Name: normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse
Uploaded: 2023-09-25T14:25:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

Under skrivandet av detta dokument har jag fått mycket stöd och hjälp. Jag vill särskilt tacka min lagkamrat XinPei Chen för hans underbara samarbete och tålmodiga stöd under min operation.

Djurförsök utfördes enligt gällande tyska regler och riktlinjer för djurskydd och ARRIVE-riktlinjerna för rapportering av djurförsök. Djurförsöksprotokollet godkändes av Thüringer Landesamt für Verbraucherschutz, Thüringen, Tyskland (godkännandenummer: UKJ - 17 - 106).
OBS: Möss av typen C57BL / 6J av hankön som vägde 34 ± 4 g (medelvärde ± standardfel för medelvärdet [SEM]) användes som leverdonatorer. De hölls under kontrollerade miljöförhållanden (50% luftfuktigh...

Kritiska steg i protokollet De två avgörande stegen i leverexplantation är kanylering av portalvenen (PV) och efterföljande kanylering av gallgången (BD). Dessa steg är av yttersta vikt för att säkerställa framgångsrik organhämtning och efterföljande perfusions- eller transplantationsförfaranden.
Utmaningar och lösningar PV-kanylering innebär tre utmaningar: skada på kärlväggen, förskjutning av katetern och genomförbarhet av införing...

Levertransplantation representerar guldstandardbehandlingen för personer med leversjukdom i slutstadiet. Tyvärr överstiger efterfrågan på donerade organ det tillgängliga utbudet, vilket leder till en betydande brist. År 2021 stod cirka 24 936 patienter på väntelistan för ett levertransplantat, medan endast 9 234 transplantationer framgångsrikt utfördes1. Den betydande skillnaden mellan utbud och efterfrågan på levertransplantat belyser det pressande behovet av att undersöka alternativa strategier för att bredda givarpoolen och förbättra tillgängligheten av levertransplantat. Ett sätt att utöka donatorpoolen är att använda marginella givare2. Marginella givare inkluderar de med hög ålder, måttlig eller svår steatos. Även om transplantation av marginella organ kan ge gynnsamma resultat, förblir de övergripande resultaten suboptimala. Som ett resultat pågår för närvarande utvecklingen av terapeutiska strategier som syftar till att förbättra funktionen hos marginella givare 3,4.
En av strategierna är att använda maskinperfusion, särskilt normotermisk syresatt maskinperfusion, för att förbättra funktionen hos dessa marginella organ5. Det finns dock fortfarande en begränsad förståelse för de molekylära mekanismer som ligger till grund för de fördelaktiga effekterna av normotermisk syresatt maskinperfusion (NEVLP). Möss, med sin rikliga tillgång på genetiskt modifierade stammar, fungerar som värdefulla modeller för att undersöka molekylära vägar. Till exempel har betydelsen av autofagivägar för att mildra hepatisk ischemi-reperfusionsskada alltmer erkänts 6,7. En viktig molekylär väg i leverischemi-reperfusionsskadan är miR-20b-5p / ATG7-vägen8. För närvarande finns det ett antal ATG-knockout- och villkorade knock-out-musstammar tillgängliga men inga motsvarande råttstammar9.
Baserat på denna bakgrund var målet att skapa en miniatyriserad NEVLP-plattform för levertransplantat från möss. Denna plattform skulle underlätta utforskning och utvärdering av potentiella genetiskt modifierade strategier som syftar till att förbättra funktionaliteten hos donatorns lever. Dessutom var det viktigt att systemet var lämpligt för långvarig perfusion, vilket möjliggjorde ex vivo-behandling av levern, vanligen kallad "organreparation".
Med tanke på den begränsade tillgången på relevanta in vitro-data om leverperfusion på möss fokuserade litteraturgenomgången på studier utförda på råtta. En systematisk sökning av litteratur som sträckte sig från 2010 till 2022 utfördes med hjälp av nyckelord som "normotermisk leverperfusion", "ex vivo eller in vitro" och "råttor". Denna sökning syftade till att identifiera optimala förhållanden hos gnagare, så att vi kunde bestämma det lämpligaste tillvägagångssättet.
Perfusionssystemet består av en förseglad vattenmantlad glasbuffertbehållare, en peristaltisk rullpump, en oxygenator, en bubbelfälla, en värmeväxlare, en orgelkammare och ett slutet cykelrörsystem (figur 1). Systemet säkerställer exakt underhåll av en konstant perfusionstemperatur på 37 °C med hjälp av en särskild termostatisk maskin. Den peristaltiska rullpumpen driver perfusatets flöde genom hela kretsen. Perfusionskretsen initieras vid den isolerade vattenmantlade behållaren. Därefter riktas perfusatet genom oxygenatorn, som mottar en gasblandning av 95% syre och 5% koldioxid från en dedikerad gasflaska. Efter syresättning passerar perfusatet genom bubbelfällan, varvid eventuella fångade bubblor omdirigeras tillbaka till behållaren av den peristaltiska pumpen. Det återstående perfusatet strömmar genom värmeväxlaren och går in i orgelkammaren, varifrån det återvänder till behållaren.
Här rapporterar vi våra erfarenheter av att etablera en NEVLP för muslever och delar de lovande resultaten av ett pilotexperiment utfört med det syresatta mediet utan syrebärare.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5 ml Micro Tube PP</td>
			<td>Sarstedt</td>
			<td>72699</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 &#181;L Micro Syringe</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>701N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 Fr Rubber Cannula</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>Sample Cannula</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+OF2419</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G Butterfly Cannula</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SR+DU2619WX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 G Hypodermic Needle</td>
			<td>Sterican</td>
			<td>100246</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 ml Syringe Pump</td>
			<td>Braun</td>
			<td>110356</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Perma-Hand Seide</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>639H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial Clip</td>
			<td>Braun</td>
			<td>BH014R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclavable Moist Chamber</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>73-4733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Big Cotton Applicator&#160;</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974018</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bubble Trap</td>
			<td>Hugo-Sachs-Elektronik</td>
			<td>V83163</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenovet (0.3 mg / ml)</td>
			<td>Elanco</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CIDEX OPA solution (2 L)</td>
			<td>Cilag GmbH</td>
			<td>20391</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrosurgical Unit for Monopolar Cutting VIO&#174; 50 C</td>
			<td>ERBE</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum(500 ml)&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F7524-500ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas Mixture (95 % oxygen &#38; 5 % carbon dioxide)</td>
			<td>House Supply</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Circulating Baths</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>75-0310</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin 5000 (I.E. /5 ml)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>1708.00.00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrocortisone (100 mg / 2 ml)</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>15427276</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin(100 IE / ml)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>I0516-5ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iris Scissors&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15000-03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isofluran (250 ml)</td>
			<td>Cp-Pharma</td>
			<td>1214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Membrane Oxygenator</td>
			<td>Hugo Sachs Elektronik</td>
			<td>T18728</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgery Microscope&#160;</td>
			<td>Leica</td>
			<td>M60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Retractor Set&#160;</td>
			<td>Carfil Quality</td>
			<td>180000056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NanoZoomer 2.0 HT</td>
			<td>Hamamatsu</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-Woven Sponges&#160;</td>
			<td>Kompressen</td>
			<td>866110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin Streptomycin (1 mg / ml)&#160;</td>
			<td>C.C.Pro</td>
			<td>Z-13-M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Perfusion Extension Tube (30 cm)</td>
			<td>Braun</td>
			<td>4256000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peristaltic Pump</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>P-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri Dishc 100x15 mm</td>
			<td>VWR&#174;</td>
			<td>391-0578</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidon-Jod (Vet-Sep Spray)</td>
			<td>Livisto</td>
			<td>799-416</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure Transducer Simulator</td>
			<td>UTAH Medical Products</td>
			<td>650-950</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Reusable Blood Pressure Transducers</td>
			<td>AD Instruments</td>
			<td>MLT-0380/D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>S &#38; T Vessel Cannulation Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00608-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Cotton Applicator</td>
			<td>NOBA Verbandmittel Danz GmbH</td>
			<td>974116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Straight Forceps 10 cm&#160;</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>00632-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Suture Tying Forceps</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>11063-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 50ml Original Perfusor</td>
			<td>Braun</td>
			<td>8728810F-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>UT - 03 Cannula</td>
			<td>Unique Medical, Japan</td>
			<td>/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vannas Spring Scissors</td>
			<td>Fine Science Instruments</td>
			<td>15018-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinary Saline (500 ml)</td>
			<td>WDT</td>
			<td>18X1807</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water Jacketed Reservoir&#160; 2 L</td>
			<td>Harvard-Apparatus</td>
			<td>73-3441</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>William&#39;s E Medium (500 ML)</td>
			<td>Thermofischer Scientific</td>
			<td>A1217601</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

normothermic ex vivo liver machine perfusion in mouse

Detta protokoll presenterar ett optimerat erytrocytfritt NEVLP-system med muslever. Ex vivo-konservering av muslever uppnåddes genom att använda modifierade kanyler och tekniker anpassade från konventionell kommersiell ex vivo-perfusionsutrustning. Systemet användes för att utvärdera bevaranderesultaten efter 12 timmars perfusion. C57BL/6J-möss fungerade som leverdonatorer, och levern explanterades genom kanylering av portalvenen (PV) och gallgången (BD) och därefter spolning av organet med varm (37 °C) hepariniserad saltlösning. Därefter överfördes de explanterade leverna till perfusionskammaren och utsattes för normotermisk syresatt maskinperfusion (NEVLP). Inlopps- och utloppsperfusatprover samlades in med 3 timmars intervall för perfusatanalys. Efter avslutad perfusion erhölls leverprover för histologisk analys, med morfologisk integritet bedömd med modifierad Suzuki-Score genom hematoxylin-Eosin (HE) färgning. Optimeringsexperimenten gav följande resultat: (1) möss som vägde över 30 g ansågs mer lämpliga för experimentet på grund av den större storleken på deras gallgång (BD). (2) en 2 Fr (ytterdiameter = 0,66 mm) polyuretankanyl var bättre lämpad för kanylering av portalvenen (PV) jämfört med en polypropenkanyl. Detta tillskrevs polyuretanmaterialets förbättrade grepp, vilket resulterade i minskad kateterglidning under överföringen från kroppen till organkammaren. (3) för kanylering av gallgången (BD) visade sig en 1 Fr (ytterdiameter = 0,33 mm) polyuretankanyl vara effektivare jämfört med polypropen UT - 03 (ytterdiameter = 0,30 mm) kanyl. Med detta optimerade protokoll bevarades muslever framgångsrikt under en varaktighet av 12 timmar utan signifikant inverkan på den histologiska strukturen. Hematoxylin-Eosin (HE) färgning avslöjade en välbevarad morfologisk arkitektur i levern, kännetecknad av övervägande livskraftiga hepatocyter med tydligt synliga kärnor och mild utvidgning av leverbihåleoider.

Etablering av kirurgiskt ingrepp Totalt 17 djur användes för detta experiment: 14 möss användes för att optimera organupphandlingsprocessen, inklusive kanylering av portalvenen (PV) och gallgången (BD), medan 3 möss användes för att validera proceduren (tabell 1). Histologiska resultat (figur 3) jämfördes för att underlätta identifieringen av det optimala perfusionstillståndet.
Urval av perfusat<b...

Watch this Scientific Journal Video about Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse at JoVE.com

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

Ett normotermiskt ex vivo leverperfusionssystem (NEVLP) skapades för muslever. Detta system kräver erfarenhet av mikrokirurgi men möjliggör reproducerbara perfusionsresultat. Möjligheten att använda muslever underlättar undersökningen av molekylära vägar för att identifiera nya perfusattillsatser och möjliggör utförande av experiment med fokus på organreparation.

Normothermic Ex Vivo levermaskinperfusion i mus

This protocol presents an optimized erythrocytes-free NEVLP system using mouse livers. Ex vivo preservation of mouse livers was achieved by employing ...

Normothermic ex-vivo levermaskinperfusion i mus. Normothermisk syresatt leverperfusion är en lovande strategi för att rädda marginella organ och har nyligen introducerats i klinisk praxis. De underliggande molekylära mekanismerna är dock inte väl förstådda.En musmodell behövs för att ytterligare studera de molekylära vägarna, som utnyttjar genetiskt modifierade djur, såsom transgena möss, och därför väntar på att etablera ett normotermiskt syresatt maskinperfusionssystem för muslever. Här är ett schema för hela vårt system. Först styrs hela systemet vid 37 grader Celsius av en termostatstyrenhet genom vattencirkulationen.Perfusatet pumpas från behållaren med en peristaltisk pump till en oxygenator. Det finns ett oavbrutet gasflöde på 95% syre och 5% koldioxid i oxygenatorn. Perfusatet passerar sedan genom en bubbelfälla.Perfusatet med luftbubblor pumpas tillbaka till behållaren under tryck. Det återstående perfusatet strömmar till orgelkammaren där röret är anslutet till portalvenen. Perfusatet dräneras från levern genom suprahepatisk cava in i organkammaren.Perfusatutflödet från orgelkammaren riktas tillbaka till behållaren av den peristaltiska pumpen. Ett galldräneringsrör är anslutet till organkammaren för att samla gallan. Detta är vårt operationsbord.Alla operationer görs under ett mikroskop. Vi upprätthåller halvsterila driftsförhållanden under hela det kirurgiska ingreppet. Håll den franska rörkanylen med pincett.Penetrera kanylväggen med en 30G nål på en centimeter avstånd från kanylens ände. Tryck nålen genom kanylen tills nålspetsen blir synlig. Här är en jämförelsebild på 26G kateter och egentillverkad kanyl; Båda är lämpliga för musportalkannulation.Förbered 25 ml hepariniserad saltlösning med en slutlig koncentration av 2 500 internationella enheter per milliliter och placera sprutan i inkubatorn inställd på 40 grader Celsius. Här är huvudkomponenterna i ex-vivo normotermiskt maskinperfusionssystem. Komponenterna innefattar huvudsakligen orgelkammaren, termostatmaskinen, rullpumpen, oxygenatorn och behållaren.Här kan du se en detaljerad uppsättning av vår orgelkammare. I grund och botten består den av en orgelkammarkropp, en trycksensor, en värmeväxlare och en bubbelfälla. Vi satte upp ett perfusatinlopp, ett perfusatutlopp och en galldräneringsport.Detta är ADI-övervakningssystemet vi använder för att övervaka portalventrycket. ADI-systemet består av en trycksensor, en central styrenhet och displayer. Aktivera LabChart-programmet för tryckövervakning.Kalibrering och nollställning krävs före varje användning av trycksensorn. Använd nollmillimeter kvicksilver och 20 millimeter kvicksilver som märken för att kalibrera trycksensorn för tvåstegskalibreringen. Baserat på den ständiga övervakningen av portaltrycket kan vi justera portalfluran enligt tryckförändringar.Vid lika stora volymer perfusat till behållaren och organkammaren för att primera systemet måste särskild uppmärksamhet ägnas åt att upprätthålla sterilitet under fyllningsprocessen. Anslut induktionskammaren med ett vägguttag. Vrid syre till 0,5 liter per minut.Vänd isofluran till 3%Placera djuret i kammaren tills djup anestesi uppnås. Använd mikrospruta för att applicera kroppsviktsanpassad dos av analgesi. Här sju mikroliter buprenorfin.Nu börjar vi operationen. Gör ett tvärgående snitt i musens bukområde. Hudsnittet sträcker sig till den bilaterala köttaxillära linjen på båda sidor.Gör försiktigt ett längsgående snitt längs linea alba. Skär genom bukmuskelskiktet med elektrokoagulering och sax. Placera försiktigt en bit våt gasbindning för att skydda levern från elektrokoagulering.Exponera musens bukhålighet helt. Flytta försiktigt tunntarmen ur bukhålan med en våt bomullspinne för att helt exponera hilum. Här visas ett schematiskt diagram över portalvenkanylering och gallgångskannulation.I grund och botten väljer vi lämplig kanyl beroende på musens storlek, och vi använder 6-0 silkesutur för fixering av kanylen. Frigör försiktigt den gemensamma gallgången med fina böjda pincett utan tänder. Den gemensamma gallgången skadas mycket lätt och bryts.När den går sönder kan den inte kanyleras. På grund av riktningen för den anatomiska positionen är böjda pincett lättare att använda. Placera två 6-0 silkesuturslinga över den gemensamma gallgången som förberedelse för nästa steg.Punktera försiktigt gallgången med en 30G nål. Använd spetsiga böjda pincett för att förstora de små hålen, så att den kan mata gallkanalkannulation. Använd kärlkanylpincett över gallgångskanylen och tryck in den i gallgången. Not.I ögonblicket av cannulation kommer du att känna motståndet från gallan. Om kraften inte är väl kontrollerad kommer kanylen att skjutas ut ur gallvägarna genom trycket av gallflödet. Justera kanylens djup försiktigt.Om det är för djupt kan det skada gallgången, och om det inte är tillräckligt djupt kan det glida ut. Gallflödet kan observeras i kanylen efter framgångsrik kannulation. Kläm fast portalvenen med plana pincett och frigör försiktigt bindväven med böjda pincett.Dra inte hårt här, för att inte orsaka rivning av portalvenen. När portalvenen är skadad är det svårt att rek cannulera portalvenen. Placera två 6-0 silkesutur Loop över den fria portalvenen.Använd ett arteriellt klipp för att stänga den distala portalvenen. Punktera portalvenen mycket noggrant med en av ovanstående portalvenkanyl. Blodflödet kan tydligt observeras i kanylen efter en lyckad punktering.Ta förvärmd heparin saltlösning från inkubatorn. Ta bort alla luftbubblor. Fixera sprutan med förvärmd hepariniserad saltlösning i sprutpumpen.Anslut sprutpumpens förlängningsrör till kanylen i portalvenen. Justera hastigheten till två milliliter per minut och starta leverspolningen. Öka isofluran till 5% och avliva musen med en överdos isofluran inhalation.Observera leverns färg i slutet av spolningsproceduren. Punktskatt levern när färgen vände sig till en homogen gul. Överför försiktigt levern till orgelkammaren med en petriskål.Håll en liten mängd saltlösning i petriskålen för att förhindra att en lever krossas. Not. Portal ven och gallgången kan lätt vridas under denna procedur, vilket kan påverka leverperfusion och galluppsamling. Infusera långsamt normal saltlösning i portalvenkanylen med en spruta för att evakuera luftbubblorna i kanylen.Anslut portalvenkanylen till perfusatutflödesröret i orgelkammaren. Musgallgångskanylen styrs genom en ventil i orgelkammaren, som är stängd med en gummilock. Därefter sätts gallröret in i ett förberedt 0,5 ml mikrorör med ett litet hål i ledningen.När allt är anslutet, sätt på den peristaltiska pumpen. Kontrollera tryckavläsningen i portalvenen för att justera flödeshastigheten. Håll portalventrycket mellan sju och 10 millimeter kvicksilver genom att justera flödeshastigheten. Not.Nominell flödeshastighet kan variera något beroende på rörens ålder och placering. Detta är valet av perfusatmedium, perfusatvolym och perfusionstryck baserat på en litteraturupparbetning av normoterma syresatta levermaskinperfusionsstudier av råtta. Detta är en steg-för-steg-test för att fastställa musperfusionsmodellen.Det tog cirka 14 experiment att välja de mest lämpliga katetrarna. I våra händer är användning av två franska gummikatetrar för portalvenen, tillsammans med en fransk gummikateter för gallgången, den bästa kombinationen för att uppnå homogen perfusion med alla katetrar på plats. pH-nivå och kaliumnivå var stabila under 12-timmars perfusion.pH-nivån varierade från 7,26 till 7,71 och kaliumnivån varierade från 5,9 till 6,8 millimol per liter. HE färgning visar att efter 12 timmars perfusion var histologiintegriteten hos muslever relativt välbevarad. Sammantaget demonstrerade vi här den framgångsrika etableringen av ett normotermiskt syresatt maskinperfusionssystem för muslever.Perfusion av en muslever i 12 timmar resulterade i ett gott bevarande av levermorfologin, men inte i hela organet. Ytterligare ansträngningar krävs för att uppnå fullständig homogen perfusion över en längre tidsperiod. När detta har uppnåtts kan användningen av genetiskt modifierade djur övervägas, såsom användning av IL-2-knockoutmöss för att undersöka inflammationens roll.

Research

JoVE Journal

Engineering

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

High-resolution, High-speed, Three-dimensional Video Imaging with Digital Fringe Projection Techniques

Högupplöst, hög hastighet, tredimensionell video Imaging med Digital Fringe Projection Tekniker

Digital fringe projection (DFP) techniques provide dense 3D measurements of dynamically changing surfaces.&#160;Like the human eyes and brain, DFP uses ...

The Preparation of Electrohydrodynamic Bridges from Polar Dielectric Liquids

Beredningen av elektro Bridges från Polar Dielektriska Vätskor

Horizontal and vertical liquid bridges are simple and powerful tools for exploring the interaction of high intensity electric fields (8-20 kV/cm) and ...

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

In Vitro Culture of Epicardial Cells From Mouse Embryonic Heart

In vitro-odling av epikardiella celler från mus embryonala hjärta

During embryogenesis, the epicardial contribution to coronary vasculature development has been very well established. Cells derived from the epicardium ...

Fabrication of Ultra-thin Color Films with Highly Absorbing Media Using Oblique Angle Deposition

Tillverkning av ultra-tunn färg filmer med mycket absorberande medier med sned vinkel nedfall

Ultra-thin film structures have been studied extensively for use as optical coatings, but performance and fabrication challenges remain.&#160; We present ...

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Methods of Ex Situ and In Situ Investigations of Structural Transformations: The Case of Crystallization of Metallic Glasses

Metoder Ex Situ och In Situ utredningar av strukturomvandlingar: fallet av kristallisation av metalliska glasögon

We demonstrate the use of two nuclear-based analytical methods that can follow the modifications of microstructural arrangement of iron-based metallic ...

Application of Design Aspects in Uniaxial Loading Machine Development

Tillämpningen av designaspekter i enaxiella lastning maskin utveckling

In terms of accurate and precise mechanical testing, machines run the continuum. Whereas commercial platforms offer excellent accuracy, they can be ...

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Assessment of Aortic Regurgitation Using Four-Dimensional Flow Magnetic Resonance Imaging

In vitro Bedömning av aortauppstötningar med hjälp av fyrdimensionell flödesmagnetisk resonanstomografi

Aortic regurgitation (AR) refers to backward blood flow from the aorta into the left ventricle (LV) during ventricular diastole. The regurgitant jet ...

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Particle Image Velocimetry Investigation of Hemodynamics via Aortic Phantom

Partikelbild Velocimetri Undersökning av hemodynamik via aortafantom

Aortic valve dysfunction and stroke have recently been reported in transcatheter aortic valve implantation (TAVI) patients. Thrombus in the aortic sinus ...

Synthesizing Nanoparticles and Nanostructures via Laser Ablation

Ultrafast Laser-Ablated Nanoparticles and Nanostructures for Surface-Enhanced Raman Scattering-Based Sensing Applications

Advancements and Applications in Nanoparticle Synthesis Through Laser Ablation in Liquids (Video) | JoVE

Ultrasnabba laserablaterade nanopartiklar och nanostrukturer för ytförstärkta Raman-spridningsbaserade avkänningsapplikationer

The technique of ultrafast laser ablation in liquids has evolved and matured over the past decade, with several impending applications in various fields ...

Preparation of Free-Surface Hyperbolic Water Vortices

Beredning av hyperboliska vattenvirvlar med fri yta

Free surface vortices are present in industry in flow regulation, energy dissipation, and energy generation. Although investigated extensively, detailed ...