JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

实验数据的可视化已成为展示结果给科学界的一个关键因素。越来越多的胚胎活延时录制的产生有助于复杂的发育过程中更好地介绍和了解。该协议是一步一步的通过枫蛋白在斑马鱼光转化指南细胞标记。

摘要

脊椎动物palatogenesis是一个非常精心设计和复杂的发展过程,它涉及颅神经嵴(CNC)细胞,收敛性和扩展面部日珥,以及颅面骨骼成熟的迁移。研究颅神经嵴向斑马鱼口感的特定区域一个SOX10的贡献:生成枫转基因斑马鱼线。 SOX10提供枫报告蛋白的谱系限制性的神经嵴,从而使细胞标记更精确的处理比传统的染料或报告mRNA注射。枫是光转换蛋白,由绿色变为红色光激活后,使人们有可能跟随细胞精确。该SOX10:转基因枫线被用来执行谱系分析,划定数控细胞群产生上颌下颌与元素,并说明同源性面部日珥到脊椎动物。本协议描述了一步s到产生SOX10的生存时间推移视频:枫斑马鱼胚胎。筛窦板的发展将成为一个实际的例子。这个协议可以应用于制作转基因斑马鱼任何枫或类似photoconvertible报告蛋白的时间推移共聚焦记录。此外,它可以被用来捕捉颅面结构在斑马鱼突变体不仅正常,而且还发育异常。

引言

口面裂代表了最普遍的颅面畸形,与1/700-1,000分娩的影响1。早期胚胎颅面部发育受阻可导致形成唇腭裂(CL / P)的。虽然原因综合征型唇裂已经在很大程度上表明,中颜面部的clefting的非综合征形式的遗传和表观遗传基础仍需要发现2-4。为了了解这些畸形的病因和发病机制,有必要阐明颅面结构的细胞基础上的发展。

在所有的脊椎动物物种颅神经嵴细胞(CNCC)从背神经管迁移到填充咽弓,这将有助于形成颜面部结构。早期胚胎神经嵴发育受阻可导致形成颅面畸形包括CL / P 5-7。

在广告DITION以斑马鱼和哺乳动物颅面部发育(CNCCs位于同源区域)之间的结构相似性,基因调控网络是高度保守的。还已经表明,CNCCs开发在脊椎动物物种和斑马鱼8之间以相同的方式,使斑马鱼的强大有机体为CL / P的发育和遗传基础的研究它有许多优点,包括体积小,快速,前宫内胚胎发育,以及高繁殖率。此外,胚胎是光学透明的,使得它适合于观察的显微镜9根据复杂的发育事件。这是一个理想的动物模型进行迁移和颅神经嵴细胞分化的研究。

枫转基因模型5:扩大先前发表的作品8,10,11,国家会议中心的迁徙模式是使用SOX10中详细描述。枫是一个照片兑换蛋白TU从绿色到红色RNS光活化后,使之能够追踪CNCCs精确。在此变换的肽骨架被裂解,这表明转化是稳定的,这意味着细胞可以被跟踪到其最终目的地12。标记下SOX10的转录调控枫转基因株系表明,脊椎动物味觉和斑马鱼筛片是同源融合双侧上颌骨突起(MXP)的额鼻突出(FNP),而形成的Y字型融合缝之间的相似种。

在其他应用中,SOX10:枫转基因斑马鱼模型被用来生成斑马鱼胚胎的视频在不同的发育阶段,以显示形成的正常和异常颅面结构。细胞的特定群体的光转化使得能够跟踪他们的发展。使用这种方法的方法来创建开发craniofac的实时成像IAL结构在斑马鱼被引入,因此很容易直观地展现这个复杂的发展过程。

该协议旨在共享使用筛窦板的SOX10的正常发展产生这些视频的经验:枫转基因斑马鱼作为一个例子。此协议可进一步应用于制造从颅神经嵴细胞在斑马鱼产生的任何结构的时间推移录像。

研究方案

1。胚胎收集的光转化

  1. 设置至少十对SOX10的:晚上5至下午6时枫转基因斑马鱼。
  2. 第二天早上,拉分频器和收集中午前后鸡蛋。他们转移到培养皿中,并把它们放到28.5℃培养箱。
  3. 在大约24小时受精后,通过去除死胚清洁的培养皿。检查是否使用了光场显微镜和任何荧光显微镜与增强型绿色荧光蛋白(EGFP)过滤胚胎13的发展阶段。枫将是可见的,通过这个过滤器。
  4. 当胚胎达到60 HPF转移5明亮的荧光的胚胎成一个单独的培养皿中,并在必要时dechorionate他们。

2。安装胚胎的光转化的

  1. 使用普通荧光显微镜安装胚胎。安装在激光共聚焦显微镜的胚胎是非常有挑战性的。
  2. 使用支架ARD E3水或使用下面的食谱准备新鲜E3:
    添加每升蒸馏水DH 2 O以下添加以下做出1X E3L:
    0.292克5.0 mM氯化钠
    0.013克0.17MM氯化钾
    0.044克0.33MM 氯化钙 (干燥剂,96%,ACS试剂)
    0.081克0.33毫米硫酸镁4(anhydrated)
    可选:添加200微升0.05%亚甲蓝到1X E3作为杀真菌剂,搅拌。
    介质保持在室温下放置1周。
  3. 使用标准的三卡因或使用下面的食谱准备三卡因:
    5升0.2%三卡因混合下列成分:
    45毫升三 - 氯(1M pH9.5的)
    5 LH 2 O
    10克三卡因
  4. 准备“电影果汁”(50毫升E3,0.015%三卡因溶液),加入3.75毫升0.2%三卡因至46.25毫升E3。
  5. 通过混合46.25毫升E3水在一个50毫升玻璃烧瓶46.35毫克低熔点(LMP)琼脂糖制备琼脂糖和由微波溶解的固体颗粒。然后加3.73毫升0.2%三卡因琼脂糖,把琼脂糖玻璃烧瓶至50℃水浴中,直到使用。

3。准备和胚胎的安装

  1. 麻醉胚胎与步骤1.1.2和转移胚胎到腔幻灯片制作E3/0.015%三卡因溶液。
  2. 吸收所有多余的E3与纸巾及认沽琼脂糖到胚胎。
  3. 位置胚胎完全与背微加载的提示。确保在整个胚胎不浮于琼脂糖的顶部,但整个身体向下推。然后倒入E3/0.015%三卡因溶液在琼脂糖嵌入式胚胎,直到腔被完全充满液体。

4。调整软件设置上的共聚焦显微镜

  1. 使用20X空气浸入式物镜(数值孔径0.75;针孔大小20)为重点的胚胎。然后按下显微镜L100光按钮并选择软件的渠道。打开图标查看/收购controls/A1settings与集团公司k是共聚焦设置按钮。接下来,单击“自动”,然后再次关闭该窗口之前选择以下途径:
    CH1:DAPI通道403.4纳米(可用于350-410纳米之间的波长)
    CH2:488.0纳米
    CH3:561.9纳米

5。光转化

  1. 关闭通道1和3,然后点击删除按钮联锁和扫描之前打开通道2。
  2. 专注于感兴趣的光转化,细胞是最好的开始1frame/sec和高压(HV)200,然后往上走在帧/秒,并降低相应的高压,直至达到1/32帧/秒和HV左右完成100-120,根据背景噪声。
  3. 当胚胎在焦点上,看在屏幕的右侧边缘,抓住绿色边缘,使其更小,因此对于光转化,然后右击鼠标适合感兴趣的区域。越小越好,因为光转化为不可逆的。
  4. 打开帧/秒,以1和HV 200和打扫描。光转化的区域的放大图像现在是可见的。
  5. Photoconvert细胞通过打开通道1(403.4纳米)。暴露在photoconverting激光随时随地从5-60秒,这取决于区域的大小,直到通过GFP的通道看到绿枫几乎是缺席的。
  6. 当绿枫信号几乎不存在,请关闭通道1。打开通道2和3上。然后单击右侧窗口上A1上的扫描区场和打“回归原始大小”来检查,如果需要的细胞进行光转换。

6。制作一个Z堆栈

  1. 查找图标菜单栏中“捕捉Z系列'和启动之前设置Z堆栈的上限和下限。设置的LUT。

7。软件设置定时

  1. 去A1Simple界面框中,勾选以下设置:
    1/32帧/秒
    大小1024
    平均4个或8倍速取决于Z-堆栈具有要采取的一个循环的数目
  2. 转到:查看/采集控制/ ND序列的获取和设置时间范围(8〜30分钟),连续单击,然后单击Z堆栈。之前,设置边框作为测试,并开始电影。
  3. 不断增加E3/0.015%三卡因液腔滑全天。到了晚上,完全填补了腔。这将持续到第二天早上。
  4. 第二天早上,笔芯E3/0.015%三卡因溶液,并检查胚胎是否还活着。荧光的损失表示死亡。继续笔芯,并检查了一整天。
  5. 当结构已经完成形成,或胚胎已经死亡,完成电影。

8。后期制作加工

  1. 点击工具栏中“显示最大密度投影”,然后用鼠标右键单击该图像,并创建新的文档。视频现在是在可能的最佳质量可见。去删除不需要的框架和调整的LUT。最后保存为。AVI。这种格式将被罚款的Windows。对于Mac下载软件TØ转换为。或MOV,WMV。

结果

在SOX10:枫转基因株系,迁徙,后迁徙CNCCs被标记荧光绿色。国家会议中心的细胞标记绿色荧光枫复述内源性SOX10表达5。

在其他应用中,这种动物模型被用来更好地可视化中集依赖颅面结构的发展。具体的结构,也颅面畸形的病理发展,特别是唇腭裂的正常发育已被抓获。已经产生了一系列的斑马鱼的生存时间推移录像在不同的发育时间点。

作为...

讨论

这里会显示在斑马鱼模型颅面部发育的可视化的新方法。的SOX10:枫转基因斑马鱼线已经被成功地用于描述中集的详细的迁移模式被用来作为模式生物5。

以前的研究已经用毛地标,如眼靶细胞,并依赖于枫的mRNA注射,光转化试验或笼荧光葡聚糖光转化为10,11,14,15红袜:相比于这10枫转基因株系具有很多优点方法。神经嵴细胞已经贴有枫,符合一个非常特?...

披露声明

作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

致谢

作者感谢罗伯特Kelsh的好心分享斑马鱼SOX10促进剂。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Sox10:kaede transgenic zebrafish line MGHAvailable via the Liao lab
Petri dishes 100x15 mmBD Falcon351029
Petri dishes 35 mmx10 mmBD Falcon351008
Ultrapure Low melting point (LMP) AgaroseInvitrogen15517022
Lab Tek 2 Chamber SlideSystem LabTek154453
Microloaders 200/pkFisherE5242956003
Nikon A1R Si Confocal Ti seriesNikonNo Catalog number
NIS Elements Software AR3.2 64-bitNikonNo Catalog number

参考文献

  1. . Prevalence at Birth of Cleft Lip With or Without Cleft Palate: Data From the International Perinatal Database of Typical Oral Clefts (IPDTOC). Cleft Palate Craniofac. J. 48 (1), 66-81 (2011).
  2. Dixon, M. J., et al. Cleft lip and palate: understanding genetic and environmental influences. Nat. Rev. Genet. 12 (3), 167-178 (2011).
  3. Mangold, E., Ludwig, K. U., Nothen, M. M. Breakthroughs in the genetics of orofacial clefting. Trends Mol. Med. 17 (12), 725-733 (2011).
  4. Kimmel, C. B., Miller, C. T., Moens, C. B. Specification and morphogenesis of the zebrafish larval head skeleton. Dev. Biol. 233 (2), 239-257 (2001).
  5. Dougherty, M., et al. Embryonic Fate Map of First Pharyngeal Arch Structures in the sox10: kaede Zebrafish Transgenic Model. J. Craniofac. Surg. 23 (5), 1333-1337 (2012).
  6. Trainor, P. A., Krumlauf, R. Hox genes, neural crest cells and branchial arch patterning. Curr. Opin. Cell Biol. 13 (6), 698-705 (2001).
  7. Schilling, T. F., Kimmel, C. B. Segment and cell type lineage restrictions during pharyngeal arch development in the zebrafish embryo. Development. 120 (3), 483-494 (1994).
  8. Swartz, M. E., et al. Examination of a palatogenic gene program in zebrafish. Dev. Dyn. 240 (9), 2204-2220 (2011).
  9. McCollum, C. W., et al. Developmental toxicity screening in zebrafish. Birth Defects Res. C. Embryo Today. 93 (2), 67-114 (2011).
  10. Wada, N., et al. Hedgehog signaling is required for cranial neural crest morphogenesis and chondrogenesis at the midline in the zebrafish skull. Development. 132 (17), 3977-3988 (2005).
  11. Eberhart, J. K., et al. Early Hedgehog signaling from neural to oral epithelium organizes anterior craniofacial development. Development. 133 (6), 1069-1077 (2006).
  12. Ando, R., et al. An optical marker based on the UV-induced green-to-red photoconversion of a fluorescent protein. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 99 (20), 12651-12656 (2002).
  13. Kimmel, C. B., et al. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203 (3), 253-310 (1993).
  14. Kawakami, A., et al. The zebrafish-secreted matrix protein you/scube2 is implicated in long-range regulation of hedgehog signaling. Curr. Biol. 15 (5), 480-488 (2005).
  15. Lombardo, V. A., Sporbert, A., Abdelilah-Seyfried, S. Cell tracking using photoconvertible proteins during zebrafish development. J. Vis. Exp. (67), e4350 (2012).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

79 SOX10

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。