JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

القدرة على حصر مصدر الرائحة هو ضروري لبقاء الحشرات ويتوقع أن تكون قابلة للتطبيق الصناعي رائحة تتبع. هو الدافع وراء الروبوت التي تسيطر عليها الحشرات من قبل silkmoth الفعلي وتمكننا من تقييم القدرة على تتبع رائحة الحشرات من خلال منصة الروبوتية.

Abstract

Robotic odor source localization has been a challenging area and one to which biological knowledge has been expected to contribute, as finding odor sources is an essential task for organism survival. Insects are well-studied organisms with regard to odor tracking, and their behavioral strategies have been applied to mobile robots for evaluation. This "bottom-up" approach is a fundamental way to develop biomimetic robots; however, the biological analyses and the modeling of behavioral mechanisms are still ongoing. Therefore, it is still unknown how such a biological system actually works as the controller of a robotic platform. To answer this question, we have developed an insect-controlled robot in which a male adult silkmoth (Bombyx mori) drives a robot car in response to odor stimuli; this can be regarded as a prototype of a future insect-mimetic robot. In the cockpit of the robot, a tethered silkmoth walked on an air-supported ball and an optical sensor measured the ball rotations. These rotations were translated into the movement of the two-wheeled robot. The advantage of this "hybrid" approach is that experimenters can manipulate any parameter of the robot, which enables the evaluation of the odor-tracking capability of insects and provides useful suggestions for robotic odor-tracking. Furthermore, these manipulations are non-invasive ways to alter the sensory-motor relationship of a pilot insect and will be a useful technique for understanding adaptive behaviors.

Introduction

Autonomous robots capable of finding an odor source can be important for the safety and security of society. They can be used for the detection of disaster victims, of drugs or explosive materials at an airport, and of hazardous material spills or leaks in the environment. At present, we rely entirely on well-trained animals (e.g., dogs) for these tasks, and robotic odor source localization has been strongly expected to relieve the workload of these animals. Finding an odor source is a challenging task for robots because odorants are distributed intermittently in an atmosphere1; therefore, continuous sampling of the odor concentration gradient is not always possible. Thus, a search strategy using intermittent odor cues is necessary for the achievement of robotic odor source localization2-4.

Odor source localization is essential for organism survival and includes tasks such as finding food, mating partners, and sites for oviposition. To overcome the difficulty in tracking patchy distributed odorants, organisms have evolved various behavioral strategies consisting of two fundamental behaviors: moving upstream during odor reception and cross-stream during cessation of odor reception5,6. These reactive strategies have been well-documented in insects and further combined with other modalities, such as wind direction and vision5-8. The insect behavioral models have also been useful examples for robotics3,9-11, in which behavioral algorithms or neural circuit models are implemented into mobile robots for the evaluation of odor source localization abilities10,12-15. From biomimetic perspectives, this "bottom-up" approach is certainly a fundamental way to develop biomimetic robots. However, the bottom-up approach is not a shortcut to obtaining a useful search strategy, because biological analyses are still ongoing, and the modeling of the sensory-motor systems behind insect behaviors has not been completed. Therefore, it is still unknown how such a biological system actually works as a controller of a robotic platform.

In this article, we demonstrate the protocol of a straightforward "top-down" approach to develop an odor-tracking mobile robot controlled by a biological system16,17. The robot is controlled by a real insect and can be regarded as a prototype of future insect-mimetic robots. In the robot's cockpit, a tethered adult male silkmoth (Bombyx mori) walked on an air-supported ball in response to the female sex pheromone, which was delivered to each antenna through air suction tubes. The ball rotations caused by the walking of the onboard moth were measured by an optical sensor and were translated into the movement of the two-wheeled robot. The advantage of this "hybrid" approach is that experimenters can investigate how the insect sensory-motor system works on the robotic platform where a pilot insect is in a closed loop between the robot and a real odor circumstance. The manipulation of the robotic hardware alters the closed loop; therefore, the insect-controlled robot is a useful platform for both engineers and biologists. For engineering, the robot represents the first steps of applying a biological model to meet the requirements for robotic tasks. For biology, the robot is an experimental platform for studying sensory-motor control under a closed loop.

Protocol

1. التجريبية الحيوانية

  1. إعداد مربع من البلاستيك للحفاظ على الشرانق من silkmoths الذكور (B. موري) حتى eclosion بهم. المناشف وضع ورقة في أسفل وقطع من الورق المقوى حول الجدار الداخلي للصندوق (الشكل 1A).
    ملاحظة: قطعة من الورق المقوى ضرورية لالعث الكبار لعقد بينما تمتد أجنحتها خلال eclosion (الشكل 1A).
  2. وضع silkmoth الذكور (Bombyx مور ط) الشرانق في منطقة الجزاء، والاحتفاظ بها في حاضنة حتى eclosion تحت 16 ساعة: ضوء 8 ساعة: دورة الظلام عند 25 درجة مئوية.
    ملاحظة: الذكور والإناث الشرانق يمكن أن يكون هناك تمييز من علامات الجنس على البطن (الشكل 1B).
  3. جمع الفراشات الذكور البالغين بعد eclosion ونقلها إلى مربع جديد.
  4. الحفاظ على العث الكبار في حاضنة تحت 16 ساعة: ضوء 8 ساعة: دورة الظلام وانخفاض درجة الحرارة إلى 15 درجة مئوية للحد من نشاطهم قبل التجربة.

2. الربط على Silkmoth

  1. تلفيق مرفق للالربط (الشكل 2A)
    ملاحظة: يتكون المرفق من الأسلاك النحاسية مع شريط من ورقة رقيقة من البلاستيك في طرفها. وهذا ما يضمن حركة الظهري البطني من القفص الصدري أثناء المشي (الشكل 2B).
    1. إعداد شريط من ورقة رقيقة من البلاستيك، 2 × 40 مم (سمك: 0.1 ملم)، وأضعاف ذلك في الوسط.
    2. إرفاق شريط مطوية إلى غيض من الأسلاك النحاسية بمادة لاصقة.
    3. ثني غيض من قطاع مطوية حيث يتم إرفاق الصدر من silkmoth.
  2. استخدام العث الكبار (2-8 أيام من العمر) خلال الفترة الخفيفة للتجربة.
    ملاحظة: الحساسية للفرمون تعتمد بقوة على مدار الساعة الإيقاعية 18. لأن B. موري هو عثة نهاري، يجب إجراء التجربة خلال الفترة الخفيفة.
  3. إزالة بلطف جميع المستويات على الدرسال الصدر (mesonotum) باستخدام قطعة من النسيج الرطب (أو مسحة القطن) وفضح بشرة من mesonotum (الشكل 2C).
  4. لصق لاصقة على شريط من البلاستيك على المرفق وعلى سطح mesonotum يتعرض مع صغيرة مفك البراغي شفرة مسطحة والانتظار 5-10 دقيقة حتى لاصقة لم يعد لزجة.
    ملاحظة: يجب على لاصق لا تلمس المفصلي الجناح أو tegulae forewing (الشكل 2C).
  5. السندات وmesonotum إلى المرفق.
  6. إبقاء فراشة المربوطة قبل وضعه داخل قمرة القيادة للروبوت. عقد المرفق على الوقوف ووضع قطعة من الورق تحت الأرجل للراحة العثة.

3. روبوت تسيطر عليها الحشرات

  1. تصميم الأجهزة للروبوت التي تسيطر عليها الحشرات بناء على الأعمال السابقة 16،17،19.
    ملاحظة: يتكون الروبوت التي تسيطر عليها الحشرات من حلقة مفرغة المدعومة الهواء مع جهاز استشعار الفأرة البصرية لcapturه وتنقل الحشرات، المدمج المخصص المعتمد على AVR وحات متحكم لتجهيز والتحكم في المحركات، واثنين من المحركات العاصمة فرش (الشكلان 3 و 4). الروبوت يمكن أن تعمل على أساس التناوب الكرة مع 96٪ الدقة أو أعلى، ضمن فترة زمنية من 200 مللي ثانية. كما يضمن تنقل أقصى سرعة إلى الأمام (24.8 ملم / ثانية) والسرعة الزاوية (96.3 درجة / ثانية) من silkmoth خلال فرمون السلوك تتبع 16. تم تصميم تدفق الهواء من مطحنة (الشكل 5A) ونظام التسليم رائحة (الشكل 5B) لفراشة على متن الطائرة على السير بسلاسة على الكرة وتكتسب رائحة من قبل اثنين من الهوائيات. يتم فصل قناة كمية الهواء وتدفق حلقة مفرغة من تلك التي في نظام تسليم رائحة لتجنب التلوث من فرمون.
  2. تصميم البرنامج لميكروكنترولر على متن الطائرة على أساس الأعمال السابقة (16).
    ملاحظة: متحكم على متن الطائرة يحسب رانه حركات الروبوت من تنقل الحشرات قياس مع جهاز استشعار بصري (التناوب، Δ س، متعدية، Δ ذ؛ الشكل 6). المسافة السفر (Δ L) وتتحول زاوية (Δθ) في وحدة الزمن الروبوت وتحسب على أساس من مسافة السفر من كل عجلة (يسار، Δ L الحق، Δ L R) مثل Δ L = (Δ L L + Δ L R) / 2 وΔθ = (Δ L L - Δ L R) / عجلة التطوير، حيث عجلة D هي المسافة بين العجلات (120 ملم). ووصف Δ L L وΔ L R أكثر مع Δ L L = Δ ل س، L + Δ L y و L وΔ L R = Δ ل س، R + Δ L ذ، ر، حيث Δ ل س، L </ دون> وΔ ل س، R هي مسافات السفر من العجلات على الجانبين الأيسر والأيمن يسيطر عليها Δ س، وΔ L y و L وΔ L y و R هي تلك التي تسيطر عليها Δ ذ. من الناحية المثالية، Δ ل س، L و Δ ل س، موصوفة R كما Δ ل س، L = -Δ ل س، ص = G Δ س (عجلة D / الكرة D)، وΔ L y و L وΔ L ص ، موصوفة R كما Δ L y و L = Δ L ص، R = G Δ ذ، حيث G هو مكسب السيارات والكرة D هو قطر الكرة (50 ملم). في الممارسة العملية، يتم تعيين مكاسب المحرك بشكل مستقل من قبل كل جانب (اليسار أو اليمين عجلة) وكل اتجاه (إلى الأمام أو إلى الخلف دوران) وذلك لمعايرة حركة الروبوت. المكاسب مستقلة تسمح كذلك لتحديد دوران المحرك غير متناظرة لتوليد التحيز تحول الروبوت (راجع الخطوة 6.1).
  3. غسل سطح بيضاء الكرة البوليستيرين (الكتلة: حوالي 2 غرام؛ القطر: 50 ملم) مع الماء لإزالة أي العظة حاسة الشم أو بصرية ممكنة.
    ملاحظة: يجب معاملة خشنة السطح من الكرة الجديدة مع الصنفرة غرامة الحصباء، مثل P400، الذي يضمن قبضة الساقين على الكرة.
  4. تشغيل مروحة منفاخ التي تزود الهواء في 9 V إلى حلقة مفرغة ويطفو على الكرة (الشكل 5A). مراقبة الكرة تطفو حوالي 2 مم من قاع الكأس.
  5. باستخدام المسمار، ونعلق الأسلاك النحاسية المرفق مع فراشة (راجع الخطوة 2) لاعبا اساسيا في قمرة القيادة للروبوت (انظر الشكل 3 الشكل). تأكد من أن موقف الساقين الأوسط في مركز الكرة (الشكل 7A).
  6. ضبط الوضع الرأسي للمرفق لتمكين العثة على المشي بشكل طبيعي على بجميع. ابقاء الكرة في نفس الارتفاع قبل وبعد ربط فراشة (7B الشكل).
    ملاحظة: الموقف ايضا منخفض المرفق يضيف الضغط على العثة ويتسبب المشي إلى الوراء لمقاومة الضغط (الشكل 7C)، في حين أن الموقف ايضا عالية يسبب المشي غير مستقرة والفشل من أجهزة الاستشعار بسبب التغيرات في الوضع الرأسي لل الكرة (الشكل 7D). للتحقق السلوك المشي العادي، يتم استخدام التحفيز فرمون واحد ينفخ لتحريك المشي في فراشة (لتحفيز فرمون، راجع الخطوة 4). لاحظ أن التحفيز الاختبار يجب أن يكون الحد الأدنى لالتعرض السابق لبومبيكول habituates silkmoths وانخفاض حساسيتها (ماتسوياما وكانزاكي، بيانات غير منشورة).

4. إعداد مصدر الرائحة

ملاحظة: ذكر ب موري هي حساسة لعنصرا رئيسيا في مناوع فرمون الإناث (بومبيكول: (E، Z) -10،12-hexadecadien-1-أول) 20. أي تلوث المعدات التجريبية مع بومبيكول يتسبب سلوك تتبع رائحة ويؤثر على الاستجابة للفراشة.

  1. إسقاط 10 ميكرولتر من الحل بومبيكول يذوب في ن الهكسان (200 نانوغرام / ميكرولتر) على قطعة من ورق الترشيح (حوالي 10 ملم × 10 ملم). كمية بومبيكول في قطعة من ورق الترشيح هو 2000 نانوغرام.
    ملاحظة: للتحقق من السلوك العادي قريبة من العث، وإعداد خرطوشة فرمون التحفيز في هذه الخطوة. خرطوشة هو الزجاج ماصة باستير مع قطعة واحدة من ورق الترشيح تحتوي على 2000 نانوغرام من بومبيكول. دفع لمبة نفث في بومبيكول الهواء تحتوي على.

5. رائحة المصدر التعريب تجربة

  1. تشغيل مروحة من نفق الرياح سحب الهواء من نوع (1800 × 900 × 300 مم، L × W × H، الشكل 8)، وضبط سرعة الرياح إلى 0.7 متر / ثانية. تأكد من أن درجة الحرارة أكثر من 20 درجة مئوية.
  2. تعيين مصدر الرائحة (عIECE من ورق الترشيح التي تحتوي على بومبيكول) المنبع من نفق الرياح.
    ملاحظة: يجب أن يكون وأكد عرض عمود قبل التجربة باستخدام TiCl 4 17،19.
  3. بدوره على متن متحكم للروبوت وتأسيس اتصال تسلسلي إلى جهاز الكمبيوتر عن طريق البلوتوث.
  4. إطلاق برنامج جافا من صنع مخصص يسمى "BioSignal"، والذي يوفر واجهة بين الكمبيوتر والروبوت.
    ملاحظة: يتضمن الإطار الرئيسي أزرار لإرسال الأوامر إلى الروبوت، ويندوز النص لعرض المدخلات والمخرجات للبلاغ المسلسل، ومربعات صغيرة لتكوين المعلمات. يتم إرسال أوامر لاحقة بالنقر فوق الأزرار المقابلة في هذا البرنامج، باستثناء التقاط الفيديو.
  5. انقر على "حول جهاز" زر لتأكيد الاتصال عن طريق إرسال الأوامر لالروبوت عبر منفذ COM المحدد وتحقق من أن رسالة يتم إرجاع بواسطة الروبوت.
  6. انقر على "مذكرةراي محو "الزر لمحو بيانات الحركة السابقة تركت على ذاكرة فلاش على متن الطائرة.
  7. انقر على زر "drivemode1" لارسال المكاسب المحرك الافتراضي للروبوت.
    ملاحظة: يتم تطبيق التلاعب من المكاسب السيارات وتأخير الوقت بين الحركة الحشرات وحركة الروبوت بعد هذه الخطوة (انظر الخطوات 6.1 و 6.3، الشكل 9).
  8. انقر على زر "لا تدفع" لإرسال الأوامر للشل حركة الروبوت حتى تبدأ التجربة.
  9. وضع الروبوت في موضع بداية (600 ملم المصب من مصدر الرائحة)، وبدوره على التبديل مجلس سائق السيارات.
  10. تضغط على الزر تسجيل الكاميرا لبدء التقاط الفيديو.
  11. انقر على زر "البدء تفصيل" لإرسال أمر بداية لبدء الروبوت مع تسجيل وقت واحد من دوران الكرة على ذاكرة فلاش على متن الطائرة. نلاحظ أن الروبوت يبدأ في التحرك والمسارات عمود رائحة.
  12. اضغط على"توقف تفصيل" و "لا تدفع" أزرار لإرسال الأوامر إلى وقف كل من حركة الروبوت وتسجيل إذا كان الروبوت يموضع مصدر الرائحة.
  13. تضغط على الزر تسجيل كاميرا الفيديو لوقف التقاط الفيديو.
  14. تحميل سجلت بيانات الحركة من ذاكرة فلاش على متن الطائرة إلى الكمبيوتر عبر اتصال تسلسلي. أغلق البرنامج.

6. التلاعب روبوت تسيطر عليها الحشرات

ملاحظة: يشار توقيت كل التلاعب في الشكل 9.

  1. التلاعب من المكاسب السيارات
    ملاحظة: هذا التلاعب يغير من سرعة متعدية والتناوب للروبوت. مكاسب السيارات غير المتكافئة تولد التحيز تحول، والتي يمكن استخدامها لدراسة كيفية تعويض الحشرات عن التحيز 17.
    1. تحديد المكاسب الدوران للأمام والوراء دوران المحرك على كل جانب 17 (الشكل 6B) عن طريق تحرير الملف التكوين ه يدعى "param2.txt" باستخدام محرر النصوص.
    2. انقر على "PARAM2 ضبط" لقراءة ملف التكوين تحريره في البرنامج. ثم، انقر على "drivemode2" لارسال المكاسب التلاعب بها لالروبوت.
  2. قلب من إخراج السيارات
    ملاحظة: يوفر هذا التلاعب حالة مشابهة لقلب المدخلات الثنائي حاسة الشم (راجع الخطوة 6.4)، ويمكن استخدامها للتحقيق في أهمية الشم الثنائي. ومع ذلك، فإن انعكاس للناتج المحرك أيضا المقلوب الحركة البصرية التي يسببها الذاتي للعثة على متن الطائرة. تأثير المدخلات البصرية التي يسببها النفس مقلوب يمكن تقييمها من قبل مقارنة مع إدخال حاسة الشم مقلوب 19.
    1. عكس التحكم في المحركات الثنائية عن طريق عبور كابلات التحكم لكل محرك.
  3. التلاعب في تأخير الوقت بين الحركة الحشرات وحركة الروبوت.
    ملاحظة: هذا التلاعبيسمح للتحقيق في فترة مقبولة من الوقت الذي يقضيه في معالجة الحسية والحركية لالروبوتية رائحة تتبع. متحكم بتخزين بيانات الحركة على الذاكرة عازلة ثم يعالج ذلك بعد تأخير زمني محدد. لاحظ أن الروبوت لديه القصوى تأخير وقت الداخلي 200 ميللي ثانية. وبالتالي، من المتوقع أن يكون التأخير الزمني المحدد بالإضافة إلى 200 مللي ثانية 16،17 تأخر الوقت الفعلي.
    1. إدخال رقم (0-10) في مربع صغير من النافذة الرئيسية لتحديد فترة زمنية من 0-1،000 ميللي ثانية في الخطوات 100 ميللي ثانية.
    2. انقر على زر "المقرر تاخير" لتطبيق تأخير الوقت.
  4. التلاعب في المدخلات حاسة الشم.
    ملاحظة: هذا التلاعب يمكن أن تستخدم للتحقيق في أهمية مساهمة الثنائي حاسة الشم. منحازة باتجاه موجة من silkmoths على الجانب تركيز أعلى 22.
    1. تغيير الفجوة بين النصائح أنبوب الشفط أو عكس مواقفهم لتغييرالفرق في تركيز الرائحة التي حصل عليها كل هوائي.
  5. التلاعب في المدخلات البصرية
    ملاحظة: هذا التلاعب هو التحقيق في دور المدخلات البصرية لرائحة تتبع.
    1. تغطية مظلة مع ورقة بيضاء حتى تسبب انسداد 105 ° و 90 ° من المجال البصري الأفقي والرأسي للعثة على متن الطائرة، على التوالي.

النتائج

نقدم هنا الخصائص الأساسية للروبوت التي تسيطر عليها الحشرات اللازمة لتوطين الناجح لمصدر الرائحة. يتم فحص المقارنة بين الروبوت وsilkmoths، فعالية نظام التسليم رائحة، وأهمية حاسة الشم الثنائي دقيقة والمدخلات البصرية.

Discussion

أهم النقاط من أجل السيطرة الناجحة للروبوت من قبل silkmoth يتم السماح فراشة سيرا على الأقدام بسلاسة على الكرة المدعومة الهواء وقياس ثبات دوران الكرة. ولذلك، الربط وsilkmoth والمتصاعدة على الكرة في المكان المناسب هي الخطوات الحاسمة في هذا البروتوكول. والتصاق غير لائق من العث?...

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Shigeru Matsuyama for providing purified bombykol. This work was supported by the Japan Society for the Promotion of Science KAKENHI (grant numbers 22700197 and 24650090) and the Human Frontier Science Program (HFSP).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Male adult silkmoth (Bombyx mori)Rear from eggs, or purchase as pupae.
IncubatorPanasonicMIR-254Store pupae or adult silkmoths at a constant temperature, 238 L.
Plastic boxSunplatecO-3Store pupae or adult silkmoths, 299 × 224 × 62 mm L × W × H.
Copper wire2-mm diameter for the attachment. Any rigid bar can be used as an alternative for making the attachment to tether a silkmoth. 
Plastic sheetKokuyoVF-1420NSold as overhead projector film with thickness of 0.1 mm. Use at the tip of the attachment.
ForcepsAs one5SARemove scales on the thorax.
AdhesiveKonishiG17Bond a silkmoth to the attachment.
Insect-controlled robotCustomBearing an air-supported treadmill, an optical sensor, custom-built AVR-based microcontroller boards, and two DC brushless motors. It is powered by 8 × AA and 3 × 006P batteries.
MicrocontrollerAtmelATMEGA8A component of the insect-controlled robot.
DC blowerNidecA34342-55A component of the insect-controlled robot for floating a ball in an air-supported treadmill. 
DC fanMinebea1606KL-04W-B50A component of the insect-controlled robot for suctioning air containing an odor.
Optical mouse sensorAgilent technologiesHDNS-2000A component of the insect-controlled robot, obtained from an optical mouse (M-GUWSRSV, Elecom, Japan).
Brushless motorMaxonEC-45A component of the insect-controlled robot for driving a wheel.
White polystyrene ballA component of the insect-controlled robot. Diameter 50 mm, mass approximately 2 g.
Bombykol:
(E,Z)-10,12-hexadecadien-1-ol
Shin-Etsu chemicalCustom synthesis.
n-hexaneWako085-00416Solvent for bombykol.
Wind tunnelCustomPulling-air type, sized 1,800 × 900 × 300 mm L × W × H.
BioSignal programCustomA program to establish serial communication between the insect-controlled robot and a PC via Bluetooth. Used for sending commands to start/stop the robot or configuring its motor properties. 
CamcorderSonyHDR-XR520VCapture robot movements.

References

  1. Murlis, J., Jones, C. D. Fine-scale structure of odor plumes in relation to insect orientation to distant pheromone and other attractant sources. Physiol Entomol. 6, 71-86 (1981).
  2. Vergassola, M., Villermaux, E., Shraiman, B. I. 'Infotaxis' as a strategy for searching without gradients. Nature. 445, 406-409 (2007).
  3. Kowadlo, G., Russell, R. A. Robot Odor Localization: A Taxonomy and Survey. The International Journal of Robotics Research. 27, 869-894 (2008).
  4. Hernandez Bennetts, V., Lilienthal, A. J., Neumann, P. P., Trincavelli, M. Mobile robots for localizing gas emission sources on landfill sites: is bio-inspiration the way to go. Frontiers in neuroengineering. 4, 20 (2011).
  5. Vickers, N. J. Mechanisms of animal navigation in odor plumes. Biol Bull. 198, 203-212 (2000).
  6. Willis, M. A. Chemical plume tracking behavior in animals and mobile robots. Navigation. 55, 127-135 (2008).
  7. Carde, R. T., Willis, M. A. Navigational strategies used by insects to find distant, wind-borne sources of odor. J Chem Ecol. 34, 854-866 (2008).
  8. Frye, M. A. Multisensory systems integration for high-performance motor control in flies. Curr Opin Neurobiol. 20, 347-352 (2010).
  9. Russell, R. A. Survey of robotic applications for odor-sensing technology. The International Journal of Robotics Research. 20, 144-162 (2001).
  10. Russell, R. A., Bab-Hadiashar, A., Shepherd, R. L., Wallace, G. G. A comparison of reactive robot chemotaxis algorithms. Robot Auton Syst. 45, 83-97 (2003).
  11. Ishida, H., Nakamoto, T., Moriizumi, T., Kikas, T., Janata, J. Plume-tracking robots: a new application of chemical sensors. Biol Bull. 200, 222-226 (2001).
  12. Webb, B., Harrison, R. R., Willis, M. A. Sensorimotor control of navigation in arthropod and artificial systems. Arthropod Struct Dev. 33, 301-329 (2004).
  13. Kanzaki, R. How does a microbrain generate adaptive behavior. Int Congr Ser. 1301, 7-14 (2007).
  14. Kanzaki, R., Ando, N., Sakurai, T., Kazawa, T. Understanding and reconstruction of the mobiligence of insects employing multiscale biological approaches and robotics. Adv Robotics. 22, 1605-1628 (2008).
  15. Ravel, N., et al. Multiphasic on/off pheromone signalling in moths as neural correlates of a search strategy. Plos One. 8, 61220 (2013).
  16. Emoto, S., Ando, N., Takahashi, H., Kanzaki, R. Insect-controlled robot-evaluation of adaptation ability. J Robot Mechatronics. 19, 436-443 (2007).
  17. Ando, N., Emoto, S., Kanzaki, R. Odour-tracking capability of a silkmoth driving a mobile robot with turning bias and time delay. Bioinspir Biomim. 8, 016008 (2013).
  18. Gatellier, L., Nagao, T., Kanzaki, R. Serotonin modifies the sensitivity of the male silkmoth to pheromone. J Exp Biol. 207, 2487-2496 (2004).
  19. Ando, N., Kanzaki, R. A simple behaviour provides accuracy and flexibility in odour plume tracking - the robotic control of sensory-motor coupling in silkmoths. J. Exp. Biol. 218, 3845-3854 (2015).
  20. Kaissling, K. E., Beidler, L. M. Insect olfaction. Handbook of Sensory Physiology Vol. 4. , 351-431 (1971).
  21. Kanzaki, R., Sugi, N., Shibuya, T. Self-generated zigzag turning of Bombyx mori males during pheromone-mediated upwind walking. Zool Sci. 9, 515-527 (1992).
  22. Takasaki, T., Namiki, S., Kanzaki, R. Use of bilateral information to determine the walking direction during orientation to a pheromone source in the silkmoth Bombyx mori. J Comp Physiol. A. 198, 295-307 (2012).
  23. Kanzaki, R. Coordination of wing motion and walking suggests common control of zigzag motor program in a male silkworm moth. J Comp Physiol A. 182, 267-276 (1998).
  24. Pansopha, P., Ando, N., Kanzaki, R. Dynamic use of optic flow during pheromone tracking by the male silkmoth, Bombyx mori. J Exp Biol. 217, 1811-1820 (2014).
  25. Loudon, C., Koehl, M. A. R. Sniffing by a silkworm moth: Wing fanning enhances air penetration through and pheromone interception by antennae. J. Exp. Biol. 203, 2977-2990 (2000).
  26. Lebedev, M. A., Nicolelis, M. A. L. Brain-machine interfaces: past, present and future. Trends Neurosci. 29, 536-546 (2006).
  27. Ejaz, N., Peterson, K. D., Krapp, H. G. An experimental platform to study the closed-loop performance of brain-machine interfaces. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).
  28. Minegishi, R., Takashima, A., Kurabayashi, D., Kanzaki, R. Construction of a brain-machine hybrid system to evaluate adaptability of an insect. Robot Auton Syst. 60, 692-699 (2012).
  29. Martinez, D., Arhidi, L., Demondion, E., Masson, J. B., Lucas, P. Using insect electroantennogram sensors on autonomous robots for olfactory searches. Journal of visualized experiments : JoVE. , e51704 (2014).
  30. Ortiz, L. I. . A mobile electrophysiology board for autonomous biorobotics. , (2006).
  31. Bohil, C. J., Alicea, B., Biocca, F. A. Virtual reality in neuroscience research and therapy. Nat Rev Neurosci. 12, 752-762 (2011).
  32. Dombeck, D. A., Reiser, M. B. Real neuroscience in virtual worlds. Curr Opin Neurobiol. 22, 3-10 (2012).
  33. Roth, E., Sponberg, S., Cowan, N. J. A comparative approach to closed-loop computation. Curr Opin Neurobiol. 25, 54-62 (2014).
  34. Leinweber, M., et al. Two-photon calcium imaging in mice navigating a virtual reality environment. Journal of visualized experiments : JoVE. , e50885 (2014).
  35. Takalo, J., et al. A fast and flexible panoramic virtual reality system for behavioural and electrophysiological experiments. Sci Rep. 2, 324 (2012).
  36. Bahl, A., Ammer, G., Schilling, T., Borst, A. Object tracking in motion-blind flies. Nat Neurosci. 16, 730-738 (2013).
  37. Bellmann, D., et al. Optogenetically Induced olfactory stimulation in Drosophila larvae reveals the neuronal basis of odor-aversion behavior. Front Behav Neurosci. 4, 27 (2010).
  38. Gaudry, Q., Hong, E. J., Kain, J., de Bivort, B. L., Wilson, R. I. Asymmetric neurotransmitter release enables rapid odour lateralization in Drosophila. Nature. 493, 424-428 (2013).
  39. Tabuchi, M., et al. Pheromone responsiveness threshold depends on temporal integration by antennal lobe projection neurons. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, 15455-15460 (2013).
  40. Schulze, A., et al. Dynamical feature extraction at the sensory periphery guides chemotaxis. Elife. 4, 06694 (2015).
  41. Duistermars, B. J., Chow, D. M., Frye, M. A. Flies require bilateral sensory input to track odor gradients in flight. Curr Biol. 19, 1301-1307 (2009).
  42. Gomez-Marin, A., Duistermars, B. J., Frye, M. A., Louis, M. Mechanisms of odor-tracking: multiple sensors for enhanced perception and behavior. Front Cell Neurosci. 4, 6 (2010).
  43. Sakurai, T., et al. A single sex pheromone receptor determines chemical response specificity of sexual behavior in the silkmoth Bombyx mori. Plos Genet. 7, (2011).
  44. Tripathy, S. J., et al. Odors pulsed at wing beat frequencies are tracked by primary olfactory networks and enhance odor detection. Front Cell Neurosci. 4, 1 (2010).
  45. Daly, K. C., Kalwar, F., Hatfield, M., Staudacher, E., Bradley, S. P. Odor detection in Manduca sexta is optimized when odor stimuli are pulsed at a frequency matching the wing beat during flight. Plos One. 8, 81863 (2013).
  46. Szyszka, P., Gerkin, R. C., Galizia, C. G., Smith, B. H. High-speed odor transduction and pulse tracking by insect olfactory receptor neurons. Proc Natl Acad Sci USA. 111, 16925-16930 (2014).
  47. Harvey, D., Lu, T. F., Keller, M. Odor sensor requirements for an insect inspired plume tracking mobile robot. Proceedings of'The 2006 IEEE International Conference on Robotics and Biomimetics. , 130-135 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

118 silkmoth

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved