Name: a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury
Uploaded: 2023-03-31T14:40:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

Эта работа была поддержана грантом Национального исследовательского фонда Кореи (NRF), финансируемым правительством Кореи (MSIT) (No 2020R1A4A3079570), Министерством образования (No 2021R1I1A1A01051425) и Программой стратегического развития промышленных технологий (No 20014873), финансируемой Министерством торговли, промышленности и энергетики Республики Корея.

Все процедуры исследований на животных были утверждены и проведены в соответствии с Законом о благополучии лабораторных животных, Руководством по уходу за лабораторными животными и их использованию, а также Руководящими принципами и политикой в отношении экспериментов на животных, п...

<ol>
	<li>Aliev, G., Burnstock, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Watanabe+rabbits+with+heritable+hypercholesterolaemia:+A+model+of+atherosclerosis.">Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis.</a> Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).</li><li>Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+in+a+rabbit+model+of+atherosclerosis:+An+immunohistochemical+and+histological+study.">Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study.</a> Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).</li><li>Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+aortic+valve+sclerosis+or+stenosis+in+rabbits:+role+of+cholesterol+and+calcium.">Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium.</a> Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).</li><li>Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+calcific+aortic+valve+disease.">Animal models of calcific aortic valve disease.</a> International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).</li><li>Honda, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+mouse+model+of+aortic+valve+stenosis+induced+by+direct+wire+injury.">A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).</li><li>Niepmann, S. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graded+murine+wire-induced+aortic+valve+stenosis+model+mimics+human+functional+and+morphological+disease+phenotype.">Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype.</a> Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).</li><li>Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+excision+of+murine+aorta;+A+versatile+technique+in+the+study+of+cardiovascular+disease.">Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease.</a> Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).</li><li>Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=COX2+inhibition+reduces+aortic+valve+calcification+in+vivo.">COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).</li><li>Jung, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spatiotemporal+dynamics+of+macrophage+heterogeneity+and+a+potential+function+of+Trem2(hi)+macrophages+in+infarcted+hearts.">Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts.</a> Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).</li><li>Freeman, R. V., Otto, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spectrum+of+calcific+aortic+valve+disease:+Pathogenesis,+disease+progression,+and+treatment+strategies.">Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies.</a> Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).</li><li>Lindman, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcific+aortic+stenosis.">Calcific aortic stenosis.</a> Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).</li><li>Cuniberti, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+mild+aortic+valve+stenosis+in+a+rabbit+model+of+hypertension.">Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension.</a> Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).</li><li>Marechaux, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+tissue+factor+in+experimental+aortic+valve+sclerosis.">Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis.</a> Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).</li><li>Hara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progression+of+calcific+aortic+valve+sclerosis+in+WHHLMI+rabbits.">Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits.</a> Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).</li></ol>

Модели AVS на животных обычно используются для изучения патологических аспектов AVS, включая начало и прогрессирование AVS. Этот протокол представляет новую модель AVS кролика, индуцированную прямым баллонным повреждением аортального клапана. В этом исследовании модель повреждения аортал...

Все большее признание получает тот факт, что использование соответствующих моделей на животных может способствовать лучшему пониманию патологических механизмов, лежащих в основе стеноза аортального клапана (АВС), из-за отсутствия доступа к надежным источникам пораженных аортальных клапанов человека, связанных с прогрессированием аортального стеноза (АС). Среди различных животных моделей для изучения АВС кролики являются одной из наиболее часто используемых моделей АВС крупных животных, а модель АВС кроликов индуцируется либо с помощью добавок холестерина/витамина D2, либо с помощью генетических манипуляций 1,2,3,4.
Несмотря на то, что кроличьи модели AVS предоставили значительное представление о развитии и прогрессировании AVS, по-прежнему остается сложной задачей последовательное и воспроизводимое индуцирование AVS, как видно из наших предварительных экспериментов.
В дополнение к генетически восприимчивым моделям животных, индуцированных диетой и генетически восприимчивым, была создана новая модель AVS путем прямой механической травмы у мышей 5,6. Модель механической травмы успешно индуцирует аортальный стеноз и представляет собой простую и воспроизводимую модель AVS у мышей дикого типа. Насколько нам известно, ранее не проводилось исследований, изучающих влияние механической травмы на аортальный клапан на кроличьих моделях. Таким образом, в данном исследовании представлена новая процедура индуцирования АВС у самцов новозеландских белых кроликов путем прямого баллонного повреждения аортального клапана, которая может точно имитировать состояние клапанного аортального стеноза. Этот протокол включает в себя пошаговое описание подготовки, хирургической процедуры и послеоперационного ухода, которые полезны для индуцирования воспроизводимых моделей кроликов AVS.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>3-0 Silk suture</td>
			<td>AILEE</td>
			<td>SK312</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde(PFA)</td>
			<td>Intron</td>
			<td>IBS-BP031-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin red Solution</td>
			<td>Millpore</td>
			<td>TMS-008-C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ASAHI SION BLUE&#160;</td>
			<td>ASAHI</td>
			<td></td>
			<td>Guide wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Back Table Cover</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>80101-30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Balloon In-deflation Device</td>
			<td>Demax Medical</td>
			<td>DID30s</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bionet Veterinary monitor</td>
			<td>BIONET</td>
			<td>BM3 VET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Arm</td>
			<td>SIEMENS Healthcare GmbH</td>
			<td>Cios alpha</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Certified Rabbit Diet</td>
			<td>Purina</td>
			<td>5322</td>
			<td>4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, &#38; 1% Molasse</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curadle Smart Incubator</td>
			<td>Autoelex</td>
			<td>CS-CV206</td>
			<td>Intensive Care Unit (ICU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergocalciferol</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>E5750</td>
			<td>Vitamin D2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fechtner conjunctiva forceps titanium</td>
			<td>WORLD PRECISSION Instrument</td>
			<td>WP1820</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td>HEBU</td>
			<td>HB203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gentamicin</td>
			<td>Shin Poong</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycopyrrolate&#160;</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Greenflex NS</td>
			<td>DAI HAN PHARM</td>
			<td></td>
			<td>Normal saline 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hematoxylin solution</td>
			<td>Sigma-aldrich&#160;</td>
			<td>HT1079-1 SET</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>JW pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td>25,000 U</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion set for single use</td>
			<td>SWOON MEDICAL</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Green pharmaceutical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodixanol</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Visipaque</td>
			<td>Inflation solution (contrast agent)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 22 G</td>
			<td>BD&#160;</td>
			<td>382423</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IV catheter 24 G</td>
			<td>BD</td>
			<td>382412</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketoprofen</td>
			<td>SamChunDang</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 10 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luer-Lok syringe 3 mL</td>
			<td>Becton Dickinson Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>OLYMPUS</td>
			<td>SZ61</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microtome</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>HM 325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MT stain kit</td>
			<td>Sigma-aldrich</td>
			<td>HT15-1kt</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needel holder</td>
			<td>Solco</td>
			<td>009-1304</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Holder with Lock and Suture</td>
			<td>JEUNGDO BIO &#38; PLANT</td>
			<td>H-1222-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraffin</td>
			<td>LK LABKOREA</td>
			<td>H06-660-107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium chloride 40</td>
			<td>Daihan Pharm</td>
			<td></td>
			<td>KCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude Ideal Hydrophilic Sheath</td>
			<td>MERIT MEDICAL</td>
			<td>PID4F11018SS</td>
			<td>Sheath 4F</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTA Balloon Dilatation catheter</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>H749-3903280208-0</td>
			<td>Balloon catheter 8.0 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rompun</td>
			<td>Elanco</td>
			<td></td>
			<td>Xylaxine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sterile Gauze</td>
			<td>DAE HAN Medical</td>
			<td></td>
			<td>10 cm x 20 cm&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gloves</td>
			<td>Ansell</td>
			<td>Ansell</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Gown</td>
			<td>Yuhan kimberly</td>
			<td>90002-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Scissors</td>
			<td>Nopa, Germany</td>
			<td>AC020/16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Tape</td>
			<td>3M micopore</td>
			<td>1530-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 10 mL</td>
			<td>Shin Chang Medical</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue cassette</td>
			<td>Scilav korea</td>
			<td>Cas3003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transducer gel&#160;</td>
			<td>SUNGHEUNG</td>
			<td>SH102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tridol</td>
			<td>Yuhan Corp.</td>
			<td></td>
			<td>Tramadol HCl</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound system</td>
			<td>Philps</td>
			<td>Affiniti 50</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Von Kossa stain kit</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab105689</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zoletil 50</td>
			<td>Virbac korea</td>
			<td></td>
			<td>Tiletamine &#38; zolazepam</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rabbit aortic valve stenosis model induced by direct balloon injury

Модели на животных становятся важным инструментом для понимания патологических механизмов, лежащих в основе стеноза аортального клапана (АВС), из-за отсутствия доступа к надежным источникам пораженных аортальных клапанов человека. Среди различных моделей животных модели кроликов AVS являются одними из наиболее часто используемых в исследованиях крупных животных. Тем не менее, традиционные модели AVS кроликов требуют длительного периода приема пищевых добавок и генетических манипуляций для индуцирования значительного стеноза аортального клапана, что ограничивает их использование в экспериментальных исследованиях. Для устранения этих ограничений предложена новая модель кроликов AVS, в которой стеноз индуцируется прямым баллонным повреждением аортального клапана. В настоящем протоколе описана успешная методика индуцирования АВС у новозеландских белых кроликов (NZW) с пошаговыми процедурами подготовки, хирургического вмешательства и послеоперационного ухода. Эта простая и воспроизводимая модель предлагает многообещающий подход к изучению возникновения и прогрессирования АВС и предоставляет ценный инструмент для изучения основных патологических механизмов заболевания.

Модель AVS кролика, индуцированная повреждением аортального клапана Для индукции кроличьей модели AVS в данном исследовании использовали кроликов-самцов NZW массой 3,5-4,0 кг. В соответствии с хирургическими процедурами, описанными на этапе 2 (рис. 2), модель AVS была с...

Watch this Scientific Journal Video about A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury at JoVE.com

A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury

Для понимания патологических механизмов, лежащих в основе стеноза аортального клапана (АВС), и для оценки эффективности терапевтических вмешательств необходима соответствующая модель на животных. В настоящем протоколе описана новая процедура разработки модели кролика AVS с помощью прямого повреждения баллоном in vivo.

Модель стеноза аортального клапана кролика, индуцированного прямым повреждением баллоном

Animal models are emerging as an important tool to understand the pathologic mechanisms underlying aortic valve stenosis (AVS) because of the lack of ...

Ежегодные модели становятся важным инструментом для понимания патологических механизмов, лежащих в основе стеноза аортального клапана, из-за отсутствия доступа к надежным источникам пораженных аортальных клапанов человека. Традиционные модели стеноза аортального клапана у кроликов требуют длительного приема пищевых добавок и генетических манипуляций для индуцирования значительного стеноза аортального клапана, что ограничивает их использование в экспериментальных исследованиях. Эта методика описывает новую процедуру индуцирования стеноза аортального клапана у кроликов путем прямого баллонного повреждения аортального клапана, которая может точно имитировать состояние человека с аортальным стенозом.Процедуру продемонстрируют Пак Ын Хе, Ким Джин-Му и Ынми Ли, специалисты по исследованиям из моего регулирующего органа. Начните подготовку дилатационного баллонного катетера, подключив устройство для сдувания, заполненное смесью физиологического раствора и коммерчески доступного контрастного вещества, к части баллонного катетера с замком Люэра. После наполнения баллона раствором для надувания удалите воздух из баллонного катетера.Начните процедуру операции с введения внутривенного или внутривенного катетера 24 калибра в краевую ушную вену кролика, находящегося под наркозом. Соедините инфузионный набор со 100 единицами на килограмм гепарина гепаринизированным физиологическим раствором. Затем подключите кролика к многопараметрическому ветеринарному монитору, чтобы постоянно контролировать жизненно важные показатели, такие как сигнал насыщения кислородом или температура SpO2 и кровяное давление.Поместив кролика в положение лежа на спине на операционном столе, оснащенном рентгеноскопией С-дуги, удалите волосы из области брюшной шеи с помощью машинок для стрижки шерсти животных. Простерилизуйте место разреза йодом и накройте кролика хирургическими полотенцами. Чтобы расположить сердце кролика, включите С-дугу и выберите режим рентгеноскопии для визуализации сердца.Отрегулируйте положение кролика, чтобы убедиться, что сердце находится в центре поля визуализации. После того, как положение будет отрегулировано, сделайте продольный разрез примерно в три сантиметра на коже шеи и хирургическими ножницами разрежьте фасцию и жировую ткань. Затем осторожно разнимайте мышцы до тех пор, пока не обнажится примерно 3-3,5 сантиметра левой общей сонной артерии, или LCCA.Наложите на LCCA шелковый шов 3-0 в верхней и нижней части открытого LCCA, чтобы остановить кровоток. Вставьте внутривенный катетер 22 калибра в LCCA. Затем введите направляющий провод диаметром 0,016 дюйма в левый желудочек через внутривенный катетер, убедившись, что кончик катетера правильно расположен в поле визуализации С-дуги.Затем извлеките внутривенный катетер, оставив направляющий провод, прежде чем поместить оболочку 4 Франции поверх направляющего провода в LCCA для введения баллонного катетера. Осторожно введите восьмимиллиметровый баллонный катетер через направляющий провод в аортальный клапан под рентгеноскопическим контролем С-дуги. Поместите наконечник баллонного катетера примерно на один-два сантиметра дистальнее аортального клапана и надуйте баллон, продувая раствор для надувания с помощью надувного насоса под давлением в шесть атмосфер.Затем продвигают баллон в левый желудочек или верхушку ЛЖ и втягивают его обратно в выходное отверстие ЛЖ. Повторите эту процедуру пять раз, прежде чем сдуть баллон. Извлеките баллонный катетер и направляющую проволоку, затем медленно извлеките оболочку из LCCA и сразу же завяжите LCCA швом на пути к аортальному клапану.Промойте область разреза физиологическим раствором, чтобы удалить сгустки крови. Осмотрите место прокола на предмет артериального кровотечения, прежде чем закрыть мышцу и кожу нерассасывающимся швом 3-0. После этого простерилизуйте рану йодом.После операции снимите контрольные пластыри и клипсы и держите кролика в инкубаторе интенсивной терапии. Через восемь недель после травмы баллоном поместите кролика под наркозом на эхо-стол в положении лежа на спине. Нанесите гель для ультразвукового датчика на грудную клетку после бритья области груди.Отрегулируйте датчик так, чтобы получить перистернальный вид по длинной оси и перистернальный вид по короткой оси аортального клапана. Используйте режим визуализации для записи изображений аортального клапана и сохранения изображений для последующего анализа. Оценка структурных изменений в аортальном клапане показала, что через восемь недель после травмы аортального клапана бугорки были утолщены, а движения ограничены у травмированных кроликов, которых кормили диетой с высоким содержанием холестерина и витамина D2, по сравнению с кроликами контрольного или дикого типа, и кролики, получавшие диету с высоким содержанием холестерина и витамина D2 без повреждения клапана.Кролики были принесены в жертву, а сердца были вырезаны через восемь недель после травмы для гистологического анализа аортального клапана. Аортальный клапан, окрашенный трихромом Массона, показал увеличенную толщину створок аортального клапана в поврежденной группе по сравнению с контролем в группах с высоким уровнем холестерина и диетой, индуцированной витамином D2. Для сравнения степени отложений кальция в клапанах указывалось на незначительные отложения кальция в створках клапанов в группе с высоким уровнем холестерина и витамином D2.Напротив, значительные кальцифицирующие отложения наблюдались в группе, пострадавшей от воздушного шара. Здесь демонстрируется успешная методика индуцирования стеноза арктического клапана на кроличьей модели с пошаговым объяснением прямого повреждения аортального клапана баллоном. Эта простая и воспроизводимая модель предлагает многообещающий подход к изучению возникновения и прогрессирования стеноза аортального клапана, а также является ценным инструментом для изучения основных патологических механизмов стеноза аортального клапана.

Research

JoVE Journal

Medicine

Photothrombosis-induced Focal Ischemia as a Model of Spinal Cord Injury in Mice

Фототромбоза-индуцированной ишемии как модель с повреждением спинного мозга у мышей

Spinal cord injury (SCI) is a devastating clinical condition causing permanent changes in sensorimotor and autonomic functions of the spinal cord (SC) ...

A Rat Carotid Balloon Injury Model to Test Anti-vascular Remodeling Therapeutics

Крыса Каротидное шар Травма Модель для тестирования Anti-сосудистое ремоделирование Therapeutics

The rat carotid balloon injury is a well-established surgical model that has been used to study arterial remodeling and vascular cell proliferation. It is ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Возпроизводимо Артериальная Денудация Травма от ИНФРАРЕНАЛЬНОГО брюшного отдела аорты зажимное в мышиной модели

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These ...

The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury

Кролик модель ускоренной атеросклероза: методологические перспективы травмы шар подвздошных артерии

Acute coronary syndrome resulting from coronary occlusion following atherosclerotic plaque development and rupture is the leading cause of death in the ...

Full-root Aortic Valve Replacement by Stentless Aortic Xenografts in Patients with Small Aortic Roots

Замена клапанов аортального клапана с полным корнем с помощью ксенотрансплантатов без Stentless аорты у пациентов с малыми корнями аорты

In patients with small aortic roots who need an aortic valve replacement with biological valve substitutes, the implantation of the stented pericardial ...

Standardized Technique of Aortic Valve Re-implantation for Valve-sparing Aortic Root Replacement

Стандартного метода повторного имплантации аортальный клапан для клапана щадящие аорты корень замена

Despite the obvious advantages of the preservation of a normal aortic valve during aortic root replacement, the complexity of valve sparing procedures ...

A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection into the Lacrimal Glands: Application to Drug Efficacy Studies

Кролик Модель Aqueous-дефицитных сухих заболеваний глаз индуцированных Concanavalin инъекции в Lacrimal Glands: Применение к наркотикам эффективности исследований

Dry eye disease (DED), a multifactorial inflammatory disease of the ocular surface, affects 1 in 6 humans worldwide with staggering implications for ...

Inducing Acute Lung Injury in Mice by Direct Intratracheal Lipopolysaccharide Instillation

Индуцирование острая травма легких у мышей путем прямого внутричехального липополисахарида интиллация

Airway administration of lipopolysaccharide (LPS) is a common way to study pulmonary inflammation and acute lung injury (ALI) in small animal models. ...

A Rat Carotid Artery Pressure-Controlled Segmental Balloon Injury with Periadventitial Therapeutic Application

Крыса сонной артерии Давление контролируемых сегментальных воздушный шар травмы с Периавентициального терапевтического применения

Cardiovascular disease remains the leading cause of death and disability worldwide, in part due to atherosclerosis. Atherosclerotic plaque narrows the ...

Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Острая модель травмы почек, вызванная Цисплатином у взрослых зебрафиш

Cisplatin is commonly used as chemotherapy. Although it has positive effects in cancer-treated individuals, cisplatin can easily accumulate in the kidney ...