This work was partially supported by B.G. Negev technology and Linda Powers's contribution.

تمت الموافقة التجارب على الحيوانات من قبل اللجنة الأخلاقية للتجارب الحيوانية في جامعة بن غوريون (IL-39-08-2010). 1. ماوس الدماغ استخراج البروتين <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد 3 أنابيب من 15 مل تحتوي كل منها على 5 مل من محلول ومكان أنابيب رينغر على الجليد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> التضحية الماوس باستخدام التخدير الأيزوفلورين (تنبيه - استخدام غطاء الكيميائية) لمدة 10-20 ثانية تليها خلع عنق الرحم وقطع الرأس على الفور. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة الدماغ من الجمجمة وشطف لبضع ثوان مع حل الجليد الباردة رينغر لمنع تلف أنسجة المخ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> باستخدام شفرة جراحية، فصل المخيخ (CR) والدماغ (BS) من القشرة الأمامية. بعد ذلك، فصل المخيخ من الدماغ وقطع الفص الجبهي (FL) من القشرة الأمامية. إزالة البصلة الشمية من الفص الجبهي. وضع مناطق الدماغ 3 في تعيين 15 مل أنابيب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجانس الأنسجة في كل أنبوب. إضافة الابحل الجليد العش رينغر بارد جدا يحتوي كل أنبوب نفس الحجم وأجهزة الطرد المركزي لمدة 7 دقائق في 800 × ز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة طاف وإضافة 100 ميكرولتر من CHAPS تحلل العازلة لكل أنبوب. تخلط جيدا، عن طريق تمرير الحل عدة مرات (~ 10) عن طريق حقنة 1 مل مع إبرة 21 G، واحتضان على الجليد لمدة 30 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل محتويات كل أنبوب جديد لأنبوب الطرد المركزي الصغيرة وأجهزة الطرد المركزي لمدة 30 دقيقة في 13،000 ز س. نقل طاف لأنبوب الطرد المركزي الصغيرة الجديدة وتحديد تركيز البروتين باستخدام طريقة المحددة سابقا. تخزين مستخلصات البروتين في aliquots من 10 ميكرولتر في -80 درجة مئوية. </li></ol> 2. TRAP الفحص إعداد الآلات، حلول ردود الفعل، والبروتين الحسابات التخفيف <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد العدد المناسب من وصفت أنابيب الطرد المركزي الصغيرة للبروتين مستخلص التخفيفات ورد فعل العازلة التيلوميراز. أداء جميع pipetting لفي البروتوكول باستخدام نصائح فلتر لمنع التلوث. </li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> ذوبان الجليد الحلول التالية على الجليد: TRAP مزيج رد فعل 10X، TS التمهيدي، وdNTP وعصائر UPW والبروتين (انظر الجدول المواد والكواشف الكواشف لتركيزات). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تمييع الحل لاستخراج البروتين إلى تركيز النهائي من 1 ميكروغرام / ميكرولتر باستخدام المياه فائقة نقية (UPW). </li></ol> 3. التيلوميراز رد الفعل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد مزيج رد فعل التيلوميراز بإضافة ما يلي إلى أنبوب الطرد المركزي الصغيرة: 2 ميكرولتر مزيج TRAP (10X)، 1 ميكرولتر TS التمهيدي (0.1 ميكروغرام)، 1 ميكرولتر dNTPs (10 ملم) و 15 ميكرولتر UPW. لعينات متعددة، ومضاعفة حجم المذكورة من قبل عدد من العينات، بالإضافة إلى 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 19 ميكرولتر من مزيج رد فعل على كل أنبوب رد فعل وإضافة 1 ميكرولتر من استخراج البروتين المخفف (1 ميكروغرام البروتينات) إلى كل أنبوب عن الحجم النهائي من 20 ميكرولتر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع أنابيب رد الفعل في 30 ° C حمام الماء المسخن مسبقا لمدة 45 دقيقة. </li></ol> 4. PCR تفاعل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خمسة عشر ميلن قبل نهاية التفاعل التيلوميراز، ذوبان الجليد الحلول التالية: التمهيدي ACX، التيتانيوم طق العازلة، UPW. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد PCR مزيج التفاعل بإضافة ما يلي إلى أنبوب الطرد المركزي الصغيرة: 2.5 ميكرولتر التيتانيوم طق العازلة (10X)، 1 ميكرولتر ACX التمهيدي (0.1 ميكروغرام)، 2 ميكرولتر UPW (1 ميكرولتر عند استخدام IC) و 0.5 ميكرولتر التيتانيوم طق البلمرة (50X). لعينات متعددة، ومضاعفة حجم المذكورة من قبل عدد من العينات زائد 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 6 ميكرولتر من PCR مزيج لكل أنبوب PCR وإضافة وحدة التخزين بالكامل من رد فعل التيلوميراز (20 ميكرولتر) إلى كل أنبوب عن الحجم النهائي من 26 ميكرولتر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج أنابيب PCR إلى الحرارية cycler PCR وتشغيل البرنامج التالي: - 90 ° C - 2 دقيقة. - 94 ° C - 30 ثانية * - 60 ° C - 30 ثانية * - 72 ° C - 45 ثانية * - 72 ° C - 2 دقيقة. متجر المنتجات PCR في -20 درجة مئوية. * = 34 دورات </li></ol> 5. الاغاروز البسيطة-GEل إعداد وعينات التوالي، وجل تلطيخ <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 25 مل عازلة الكهربائي المبرد (TBE) وبقضيب إلى دورق هذا هو 2-4 أضعاف حجم حل العازلة ويرش ببطء في 1.125 غرام من عالية الدقة (HR) مسحوق الاغاروز بينما يحرك الحل بسرعة . إزالة شريط ضجة، وتغطي الدورق مع غلاف بلاستيكي وبيرس في حفرة صغيرة للتهوية. تسخين كوب في الميكروويف على &quot;منخفضة&quot; السلطة لمدة 3 دقائق ومن ثم التبديل إلى السلطة &quot;عالية&quot; وتسخين الحل في نبضات قصيرة مع الحرص على عدم التسبب في إراقة. لاحظ أنه عند الرغوة التي تم إنشاؤها عن طريق التسخين تصبح فقاعات كبيرة ويختفي بعد بضع ثوان، والاغاروز جاهز. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يلقي هلام إلى جهاز الأفقي مصغرة هلام، هلام بعد يتصلب في درجة حرارة الغرفة تسمح هلام البرد لمدة 20 دقيقة في 4 درجات مئوية قبل الاستخدام. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحميل كل حارة مع 25 ميكرولتر من العينة TRAP (20 ميكرولتر TRAP المنتجات PCR و 5 ميكرولتر 6X صبغ هلام التحميل) وتعمل في 110 V لمدة 3 ساعة في غرفة باردة 4 درجات مئوية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحضير حمض النووي 3X وصمة عار الحل تعمل عن طريق إضافة 15 ميكرولتر 10،000x-نوكليك حمض صمة عار، محلول المخزون إلى 50 مل ماء مقطر مزدوجة (DDW) مع 0.1 M كلوريد الصوديوم (0.29 ز). وصمة عار في هلام لمدة 20 دقيقة مع اهتزاز لطيف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الأشعة فوق البنفسجية مع نقل transilluminator 302 نانومتر الطول الموجي لعرض أشرطة DNA TRAP سلم. </li></ol>

<ol>
	<li>Urquidi, V., Tarin, D., Goodison, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+telomerase+in+cell+senescence+and+oncogenesis.">Role of telomerase in cell senescence and oncogenesis.</a> Annu Rev Med. 51, 65-79 (2000).</li><li>Cong, Y., Shay, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Actions+of+human+telomerase+beyond+telomeres.">Actions of human telomerase beyond telomeres.</a> Cell Res. 18, 725-732 (2008).</li><li>Tichon, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oxidative+stress+protection+by+novel+telomerase+activators+in+mesenchymal+stem+cells+derived+from+healthy+and+diseased+individuals.">Oxidative stress protection by novel telomerase activators in mesenchymal stem cells derived from healthy and diseased individuals.</a> Curr.Mol. Med. 13, 1010-1022 (2013).</li><li>Lannilli, F., Zalfa, F., Gartner, A., Bagni, C., Dotti, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytoplasmic+TERT+associates+to+RNA+granules+in+fully+mature+neurons:+Role+in+the+translational+control+of+the+cell+cycle+inhibitor+p15INK4B.">Cytoplasmic TERT associates to RNA granules in fully mature neurons: Role in the translational control of the cell cycle inhibitor p15INK4B.</a> PloS one. 8, e66602 (2013).</li><li>De Jesus, B. B., Blasco, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potential+of+telomerase+activation+in+extending+health+span+and+logevity.">Potential of telomerase activation in extending health span and logevity.</a> Curr opinion in Cell Biology. 24, 1-5 (2012).</li><li>Blackburn, E., Collins, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Telomerase:+An+RNP+enzyme+synthesizes+DNA.">Telomerase: An RNP enzyme synthesizes DNA.</a> Cold Spring Harb Perspect Biol. 3, 1-9 (2011).</li><li>Klapper, W., Shin, T., Mattson, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+regulation+of+telomerase+activity+and+TERT+expression+during+brain+development+in+mice.">Differential regulation of telomerase activity and TERT expression during brain development in mice.</a> J. Neurosci. Res. 64, 252-260 (2001).</li><li>Caporaso, G. L., Lim, D. A., Alvarez-Buylla, A., Chao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Telomerase+activity+in+the+subventricular+zone+of+adult+mice.">Telomerase activity in the subventricular zone of adult mice.</a> Mol. Cell Neurosci. 23, 693-702 (2003).</li><li>Eitan, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+Telomerase-increasing+compound+in+mouse+brain+delays+the+onset+of+amyotrophic+lateral+sclerosis.">Novel Telomerase-increasing compound in mouse brain delays the onset of amyotrophic lateral sclerosis.</a> EMBO Mol. Med. 4, 313-329 (2012).</li><li>Kim, N. W., Wu, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advances+in+quantification+and+characterization+of+telomerase+activity+by+the+telomeric+repat+amplification+protocol+(TRAP).">Advances in quantification and characterization of telomerase activity by the telomeric repat amplification protocol (TRAP).</a> Nuc. Acid Res. 25, 2595-2597 (1997).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

تحليل النشاط التيلوميراز في مخ الفأر عن طريق فحص TRAP يتكون من 4 خطوات رئيسية: 1) استخراج البروتينات من مناطق معينة من أنسجة المخ 2) TS استطالة التمهيدي من التيلوميراز - رد فعل التيلوميراز 3) التضخيم من منتجات التفاعل التيلوميراز بواسطة PCR 4 ) فصل المنتجات PCR باستخدام عالية ا?...

التيلوميراز هو بروتين نووي ريبوزي تتألف من التيلوميراز الناسخ العكسي (TERT)، الوحيدات الحفاز تيلوميراز، ومكون RNA (TERC). دور الكنسي تيلوميراز هو الحفاظ على طول التيلوميرات السليم للطريق إضافة سلاسل متكررة (TTAGGG) إلى نهايات الكروموسومات، وبالتالي تعزيز النزاهة الجينومية، وانتشار الخلايا 1. ونسبت أدوار إضافية لTERT في الخلايا، أي أنه يمنح مقاومة لموت الخلايا المبرمج الناجمة عن مختلف عامل ضار 2، يحمي الخلايا الجذعية الوسيطة الإنسان من الإجهاد التأكسدي 3، ويلعب دورا المؤيدة للبقاء في الخلايا العصبية متباينة بالكامل من قبل ارتباطه إلى TIA1 RNA إيجابي حبيبات 4. وأعرب عن TERT وتنشط بشكل رئيسي في الخلايا الجسدية وتقسيم في معظم أنواع السرطان، في حين يتم تنظيم مستويات التعبير والنشاط بإحكام انزيم في الخلايا غير تقسيم 5،6. وقد أظهرت الدراسات أن في صodent الدماغ، ويصبح النشاط التيلوميراز لا يمكن الكشف عنها من قبل يوم 10 بعد الولادة، بينما يتم الحفاظ TERT مرنا في المستويات الدنيا في مرحلة البلوغ 7. وأظهرت دراسات أخرى التيلوميراز النشاط داخل المنطقة البطيني الفرعية الكبار، البصلة الشمية، والحصين، والمخيخ والقشرة الكبار 8. أثبتنا مؤخرا أن المركبات الجديدة التي تزيد التعبير التيلوميراز والنشاط في الدماغ والعمود الفقري الحبال المبذولة آثار اعصاب في N-ميثيل-D-اسبارتاتي (NMDA) - الفئران المحقونة، أخرت ظهور وتطور مرض التصلب الجانبي الضموري في SOD1 المعدلة وراثيا زاد الفئران وبقاء الخلايا العصبية الحركية في النخاع الشوكي من هذه الفئران 9. إلى فهم كامل للدور الموالي للبقاء تيلوميراز في الخلايا العصبية في الدماغ و، فمن الضروري لتطوير فحص بسيط وسريع نسبيا حساسة للكشف عن النشاط التيلوميراز في مناطق مختلفة من الدماغ. ص الكروموسوماتبروتوكول التضخيم EPEAT (TRAP) هو فحص حساسية معروفة الجمع بين النشاط الكنسي التيلوميراز وتفاعل البلمرة المتسلسل (PCR). تستخدم ACX المسمى 32 P لdCTP لكشف - في هذا الاختبار، التيلوميراز يضيف TTAGGG يكرر إلى الركيزة التيلوميراز (TS التمهيدي) قليل النوكليوتيد، تليها PCR التضخيم الذي يولد قاعدة 6 أزواج (بي بي) سلم DNA باستخدام TS العكسي التمهيدي. كمية قليلة من المنتجات PCR. يتم حل سلم الحمض النووي عن طريق التسلسل هلام بولي أكريلاميد الكهربائي (PAGE). كل من شدة العصابات DNA وطول سلم DNA تعكس كمية جزيئات أنزيم نشطة وprocessivity على التوالي 10. هذا الاختبار التقليدي يحمل بعض الصعوبات الرئيسية: خطر التعرض للمواد المشعة، كبيرة ويصعب التعامل PAGE التسلسل واستهلاك الوقت من هلام على التوالي وتعرض الفيلم المنتج المشع (بين عشية وضحاها في كل الحالات). </p&gt; هذا البروتوكول يوفر تحسين الاغاروز مصغرة هلام الفحص القائمة على غير المشعة. يتم حل BP سلم DNA 6 باستخدام 4.5٪ عالية الدقة الاغاروز جل ويتحقق الكشف يستخدم حساسة للغاية وصمة عار الحمض النووي. الجمع بين استخدام عالية الدقة الاغاروز مصغرة هلام وحساسة وصمة عار الحمض النووي يوفر سهولة التعامل مع الفحص، ويزيل خطر التعرض للنشاط الإشعاعي وتقصير كبير في مدة الفحص الشاملة من 3 أيام إلى عدة ساعات.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1102">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:83px;">Company</td>
			<td style="width:143px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:628px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="49">
			<td height="49" style="height:49px;width:251px;">TRAP Mix (X10)</td>
			<td style="width:83px;"></td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:628px;">Made manually, mix the following in UPW: 630mM KCl, 200mM Tris-HCl pH8.2, 10mM EDTA, 15mM MgCl2, 1mg/ml BSA, 0.5% TWEEN (purchased from sigma). Aliquots are freezed&#160; in -20 C.</td>
		</tr>
		<tr height="41">
			<td height="41" style="height:41px;width:251px;">Ringer&#39;s solution</td>
			<td style="width:83px;"></td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:628px;">Made manually, mix the following in DDW: 124mM NaCl, 3mM KCl, 1.25mM NaH2PO4*H2O, 2mM MgSO4, 26mM NaHCO3, 1.802 g/L D-(+)-glucose anhydrous.</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:251px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:83px;">Minrad INC.</td>
			<td style="width:143px;">NDC 60307-110-10</td>
			<td style="width:628px;">Handle with care in a chemical hood</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">dNTP&#39;s 10 mM</td>
			<td style="width:83px;">Sigma</td>
			<td style="width:143px;">D7295</td>
			<td style="width:628px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:251px;">TS primer (5&#39;-AATCCGTCGAGCAGAGTT-3&#39;)</td>
			<td style="width:83px;">Sigma</td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:628px;">DNA oligos orderd in DRY format and UPW added according to requierd concentration</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:251px;">ACX primer (5&#39;-GCGCGGCTTACCCTTACCCTTACCCTAACC-3&#39;)</td>
			<td style="width:83px;">Sigma</td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:628px;">DNA oligos orderd in DRY format and UPW added according to requierd concentration</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">Titanium Taq Polymerase/Buffer</td>
			<td style="width:83px;">Clontech</td>
			<td style="width:143px;">S1792/S1793</td>
			<td style="width:628px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">High Resolution agarose</td>
			<td style="width:83px;">Sigma</td>
			<td style="width:143px;">A4718</td>
			<td style="width:628px;">Any high quality high-resolution agarose may be sutible</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">Mini-gel apparatus&#160;</td>
			<td style="width:83px;">Bio-Rad</td>
			<td style="width:143px;">170-4466</td>
			<td style="width:628px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:251px;">Nucleic-acid Stain (GEL-RED)</td>
			<td style="width:83px;">Biotium</td>
			<td style="width:143px;">41003</td>
			<td style="width:628px;"></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:251px;">IC primer (5&#39;-ATCGCTTCTCGGCCTTTT-3&#39;)</td>
			<td style="width:83px;">Sigma</td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td style="width:628px;">DNA oligos orderd in DRY format and UPW added according to requierd concentration</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:251px;">CHAPS lysis buffer</td>
			<td style="width:83px;">Cell Signaling Technology</td>
			<td style="width:143px;">9852S</td>
			<td>Add PMSF (protease inhibitor) to a final concentration of 1mM</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:251px;">Ultra Pure Water (UPW)</td>
			<td style="width:83px;">Biological Industries</td>
			<td style="width:143px;">01-866-1B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="62">
			<td height="62" style="height:62px;width:251px;">CD-1 mice</td>
			<td style="width:83px;">HARLAN Laboratories INC.</td>
			<td style="width:143px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

telomerase activity in the various regions of mouse brain: non-radioactive telomerase repeat amplification protocol (trap) assay

التيلوميراز، وهو بروتين نووي ريبوزي، هو المسؤول عن الحفاظ على طول التيلومير وبالتالي تعزيز النزاهة الجيني، والانتشار، وعمر. بالإضافة إلى ذلك، التيلوميراز يحمي الميتوكوندريا من الاكسدة ويمنح المقاومة لموت الخلايا المبرمج، مما يشير إلى الأهمية المحتملة على قيد الحياة من غير الإنقسامية، خلايا نشطة للغاية مثل الخلايا العصبية. أثبتنا سابقا قدرة تفعيل التيلوميراز جديدة لزيادة النشاط التيلوميراز والتعبير في مختلف المناطق الماوس الدماغ وتحمي الخلايا العصبية الحركية من الاكسدة. هذه النتائج تعزز فكرة أن التيلوميراز تشارك في حماية الخلايا العصبية من الآفات المختلفة. التأكيد على دور التيلوميراز في الدماغ، ونحن هنا مقارنة النشاط تيلوميراز في الذكور والإناث الماوس الدماغ واعتمادها على العمر. TRAP الفحص هو الطريقة القياسية للكشف عن النشاط التيلوميراز في الأنسجة المختلفة أو خطوط الخلايا. نحن هنا لشرح analyجهاز الأمن والمخابرات النشاط التيلوميراز في ثلاث مناطق من الدماغ الماوس عن طريق غير تغيير طبيعة استخراج البروتين باستخدام CHAPS الاحتياطي تحلل تليها تعديل TRAP الفحص القياسية. في هذا 2 خطوة الفحص، التيلوميراز الذاتية يستطيل ركيزة التيلوميراز محددة (TS التمهيدي) وذلك بإضافة 6 يكرر TTAGGG مضت (التيلوميراز رد فعل). وتتضخم المنتجات رد فعل التيلوميراز عن طريق تفاعل PCR خلق سلم DNA من 6 الزيادات مضت. يتم إجراء تحليل للسلم DNA بنسبة 4.5٪ عالية الدقة هلام الاغاروز الكهربائي تليها تلطيخ مع حساسة للغاية وصمة عار الحمض النووي. بالمقارنة مع فحص TRAP التقليدية التي تستخدم 32 P المسمى المشعة في dCTP للكشف عن الحمض النووي وبولي أكريلاميد الكهربائي للهلام لحسم سلم الحمض النووي، وهذا البروتوكول يوفر الوقت غير سامة إنقاذ TRAP الفحص لتقييم نشاط التيلوميراز في مخ الفأر، مما يدل على القدرة على كشف الفروق في telomerasنشاط البريد في مختلف المنطقة الماوس الدماغ الإناث والذكور.

أعدت كلها مقتطفات بروتين الخلية من الفص الجبهي (FL)، جذع الدماغ (BS)، والمخيخ (CR)، والمستمدة من 3 CD-1 الإناث و 3 CD-1 الفئران الذكور في الأعمار من 1 و 3 أشهر من العمر ل تعديل مقايسة TRAP و 3 CD-1 الفئران الذكور في سن 2 أشهر من العمر لTRAP فحص الإشعاعي. تم الكشف عن نشاط التيلوميراز في 1 مي?...

Watch this Scientific Journal Video about Telomerase Activity in the Various Regions of Mouse Brain: Non-Radioactive Telomerase Repeat Amplification Protocol TRAP Assay at JoVE.com

Telomerase Activity in the Various Regions of Mouse Brain: Non-Radioactive Telomerase Repeat Amplification Protocol TRAP Assay

Telomerase is expressed in the neonatal brain and also in distinct regions of the adult brain. We present a non-toxic time saving TRAP assay for the analysis of telomerase activity in various regions of the mouse brain and detection of differences in telomerase activity between male and female mouse brains.

نشاط التيلوميراز في مناطق مختلفة من الدماغ ماوس: التيلوميراز غير المشعة كرر بروتوكول التضخيم (TRAP) الفحص

Telomerase, a ribonucleoprotein, is responsible for maintaining the telomere length and therefore promoting genomic integrity, proliferation, and ...

telomerase-activity-various-regions-mouse-brain-non-radioactive

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Telomerase Activity in the Various Regions of Mouse Brain: Non-Radioactive Telomerase Repeat Amplification Protocol (TRAP) Assay

14.6K Views.  Ben-Gurion University of the Negev. Telomerase is expressed in the neonatal brain and also in distinct regions of the adult brain. We present a non-toxic time saving TRAP assay for the analysis of telomerase activity in various regions of the mouse brain and detection of differences in telomerase activity between male and female mouse brains.

Video: Telomerase Activity in the Various Regions of Mouse Brain: Non-Radioactive Telomerase Repeat Amplification Protocol TRAP Assay

The NeuroStar TMS Device: Conducting the FDA Approved Protocol for Treatment of Depression

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic fields. These rapidly alternating fields induce electrical currents within localized, targeted regions of the cortex which are associated with various physiological and functional brain changes.1,2,3
In 2007, O'Reardon et al., utilizing the NeuroStar device, published the results of an industry-sponsored, multisite, randomized, sham-stimulation controlled clinical trial in which 301 patients with major depression, who had previously failed to respond to at least one adequate antidepressant treatment trial, underwent either active or sham TMS over the left dorsolateral prefrontal cortex (DLPFC). The patients, who were medication-free at the time of the study, received TMS five times per week over 4-6 weeks.4
The results demonstrated that a sub-population of patients (those who were relatively less resistant to medication, having failed not more than two good pharmacologic trials) showed a statistically significant improvement on the Montgomery-Asberg Depression Scale (MADRS), the Hamilton Depression Rating Scale (HAMD), and various other outcome measures. In October 2008, supported by these and other similar results5,6,7, Neuronetics obtained the first and only Food and Drug Administration (FDA) approval for the clinical treatment of a specific form of medication-refractory depression using a TMS Therapy device (FDA approval K061053).
In this paper, we will explore the specified FDA approved NeuroStar depression treatment protocol (to be administered only under prescription and by a licensed medical profession in either an in- or outpatient setting).

In this article, we examine the methodology and considerations relevant to the FDA approved depression treatment protocol using the Neuronetics NeuroStar TMS device.

وافق إجراء بروتوكول ادارة الاغذية والعقاقير لعلاج الاكتئاب : جهاز TMS NeuroStar

The Neuronetics NeuroStar Transcranial Magnetic Stimulation (TMS) System is a class II medical device that produces brief duration, pulsed magnetic ...

Purification of Mouse Brain Vessels

In the brain, most of the vascular system consists of a selective barrier, the blood-brain barrier (BBB) that regulates the exchange of molecules and immune cells between the brain and the blood. Moreover, the huge neuronal metabolic demand requires a moment-to-moment regulation of blood flow. Notably, abnormalities of these regulations are etiological hallmarks of most brain pathologies; including glioblastoma, stroke, edema, epilepsy, degenerative diseases (ex: Parkinson&#8217;s disease, Alzheimer&#8217;s disease), brain tumors, as well as inflammatory conditions such as multiple sclerosis, meningitis and sepsis-induced brain dysfunctions. Thus, understanding the signaling events modulating the cerebrovascular physiology is a major challenge. Much insight into the cellular and molecular properties of the various cell types that compose the cerebrovascular system can be gained from primary culture or cell sorting from freshly dissociated brain tissue. However, properties such as cell polarity, morphology and intercellular relationships are not maintained in such preparations. The protocol that we describe here is designed to purify brain vessel fragments, whilst maintaining structural integrity. We show that isolated vessels consist of endothelial cells sealed by tight junctions that are surrounded by a continuous basal lamina. Pericytes, smooth muscle cells as well as the perivascular astrocyte endfeet membranes remain attached to the endothelial layer. Finally, we describe how to perform immunostaining experiments on purified brain vessels.

We describe a protocol allowing the purification of the mouse brain's vascular compartment. Isolated brain vessels include endothelial cells linked by tight junctions and surrounded by a continuous basal lamina, pericytes, vascular smooth muscle cells, as well as perivascular astroglial membranes.

تنقية ماوس سفن الدماغ

In the brain, most of the vascular system consists of a selective barrier, the blood-brain barrier (BBB) that regulates the exchange of molecules and ...

High Resolution Quantitative Synaptic Proteome Profiling of Mouse Brain Regions After Auditory Discrimination Learning

The molecular synaptic mechanisms underlying auditory learning and memory remain largely unknown. Here, the workflow of a proteomic study on auditory discrimination learning in mice is described. In this learning paradigm, mice are trained in a shuttle box Go/NoGo-task to discriminate between rising and falling frequency-modulated tones in order to avoid a mild electric foot-shock. The protocol involves the enrichment of synaptosomes from four brain areas, namely the auditory cortex, frontal cortex, hippocampus, and striatum, at different stages of training. Synaptic protein expression patterns obtained from trained mice are compared to na&#239;ve controls using a proteomic approach. To achieve sufficient analytical depth, samples are fractionated in three different ways prior to mass spectrometry, namely 1D SDS-PAGE/in-gel digestion, in-solution digestion and phospho-peptide enrichment. 
High-resolution proteomic analysis on a mass spectrometer and label-free quantification are used to examine synaptic protein profiles in phospho-peptide-depleted and phospho-peptide-enriched fractions of synaptosomal protein samples. A commercial software package is utilized to reveal proteins and phospho-peptides with significantly regulated relative synaptic abundance levels (trained/na&#239;ve controls). Common and differential regulation modes for the synaptic proteome in the investigated brain regions of mice after training were observed. Subsequently, meta-analyses utilizing several databases are employed to identify underlying cellular functions and biological pathways.

The identification of molecules and pathways controlling synaptic plasticity and memory is still a major challenge in neuroscience. Here, a workflow is described addressing the relative quantification of synaptic proteins supposedly involved in the molecular reorganization of synapses during learning and memory consolidation in an auditory learning paradigm.

عالية الدقة الكمية متشابك بروتيوم من التنميط ماوس مناطق الدماغ بعد السمعية التمييز التعلم

The molecular synaptic mechanisms underlying auditory learning and memory remain largely unknown. Here, the workflow of a proteomic study on auditory ...

High-throughput Analysis of Locomotor Behavior in the Drosophila Island Assay

Advances in next-generation sequencing technologies contribute to the identification of (candidate) disease genes for movement disorders and other neurological diseases at an increasing speed. However, little is known about the molecular mechanisms that underlie these disorders. The genetic, molecular, and behavioral toolbox of Drosophila melanogaster makes this model organism particularly useful to characterize new disease genes and mechanisms in a high-throughput manner. Nevertheless, high-throughput screens require efficient and reliable assays that, ideally, are cost-effective and allow for the automatized quantification of traits relevant to these disorders. The island assay is a cost-effective and easily set-up method to evaluate Drosophila locomotor behavior. In this assay, flies are thrown onto a platform from a fixed height. This induces an innate motor response that enables the flies to escape from the platform within seconds. At present, quantitative analyses of filmed island assays are done manually, which is a laborious undertaking, particularly when performing large screens.
This manuscript describes the &#34;Drosophila Island Assay&#34; and &#34;Island Assay Analysis&#34; algorithms for&#160;high-throughput, automated data processing and quantification of island assay data. In the setup, a simple webcam connected to a laptop collects an image series of the platform while the assay is performed. The &#34;Drosophila Island Assay&#34; algorithm developed for the open-source software Fiji processes these image series and quantifies, for each experimental condition, the number of flies on the platform over time. The &#34;Island Assay Analysis&#34; script, compatible with the free software R, was developed to automatically process the obtained data and to calculate whether treatments/genotypes are statistically different. This greatly improves the efficiency of the island assay and makes it a powerful readout for basic locomotion and flight behavior. It can thus be applied to large screens investigating fly locomotor ability, Drosophila models of movement disorders, and drug efficacy.

High-throughput Analysis of Locomotor Behavior in the Drosophila Island Assay

The island assay is a relatively new, cost-effective assay that can be used to evaluate the basic locomotor behavior of Drosophila melanogaster. This manuscript describes algorithms for automatic data processing and objective quantification of island assay data, making this assay a sensitive, high-throughput readout for large genetic or pharmacological screens.

تحليل الفائق للسلوك الحركي في مقايسة الجزيرة المورفولوجية

Advances in next-generation sequencing technologies contribute to the identification of (candidate) disease genes for movement disorders and other ...

Use of Synaptic Zinc Histochemistry to Reveal Different Regions and Laminae in the Developing and Adult Brain

Characterization of anatomical and functional brain organization and development requires accurate identification of distinct neural circuits and regions in the immature and adult brain. Here we describe a zinc histochemical staining procedure that reveals differences in staining patterns among different layers and brain regions. Others have utilized this procedure not only to reveal the distribution of zinc-containing neurons and circuits in the brain, but also to successfully delineate areal and laminar boundaries in the developing and adult brain in several species. Here we illustrate this staining procedure with images from developing and adult ferret brains. We reveal a zinc-staining pattern that serves as an anatomical marker of areas and layers, and can be reliably used to distinguish visual cortical areas in the developing and adult visual cortex. The main goal of this protocol is to present a histochemical method that allows the accurate identification of layers and regions in the developing and adult brain where other methods fail to do so. Secondarily, in conjunction with densitometric image analysis, this method allows one to assess the distribution of synaptic zinc to reveal potential changes throughout development. This protocol describes in detail the reagents, tools, and steps necessary to successively stain frozen brain sections. Although this protocol is described using ferret brain tissue, it can easily be adapted for use in rodents, cats, or monkeys as well as in other brain regions.

We describe a histochemical procedure that reveals characteristic laminar and areal zinc staining patterns in different brain regions. The zinc-staining pattern may be used in conjunction with other anatomical markers to reliably distinguish layers and regions in the developing and adult brain.

استخدام هيستوتشيميستري الزنك متشابك للكشف عن مختلف المناطق وعن في الدماغ النامي والكبار

Characterization of anatomical and functional brain organization and development requires accurate identification of distinct neural circuits and regions ...

Large-scale Three-dimensional Imaging of Cellular Organization in the Mouse Neocortex

The mammalian neocortex is composed of many types of excitatory and inhibitory neurons, each with specific electrophysiological and biochemical properties, synaptic connections, and in vivo functions, but their basic functional and anatomical organization from cellular to network scale is poorly understood. Here we describe a method for the three-dimensional imaging of fluorescently-labeled neurons across large areas of the brain for the investigation of the cortical cellular organization. Specific types of neurons are labeled by the injection of fluorescent retrograde neuronal tracers or expression of fluorescent proteins in transgenic mice. Block brain samples, e.g., a hemisphere, are prepared after fixation, made transparent with tissue clearing methods, and subjected to fluorescent immunolabeling of the specific cell types. Large areas are scanned using confocal or two-photon microscopes equipped with large working distance objectives and motorized stages. This method can resolve the periodic organization of the cell type-specific microcolumn functional modules in the mouse neocortex. The procedure can be useful for the study of three-dimensional cellular architecture in the diverse brain areas and other complex tissues.

Here we describe a procedure for tissue clearing, fluorescent labeling, and large-scale imaging of mouse brain tissue which, thereby, enables visualization of the three-dimensional organization of cell types in the neocortex.

تصوير ثلاثي الأبعاد على نطاق واسع من المنظمة الخلوية في اللحاء الجديد الماوس

The mammalian neocortex is composed of many types of excitatory and inhibitory neurons, each with specific electrophysiological and biochemical ...

Localization of the Locus Coeruleus in the Mouse Brain

The locus coeruleus (LC) is a major hub of norepinephrine producing neurons that modulate a number of physiological functions. Structural or functional abnormalities of LC impact several brain regions including cortex, hippocampus, and cerebellum and may contribute to depression, bipolar disorder, anxiety, as well as Parkinson disease and Alzheimer disease. These disorders are often associated with metal misbalance, but the role of metals in LC is only partially understood. Morphologic and functional studies of LC are needed to better understand the human pathologies and contribution of metals. Mice are a widely used experimental model, but the mouse LC is small (~0.3 mm diameter) and hard to identify for a non-expert. Here, we describe a step-by-step immunohistochemistry-based protocol to localize the LC in the mouse brain. Dopamine-&#946;-hydroxylase (DBH), and alternatively, tyrosine hydroxylase (TH), both enzymes highly expressed in the LC, are used as immunohistochemical markers in brain slices. Sections adjacent to LC-containing sections can be used for further analysis, including histology for morphological studies, metabolic testing, as well as metal imaging by X-ray fluorescence microscopy (XFM).

The locus coeruleus is a small cluster of neurons involved in a variety of physiological processes. Here, we describe a protocol to prepare mouse brain sections for studies of proteins and metals in this nucleus.

تعريب كوروليس موقعا في الدماغ الماوس

The locus coeruleus (LC) is a major hub of norepinephrine producing neurons that modulate a number of physiological functions. Structural or functional ...

Quantifying Subcellular Ubiquitin-proteasome Activity in the Rodent Brain

The ubiquitin-proteasome system is a key regulator of protein degradation and a variety of other cellular processes in eukaryotes. In the brain, increases in ubiquitin-proteasome activity are critical for synaptic plasticity and memory formation and aberrant changes in this system are associated with a variety of neurological, neurodegenerative and psychiatric disorders. One of the issues in studying ubiquitin-proteasome functioning in the brain is that it is present in all cellular compartments, in which the protein targets, functional role and mechanisms of regulation can vary widely. As a result, the ability to directly compare brain ubiquitin protein targeting and proteasome catalytic activity in different subcellular compartments within the same animal is critical for fully understanding how the UPS contributes to synaptic plasticity, memory and disease. The method described here allows collection of nuclear, cytoplasmic and crude synaptic fractions from the same rodent (rat) brain, followed by simultaneous quantification of proteasome catalytic activity (indirectly, providing activity of the proteasome core only) and linkage-specific ubiquitin protein tagging. Thus, the method can be used to directly compare subcellular changes in ubiquitin-proteasome activity in different brain regions in the same animal during synaptic plasticity, memory formation and different disease states. This method can also be used to assess the subcellular distribution and function of other proteins within the same animal.

This protocol is designed to efficiently quantify ubiquitin-proteasome system (UPS) activity in different cellular compartments of the rodent brain. Users are able to examine UPS functioning in nuclear, cytoplasmic and synaptic fractions in the same animal, reducing the amount of time and number of animals needed to perform these complex analyses.

قياس النشاط شبه الخلوي يوبيكويتين بروتياسوم في الدماغ القوارض

The ubiquitin-proteasome system is a key regulator of protein degradation and a variety of other cellular processes in eukaryotes. In the brain, increases ...

Collection of Frozen Rodent Brain Regions for Downstream Analyses

As our understanding of neurobiology has progressed, molecular analyses are often performed on small brain areas such as the medial prefrontal cortex (mPFC) or nucleus accumbens. The challenge in this work is to dissect the correct area while preserving the microenvironment to be examined. In this paper, we describe a simple, low-cost method using resources readily available in most labs. This method preserves nucleic acid and proteins by keeping the tissue frozen throughout the process. Brains are cut into 0.5&#8211;1.0 mm sections using a brain matrix and arranged on a frozen glass plate. Landmarks within each section are compared to a reference, such as the Allen Mouse Brain Atlas, and regions are dissected using a cold scalpel or biopsy punch. Tissue is then stored at -80 &#176;C until use. Through this process rat and mouse mPFC, nucleus accumbens, dorsal and ventral hippocampus and other regions have been successfully analyzed using qRT-PCR and Western assays. This method is limited to brain regions that can be identified by clear landmarks.

This procedure describes the collection of discrete frozen brain regions to obtain high-quality protein and RNA using inexpensive and commonly available tools.

مجموعة من مناطق الدماغ القوارض المجمدة لتحليلات المصب

As our understanding of neurobiology has progressed, molecular analyses are often performed on small brain areas such as the medial prefrontal cortex ...

Dissection and Isolation of Murine Glia from Multiple Central Nervous System Regions

The methods presented here demonstrate laboratory procedures for the dissection of four different regions of the central nervous system (CNS) from murine neonates for the isolation of glial subpopulations. The purpose of the procedure is to dissociate microglia, oligodendrocyte progenitor cells (OPCs), and astrocytes from cortical, cerebellar, brainstem, and spinal cord tissue to facilitate further in vitro analysis. The CNS region isolation procedures allow for the determination of regional heterogeneity among glia in multiple cell culture systems. Rapid CNS region isolation is performed, followed by the mechanical removal of meninges to prevent meningeal cell contamination of glia. This protocol combines gentle tissue dissociation and plating on a specified matrix designed to preserve cell integrity and adherence. Isolating mixed glia from multiple CNS regions provides a comprehensive analysis of potentially heterogenous glia while maximizing the use of individual experimental animals. Additionally, following dissociation of regional tissue, mixed glia are further divided into multiple cell types including microglia, OPCs, and astrocytes for use in either single cell type, cell culture plate inserts, or co-culture systems. Overall, the demonstrated techniques provide a comprehensive protocol of broad applicability for careful dissection of four individual CNS regions from murine neonates and includes methods for the isolation of three individual glia cell types to examine regional heterogeneity in any number of in vitro cell culture systems or assays.

Here we present a protocol for in vitro isolation of multiple glial cell populations from a mouse CNS. This method allows for the segregation of regional microglia, oligodendrocyte precursor cells, and astrocytes to study the phenotypes of each in a variety of culture systems.

تشريح وعزل الفئران الدبقية من مناطق الجهاز العصبي المركزي المتعددة

The methods presented here demonstrate laboratory procedures for the dissection of four different regions of the central nervous system (CNS) from murine ...