Name: normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse
Uploaded: 2023-09-25T14:25:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

Under hele udarbejdelsen af dette papir har jeg modtaget megen støtte og hjælp. Jeg vil især gerne takke min holdkammerat XinPei Chen for hans vidunderlige samarbejde og patientstøtte under min operation.

Dyreforsøg blev udført i henhold til gældende tyske regler og retningslinjer for dyrevelfærd og ARRIVE-retningslinjerne for rapportering af dyreforsøg. Dyreforsøgsprotokollen blev godkendt af Thüringer Landesamt für Verbraucherschutz, Thüringen, Tyskland (godkendelsesnummer: UKJ - 17 - 106).
BEMÆRK: C57BL/6J-hanmus, der vejede 34 ± 4 g (gennemsnitlig ± standardfejl for den gennemsnitlige [SEM]), blev anvendt som leverdonorer. De blev vedligeholdt under kontrollerede miljøforhold (...

Kritiske trin i protokollen De to afgørende trin i levereksplantation er kanylering af portalvenen (PV) og den efterfølgende kanylering af galdegangen (BD). Disse trin er af afgørende betydning for at sikre vellykket organudtagning og efterfølgende perfusions- eller transplantationsprocedurer.
Udfordringer og løsninger PV-kanylering giver tre udfordringer: skade på beholdervæggen, forskydning af kateteret og praktisk anvendelighed af indsættelses...

Levertransplantation repræsenterer guldstandardbehandlingen for personer med leversygdom i slutstadiet. Desværre overstiger efterspørgslen efter donororganer det tilgængelige udbud, hvilket fører til en betydelig mangel. I 2021 var ca. 24.936 patienter på venteliste til et levertransplantat, mens kun 9.234 transplantationer blev udført med succes1. Den betydelige forskel mellem udbud og efterspørgsel efter levertransplantater understreger det presserende behov for at undersøge alternative strategier for at udvide donorpuljen og forbedre tilgængeligheden af levertransplantater. En måde at udvide donorpuljen på er at bruge marginale donorer2. Marginale donorer omfatter dem med fremskreden alder, moderat eller svær steatose. Selvom transplantation af marginale organer kan give gunstige resultater, forbliver de samlede resultater suboptimale. Som følge heraf er udviklingen af terapeutiske strategier, der tager sigte på at forbedre marginaldonorernes funktion, i øjeblikket i gang 3,4.
En af strategierne er at bruge maskinperfusion, især normoterm oxygeneret maskinperfusion, for at forbedre funktionen af disse marginale organer5. Der er dog stadig en begrænset forståelse af de molekylære mekanismer, der ligger til grund for de gavnlige virkninger af normoterm oxygeneret maskinperfusion (NEVLP). Mus, med deres rigelige tilgængelighed af genetisk modificerede stammer, tjener som værdifulde modeller til undersøgelse af molekylære veje. For eksempel er betydningen af autofagiveje til at afbøde leveriskæmi-reperfusionsskade i stigende grad blevet anerkendt 6,7. En vigtig molekylær vej i leveriskæmi-reperfusionsskaden er miR-20b-5p / ATG7-vejen8. I øjeblikket er der en række ATG-knockout- og betingede knock-out-musestammer tilgængelige, men ingen tilsvarende rottestammer9.
Baseret på denne baggrund var målet at generere en miniaturiseret NEVLP-platform til muselevertransplantater. Denne platform vil lette udforskningen og evalueringen af potentielle genetisk modificerede strategier, der har til formål at forbedre donorleverens funktionalitet. Derudover var det vigtigt, at systemet var egnet til langvarig perfusion, hvilket muliggør ex vivo-behandling af leveren, almindeligvis omtalt som "organreparation".
I betragtning af den begrænsede tilgængelighed af relevante in vitro-data om perfusion af muselever fokuserede litteraturgennemgangen på studier udført på rotter. En systematisk litteratursøgning fra 2010 til 2022 blev udført ved hjælp af nøgleord som "normoterm leverperfusion", "ex vivo eller in vitro" og "rotter". Denne søgning havde til formål at identificere optimale forhold hos gnavere, så vi kunne bestemme den mest hensigtsmæssige tilgang.
Perfusionssystemet består af et forseglet vandkappet glasbufferreservoir, en peristaltisk rullepumpe, en oxygenator, en boblefælde, en varmeveksler, et orgelkammer og et lukket cykelslangesystem (figur 1). Systemet sikrer præcis vedligeholdelse af en konstant perfusionstemperatur på 37 °C ved hjælp af en dedikeret termostatisk maskine. Den peristaltiske rullepumpe driver strømmen af perfusat gennem kredsløbet. Perfusionskredsløbet starter ved det isolerede vandkappede reservoir. Derefter ledes perfusatet gennem oxygenatoren, som modtager en gasblanding af 95% ilt og 5% kuldioxid fra en dedikeret gasflaske. Efter iltning passerer perfusatet gennem boblefælden, hvor eventuelle indesluttede bobler omdirigeres tilbage til reservoiret af den peristaltiske pumpe. Det resterende perfusat strømmer gennem varmeveksleren og kommer ind i orgelkammeret, hvorfra det vender tilbage til reservoiret.
Her rapporterer vi vores erfaringer med at etablere en NEVLP til muselever og deler de lovende resultater af et piloteksperiment udført ved hjælp af det iltede medium uden iltbærere.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5 ml Micro Tube PP</td>
			<td>Sarstedt</td>
			<td>72699</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L Micro Syringe</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>701N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+OF2419</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+DU2619WX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 G Hypodermic Needle</td>
			<td>Sterican</td>
			<td>100246</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml Syringe Pump</td>
			<td>Braun</td>
			<td>110356</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Perma-Hand Seide</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>639H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial Clip</td>
			<td>Braun</td>
			<td>BH014R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclavable Moist Chamber</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>73-4733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Big Cotton Applicator&#160;</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bubble Trap</td>
			<td>Hugo-Sachs-Elektronik</td>
			<td>V83163</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenovet (0.3 mg / ml)</td>
			<td>Elanco</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CIDEX OPA solution (2 L)</td>
			<td>Cilag GmbH</td>
			<td>20391</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrosurgical Unit for Monopolar Cutting VIO&#174; 50 C</td>
			<td>ERBE</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum(500 ml)&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F7524-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas Mixture (95 % oxygen &#38; 5 % carbon dioxide)</td>
			<td>House Supply</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Circulating Baths</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>75-0310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin 5000 (I.E. /5 ml)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>1708.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrocortisone (100 mg / 2 ml)</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>15427276</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin(100 IE / ml)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I0516-5ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15000-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isofluran (250 ml)</td>
			<td>Cp-Pharma</td>
			<td>1214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Membrane Oxygenator</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>T18728</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgery Microscope&#160;</td>
			<td>Leica</td>
			<td>M60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Retractor Set&#160;</td>
			<td>Carfil Quality</td>
			<td>180000056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NanoZoomer 2.0 HT</td>
			<td>Hamamatsu</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-Woven Sponges&#160;</td>
			<td>Kompressen</td>
			<td>866110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin Streptomycin (1 mg / ml)&#160;</td>
			<td>C.C.Pro</td>
			<td>Z-13-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion Extension Tube (30 cm)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>4256000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peristaltic Pump</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>P-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri Dishc 100x15 mm</td>
			<td>VWR&#174;</td>
			<td>391-0578</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidon-Jod (Vet-Sep Spray)</td>
			<td>Livisto</td>
			<td>799-416</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure Transducer Simulator</td>
			<td>UTAH Medical Products</td>
			<td>650-950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reusable Blood Pressure Transducers</td>
			<td>AD Instruments</td>
			<td>MLT-0380/D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S &#38; T Vessel Cannulation Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00608-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Cotton Applicator</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight Forceps 10 cm&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture Tying Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>11063-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 50ml Original Perfusor</td>
			<td>Braun</td>
			<td>8728810F-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UT - 03 Cannula</td>
			<td>Unique Medical, Japan</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vannas Spring Scissors</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15018-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinary Saline (500 ml)</td>
			<td>WDT</td>
			<td>18X1807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Jacketed Reservoir&#160; 2 L</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>73-3441</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>William&#39;s E Medium (500 ML)</td>
			<td>Thermofischer Scientific</td>
			<td>A1217601</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse

Denne protokol præsenterer et optimeret erythrocytfrit NEVLP-system ved hjælp af muselever. Ex vivo-konservering af muselever blev opnået ved at anvende modificerede kanyler og teknikker tilpasset fra konventionelt kommercielt ex vivo-perfusionsudstyr. Systemet blev brugt til at evaluere bevaringsresultaterne efter 12 timers perfusion. C57BL/6J-mus fungerede som leverdonorer, og leveren blev plantet ved at kanylere portalvenen (PV) og galdegangen (BD) og efterfølgende skylle organet med varmt (37 °C) hepariniseret saltvand. Derefter blev de udplantede lever overført til perfusionskammeret og udsat for normoterm oxygeneret maskinperfusion (NEVLP). Indløbs- og udløbsperfusatprøver blev indsamlet med 3 timers mellemrum til perfusatanalyse. Efter afslutning af perfusionen blev leverprøver opnået til histologisk analyse med morfologisk integritet vurderet under anvendelse af modificeret Suzuki-score gennem hæmatoxylin-Eosin (HE) farvning. Optimeringseksperimenterne gav følgende resultater: (1) mus, der vejer over 30 g, blev anset for mere egnede til eksperimentet på grund af den større størrelse af deres galdegang (BD). (2) en 2 Fr (udvendig diameter = 0,66 mm) polyurethankanyle var bedre egnet til kanylering af portalvenen (PV) sammenlignet med en polypropylenkanyle. Dette blev tilskrevet polyurethanmaterialets forbedrede greb, hvilket resulterede i reduceret kateterglidning under overførslen fra kroppen til orgelkammeret. (3) til kanylering af galdegangen (BD) blev en 1 Fr (udvendig diameter = 0,33 mm) polyurethankanyle fundet mere effektiv sammenlignet med polypropylen UT - 03 (ydre diameter = 0,30 mm) kanyle. Med denne optimerede protokol blev muselever med succes bevaret i en varighed på 12 timer uden væsentlig indvirkning på den histologiske struktur. Hematoxylin-Eosin (HE) farvning afslørede en velbevaret morfologisk arkitektur i leveren, kendetegnet ved overvejende levedygtige hepatocytter med tydeligt synlige kerner og mild udvidelse af hepatiske sinusoider.

Etablering af kirurgisk procedure I alt 17 dyr blev brugt til dette forsøg: 14 mus blev ansat til at optimere organudtagningsprocessen, herunder kanylering af portalvenen (PV) og galdegangen (BD), mens 3 mus blev brugt til at validere proceduren (tabel 1). Histologiske resultater (figur 3) blev sammenlignet for at lette identifikationen af den optimale perfusionstilstand.
Udvælgelse af perfusat Et tidliger...

Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

Et normoterm ex vivo leverperfusion (NEVLP) system blev oprettet til muselever. Dette system kræver erfaring med mikrokirurgi, men giver mulighed for reproducerbare perfusionsresultater. Evnen til at udnytte muselever letter undersøgelsen af molekylære veje til at identificere nye perfusatadditiver og muliggør udførelse af eksperimenter med fokus på organreparation.

Normothermic ex vivo levermaskine perfusion i mus

This protocol presents an optimized erythrocytes-free NEVLP system using mouse livers. Ex vivo preservation of mouse livers was achieved by employing ...

Normothermic ex-vivo levermaskine perfusion i mus. Normodermisk iltet leverperfusion er en lovende strategi til redning af marginale organer og er for nylig blevet introduceret i klinisk praksis. Imidlertid er de underliggende molekylære mekanismer ikke godt forstået.En musemodel er nødvendig for yderligere at studere de molekylære veje og drage fordel af genetisk modificerede dyr, såsom transgene mus, og venter derfor på at etablere et normoterm iltet maskinperfusionssystem til muselever. Her er en ordning for hele vores system. For det første styres hele systemet ved 37 grader celsius af en termostatstyring gennem vandcirkulationen.Perfusatet pumpes fra reservoiret af en peristaltisk pumpe ind i en oxygenator. Der er en uafbrudt gasstrøm på 95%oxygen og 5%carbondioxid i oxygenatoren. Perfusatet passerer derefter gennem en boblefælde.Perfusatet med luftbobler pumpes tilbage til reservoiret under tryk. Det resterende perfusat strømmer til orgelkammeret, hvor røret er forbundet med portalvenen. Perfusatet drænes fra leveren gennem den suprahepatiske cava ind i orgelkammeret.Perfusatudstrømningen fra orgelkammeret ledes tilbage til reservoiret af den peristaltiske pumpe. Et galdedrænrør er forbundet til orgelkammeret for at opsamle galde. Dette er vores operationsbord.Alle operationer udføres under et mikroskop. Vi opretholder semisterile driftsforhold under hele det kirurgiske indgreb. Hold den franske rørkanyle med tang.Træng ind i kanylevæggen med en 30G nål i en centimeter afstand fra kanylens ende. Tryk nålen gennem kanylen, indtil spidsen af nålen bliver synlig. Her er et sammenligningsbillede af 26G kateter og selvfremstillet kanyle; Begge er velegnede til kanylering af museportaler.Forbered 25 ml hepariniseret saltvand med en endelig koncentration på 2.500 internationale enheder pr. Milliliter, og læg sprøjten i inkubator indstillet til 40 grader celsius. Her er hovedkomponenterne i ex-vivo normoterm maskinperfusionssystem. Komponenterne omfatter hovedsageligt orgelkammeret, termostatmaskinen, rullepumpen, oxygenatoren og reservoiret.Her kan du se en detaljeret opsætning af vores orgelkammer. Grundlæggende består den af et organkammerlegeme, en tryksensor, en varmeveksler og en boblefælde. Vi oprettede et perfusatindløb, et perfusatudløb og en galdeafløbsport.Dette er det ADI-overvågningssystem, vi bruger til at overvåge portalvenetrykket. ADI-systemet består af en tryksensor, en central styring og displays. Tænd LabChart-programmet til trykovervågning.Kalibrering og nulstilling er påkrævet før hver brug af tryksensoren. Brug nul-millimeter kviksølv og 20-millimeter kviksølv som mærker til at kalibrere tryksensoren til totrinskalibreringen. Baseret på den konstante overvågning af portaltrykket kan vi justere portalfluranen i henhold til trykændringer.Ved lige store mængder perfusat til reservoiret og organkammeret for at prime systemet skal der lægges særlig vægt på at opretholde sterilitet under påfyldningsprocessen. Tilslut induktionskammeret med en stikkontakt. Drej ilt til 0,5 liter pr. Minut.Drej isofluran til 3%Anbring dyret i kammeret, indtil dyb anæstesi er nået. Brug mikrosprøjten til at anvende legemsvægttilpasset dosis analgesi. Her syv mikroliter buprenorphin.Nu starter vi operationen. Lav et tværgående snit i musens abdominalområde. Hudsnittet strækker sig til den bilaterale kødaksillære linje på begge sider.Lav forsigtigt et langsgående snit langs linea alba. Skær gennem mavemuskellaget med elektrokoagulation og saks. Placer forsigtigt et stykke vådt gasbind for at beskytte leveren mod elektrokoagulation.Udsæt musens bukhule fuldt ud. Flyt forsigtigt tyndtarmen ud af bukhulen med en våd vatpind for fuldt ud at udsætte hilum. Her vises et skematisk diagram over portalvenekanylering og galdegangskanulering.Grundlæggende vælger vi den passende kanyle i henhold til musens størrelse, og vi bruger 6-0 silkesutur til fiksering af kanylen. Frigør forsigtigt den fælles galdegang ved hjælp af fine buede tang uden tænder. Den fælles galdegang er meget let beskadiget og går i stykker.Når den går i stykker, kan den ikke kanyleres. På grund af retningen af den anatomiske position er buede tang lettere at betjene. Placer to 6-0 silkesutursløjfe over den fælles galdegang som forberedelse til næste trin.Punktering forsigtigt galdegangen med en 30G nål. Brug spidse buede tang til at forstørre de små huller, så den kan føde galdegangskanulering. Brug karkanyleringstang over galdegangskanulen og skub den ind i galdegangen. Seddel.I øjeblikket af kanylering vil du føle modstanden fra galden. Hvis kraften ikke er velkontrolleret, vil kanylen blive skubbet ud af galdevejen ved trykket af galdeudstrømningen. Juster forsigtigt kanylens dybde.Hvis det er for dybt, kan det beskadige galdegangen, og hvis det ikke er dybt nok, kan det glide ud. Galdestrømmen kan observeres i kanylen efter vellykket kanylering. Klem portalvenen med flade tang og frigør forsigtigt bindevævet med buede tang.Træk ikke hårdt her, for ikke at forårsage rivning af portalvenen. Når portalvenen er beskadiget, er det vanskeligt at rec cannulate portalvenen. Placer to 6-0 silkesutursløjfe over den frie portalvene.Brug et arterielt klip til at lukke den distale portalvene. Punktering meget omhyggeligt portalvenen med en af ovenstående portalvenekanyler. Blodgennemstrømningen kan tydeligt observeres i kanylen efter en vellykket punktering.Tag forvarmet heparinsaltopløsning fra inkubatoren. Fjern alle luftbobler. Fastgør sprøjten med forvarmet hepariniseret saltvand i sprøjtepumpen.Tilslut sprøjtepumpens forlængerrør til kanylen i portalvenen. Juster hastigheden til to milliliter i minuttet, og start skylningen af leveren. Forøg isofluran til 5% og aflive musen med en overdosis isofluran inhalation.Overhold leverens farve ved afslutningen af skylleproceduren. Punktafgifter leveren, når farven blev til en homogen gul. Overfør forsigtigt leveren til orgelkammeret ved hjælp af en petriskål.Opbevar en lille mængde saltvand i petriskålen for at forhindre, at leveren knuses. Seddel. Portalvene og galdegang kan let vrides under denne procedure, hvilket kan påvirke leverperfusion og galdeopsamling. Tilsæt langsomt normalt saltvand i portalvenekanylen med en sprøjte for at evakuere luftboblerne i kanylen.Tilslut portalvenekanylen til perfusatudstrømningsrøret i orgelkammeret. Musens galdekanalkanyle styres gennem en ventil i orgelkammeret, som er lukket med en gummihætte. Derefter indsættes galderøret i et forberedt 0,5 ml mikrorør med et lille hul i blyet.Når alt er tilsluttet, skal du tænde den peristaltiske pumpe. Kontroller portalens venetrykaflæsning for at justere strømningshastigheden. Oprethold portalvenetrykket mellem syv og 10 millimeter kviksølv ved at justere strømningshastigheden. Seddel.Den nominelle strømningshastighed kan variere lidt afhængigt af alder og placering af rør. Dette er udvælgelsen af perfusatmedium, perfusatvolumen og perfusionstryk baseret på en litteraturoparbejdning af normotermiske iltede rottelevermaskinperfusionsundersøgelser. Dette er et trin-for-trin forsøg for at etablere museperfusionsmodellen.Det tog omkring 14 eksperimenter at vælge de mest egnede katetre. I vores hænder er brug af to franske gummikatetre til portalvenen sammen med et fransk gummikateter til galdegangen den bedste kombination for at opnå homogen perfusion med alle katetre på plads. pH-niveau og kaliumniveau var stabilt gennem 12-timers perfusion.pH-niveauet varierede fra 7,26 til 7,71, og kaliumniveauet varierede fra 5,9 til 6,8 millimol pr. Liter. HE-farvning viser, at efter 12 timers perfusion var histologiintegriteten af muselever relativt velbevaret. Samlet set demonstrerede vi her den vellykkede etablering af et normoterm oxygeneret maskinperfusionssystem til museleveren.Perfusion af en muselever i 12 timer resulterede i en god bevarelse af levermorfologien, men ikke i hele organet. Der er behov for en yderligere indsats for at opnå fuldstændig homogen perfusion over en længere periode. Når dette er opnået, kan brugen af genetisk modificerede dyr overvejes, såsom brugen af IL-2-knockout-mus til at undersøge inflammationens rolle.

Research

JoVE Journal

Engineering

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

High-resolution, High-speed, Three-dimensional Video Imaging with Digital Fringe Projection Techniques

Digital fringe projection (DFP) techniques provide dense 3D measurements of dynamically changing surfaces.&#160;Like the human eyes and brain, DFP uses ...

The Preparation of Electrohydrodynamic Bridges from Polar Dielectric Liquids

Fremstillingen af ​​elektrohydrodynamisk Bridges fra Polar Dielektriske Væsker

Horizontal and vertical liquid bridges are simple and powerful tools for exploring the interaction of high intensity electric fields (8-20 kV/cm) and ...

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

In Vitro Kultur Epikardielle celler fra mus embryonale Heart

During embryogenesis, the epicardial contribution to coronary vasculature development has been very well established. Cells derived from the epicardium ...

Fabrication of Ultra-thin Color Films with Highly Absorbing Media Using Oblique Angle Deposition

Fabrikation af ultra-tynde farve film med meget absorberende medier bruger skråt Deposition

Ultra-thin film structures have been studied extensively for use as optical coatings, but performance and fabrication challenges remain.&#160; We present ...

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Metoder til Ex Situ og In Situ undersøgelser af strukturelle forandringer: sagen om krystallisering af metalliske briller

We demonstrate the use of two nuclear-based analytical methods that can follow the modifications of microstructural arrangement of iron-based metallic ...

Application of Design Aspects in Uniaxial Loading Machine Development

Anvendelse af designaspekter i enakset lastning maskine udvikling

In terms of accurate and precise mechanical testing, machines run the continuum. Whereas commercial platforms offer excellent accuracy, they can be ...

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Vurdering af aorta regurgitation ved hjælp af firedimensionel flow magnetisk resonansbilleddannelse

Aortic regurgitation (AR) refers to backward blood flow from the aorta into the left ventricle (LV) during ventricular diastole. The regurgitant jet ...

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Partikelbillede Velocimetry Undersøgelse af hæmodynamik via Aorta Phantom

Aortic valve dysfunction and stroke have recently been reported in transcatheter aortic valve implantation (TAVI) patients. Thrombus in the aortic sinus ...

Synthesizing Nanoparticles and Nanostructures via Laser Ablation

Ultrafast Laser-Ablated Nanoparticles and Nanostructures for Surface-Enhanced Raman Scattering-Based Sensing Applications

Advancements and Applications in Nanoparticle Synthesis Through Laser Ablation in Liquids (Video) | JoVE

Ultrahurtige laserablerede nanopartikler og nanostrukturer til overfladeforbedrede Raman-spredningsbaserede sensorapplikationer

The technique of ultrafast laser ablation in liquids has evolved and matured over the past decade, with several impending applications in various fields ...

Preparation of Free-Surface Hyperbolic Water Vortices

Fremstilling af hyperbolske vandhvirvler med fri overflade

Free surface vortices are present in industry in flow regulation, energy dissipation, and energy generation. Although investigated extensively, detailed ...