JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • النتائج
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

نقدم هنا نموذجا للفئران لمفاغرة الشريان الفخذي ، ونقدم للباحثين نموذجا حيوانيا قيما لدراسة ومحاكاة تضيق مفاغرة الأوعية الدموية. هذا التطور أمر بالغ الأهمية لتعزيز فهمنا للفيزيولوجيا المرضية الكامنة وراء هذه الحالة وتسهيل إجراء أبحاث أكثر دقة وفعالية في أمراض الأوعية الدموية.

Abstract

في جراحة الأوعية الدموية ، مفاغرة الأوعية الدموية هي تقنية ترميمية شائعة تستخدم لاستعادة تدفق الدم. ومع ذلك ، فإن تضيق المفاغرة هو أحد المضاعفات المتكررة بعد الجراحة ، والتي تسببها في المقام الأول إصابة الأوعية الدموية الناجمة عن الجراحة ، وتضخم التنسج الحمي، والاستجابات الالتهابية. يستخدم نموذج مفاغرة الشريان الفخذي للفأر على نطاق واسع للتحقيق في آليات تضيق الشريان الفخذي وإصلاح الأوعية الدموية. يسمح مفاغرة الشريان الفخذي الموجه مجهريا بالمحاكاة الدقيقة لإصابة الأوعية الدموية وعمليات الإصلاح بعد الجراحة ، مما يوفر أداة تجريبية موثوقة لدراسة الآليات المرضية المتعلقة بتضيق التنسج. تركز هذه الدراسة على تحسين التقنية الجراحية لمفاغرة الشريان الفخذي في الفئران. من خلال التحسينات في التقنيات الجراحية وتحسين التفاصيل الفنية ، حققنا زيادة ملحوظة في معدل نجاح النموذج وقابليته للتكرار. تشمل التحسينات المحددة تقنيات معالجة الأوعية الدموية المكررة أثناء الجراحة ، واختيار مواد الخياطة ، وتحسين طرق الخياطة لتقليل التسرب المفاغرة والانسداد بعد الجراحة. تؤكد الدراسة أيضا على ملاحظة تضخم الدماغ الحمي، وإعادة تشكيل الأوعية الدموية في الموقع المفاغرة، وسالكية الأوعية الدموية على المدى الطويل. من خلال هذا البحث ، نقدم دليلا تشغيليا موجزا وفعالا لإجراء مفاغرة الشريان الفخذي للفأر ، ونقدم دعما فنيا موثوقا به للدراسات التجريبية في جراحة الأوعية الدموية. يضع هذا العمل أساسا متينا للتحقيقات اللاحقة في الآليات وتقييمات التدخل العلاجي ذات الصلة.

Introduction

مفاغرة الأوعية الدموية هي تقنية أساسية في إجراءات إعادة التوعي ، وتلعب دورا محوريا في استعادة تدفق الدم وتعزيز إصلاح الأنسجة. ومع ذلك ، فإن حدوث تضخم حمي (IH) في موقع مفاغرة غالبا ما يؤدي إلى تضيق الدم ، مما يضر بشكل كبير بسالكية الأوعية الدموية على المدى الطويل ويؤثر سلبا على النتائج السريرية وتشخيص المريض1،2. يرتبط IH ارتباطا وثيقا بإصابة الأوعية الدموية أثناء الجراحة ، والتي تتميز بالتكاثر والهجرة غير الطبيعية لخلايا العضلات الملساء (SMCs) والترسب المفرط للمصفوفة خارج الخلية1. تؤكد هذه العمليات المرضية المعقدة والمترابطة على الحاجة الماسة لتوضيح الآليات الدقيقة ل IH لإبلاغ الاستراتيجيات الوقائية والتدخلية ضد تضيق التنسج.

نظرا لقابليتها للتكاثر والتحكم الدقيق ، فقد تم اعتماد نماذج الفئران لمفاغرة الشريان الفخذي على نطاق واسع في البحث عن إصلاح الأوعية الدموية والآليات المرضية المرتبطةبها 3،4،5. يسمح مفاغرة البداية إلى النهاية في الفئران بمحاكاة دقيقة لإصابة مفاغرة ما بعد الجراحة ، مما يتيح الملاحظة الديناميكية ل IH وإعادة تشكيل الأوعية الدموية. توفر هذه النماذج منصة مثالية لدراسة التفاعلات بين الخلايا البطانية و SMCs بعد الجراحة وتقييم دور الاستجابات الالتهابية في تطور IH6. من خلال الجمع بين التحليل النسيجي واكتشاف المؤشرات الحيوية الجزيئية ، يمكن للباحثين تحديد الدوافع الرئيسية ل IH بشكل شامل ، وتقديم رؤى مهمة حول آلياته الأساسية وأهدافه العلاجية المحتملة.

إن تطوير IH مدفوع بعوامل متعددة ، حيث تعد التغييرات الديناميكية الدموية مساهما حاسما1،7،8. في موقع مفاغرة ، تعد مناطق إجهاد القص المنخفض ومؤشر القص التذبذبي غير الطبيعي (OSI) محفزات أولية لتكاثر SMCs وهجرتها1،7. علاوة على ذلك ، يؤدي عدم تطابق الامتثال وتدفق الدم المضطرب حول مفاغرة إلى تفاقم إصابة البطانة ، مما يؤدي إلى تسريع تقدم IH8. تؤكد هذه النتائج على ضرورة تحسين التقنيات الجراحية واختيار المواد المناسبة للتخفيف من التغيرات المرضية في موقع مفاغرة.

في السنوات الأخيرة ، أثبتت البالونات المغلفة بالأدوية (DCBs) فعاليتها في تقليل IH. العوامل المضادة للتكاثر ، مثل باكليتاكسيل ، تمنع بشكل فعال انتشار SMCs وهجرتها ، مما يقلل بشكل كبير من حدوث تضيقالتضيق 9. ومع ذلك ، لا تزال التحديات مستمرة في أنظمة التدفق العالي مثل الطعوم الشريانية الوريدية ، حيث قد تقلل التقلبات السريعة في إجهاد القص ومعدلات تدفق الدم العالية من فعاليةDCBs 1. يجب أن تركز الدراسات المستقبلية على تحسين قابلية تطبيق DCBs في بيئات ديناميكية الدم المتنوعة مع الاستفادة من التقدم في علم المواد الحيوية لتطوير حلول أكثر تخصيصا وفعالية لتضيق الدم بعد الجراحة. بالإضافة إلى التدخلات الموضعية ، تؤثر العوامل الجهازية مثل مرض السكري وتصلب الشرايين والخلل البطاني بشكل كبير على تطور IH10. لذلك ، يجب أن تعطي الاستراتيجيات السريرية الأولوية للإدارة الشاملة لهذه الحالات الجهازية لتعزيز صحة الأوعية الدموية بشكل عام. في الوقت نفسه ، يمكن أن يوفر تحديد ومراقبة المؤشرات الحيوية الجديدة لتطور IH فرصا للتدخل المبكر. يوفر دمج الذكاء الاصطناعي في التخطيط الجراحي وسيلة واعدة أخرى ، مما يسمح بالتصميم الحسابي للتكوينات المفاغرة المحسنة ، وبالتالي تحسين معدلات النجاح الجراحي وإطالة سالكية الأوعية الدموية.

في دراسة IH بعد الجراحة والآليات المرضية المرتبطة بها ، يبرز نموذج مفاغرة الشريان الفخذي بدقته وقابليته للتكاثر11. هذا النموذج ، الذي يستخدم تقنيات الجراحة المجهرية لإنشاء مفاغرة شاملة للشريان الفخذي في الفئران ، يحاكي بدقة الصدمة الجراحية الموضعية في موقع مفاغرة. تصبح مزايا هذا النموذج واضحة بشكل خاص عند مقارنتها بنماذج مثل الإصابة الناجمة عن الأسلاك أو البدائل الأخرى. تتمثل الميزة التقنية الرئيسية لنموذج مفاغرة الشريان الفخذي في قدرته على إحداث إصابة الأوعية الدموية الموضعية للغاية والسيطرةعليها 12. تسمح الصدمة الجراحية بتأثير مركز على منطقة مفاغرة ، وتحاكي عن كثب أنماط الإصابات التي تواجهها جراحة الأوعية الدموية السريرية. في المقابل ، غالبا ما تؤدي نماذج الإصابات الناجمة عن الأسلاك ، على الرغم من أنها أبسط في التقنية ، إلى تعرية البطانية على نطاق واسع ، مما يجعل من الصعب تكرار الصدمة الموضعية التي لوحظت في جراحات مفاغرة الحياة الواقعية13. علاوة على ذلك ، فإن التباين في عمق ومدى الضرر الناجم عن الأسلاك عبر التجارب المختلفة من المحتمل أن يقلل من قابلية تكرار النتائج. إن الطبيعة الواسعة والمنتشرة للضرر في نماذج إصابة الأسلاك تجعلها أقل أهمية للتحقيق في IH الموضعي المرتبط على وجه التحديد بالمناطق المفاغرة.

في هذه الدراسة ، باستخدام نموذج الفئران لمفاغرة الشريان الفخذي ، قمنا بتحسين التقنيات الجراحية بشكل منهجي لتعزيز معدلات نجاح النموذج وضمان سالكية موقع مفاغرة على المدى الطويل. من خلال الاستفادة من هذا الأساس الراسخ ، تعمقت دراستنا في الآليات الجزيئية والخلوية الكامنة وراء IH ، بما في ذلك المسارات التنظيمية التي تحكم هجرة SMCs وانتشارها ، بالإضافة إلى دور الوسطاء الالتهابيين في تطور IH. من خلال هذا البحث ، نهدف إلى المساهمة برؤى نظرية جديدة حول آليات تضيق ما بعد مفاغرة وإنشاء أساس تجريبي لتطوير استراتيجيات علاجية تستهدف IH على وجه التحديد.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

تمت الموافقة على هذه الدراسة ، وتم التعامل مع وفقا للمبادئ التوجيهية لإدارة واستخدام المختبر في الصين. التزم البحث بصرامة بالمتطلبات الأخلاقية للتجارب على ، بموافقة لجنة أخلاقيات (رقم الموافقة: SWMU20221109-019). هنا ، تم استخدام الفئران السليمة C57BL / 6 البالغة من العمر 8 أسابيع من كلا الجنسين ، والتي يتراوح وزنها بين 20-22 جراما ، في هذه الدراسة. تم إيواء في مركز المختبر التابع لجامعة ساوث ويست الطبية (SWMU).

1. إجراءات ما قبل الجراحة

  1. تخدير الفئران باستنشاق 3٪ من الأيزوفلوران وفقا للبروتوكولات المعتمدة مؤسسيا. بعد بداية التخدير ، تحقق من الفقدان الكامل لردود الفعل ، مثل عدم الاستجابة لقرص إصبع القدم ، لضمان التخدير العميق قبل الشروع في الجراحة. بعد تحفيز التخدير ، قلل تركيز الأيزوفلوران إلى 1٪ -1.5٪ للحفاظ على حالة التخدير ، مما يضمن بقاء في تخدير عميق طوال العملية الجراحية.
  2. ضع الفأر ضعيفا على منصة جراحية ، مع تمديد الأطراف الخلفية دون الإفراط في التمدد.
  3. ضعي كريم إزالة الشعر على منطقة الفخذ لمدة 1 دقيقة تقريبا لإزالة الشعر ، ثم نظفي المنطقة جيدا لإزالة أي كريم متبقي وشعر شارد.
  4. تطهير موقع الجراحة بمحلول اليود 3x للتحضير للخطوات الجراحية اللاحقة.

2. مفاغرة الأوعية الدموية للشريان الفخذي

  1. تحت المجهر المجسم ، قم بعمل شق بطول 1.5 سم تقريبا على طول محور عظم الفخذ في منطقة منتصف الفخذ باستخدام مشرط دقيق. بعد شق الجلد ، قم بإجراء تشريح حاد لفصل الأنسجة تحت الجلد حتى ينكشف الشريان الفخذي والوريد الفخذي. يقع الشريان الفخذي بشكل جانبي في الوريد الفخذي ، ويتم وضع العصب بشكل متفوق وجانبي على الشريان.
  2. قم بتشريح الأنسجة بعناية لكشف جزء 1 سم من الشريان الفخذي بالكامل. باستخدام ملقط مرقئ ، افصل العضلات واللفافة العميقة برفق لكشف الأعصاب والشريان والوريد. خلال هذه العملية ، يقع العصب في الطبقة الخارجية ، والشريان في المنتصف ، والوريد في الداخل.
  3. افصل بلطف بين الشريان الفخذي والوريد الفخذي باستخدام تشريح حاد. كن حذرا عند استخدام ملقط دقيق لفصل النسيج الضام لكشف الشريان الفخذي بالكامل. ضع وسادة معقمة أسفل الشريان الفخذي لمنع إصابة الإبرة العرضية أثناء العملية. بعد ذلك ، قم بتثبيت الشريان الفخذي برفق باستخدام ملقط للحث على ورم دموي.
  4. . باستخدام ملقط مرقئ صغير ، قم بتثبيت الأطراف القريبة والبعيدة من الشريان الفخذي. استخدم مقصا دقيقا لتمرير الشريان الفخذي بدقة ومتناظرة.
  5. ارسم محلول ملحي هيباريني 1٪ (1٪ هيبارين في محلول ملحي عادي) في حقنة سعة 1 مل للحقن في مفاغرة الشريان الفخذي. أضف المحلول الملحي على شكل 3-4 قطرات في المرة الواحدة ، مع عدة شطف متكرر لإزالة أي جلطات دموية من الشريان.
  6. لتوفير الدعم للوعاء أثناء الخياطة اللاحقة ومحاكاة الضرر المحتمل الناجم عن تدخل سلك التوجيه ، أدخل خياطة جراحية بطول 1 سم 6-0 في الشريان الفخذي. تأكد من المحاذاة المناسبة ونعومة الشريان الفخذي لتسهيل عملية الخياطة.
  7. استخدم خياطة جراحية 12-0 للمفاغرة واضبط زاوية الإبرة تحت المجهر للتأكد من خروج الإبرة من الجانب الداخلي إلى الجانب الخارجي للوعاء الدموي.
  8. قم بإنشاء ثمانية مواقع ثقب ، أربعة على الطرف القريب وأربعة على الأطراف البعيدة للشريان الفخذي.
    1. تأكد من أن مواقع البزل تقع في النقاط الأمامية والخلفية واليسرى واليمنى للوعاء الدموي ، مع المواقع المقابلة في الأطراف البعيدة والقريبة. عند اختيار هذه النقاط ، تأكد من إمكانية الوصول إلى الوعاء الدموي ، وتجنب الهياكل التشريحية الحرجة ، والحفاظ على تدفق الدم الجيد أثناء مفاغرة.
    2. اجعل قطر الثقب صغيرا بما يكفي لتقليل الضرر الذي يلحق بالوعاء ولكنه كبير بما يكفي للإجراءات اللازمة. عادة ما تستخدم إبرة خياطة 12-0 للثقب.
  9. قم بقص أربعة أطوال من 12-0 خياطة ، طول كل منها 3-4 سم ، وقم بربط كل منها من خلال فتحة الثقب المقابلة. ابدأ بربط عقدة فضفاضة لتجنب تشابك الغرز.
  10. قم بإزالة الخيط 6-0 المستخدم لدعم السفينة واربط العقد بإحكام. حرر ملقط مرقئ بعد اكتمال المفاغرة.
  11. اكشط الشريان الفخذي برفق باستخدام ملقط منحني من الطرف القريب إلى الطرف البعيد للتحقق من المباح ، مما يضمن تدفق الدم بحرية عبر الوعاء الدموي. بالإضافة إلى ذلك ، افحص موقع مفاغرة بعناية بحثا عن أي علامات تسرب واضح.

3. خياطة ما بعد الجراحة

  1. خياطة جلد الطرف السفلي باستخدام خياطة جراحية 6-0 ، باستخدام خياطة متقطعة لضمان محاذاة دقيقة وتقريب آمن للأنسجة. بعد خياطة الجرح ، ضع صبغة اليود على المنطقة المخيطة لتطهير الجرح وتقليل خطر الإصابة بالعدوى.
  2. الحفاظ على الظروف المعقمة بعد الجراحة. لا تترك دون رقابة حتى يستعيد وعيه الكافي للحفاظ على الاستلقاء القصي. لا تعيد التي خضعت لعملية جراحية إلى صحبة الأخرى حتى يتم شفائها تماما.

4. المراقبة وأخذ العينات بعد الجراحة

  1. افحص موقع الجراحة بانتظام بحثا عن أي علامات للالتهاب أو التورم المفرط أو الإفرازات. قم بتوثيق حالة وتقديم الرعاية المناسبة حسب الحاجة.
  2. بعد 4 أسابيع من الجراحة ، قم بالقتل الرحيم للفئران بشكل إنساني وفقا للإرشادات الأخلاقية المعتمدة. للقتل الرحيم، يتم تطبيق جرعة زائدة من البنتوباربيتال الصوديوم (150 ملغ/كغ، الحقن داخل الصفاق)، مما يضمن نهاية إنسانية وغير مؤلمة. بمجرد تأكيد فقدان الوعي وتوقف ردود الفعل ، ابدأ في جمع الأنسجة.
    ملاحظة: في الدراسات الأولية ، وجدنا أن حصاد العيناتخلال الأسبوع الثالث أو قبل ذلك لم يكن مفيدا لتكوين تضخم حميمي. على العكس من ذلك ، أدى جمع العيناتفي الأسبوع الخامس إلى تضخم حميم مفرط. لم يعيق هذا النمو المفرط مراقبة التجارب اللاحقة فحسب ، بل شكل أيضا مخاطر صحية محتملة على الفئران. لذلك تماختيار الأسبوع الرابع هنا.
  3. جمع عينات الشريان الفخذي ، مع التركيز على موقع مفاغرة ، تمتد حوالي 1 سم في كلا الاتجاهين من مفاغرة. باستخدام مقص ناعم ، قم باستئصال الشريان الفخذي مع جميع الأنسجة العضلية المحيطة.
  4. بعد الاستئصال ، اشطف العينة في PBS لإزالة الدم المتبقي ، ثم قم بإصلاحها في الفورمالين المحايد بنسبة 10٪ لمدة 1-2 أيام لمزيد من الحفظ والتحليل.
    ملاحظة: الفورمالين المحايد بنسبة 10٪ هو خيار كلاسيكي لتثبيت الأنسجة ، وربط البروتينات بشكل فعال والحفاظ على سلامة بنية الأنسجة ، مما يجعله مناسبا بشكل خاص لتخزين الأنسجة على المدى الطويل. في المقابل ، فإن 4٪ بارافورمالدهيد (PFA) هو مثبت أكثر اعتدالا وهو أكثر ملاءمة للحفاظ على الهياكل داخل الخلايا (مثل الأحماض النووية والبروتينات) ويستخدم بشكل شائع في الكيمياء المناعية أو تحليل التألق المناعي. الهدف الأساسي من هذه الدراسة هو مراقبة التغيرات النسيجية في الأوعية الدموية (مثل تضخم الدم وإعادة تشكيل الأوعية الدموية) بدلا من التوطين الدقيق للجزيئات أو البروتينات داخل الخلايا. لذلك ، فإن تأثير تثبيت الفورمالين كاف لتلبية الاحتياجات التجريبية. إذا كان البحث يتطلب دقة جزيئية أعلى (مثل الحفاظ على الحمض النووي الريبي أو البروتينات) ، فقد يكون PFA خيارا أفضل.

5. الجفاف وتضمين الشريان الفخذي

  1. بعد التثبيت ، ضع العينات في صناديق التضمين. اشطف عينات الشريان الفخذي بالماء الجاري لمدة 6-8 ساعات قبل معالجتها لجفاف الأنسجة باستخدام معالج الأنسجة الآلي.
  2. صب البارافين المذاب في قوالب التضمين ، واختر الشريان الفخذي بعناية باستخدام ملقط ساخن ، ثم قم بتضمينه عموديا في القالب الذي يحتوي على البارافين المنصهر. افصل غطاء وأسفل صندوق التضمين ، مع وضع الجزء السفلي أعلى قالب التضمين. أضف كمية صغيرة من البارافين المذاب لتثبيته في مكانه ، ليكون بمثابة قاعدة لكتلة البارافين. يجب تجنب فقاعات الهواء بدقة.
  3. عندما تبرد كتلة الشمع إلى النقطة التي يتشكل فيها فيلم شمع شفاف على السطح ، ضعه على طاولة تجميد ليبرد بسرعة.
  4. قم بإزالة كتلة الشمع المدمجة من قالب التضمين وقم بقص البارافين الزائد الذي يحيط بكتلة الأنسجة بعناية باستخدام شفرة حادة.

6. تحضير أقسام البارافين في الشريان الفخذي

  1. قم بتركيب الشفرة على الميكروتوم ، مما يضمن أن السكين حاد للتقسيم.
  2. ثبت كتلة البارافين على الحامل واضبط الكتلة بالنسبة للشفرة على الموضع المناسب للتقسيم.
  3. قم بقص الكتلة لضمان إمكانية تقسيم الأنسجة المضمنة بالكامل. اضبط سمك الأقسام الأولية على 15-20 ميكرومتر.
  4. اضبط سمك القسم على حوالي 4 ميكرومتر واستمر في التقسيم.
  5. ارفع الأقسام برفق باستخدام فرشاة وانقلها باستخدام ملاقط دقيقة متخصصة إلى صندوق منزلق مملوء بالماء الدافئ (حوالي 45 درجة مئوية) لتسهيل الطفو.
  6. انقل أقسام الانتشار إلى شرائح المجهر. ضع الشرائح بزاوية 45 درجة لتصريف المياه الزائدة. بعد ذلك ، ضع الشرائح في فرن حتى تجف ، عادة عند 37 درجة مئوية لمدة ساعتين ، متبوعا بالخبز على حرارة 60 درجة مئوية لمدة ساعة.

7. تلطيخ الهيماتوكسيلين إيوسين

  1. قم بترطيب الأقسام باستخدام سلسلة من تركيزات الإيثانول المتدرجة ، بما في ذلك الإيثانول المطلق ، 95٪ و 80٪ و 70٪ من الإيثانول ، مع كل خطوة تستغرق حوالي 5 دقائق. بعد ذلك ، اشطف الأقسام بالماء المقطر لإزالة أي إيثانول متبقي.
  2. قم بتلطيخ الأقسام بالهيماتوكسيلين لمدة 8-10 دقائق تقريبا واغسلها جيدا 3 مرات بالماء الجاري لإزالة البقعة الزائدة.
  3. للتمييز بين الأقسام الملطخة ، ضع محلول كحول حمض الهيدروكلوريك بنسبة 1٪ لفترة وجيزة من 5-7 ثوان.
  4. لتكثيف اللون الأزرق ، عالج الأقسام بمحلول الأمونيا 1: 400 لمدة 1 دقيقة.
  5. بعد النقع في 75٪ من الإيثانول ، قم بتلطيخ الأقسام باليوزين لمدة 36 ثانية. بعد التلوين ، قم بتجفيف الأقسام بالتتابع بسلسلة تصاعدية من تركيزات الإيثانول (80٪ و 90٪ و 95٪ و 100٪) ، مع استمرار كل خطوة لمدة 3-5 ثوان.
  6. أخيرا ، اخبز الأقسام على حرارة 37 درجة مئوية في فرن لمدة 10 دقائق ، ضع بضع قطرات من عامل الختم على شريحة زجاجية ، وقم بتغطية العينة بغطاء لتثبيتها في مكانها ، واتركها تجف في الهواء بشكل طبيعي.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

النتائج

في جراحة مفاغرة الأوعية الدموية ، يمكن أن تؤدي الإصابة الميكانيكية لجدار الوعاء الدموي إلى تنشيط الخلايا الحميمة وتحفيز التكاثر. يمكن أن تحفز التغيرات في سرعة تدفق الدم واتجاهه بعد مفاغرة أيضا تكاثر الخلايا الحميمة. يمكن أن تؤدي عملية إعادة تشكيل الأوعية الدموية وعدم ا...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

مفاغرة الأوعية الدموية هي تقنية حاسمة في جراحة إعادة بناء الأوعية الدموية ، حيث يلعب نموذجها الحيواني دورا رئيسيا في دراسة آليات تضيق الأوعية الدموية بعد الجراحة. يقدم هذا النموذج نهجا خاضعا للرقابة للتحقيق في التغيرات المرضية في الأوعية الدموية ، لا سيما في فهم أصل ال?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإفصاح عنه.

Acknowledgements

نود أن نتقدم بخالص الشكر للبروفيسور تشينغبو شو ويانهوا هو من جامعة تشجيانغ على مساعدتهما الفنية القيمة. تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسات الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (أرقام المنح 82070502 و 32171099) ، وبرنامج سيتشوان للعلوم والتكنولوجيا (أرقام المنح 2025HJRC0035 ، 2024NSFSC0709) ، والمشروع المشترك لجامعة لوتشو الجنوبية الغربية الطبية (2024LZXNYDJ021 ، 2024LZXNYDJ014)

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
6-0 Nylon Suture with NeedleNingbo Chenghe240102
12-0 Nylon Suture with NeedleNingbo Lingqiao22064
Electro-heating standing-temperature incubatorShanghai BoxunHPX-9272MBE
Eosin Staining SolutionServicebioG1005-2
Formaldehyde SolutionKESHI50-00-0
Hematoxylin Staining SolutionServicebioG1005-1
Heparin SodiumSolarbioH8060
MAGSCANNER KF-PRO-002KFBIOKFPBL00200107003
Mounting mediumWuxi Jiangyuan220810
OLYMPUS SZ2-ILSTOLYMPUS CORPORATIONSN 9B40828
Paraffin embedding machineYAGUANGYB-7LF
Phosphate-Buffered SalineSolarbioP1010

References

  1. Haruguchi, H., Teraoka, S. Intimal hyperplasia and hemodynamic factors in arterial bypass and arteriovenous grafts: A review. J Artificial Organs. 6 (4), 227-235 (2003).
  2. Huang, C., et al. Outcome and risk factors of restenosis post percutaneous transluminal angioplasty at juxta-anastomotic of wrist autogenous radial-cephalic arteriovenous fistulas: A retrospective cohort study. Ann Vas Surg. 93, 234-242 (2023).
  3. Pruthi, N., Tyagi, G., Gohil, D. End-to-side microvascular anastomosis on rat femoral vessels using only 2-throw knot interrupted sutures - evaluation of feasibility and patency rates on rat femoral vessels model. World Neurosurg. 148, e145-e150 (2021).
  4. Yücel, H. C., et al. Effectiveness of 1α-25-dihydroxyvitamin d3 active substance on anastomosis safety in the rat femoral artery end-to-end anastomosis experimental model: Macroscopic and histological analyses. J Plastic Reconstruct Aesthetic Surg. 97, 310-319 (2024).
  5. Godden, D. R. P., Little, R., Weston, A., Greenstein, A., Woodwards, R. T. M. Catecholamine sensitivity in the rat femoral artery after microvascular anastomosis. Microsurgery. 20 (5), 217-220 (2000).
  6. Lu, Y., et al. Endothelial ripk1 protects artery bypass graft against arteriosclerosis by regulating smc growth. Sci Adv. 9 (35), e8939(2023).
  7. Ghista, D. N., Kabinejadian, F. Coronary artery bypass grafting hemodynamics and anastomosis design: A biomedical engineering review. Biomed Eng Online. 12 (1), 129(2013).
  8. Surovtsova, I. Effects of compliance mismatch on blood flow in an artery with endovascular prosthesis. J Biomech. 38 (10), 2078-2086 (2005).
  9. Matsuura, S., et al. Effect of drug-coated balloons in treatment of stenosis of the femoral artery and vein bypass graft not responding to plain old balloon angioplasty: A case report. Surg Case Rep. 5 (1), 204(2019).
  10. Funk, S. D., Yurdagul, A., Orr, A. W. Hyperglycemia and endothelial dysfunction in atherosclerosis: Lessons from type 1 diabetes. Int J Vas Medicine. 2012, 1-19 (2012).
  11. Akelina, Y. Ballestín Aeds. Microsurgery 101. , Springer Nature. Switzerland. (2024).
  12. Curaj, A., Zhoujun, W., Staudt, M., Liehn, E. A. Induction of accelerated atherosclerosis in mice: The "wire-injury" model. J Vis Exp. (162), e54571(2020).
  13. Oh, J. G., Ishikawa, K. Experimental models of cardiovascular diseases: Overview. Methods Mol Biol. 1816, 3-14 (2018).
  14. Lipke, E. A., West, J. L. Localized delivery of nitric oxide from hydrogels inhibits neointima formation in a rat carotid balloon injury model. Acta Biomater. 1 (6), 597-606 (2005).
  15. Dong, Z. F., et al. Role of smooth muscle progenitor cells in vascular mechanical injury and repair. Medicine Novel Technol Devices. 16, 100178(2022).
  16. Yau, J. W., Teoh, H., Verma, S. Endothelial cell control of thrombosis. BMC Cardiovasc Disord. 15, 130(2015).
  17. Jia, G., Aroor, A. R., Jia, C., Sowers, J. R. Endothelial cell senescence in aging-related vascular dysfunction. Biochim Biophys Acta. 1865 (7), 1802-1809 (2019).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

218

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved