Name: normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse
Uploaded: 2023-09-25T14:25:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

На протяжении всего периода написания этой статьи я получал большую поддержку и помощь. Я особенно хотел бы поблагодарить моего товарища по команде Синьпэй Чена за его прекрасное сотрудничество и терпеливую поддержку во время моей операции.

Эксперименты на животных проводились в соответствии с действующими немецкими правилами и рекомендациями по благополучию животных и рекомендациями ARRIVE, касающимися отчетности об исследованиях на животных. Протокол эксперимента на животных был одобрен Thüringer Landesamt für Verbraucherschutz, Тюринг?...

Критические шаги в протоколе Двумя важнейшими этапами эксплантации печени являются канюляция воротной вены (PV) и последующая канюляция желчного протока (BD). Эти шаги имеют первостепенное значение для обеспечения успешного извлечения органов и последующих процедур перфузии...

Трансплантация печени представляет собой золотой стандарт лечения людей с терминальной стадией заболевания печени. К сожалению, спрос на донорские органы превышает имеющееся предложение, что приводит к значительному дефициту. В 2021 году около 24 936 пациентов находились в листе ожидания на пересадку печени, при этом было успешно выполнено только 9 234 трансплантации1. Значительное несоответствие между спросом и предложением на трансплантаты печени подчеркивает настоятельную необходимость изучения альтернативных стратегий для расширения пула доноров и повышения доступности трансплантатов печени. Одним из путей расширения пула доноров является использование маргинальных доноров2. К маргинальным донорам относятся пожилые люди, с умеренным или тяжелым стеатозом. Хотя трансплантация маргинальных органов может дать благоприятные результаты, общие результаты остаются неоптимальными. В результате в настоящеевремя ведется разработка терапевтических стратегий, направленных на усиление функции маргинальных доноров3,4.
Одна из стратегий состоит в том, чтобы использовать машинную перфузию, особенно нормотермическую кислородированную машинную перфузию, для улучшения функции этих маргинальных органов5. Тем не менее, все еще существует ограниченное понимание молекулярных механизмов, лежащих в основе благотворного воздействия нормотермической оксигенированной машинной перфузии (NEVLP). Мыши, с их обильной доступностью генетически модифицированных штаммов, служат ценными моделями для исследования молекулярных путей. Например, значение путей аутофагии в смягчении ишемии-реперфузионного повреждения печени все чаще признается 6,7. Одним из важных молекулярных путей при ишемии-реперфузии печени является путь miR-20b-5p/ATG78. В настоящее время существует ряд штаммов мышей с нокаутом АТГ и условным нокаутом, но нет соответствующих штаммов крыс9.
Исходя из этого, цель состояла в том, чтобы создать миниатюрную платформу NEVLP для трансплантатов печени мышей. Эта платформа облегчит изучение и оценку потенциальных генетически модифицированных стратегий, направленных на улучшение функциональности печени донора. Кроме того, было важно, чтобы система была пригодна для длительной перфузии, что позволяло проводить лечение печени ex vivo , обычно называемое «восстановлением органов».
Учитывая ограниченную доступность соответствующих данных in vitro о перфузии печени мышей, обзор литературы был сосредоточен на исследованиях, проведенных на крысах. Систематический поиск литературы за период с 2010 по 2022 год проводился с использованием таких ключевых слов, как «нормотермическая перфузия печени», «ex vivo или in vitro» и «крысы». Этот поиск был направлен на выявление оптимальных условий у грызунов, что позволило определить наиболее подходящий подход.
Перфузионная система состоит из герметичного стеклянного буферного резервуара с водяной рубашкой, перистальтического роликового насоса, оксигенатора, пузырьковой ловушки, теплообменника, камеры органа и замкнутой системы циклических трубок (рис. 1). Система обеспечивает точное поддержание постоянной температуры перфузии 37 °C с помощью специальной термостатической машины. Перистальтический роликовый насос приводит в движение поток перфузата по всему контуру. Перфузионный контур начинается в изолированном резервуаре с водяной рубашкой. Затем перфузат направляется через оксигенатор, который получает газовую смесь из 95% кислорода и 5% углекислого газа из специального газового баллона. После оксигенации перфузат проходит через пузырьковую ловушку, в которой любые захваченные пузырьки перенаправляются обратно в резервуар перистальтическим насосом. Оставшийся перфузат проходит через теплообменник и поступает в камеру органа, откуда возвращается в резервуар.
Здесь мы сообщаем о нашем опыте создания NEVLP для печени мышей и делимся многообещающими результатами пилотного эксперимента, проведенного с использованием оксигенированной среды без переносчиков кислорода.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5 ml Micro Tube PP</td>
			<td>Sarstedt</td>
			<td>72699</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L Micro Syringe</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>701N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+OF2419</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+DU2619WX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 G Hypodermic Needle</td>
			<td>Sterican</td>
			<td>100246</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml Syringe Pump</td>
			<td>Braun</td>
			<td>110356</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Perma-Hand Seide</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>639H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial Clip</td>
			<td>Braun</td>
			<td>BH014R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclavable Moist Chamber</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>73-4733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Big Cotton Applicator&#160;</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bubble Trap</td>
			<td>Hugo-Sachs-Elektronik</td>
			<td>V83163</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenovet (0.3 mg / ml)</td>
			<td>Elanco</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CIDEX OPA solution (2 L)</td>
			<td>Cilag GmbH</td>
			<td>20391</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrosurgical Unit for Monopolar Cutting VIO&#174; 50 C</td>
			<td>ERBE</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum(500 ml)&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F7524-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas Mixture (95 % oxygen &#38; 5 % carbon dioxide)</td>
			<td>House Supply</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Circulating Baths</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>75-0310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin 5000 (I.E. /5 ml)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>1708.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrocortisone (100 mg / 2 ml)</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>15427276</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin(100 IE / ml)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I0516-5ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15000-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isofluran (250 ml)</td>
			<td>Cp-Pharma</td>
			<td>1214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Membrane Oxygenator</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>T18728</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgery Microscope&#160;</td>
			<td>Leica</td>
			<td>M60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Retractor Set&#160;</td>
			<td>Carfil Quality</td>
			<td>180000056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NanoZoomer 2.0 HT</td>
			<td>Hamamatsu</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-Woven Sponges&#160;</td>
			<td>Kompressen</td>
			<td>866110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin Streptomycin (1 mg / ml)&#160;</td>
			<td>C.C.Pro</td>
			<td>Z-13-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion Extension Tube (30 cm)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>4256000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peristaltic Pump</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>P-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri Dishc 100x15 mm</td>
			<td>VWR&#174;</td>
			<td>391-0578</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidon-Jod (Vet-Sep Spray)</td>
			<td>Livisto</td>
			<td>799-416</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure Transducer Simulator</td>
			<td>UTAH Medical Products</td>
			<td>650-950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reusable Blood Pressure Transducers</td>
			<td>AD Instruments</td>
			<td>MLT-0380/D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S &#38; T Vessel Cannulation Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00608-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Cotton Applicator</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight Forceps 10 cm&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture Tying Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>11063-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 50ml Original Perfusor</td>
			<td>Braun</td>
			<td>8728810F-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UT - 03 Cannula</td>
			<td>Unique Medical, Japan</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vannas Spring Scissors</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15018-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinary Saline (500 ml)</td>
			<td>WDT</td>
			<td>18X1807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Jacketed Reservoir&#160; 2 L</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>73-3441</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>William&#39;s E Medium (500 ML)</td>
			<td>Thermofischer Scientific</td>
			<td>A1217601</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse

Этот протокол представляет собой оптимизированную систему NEVLP без эритроцитов с использованием печени мышей. Сохранение печени мышей ex vivo было достигнуто за счет использования модифицированных канюль и методов, адаптированных из обычного коммерческого перфузионного оборудования ex vivo . Система была использована для оценки результатов сохранения после 12 часов перфузии. Мыши C57BL/6J служили донорами печени, а печень эксплантировали путем канюляции воротной вены (PV) и желчного протока (BD) и последующего промывания органа теплым (37 °C) гепаринизированным физиологическим раствором. Затем эксплантированную печень переносили в перфузионную камеру и подвергали нормотермической оксигенированной машинной перфузии (NEVLP). Образцы перфузата на входе и выходе отбирали с интервалом в 3 часа для анализа перфузата. После завершения перфузии были получены образцы печени для гистологического анализа, при этом морфологическая целостность оценивалась с использованием модифицированной шкалы Suzuki-Score путем окрашивания гематоксилин-эозином (HE). Эксперименты по оптимизации дали следующие результаты: (1) мыши весом более 30 г были признаны более подходящими для эксперимента из-за большего размера их желчного протока (BD). (2) полиуретановая канюля 2 Fr (наружный диаметр = 0,66 мм) лучше подходила для канюляции воротной вены (PV) по сравнению с полипропиленовой канюлей. Это было связано с улучшенным сцеплением полиуретанового материала, что привело к уменьшению проскальзывания катетера при переносе из тела в камеру органа. (3) для канюляции желчного протока (BD) полиуретановая канюля 1 Fr (наружный диаметр = 0,33 мм) оказалась более эффективной по сравнению с полипропиленовой канюлей UT - 03 (наружный диаметр = 0,30 мм). С помощью этого оптимизированного протокола печень мышей была успешно сохранена в течение 12 часов без существенного влияния на гистологическую структуру. Окрашивание гематоксилин-эозином (ГЭ) выявило хорошо сохранившуюся морфологическую архитектуру печени, характеризующуюся преимущественно жизнеспособными гепатоцитами с хорошо видимыми ядрами и легкой дилатацией печеночных синусоидов.

Установление хирургического вмешательства Всего для этого эксперимента было использовано 17 животных: 14 мышей были использованы для оптимизации процесса получения органов, включая канюляцию воротной вены (PV) и желчного протока (BD), в то время как 3 мыши были использованы для п...

Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

Для печени мышей была создана нормотермическая система перфузии печени ex vivo (NEVLP). Эта система требует опыта в микрохирургии, но позволяет получить воспроизводимые результаты перфузии. Возможность использования печени мышей облегчает исследование молекулярных путей для выявления новых добавок перфузата и позволяет проводить эксперименты, направленные на восстановление органов.

Нормотермическая перфузия печени ex vivo у мышей

This protocol presents an optimized erythrocytes-free NEVLP system using mouse livers. Ex vivo preservation of mouse livers was achieved by employing ...

Нормотермическая перфузия печени ex-vivo у мышей. Нормотермическая оксигенированная перфузия печени является перспективной стратегией спасения маргинальных органов и недавно была внедрена в клиническую практику. Однако основные молекулярные механизмы не совсем понятны.Мышиная модель необходима для дальнейшего изучения молекулярных путей с использованием генетически модифицированных животных, таких как трансгенные мыши, поэтому ожидается создание нормотермической оксигенированной системы машинной перфузии для печени мышей. Вот схема всей нашей системы. Во-первых, вся система контролируется при температуре 37 градусов по Цельсию термостатическим регулятором через циркуляцию воды.Перфузант перекачивается из резервуара перистальтическим насосом в оксигенатор. В оксигенаторе происходит непрерывный поток газа, состоящий из 95% кислорода и 5% углекислого газа. Затем перфузат проходит через пузырьковую ловушку.Перфузат с пузырьками воздуха под давлением перекачивается обратно в резервуар. Оставшийся перфузат поступает в камеру органа, где трубка соединяется с воротной веной. Перфузат дренируется из печени через надпеченочную полую краду в камеру органа.Перфузиальный отток из камеры органа направляется обратно в резервуар перистальтическим насосом. Желчная дренажная трубка соединяется с камерой органа для сбора желчи. Это наш операционный стол.Все операции проводятся под микроскопом. Мы поддерживаем полустерильные условия работы на протяжении всей хирургической процедуры. Удерживайте канюлю с французской трубкой щипцами.Проникните в стенку канюли иглой 30G на расстоянии одного сантиметра от конца канюли. Протолкните иглу через канюлю до тех пор, пока кончик иглы не станет виден. Вот сравнительная картина катетера 26G и самодельной канюли; Оба подходят для портальной канюляции мыши.Приготовьте 25 миллилитров гепаринизированного физиологического раствора с конечной концентрацией 2 500 международных единиц на миллилитр и поместите шприц в инкубатор при температуре 40 градусов по Цельсию. Вот основные компоненты перфузионной системы нормотермического аппарата ex-vivo. Компоненты в основном включают камеру органа, термостатическую машину, роликовый насос, оксигенатор и резервуар.Здесь вы можете увидеть подробную настройку нашей органной камеры. По сути, он состоит из корпуса камеры органа, датчика давления, теплообменника и ловушки для пузырей. Мы установили вход для перфузата, выход для перфузата и отверстие для отвода желчи.Это система мониторинга ADI, которую мы используем для контроля давления в воротной вене. Система ADI состоит из датчика давления, центрального контроллера и дисплеев. Включите программу LabChart для контроля давления.Калибровка и обнуление требуются перед каждым использованием датчика давления. Используйте ртутный столб с нулевым миллиметром и 20-миллиметровый ртутный столб в качестве меток для калибровки датчика давления для двухэтапной калибровки. Основываясь на постоянном контроле портального давления, мы можем регулировать портальный флуран в соответствии с изменениями давления.При равных объемах перфузата в резервуар и камеру органа для заправки системы особое внимание необходимо уделять поддержанию стерильности в процессе наполнения. Соедините индуционную камеру с розеткой. Увеличьте кислород до 0,5 литра в минуту.Увеличьте изофлуран до 3%Поместите животное в камеру до тех пор, пока не будет достигнута глубокая анестезия. Используйте микрошприц, чтобы применить дозу анальгезии, адаптированную к массе тела. Здесь семь микролитров бупренорфина.Теперь мы приступаем к хирургической операции. Сделайте поперечный разрез в области живота мыши. Разрез кожи распространяется на двустороннюю подмышечную линию с обеих сторон.Аккуратно сделайте продольный надрез вдоль белой линии. Разрежьте слой мышц живота с помощью электрокоагуляции и ножниц. Аккуратно положите кусочек влажной марли, чтобы защитить печень от электрокоагуляции.Полностью обнажить брюшную полость мыши. Осторожно выведите тонкую кишку из брюшной полости влажным ватным тампоном, чтобы полностью обнажить хилум. Здесь показана принципиальная схема канюляции воротной вены и канюляции желчных протоков.В основном мы выбираем подходящую канюлю в соответствии с размером мыши, а для фиксации канюли используем шелковый шов 6-0. Осторожно освободите общий желчный проток с помощью тонких изогнутых щипцов без зубов. Общий желчный проток очень легко повреждается и разрывается.Как только он сломается, его нельзя будет канюлировать. Благодаря направлению анатомического положения изогнутые щипцы легче оперировать. Наденьте две шелковые шовные петли 6-0 на общий желчный проток, чтобы подготовиться к следующему шагу.Аккуратно проколите желчный проток иглой 30G. Используйте заостренные изогнутые щипцы, чтобы увеличить маленькие отверстия, чтобы он мог питать канюляцию желчных протоков. Используйте щипцы для канюляции сосудов поперек канюли желчных протоков и протолкните их в желчный проток. Заметка.В момент канюляции вы почувствуете сопротивление, приносимое желчью. Если сила не контролируется должным образом, канюля будет выталкиваться из желчевыводящих путей под давлением оттока желчи. Тщательно отрегулируйте глубину канюли.Если он слишком глубокий, он может повредить желчный проток, а если он недостаточно глубокий, он может выскользнуть. Отток желчи может наблюдаться в канюле после успешной канюляции. Зажмите воротную вену плоскими щипцами и аккуратно освободите соединительную ткань изогнутыми щипцами.Не тяните здесь сильно, чтобы не вызвать разрыв воротной вены. После повреждения воротной вены трудно повторно канюлировать воротную вену. Наденьте две шелковые шовные петли 6-0 на свободную воротную вену.Используйте артериальный зажим, чтобы закрыть дистальную воротную вену. Очень осторожно проколите воротную вену одной из вышеперечисленных канюль воротной вены. Кровоток можно четко наблюдать внутри канюли после успешной пункции.Возьмите подогретый солевой раствор гепарина из инкубатора. Удалите все пузырьки воздуха. Зафиксируйте шприц с предварительно подогретым гепаринизированным физиологическим раствором в шприцевом насосе.Подсоедините удлинительную трубку шприцевого насоса к канюле воротной вены. Отрегулируйте скорость до двух миллилитров в минуту и начните промывание печени. Увеличьте изофлуран до 5% и усыпьте мышей при передозировке изофлурана ингаляцией.Наблюдайте за цветом печени в конце процедуры промывания. Иссекайте печень, как только цвет станет однородным желтым. Осторожно перенесите печень в камеру органа с помощью чашки Петри.Держите небольшое количество физиологического раствора в чашке Петри, чтобы печень не раздавилась. Заметка. Воротная вена и желчный проток могут быть легко перекручены во время этой процедуры, что может повлиять на перфузию печени и сбор желчи. Медленно вливайте нормальный физиологический раствор в канюлю воротной вены с помощью шприца, чтобы удалить пузырьки воздуха в канюле.Подключите канюлю воротной вены к трубке перфузатного оттока в камере органа. Канюля желчного протока мыши направляется через клапан камеры органа, который закрывается резиновым колпачком. Затем желчная трубка вставляется в заранее подготовленную микропробирку объемом 0,5 миллилитра с небольшим отверстием в отведении.После того, как все подключено, включите перистальтический насос. Проверьте показания давления в воротной вене, чтобы отрегулировать скорость потока. Поддерживайте давление в воротной вене от семи до 10 миллиметров ртутного столба, регулируя скорость потока. Заметка.Номинальный расход может незначительно варьироваться в зависимости от возраста и расположения труб. Это выбор перфузатной среды, объема перфузии и перфузионного давления на основе литературного анализа нормотермических исследований перфузии печени крыс с кислородом. Это пошаговое испытание для создания модели перфузии мыши.Потребовалось около 14 экспериментов, чтобы выбрать наиболее подходящие катетеры. В наших руках использование двух французских резиновых катетеров для воротной вены вместе с одним французским каучуковым катетером для желчных протоков является лучшей комбинацией для достижения однородной перфузии со всеми установленными катетами. Уровень рН и уровень калия были стабильными на протяжении всей 12-часовой перфузии.Уровень рН варьировался от 7,26 до 7,71, а уровень калия – от 5,9 до 6,8 миллимоль на литр. Окрашивание HE показывает, что после 12-часовой перфузии целостность гистологии печени мыши была относительно хорошо сохранена. Взятые вместе, мы продемонстрировали здесь успешное создание нормотермической оксигенированной машинной перфузионной системы для печени мышей.Перфузия печени мыши в течение 12 часов привела к хорошему сохранению морфологии печени, хотя и не по всему органу. Необходимы дальнейшие усилия для достижения полной однородной перфузии в течение более длительного периода времени. Как только это будет достигнуто, можно будет рассмотреть возможность использования генетически модифицированных животных, таких как использование мышей с нокаутом IL-2 для исследования роли воспаления.

Research

JoVE Journal

Engineering

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

High-resolution, High-speed, Three-dimensional Video Imaging with Digital Fringe Projection Techniques

Высокое разрешение, высокая скорость, Трехмерная Видео Формирование изображений с цифровой Fringe методы проекции

Digital fringe projection (DFP) techniques provide dense 3D measurements of dynamically changing surfaces.&#160;Like the human eyes and brain, DFP uses ...

The Preparation of Electrohydrodynamic Bridges from Polar Dielectric Liquids

Подготовка Электрогидродинамические Мосты от полярных диэлектрических жидкостей

Horizontal and vertical liquid bridges are simple and powerful tools for exploring the interaction of high intensity electric fields (8-20 kV/cm) and ...

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

Экстракорпоральное культуры эпикардиального клеток из эмбриональных сердца

During embryogenesis, the epicardial contribution to coronary vasculature development has been very well established. Cells derived from the epicardium ...

Fabrication of Ultra-thin Color Films with Highly Absorbing Media Using Oblique Angle Deposition

Изготовление ультра-тонкий цветной фильмов с сильно поглощающих средств массовой информации с использованием угла наклона осаждения

Ultra-thin film structures have been studied extensively for use as optical coatings, but performance and fabrication challenges remain.&#160; We present ...

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Методы Ex Situ и In Situ исследования структурных преобразований: В случае кристаллизации металлических стекол

We demonstrate the use of two nuclear-based analytical methods that can follow the modifications of microstructural arrangement of iron-based metallic ...

Application of Design Aspects in Uniaxial Loading Machine Development

Применение дизайн аспектов в развитии одноосные загрузки машины

In terms of accurate and precise mechanical testing, machines run the continuum. Whereas commercial platforms offer excellent accuracy, they can be ...

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Оценка регургитации аорты с помощью четырехмерной проточной магнитно-резонансной томографии

Aortic regurgitation (AR) refers to backward blood flow from the aorta into the left ventricle (LV) during ventricular diastole. The regurgitant jet ...

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Велоциметрическое исследование гемодинамики с помощью аортального фантома

Aortic valve dysfunction and stroke have recently been reported in transcatheter aortic valve implantation (TAVI) patients. Thrombus in the aortic sinus ...

Synthesizing Nanoparticles and Nanostructures via Laser Ablation

Ultrafast Laser-Ablated Nanoparticles and Nanostructures for Surface-Enhanced Raman Scattering-Based Sensing Applications

Advancements and Applications in Nanoparticle Synthesis Through Laser Ablation in Liquids (Video) | JoVE

Сверхбыстрые наночастицы и наноструктуры с лазерной абляцией для поверхностного зондирования на основе комбинационного рассеяния

The technique of ultrafast laser ablation in liquids has evolved and matured over the past decade, with several impending applications in various fields ...

Preparation of Free-Surface Hyperbolic Water Vortices

Получение поверхностных гиперболических вихрей воды

Free surface vortices are present in industry in flow regulation, energy dissipation, and energy generation. Although investigated extensively, detailed ...