JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

الخيطية انسداد الشريان الدماغي الأوسط هو نموذج مشترك لدراسة السكتة الدماغية لدى الفئران.

Abstract

السكتة الدماغية هي من بين الأسباب الأكثر شيوعا للوفاة والعجز الكبار ، لا سيما في البلدان المتقدمة للغاية. ومع ذلك ، وخيارات العلاج حتى الآن محدودة للغاية. لتلبية الحاجة إلى نهج العلاجية الرواية ، والسكتة الدماغية البحوث التجريبية توظف كثيرا من النماذج من نقص الأوكسجين الدماغي القوارض التنسيق. معظم الباحثين استخدام إطباق دائمة أو مؤقتة من الشريان الدماغي الأوسط (MCA) في الفئران أو الجرذان.

انسداد الشرايين القريبة من الدماغ المتوسط ​​(MCA) من خلال تقنية خياطة داخل اللمعة (ما يسمى خيوط الدرز أو النموذج) هو على الارجح النموذج الأكثر استخداما في البحوث التجريبية السكتة الدماغية. نموذج MCAO داخل اللمعة يوفر ميزة على إحداث نقص الأوكسجين عابرة أو استنساخه الدائم للأراضي MCA نسبيا بطريقة غير الغازية. النهج داخل اللمعة يقطع تدفق الدم في كامل أراضي هذا الشريان. خيوط بالتالي انسداد تدفق الاعتقالات الأقرب إلى الشرايين lenticulo - المخططية ، التي تمد العقد القاعدية. خيوط يمكن انسداد نتائج MCA في الآفات استنساخه في القشرة والمخطط وتكون إما دائمة أو عابرة. في المقابل ، حمل نماذج البعيدة (لالمتفرعة من الشرايين lenticulo - المخططية) MCA إطباق الغيار عادة المخطط ينطوي في المقام الأول والقشرة المخية الحديثة. بالإضافة هذه النماذج لا تتطلب قطع القحف. في النموذج أظهر في هذه المقالة ، يتم إدخال خيوط السيليكون مغلفة في الشريان السباتي المشترك ومتقدمة على طول الشريان السباتي الداخلي في دائرة ويليس ، حيث كتل منشأ الشريان الدماغي الأوسط. في المرضى ، وانسداد الشريان الدماغي الأوسط هي من بين الأسباب الأكثر شيوعا من السكتات الدماغية. يمكن أن يتم اختياره منذ فترات متفاوتة الدماغية بحرية في هذا النموذج بالاعتماد على نقطة للمرة ضخه ، والآفات الدماغية بدرجات متفاوتة من الشدة يمكن أن تنتجه. ضخه من قبل إزالة خيوط الإطباق على الأقل جزئيا نماذج استعادة تدفق الدم بعد تحلل (طن سنويا) عفوية أو العلاجية لجلطة انصمامية في البشر.

في هذا الفيديو سوف نقدم هذه التقنية الأساسية فضلا عن المزالق الكبرى والإرباك الذي قد يحد من القيمة التنبؤية لهذا النموذج.

Protocol

لضمان جودة عالية واستنساخ ، نوصي استخدام إجراءات التشغيل الموحدة (سوب). في هذا الفيديو ، ويتم تطبيق إجراءات العمل الموحدة كما نشرت المتقدمة واستخدامها في المختبر لدينا. 1

1. انسداد الشريان الدماغي الأوسط

  1. الفئران هي مخدرة مع النظام مخدر المناسبة في التشاور مع الموظفين البيطريين. (مثلا التعريفي مع 1.5 -- 2 ٪ Isoflurane والصيانة مع 1.0 -- 1.5 ٪ في Isoflurane N2O 03/02 و 1 / 3 O2 باستخدام المرذاذ).
    1. يتم الاحتفاظ درجة حرارة الجسم من الفئران على 36،5 درجة مئوية ± 0.5 درجة مئوية أثناء الجراحة مع لوحة التدفئة. ينصح بشدة ردود الفعل وسادة التدفئة للرقابة ، الذي يدفئ وفقا لدرجة حرارة المستقيم من الفأرة.
    2. تطهير الجلد والفرو المحيطة بها مع وكيل المناسب (مثل الكحول الإيثيلي 70 ٪) وجففها بعد ذلك.
  2. يتم إجراء شق الرقبة خط الوسط ويتم سحبها في الأنسجة اللينة إربا.
  3. يتم تشريح بعناية الشريان السباتي الأيسر الشائع (LCCA) خالية من الأعصاب المحيطة (ودون الإضرار بمصالح العصب المبهم) ويتم إجراء ضمد به 6.0/7.0 السلسلة. ويمكن أيضا أن تستخدم 5.0 السلسلة.
  4. ثم يتم فصل الشريان السباتي الأيسر الخارجية (LECA) ويتم إجراء العقدة الثانية.
  5. المقبل ، يتم عزل الشريان السباتي الأيسر الداخلية (LICA) ومستعدة عقدة مع خيوط 6.0.
  6. بعد الحصول على عرض جيد من الشريان السباتي الداخلي اليسار (LICA) والشريان الأيسر جناحية (LPA) ، يتم قص كلا الشرايين والاوعية الدموية الدقيقة باستخدام قصاصة.
  7. يتم قطع ثقب صغير في LCCA معروضا bifurcates إلى LECA وLICA و. ومن ثم قدم وحيدة المصنوعة من النايلون 8،0 المغلفة مع خليط تصليب السيليكون (أنظر أدناه) في LICA ، حتى أنه يتوقف عند مقطع. الاهتمام يجب أن يدفع بعدم دخول الشريان القذالي. (الشكل 1)
  8. يتم فتح الشرايين في حين قص يتم إدراج خيوط في LICA لتسد أصل LMCA في دائرة ويليس.
  9. إغلاق العقدة الثالثة على LICA لإصلاح خيوط في الموقف.
  10. الفئران تلقي المالحة 0،5 مل تحت الجلد وتجديد وحدة التخزين. لتخفيف الألم ، ويطبق موضعيا يدوكائين هلام في الجرح.
  11. إذا كان المقصود ضخه والفئران البقاء لمدة 30-90 دقيقة انسداد في قفص ساخنة ، قد تكون مغلقة على الجرح مع مقطع خياطة صغيرة. بعد ذلك ، يتم تنفيذ عملية التخدير الثانية ، والثالثة على عقدة ICA هو لحظة فتح وسحب خيوط.
  12. يتم تقصير الخيوط المتبقية ويتم تكييفها مع الجلد خياطة جراحية.
  13. جميع الحيوانات الحصول على تجديد الجزء الثاني كما هو موضح أعلاه.
  14. يتم وضع الحيوانات في قفص ساخن لمدة ساعتين للسيطرة على درجة حرارة الجسم.
    1. يجب فحص الحيوانات يوميا بعد عملية جراحية لعلامات الانزعاج. يمكن أن تظهر بعض الفئران آخر وفقدان الوزن الجراحية. انهم يحصلون على غذاء المهروسة في طبق بتري ، وضعت على الأرض لتشجيع تناول الطعام. يتم استبدال المواد الغذائية يوميا لمدة سبعة أيام.

2. عملية صورية

  1. لعمليات صورية يتم إدراج خيوط لتسد LMCA وسحبت على الفور للسماح ضخه الفورية (1.8). العملية اللاحقة مطابقة لتلك التي أجريت على الحيوانات تمر نقص الأوكسجين الدماغي (1،9-1،14) بما في ذلك تخدير الثانية.

3. إعداد الشعيرة

  1. وينبغي النظر في عقم للخيوط. استخدام معدات معقمة وكذلك التعامل مع المناسبة من خيوط وبعد ذلك شرطا أساسيا لعملية جراحية معقمة. التطهير من خيوط أمر صعب ، لأن العديد من الأساليب الشائعة التعقيم قد تسوء نوعية خيوط. لكن أساليب مثل الإشعاع ، على سبيل المثال مع ضوء الأشعة فوق البنفسجية أو الأشعة γ ، أو التعقيم الكيميائي ، على سبيل المثال مع غازات شديدة التفاعل مثل أكسيد الإثيلين ، قابلة للتطبيق.
  2. تقطع خيوط النايلون 8،0 في أطوال 11 ملم تحت المجهر
  3. يجب أن تكون مغلفة طرف الخيط تماما وبالتساوي على طول 8 ملم مع خليط من تصليب Xantopren M الغشاء المخاطي والمنشط Optosil NF

4. ممثل النتائج

اعتمادا على مدة تقييد تدفق الدم ، والحركية المختلفة والسلوكية نتيجة العجز. على حد سواء بعد 30 و 60 دقيقة من نقص الأوكسجين الدماغي ، والحيوانات في معظم الحالات تظهر انخفاض المقاومة لدفع الأطراف وتدور بسبب اضطراب في الحركة. أخف تتظاهر الآفات موقفا المثنية في الجبهة لىMBS. ويمكن استخدام هذه العلامات يمكن ملاحظتها بسهولة على درجة الأساسية لنجاح العملية. 2

يمكن أن يكون شكليا المقررة الآفة باستخدام الأنسجة أو التصوير بالرنين المغناطيسي (MRI). ستون دقيقة انسداد الشريان الدماغي الأوسط تنتج pannecrosis الأنسجة في المنطقة بما في ذلك المخطط والقشرة المخية الحديثة على حد سواء ، وبينما 30 دقيقة من نقص الأوكسجين يسبب موت الخلايا العصبية أساسا تقتصر على المخطط. 3 (الشكل 2) ومن حيث حجم احتشاء ، ونحن نتوقع الانحراف المعياري أقل من 30 ٪ في مجموعة من العمليات. وفيات يعتمد على الوقت مع إطباق نحو 5 ٪ بعد 30 دقيقة من نقص الأوكسجين و 10 -- 20 ٪ بعد 60 دقيقة.

احتمال آخر الغازية الحد الأدنى هو استخدام الليزر دوبلر flowmetry (LDF) خلال العملية ، التي تسمح للسيطرة المباشرة من نجاحه. في حيوان الفردية ، والحد إلى 10 -- 20 ٪ من قيم preocclusion يشير بوضوح تحريض الناجح لنقص التروية الدماغية الوصل 4 ومع ذلك ، لا يمكن LDF أن تستخدم كوسيلة لإجراء مقارنات بين الأفراد ، منذ LDF يمكن قياس فقط التغيرات الكمية (بالنسبة المئوية) من الدم. تدفق داخل نسيج عينة صغيرة الحجم ومحدودة. أنها لا تعطي معلومات عن مدى المكاني للحد من تدفق الدم. 5

هناك عدة اختبارات لتقييم الجوانب السلوكية بعد السكتة الدماغية ، بما في ذلك تحليل مشية 6،7 ، Rotarod 8 ، 9،10 القطب اختبار لاصقة اختبار إزالة 11،12 ، 13،14 اختبار الدرج ، سلم اختبار درجة 15،16 وموريس متاهة مائية 17. في كل هذه التجارب ، والفئران التعرض للMCAo أداء أقل من الحيوانات بنجاح السيطرة.

figure-protocol-6914
الشكل 1. مخطط للهيكل السفينة التي تغذي الدماغ (كما هو مبين في الخلفية) في الماوس. سلالات مختلفة قد تظهر الاختلافات ، وعلى سبيل المثال الشريان القذالي يترك أحيانا من الشريان السباتي الداخلي.

figure-protocol-7259
الشكل 2. توضيح تخطيطي من أحجام الآفة النموذجية بعد نقطة زمنية مختلفة من ضخه في النموذج MCAo القريبة. في الوسط ، وصفت مسار نموذجي من النشاط الدماغي وظيفية وتدفق الدم بعد MCAo. (MCAo : الشرق الدماغي انسداد الشريان ، LDF : ليزر لقياس تدفق دوبلر)

Discussion

قدم نموذج عابرة ، انسداد MCA القريبة 18،19 يحاكي هنا واحدة من الأنواع الأكثر شيوعا من السكتات الدماغية في المرضى. 20 واستنادا مرات ضخه متغير ، ويقدم نموذجا درجات مختلفة من الضرر تتراوح بين هجوم نقص تروية عابرة (TIA) إلى الكبيرة عوائق بما في ذلك أجزاء كبيرة من نصف الكرة الدماغية. وهذا يسمح للباحث لدراسة الآليات الفيزيولوجية المرضية المختلفة بعد السكتة الدماغية. 20،21

يمكن إجراء عملية جراحية في فترة زمنية قصيرة ، وتنتج الآفات استنساخه للغاية. ومع ذلك ، وهذا يتطلب مراقبة دقيقة من الإرباك 22 الفروق الصغيرة في تقنية العملية قد تكون مسؤولة عن تأثيرات مختلفة على احتشاء. 23،24 وعلاوة على ذلك ، ويرجع ذلك إلى الفروق في تشريح الأوعية الدموية الدماغية ، وسلالات مختلفة الماوس تظهر نتائج مختلفة. 25،26 الهيئة درجة الحرارة يؤثر على الجهاز العصبي الضرر ، مع انخفاض درجة الحرارة يؤدي إلى آفات أصغر 27 و ارتفاع الحرارة إلى عجز أشد (28). بالتالي التحكم في درجة الحرارة ، والصيانة ذات الصلة للغاية في هذا النموذج (29). بالإضافة إلى ذلك ، ضغط الدم وغازات الدم والإرباك هاما من نتائج ، وتحتاج إلى يتم رصدها. ينصح 30،31 استخدام طرق سريعة والغازية الحد الأدنى (غير الغازية قياس ضغط الدم ، ومناسبة وسهلة الوصول إلى مواقع جمع الدم). اختيار مخدر المهم أيضا للغاية ، كما أن البعض قد يكون لها آثار اعصاب ، و / أو أن تكون موسعات ، وعلى سبيل المثال Isoflurane 32 وبالتالي ، ينبغي أن يكون التعرض للتخدير أن تكون قصيرة قدر الإمكان وموحدة. استثنينا الحيوانات التي خضعت لعملية جراحية لمدة أطول من 15 دقيقة.

حلق موقع الجراحية تنتج microabrasions والالتهابات والنشرات شظايا الشعر. هذا قد زيادة الالتهاب وتعزيز العدوى المحلية ، والتي قد تؤثر على فيزيولوجيا السكتة الدماغية. قد ظروف السكن ، وبخاصة استخدام التخصيب ، تؤثر نتائج السكتة الدماغية ، وينبغي أن تكون موحدة وصفها في التقارير البحثية. 6،33،34 استخدام تخصيب البيئية وتأثيرها على استنساخ هو موضوع نقاش (35). المحير الآخر المهم هو السكتة الدماغية الناجمة عن مخاطر الإصابة خاصة بعد أوقات أطول من نقص الأوكسجين 36 ، الأمر الذي يؤدي إلى اعتلال إضافية وزيادة معدل الوفيات. 37،38 أما أعراض العدوى أصبحت اليوم في حوالي 3-5 ، وهذا له آثار مهمة على المدى الطويل في متابعة مثل هذه النماذج.

لتحقيق نتائج ذات الصلة لوضع استراتيجيات علاجية جديدة لتوحيد المقاييس ومراقبة الجودة والسكتة الدماغية مهم للغاية في مجال البحوث قبل السريرية متعدية السكتة الدماغية 39 "الممارسة المعملية الجيدة" 40،41 ولايات :

  1. وصفا مفصلا لمناسبة والحيوانات المستخدمة ؛
  2. حساب حجم العينة وإعداد التقارير عن حجم التأثير المتوقع ؛
  3. إدراج معايير والإقصاء ، التي أنشئت قبل الدراسة ؛
  4. التوزيع العشوائي للتوزيع إلى مجموعات ؛
  5. إخفاء التخصيص بالنسبة للمحققين ؛
  6. الإبلاغ عن الحيوانات المستبعدة من التحليل ؛
  7. أعمى تقييم نتائج ؛
  8. الإبلاغ عن احتمال تضارب المصالح وتمويل الدراسة.

Disclosures

وقد أجريت تجارب على الحيوانات وفقا للمبادئ التوجيهية واللوائح التي وضعتها fuer Landesamt Soziales اوند Gesundheit ، برلين ، ألمانيا.

Acknowledgements

وقد تم تمويل هذا العمل عن طريق برنامج الاتحاد الأوروبي الإطاري السابع (FP7/2007-2013) بموجب اتفاق منحة رقم 201024 ورقم 202213 (الشبكة الأوروبية السكتة الدماغية). وقدم تمويل إضافي من قبل الفراء Bundesministerium الإضافية اطلعوا اوند Bildung (مركز أبحاث السكتة الدماغية في برلين) ، وجمعية الألمانية للبحوث (Exzellenzcluster NEUROCURE).

فإن الكتاب أود أن أشكر Mareike Thielke (الإعالة التجريبي للأعصاب ، شاريتيه برلين) للدعم خلال العملية وإلكه لودفيغ (خدمات الفيديو شاريتيه) لإنتاج الرسوم المتحركة.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Surgical scissors (skin cut)Fine Science Tools14028-10
2 Dumont forceps (Medical #5 straight tip)Fine Science Tools11253-20
Spring scissors (according to Vannas)Fine Science Tools15000-00
Applying forceps for micro clampsFine Science Tools00072-14
Micro vascular clamp (e.g. S&G B1-V)Fine Science Tools00396-01Also Serrefine possible
2 Hemostats according to HartmannFine Science Tools13002-10
Needle holder (according Olsen-Hegar or other)Fine Science Tools12002-14
Standard anatomical forceps (for wound closure)Fine Science Tools11000-12
5/0 sutures Supramafor vascular ligatures
6/0 sutures Supramafor skin suture, 5/0 also possible
Lidocaine (e.g. Xylocain Gel 2%)AstraZenecaor other local pain relief
Dissecting microscope (stereo microscope), magnification 6x to max. 40xLeica ZeissMZ6 Stemi2000C
Cold light sourceLeica MicrosystemsKL1500
Temperature feedback controlled heating pad systemFine Science Tools21052-00With mouse pad and small probe
Anaethesia system for isoflurane
IsofluraneAbott
Veterinary Recovery ChamberPeco ServicesV1200Heated cage
8.0 nylon filamentSupramaTEL181005for coating
ScalpelFor cutting filament in pieces
RulerTo cut correct length of filament
Xantopren M MucosaHeraeus Instruments
Activator Universal PlusHeraeus InstrumentsOptosil - Xantopren
2 Dumont forceps (Medical #5 straight tip)Fine Science Tools11253-20
A soft underlay for storing and grasping the uncoated filamentse.g. swabs, foam, …
Receptacle for new build filamentse.g. petri dish, flexible foam,…

References

  1. Dirnagl, U. Standard operating procedures (SOP) in experimental stroke research: SOP for middle cerebral artery occlusion in the mouse. Nature Precedings. , (2010).
  2. Bederson, J. B. Rat middle cerebral artery occlusion: evaluation of the model and development of a neurologic examination. Stroke. 17, 472-476 (1986).
  3. Katchanov, J. Selective neuronal vulnerability following mild focal brain ischemia in the mouse. Brain Pathol. 13, 452-464 (2003).
  4. Dirnagl, U., Dirnagl, U. . Complexities, Confounders, and Challenges in Experimental Stroke Research: A checklist for researchers and reviewers in Rodent models of stroke. , 267-267 (2010).
  5. Dirnagl, U., Kaplan, B., Jacewicz, M., Pulsinelli, W. Continuous measurement of cerebral cortical blood flow by laser-Doppler flowmetry in a rat stroke model. J Cereb Blood Flow Metab. 9, 589-596 (1989).
  6. Wang, Y. A comprehensive analysis of gait impairment after experimental stroke and the therapeutic effect of environmental enrichment in rats. J Cereb Blood Flow Metab. 28, 1936-1950 (2008).
  7. Lubjuhn, J. Functional testing in a mouse stroke model induced by occlusion of the distal middle cerebral artery. J Neurosci Methods. 184, 95-103 (2009).
  8. Jones, B. J., Roberts, D. J. The quantiative measurement of motor inco-ordination in naive mice using an acelerating rotarod. J Pharm Pharmacol. 20, 302-304 (1968).
  9. Matsuura, K., Kabuto, H., Makino, H., Ogawa, N. Pole test is a useful method for evaluating the mouse movement disorder caused by striatal dopamine depletion. J Neurosci Methods. 73, 45-48 (1997).
  10. Bouet, V. Sensorimotor and cognitive deficits after transient middle cerebral artery occlusion in the mouse. Exp Neurol. 203, 555-567 (2007).
  11. Freret, T. Delayed administration of deferoxamine reduces brain damage and promotes functional recovery after transient focal cerebral ischemia in the rat. Eur J Neurosci. 23, 1757-1765 (2006).
  12. Modo, M. Neurological sequelae and long-term behavioural assessment of rats with transient middle cerebral artery occlusion. J Neurosci Methods. 104, 99-109 (2000).
  13. Montoya, C. P., Campbell-Hope, L. J., Pemberton, K. D., Dunnett, S. B. The "staircase test": a measure of independent forelimb reaching and grasping abilities in rats. J Neurosci Methods. 36, 2-3 (1991).
  14. Baird, A. L., Meldrum, A., Dunnett, S. B. The staircase test of skilled reaching in mice. Brain Res Bull. 54, 243-250 (2001).
  15. Metz, G. A., Whishaw, I. Q. Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: a new task to evaluate fore- and hindlimb stepping, placing, and co-ordination. J Neurosci Methods. 115, 169-179 (2002).
  16. Farr, T. D., Liu, L., Colwell, K. L., Whishaw, I. Q., Metz, G. A. Bilateral alteration in stepping pattern after unilateral motor cortex injury: a new test strategy for analysis of skilled limb movements in neurological mouse models. J Neurosci Methods. 153, 104-113 (2006).
  17. Morris, R. Developments of a water-maze procedure for studying spatial learning in the rat. J Neurosci Methods. 11, 47-60 (1984).
  18. Koizumi, J., Yoshida, Y., Nakazawa, T., Ooneda, G. Experimental studies of ischemic brain edema. I: a new experimental model of cerebral embolism in rats in which recirculation can be introduced in the ischemic area. Jpn J Stroke. 8, 1-8 (1986).
  19. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20, 84-91 (1989).
  20. Endres, M., Dirnagl, U., Alzheimer, C. Neuroprotective Strategies in Animal and in vitro-Models of Neuronal Damage: Ischemia and Stroke. Molecular and Cellular Biology of Neuroprotection in the CNS. , 455-474 (2003).
  21. Dirnagl, U., Iadecola, C., Moskowitz, M. A. Pathobiology of ischaemic stroke: an integrated view. Trends Neurosci. 22, 391-397 (1999).
  22. Liu, S., Zhen, G., Meloni, B. P., Campbell, K., Winn, H. R. Rodent Stroke Model Guidelines for Preclinical Stroke Trials (1st Edition). J Exp Stroke Transl Med. 2, 2-27 (2009).
  23. Chen, Y., Ito, A., Takai, K., Saito, N. Blocking pterygopalatine arterial blood flow decreases infarct volume variability in a mouse model of intraluminal suture middle cerebral artery occlusion. J Neurosci Methods. 174, 18-24 (2008).
  24. Tsuchiya, D., Hong, S., Kayama, T., Panter, S. S., Weinstein, P. R. Effect of suture size and carotid clip application upon blood flow and infarct volume after permanent and temporary middle cerebral artery occlusion in mice. Brain Res. 970, 1-2 (2003).
  25. Beckmann, N. High resolution magnetic resonance angiography non-invasively reveals mouse strain differences in the cerebrovascular anatomy in vivo. Magn Reson Med. 44, 252-258 (2000).
  26. Barone, F. C., Knudsen, D. J., Nelson, A. H., Feuerstein, G. Z., Willette, R. N. Mouse strain differences in susceptibility to cerebral ischemia are related to cerebral vascular anatomy. J Cereb Blood Flow Metab. 13, 683-692 (1993).
  27. Florian, B. Long-term hypothermia reduces infarct volume in aged rats after focal ischemia. Neurosci Lett. 438, 180-185 (2008).
  28. Noor, R., Wang, C. X., Shuaib, A. Effects of hyperthermia on infarct volume in focal embolic model of cerebral ischemia in rats. Neurosci Lett. 349, 130-132 (2003).
  29. Barber, P. A., Hoyte, L., Colbourne, F., Buchan, A. M. Temperature-regulated model of focal ischemia in the mouse: a study with histopathological and behavioral outcomes. Stroke. 35, 1720-1725 (2004).
  30. Shin, H. K. Mild induced hypertension improves blood flow and oxygen metabolism in transient focal cerebral ischemia. Stroke. 39, 1548-1555 (2008).
  31. Bottiger, B. W. Global cerebral ischemia due to cardiocirculatory arrest in mice causes neuronal degeneration and early induction of transcription factor genes in the hippocampus. Brain Res Mol Brain Res. 65, 135-142 (1999).
  32. Kapinya, K. J., Prass, K., Dirnagl, U. Isoflurane induced prolonged protection against cerebral ischemia in mice: a redox sensitive mechanism. Neuroreport. 13, 1431-1435 (2002).
  33. Endres, M. Mechanisms of stroke protection by physical activity. Ann Neurol. 54, 582-590 (2003).
  34. Gertz, K. Physical activity improves long-term stroke outcome via endothelial nitric oxide synthase-dependent augmentation of neovascularization and cerebral blood flow. Circ Res. 99, 1132-1140 (2006).
  35. Richter, S. H., Garner, J. P., Wurbel, H. Environmental standardization: cure or cause of poor reproducibility in animal experiments. Nat Methods. 6, 257-261 (2009).
  36. Liesz, A. The spectrum of systemic immune alterations after murine focal ischemia: immunodepression versus immunomodulation. Stroke. 40, 2849-2858 (2009).
  37. Meisel, C., Schwab, J. M., Prass, K., Meisel, A., Dirnagl, U. Central nervous system injury-induced immune deficiency syndrome. Nat Rev Neurosci. 6, 775-786 (2005).
  38. Engel, O., Meisel, A. Models of Infection Before and After Stroke: Investigating New Targets. Infect Disord Drug Targets. 9, (2010).
  39. Dirnagl, U. Bench to bedside: the quest for quality in experimental stroke research. J Cereb Blood Flow Metab. 26, 1465-1478 (2006).
  40. Macleod, M. R. Good laboratory practice: preventing introduction of bias at the bench. Stroke. 40, 50-52 (2009).
  41. Group, S. T. A. I. R. Recommendations for standards regarding preclinical neuroprotective and restorative drug development. Stroke. 30, 2752-2758 (1999).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

47 MCAo

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved