incluindo o início e a progressão da EVA. Este protocolo introduz um novo modelo de EVA de coelho induzida por lesão direta por balão na valva aórtica. Neste estudo, o modelo de lesão valvar aórtica mostrou espessamento e calcificação importantes dos folhetos. Comparada ao modelo de EVA leve induzida pela suplementação dietética, a valva aórtica no modelo de lesão direta por balão foi seletivamente lesada, levando a ...

É cada vez mais reconhecido que o uso de modelos animais apropriados pode contribuir para uma melhor compreensão dos mecanismos patológicos subjacentes à estenose valvar aórtica (SVA) devido à falta de acesso a fontes confiáveis de valvas aórticas humanas doentes associadas à progressão da estenose aórtica (EA). Dentre os vários modelos animais para o estudo da SVA, o coelho é um dos modelos de SVA de grande porte mais comumente usados, e o modelo de coelho com SVA é induzido por meio de suplementação de colesterol/vitamina D2 ou manipulação genética 1,2,3,4.
Embora os modelos de SVA em coelhos tenham fornecido informações significativas sobre o desenvolvimento e a progressão da SVA, ainda permanece desafiador induzir a SVA de forma consistente e reprodutível, como visto em nossos experimentos preliminares.
Além de modelos animais induzidos por dieta e geneticamente suscetíveis, um novo modelo de SVA foi estabelecido por meio de lesão mecânica direta em camundongos 5,6. O modelo de lesão mecânica induz com sucesso estenose aórtica e representa um modelo AVS simples e reprodutível em camundongos selvagens. Até onde sabemos, não há estudos prévios examinando os efeitos de uma lesão mecânica na valva aórtica em modelos de coelhos. Assim, este estudo fornece um novo procedimento para indução de EVA em coelhos brancos machos da raça Nova Zelândia através de uma lesão direta por balão na valva aórtica, que pode mimetizar com precisão a condição de estenose aórtica valvar. Esse protocolo inclui descrições passo a passo do preparo, do procedimento cirúrgico e dos cuidados pós-operatórios, que são úteis para induzir modelos reprodutíveis de coelhos da SVA.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

Modelos animais estão emergindo como uma ferramenta importante para entender os mecanismos patológicos subjacentes à estenose da valva aórtica (SVA) devido à falta de acesso a fontes confiáveis de valvas aórticas humanas doentes. Dentre os vários modelos animais, os modelos de coelhos AVS são um dos mais comumente utilizados em estudos com grandes animais. No entanto, os modelos tradicionais de AVS em coelhos requerem um longo período de suplementação dietética e manipulação genética para induzir estenose significativa na valva aórtica, limitando seu uso em estudos experimentais. Para abordar essas limitações, um novo modelo de EVA em coelhos é proposto, no qual a estenose é induzida por uma lesão direta por balão na valva aórtica. O presente protocolo descreve uma técnica bem sucedida de indução de SVA em coelhos brancos da raça Nova Zelândia (NZW), com procedimentos passo a passo para o preparo, o procedimento cirúrgico e os cuidados pós-operatórios. Este modelo simples e reprodutível oferece uma abordagem promissora para o estudo do início e progressão da EVA e fornece uma ferramenta valiosa para investigar os mecanismos patológicos subjacentes da doença.

Modelo de EVA de coelho induzida por lesão valvar aórtica Para induzir o modelo de EVA de coelhos, coelhos machos NZW pesando 3,5-4,0 kg foram utilizados para este estudo. De acordo com os procedimentos cirúrgicos descritos no passo 2 (Figura 2), o modelo AVS foi estabelecido por lesão valvar aórtica, que resultou em degeneração e calcificação valvar aórtica mecânica. O grupo controle incluiu coelhos alimentados com uma dieta enriquecida com 0,5% de colesterol ...

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A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

Um modelo animal apropriado é necessário para entender os mecanismos patológicos subjacentes à estenose da valva aórtica (SVA) e avaliar a eficácia das intervenções terapêuticas. O presente protocolo descreve um novo procedimento para o desenvolvimento do modelo de AVS em coelhos através de uma lesão direta por balão in vivo.

Modelo de estenose da valva aórtica de coelho induzida por lesão direta por balão

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

Modelos anuais estão emergindo como uma ferramenta importante para entender os mecanismos patológicos subjacentes à estenose valvar aórtica devido à falta de acesso a fontes confiáveis de valvas aórticas humanas doentes. Os modelos tradicionais de estenose valvar aórtica em coelhos requerem suplementação dietética em longo prazo e manipulação genética para induzir estenose significativa na valva aórtica, limitando seu uso em estudos experimentais. Esta técnica descreve um novo procedimento para indução de estenose valvar aórtica em coelhos através de uma lesão direta por balão na valva aórtica, que pode mimetizar com precisão a condição de um ser humano com estenose aórtica.Demonstrando o procedimento estarão Eun-Hye Park, Jin-Moo Kim e Eunmi Lee, especialistas em pesquisa do meu regulador. Comece a preparar o conjunto de cateteres balão de dilatação conectando o dispositivo de desinsuflação preenchido com a mistura um-para-um de soro fisiológico e meio de contraste comercialmente disponível à parte Luer lock do cateter-balão. Depois de encher o balão com uma solução de insuflação, remova o ar do cateter do balão.Iniciar o procedimento cirúrgico inserindo um cateter intravenoso ou IV de calibre 24 na veia auricular marginal do coelho anestesiado. Conecte um conjunto de infusão com 100 unidades por quilograma de solução salina heparinizada de heparina. Em seguida, conecte o coelho com um monitor veterinário multiparamétrico para monitorar continuamente os sinais vitais, como o sinal de saturação de oxigênio ou a temperatura e pressão arterial da SpO2.Depois de colocar o coelho em decúbito dorsal em uma mesa cirúrgica equipada com fluoroscopia em C, remova os pelos da área ventral do pescoço usando cortadores de pelos de animais. Esterilizar a área da incisão com iodo e cobrir o coelho com toalhas cirúrgicas. Para posicionar o coração do coelho, ligue o arco em C e selecione o modo fluoroscópico para imagens cardíacas.Ajuste a posição do coelho para garantir que o coração esteja no centro do campo de imagem. Uma vez ajustada a posição, faça uma incisão longitudinal de aproximadamente três centímetros na pele do pescoço e use uma tesoura cirúrgica para cortar a fáscia e o tecido adiposo. Em seguida, separe cuidadosamente os músculos até que aproximadamente 3 a 3,5 centímetros da artéria carótida comum esquerda, ou ACCE, sejam expostos.Ligate a ACCE com uma sutura de seda 3-0 na parte superior e final da ACEC exposta para interromper o fluxo sanguíneo. Insira um cateter IV de calibre 22 na ACCE. Em seguida, introduza um fio-guia de 0,016 polegada no ventrículo esquerdo através do cateter IV, garantindo que a ponta do cateter esteja adequadamente posicionada no campo de imagem do arco em C.Em seguida, retirar o cateter endovenoso, deixando o fio-guia antes de colocar uma bainha 4 French sobre o fio-guia na ACCE para introduzir o cateter-balão. Insira cuidadosamente o cateter-balão de oito milímetros sobre o fio-guia na válvula aórtica sob orientação fluoroscópica do arco em C. Colocar a ponta do cateter-balão aproximadamente um a dois centímetros distal à valva aórtica e inflar o balão purgando a solução de insuflação com um inflador de pressão em seis atmosferas.Em seguida, avance o balão para o ventrículo esquerdo ou ápice do VE e puxe-o de volta para a saída do VE. Repita este procedimento cinco vezes antes de desinsuflar o balão. Retirar o cateter-balão e o fio-guia, retirar lentamente a bainha da ACCE e amarrar imediatamente a ACCE com a sutura até a valva aórtica.Limpe a área da incisão com soro fisiológico para remover os coágulos sanguíneos. Inspecionar o local puncionado em busca de sangramento arterial antes de fechar o músculo e a pele com uma sutura inabsorvível 3-0. Uma vez feito, esterilizar a ferida usando iodo.Após a cirurgia, remova os adesivos e clipes de monitoramento e mantenha o coelho em uma incubadora de terapia intensiva. Após oito semanas da lesão com balão, colocar o coelho anestesiado em uma mesa de eco em decúbito dorsal. Aplique o gel do transdutor de ultrassom no tórax depois de raspar a área do tórax.Ajustar o transdutor para obter a visão periesternal eixo longo e periesternal eixo curto da valva aórtica. Use o modo de imagem para gravar imagens da valva aórtica e salve as imagens para análise posterior. A avaliação da alteração estrutural na valva aórtica revelou que oito semanas após a lesão valvar aórtica, as cúspides estavam espessadas e a movimentação restrita nos coelhos lesionados alimentados com dieta rica em colesterol e vitamina D2 em comparação com coelhos controle ou selvagem, e os coelhos alimentados com dieta rica em colesterol e vitamina D2 sem lesão valvar.Os coelhos foram sacrificados e os corações foram excisados oito semanas após a lesão para análise histológica da valva aórtica. A valva aórtica corada com tricrômico de Masson mostrou espessura aumentada das cúspides valvares aórticas no grupo lesado em relação ao controle nos grupos colesterol elevado e dieta induzida por vitamina D2. As colorações com vermelho de alizarina e de Von Kossa foram realizadas para comparar o grau de depósito de cálcio valvar que indicou depósitos de cálcio desprezíveis nos folhetos valvares no grupo com dieta rica em colesterol e vitamina D2.Em contraste, depósitos calcificados significativos foram observados no grupo lesionado por balão. A técnica bem sucedida de indução de estenose valvar ártica, no modelo coelho, é demonstrada aqui com uma explicação passo a passo de uma lesão direta por balão na valva aórtica. Este modelo simples e reprodutível oferece uma abordagem promissora para o estudo do início e progressão da estenose da valva aórtica, e fornece uma ferramenta valiosa para investigar os mecanismos patológicos subjacentes da estenose da valva aórtica.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

Fototrombose induzida por isquemia focal como um Modelo de Lesão Medular em Ratos

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

Medicina

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

A Rat carótida Balão Injury modelo para testar Therapeutics remodela Anti-vasculares

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Reprodutível Arterial Desnudamento Lesão por aorta abdominal infrarrenal fixação num modelo murino

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

O modelo de coelho da aterosclerose acelerada: uma perspectiva metodológica da artéria ilíaca balão lesão

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

Substituição da valva aórtica de raiz completa por Xenotransplantes aórticos sem stent em pacientes com pequenas raízes aórticas

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

Substituição de raiz de técnica padronizada de re-implantação de válvula aórtica para válvula conservadora da aorta

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

Um modelo de coelho da doença aquosa-deficiente do olho seco induzida pela concanavalina Uma injeção nas glândulas lacrimal: aplicação a estudos de eficácia de drogas

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Induzindo lesão pulmonar aguda em camundongos por instilação de lipopolissacárido intratraqueal direto

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Uma lesão de balão segmental controlada por pressão da artéria de rato com aplicação terapêutica periadventicional

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Modelo de lesão renal aguda induzida por cisplatina em zebrafish adulto

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...