小鼠使用表面垫心电图心肌缺血再灌注损伤的确认

摘要

During murine myocardial ischemia/reperfusion surgery, correct placement of the occluding ligature is typically confirmed by visible observation of myocardial pallor. Herein, a method of electrocardiographically confirming ischemia and reperfusion, to supplement observed myocardial pallor, is demonstrated in male C57Bl/6 mice.

摘要

Many animal models have been established for the study of myocardial remodeling and heart failure due to its status as the number one cause of mortality worldwide. In humans, a pathologic occlusion forms in a coronary artery and reperfusion of that occluded artery is considered essential to maintain viability of the myocardium at risk. Although essential for myocardial recovery, reperfusion of the ischemic myocardium creates its own tissue injury. The physiologic response and healing of an ischemia/reperfusion injury is different from a chronic occlusion injury. Myocardial ischemia/reperfusion injury is gaining recognition as a clinically relevant model for myocardial infarction studies. For this reason, parallel animal models of ischemia/reperfusion are vital in advancing the knowledge base regarding myocardial injury. Typically, ischemia of the mouse heart after left anterior descending (LAD) coronary artery occlusion is confirmed by visible pallor of the myocardium below the occlusion (ligature). However, this offers only a subjective way of confirming correct or consistent ligature placement, as there are multiple major arteries that could cause pallor in different myocardial regions. A method of recording electrocardiographic changes to assess correct ligature placement and resultant ischemia as well as reperfusion, to supplement observed myocardial pallor, would help yield consistent infarct sizes in mouse models. In turn, this would help decrease the number of mice used. Additionally, electrocardiographic changes can continue to be recorded non-invasively in a time-dependent fashion after the surgery. This article will demonstrate a method of electrocardiographically confirming myocardial ischemia and reperfusion in real time.

引言

心脏疾病仍然死亡全世界^1,2的主要原因。不仅是左心室（LV）的最肌肉室，负责从心脏泵血对整个主体^3，它是一个常见的心脏损伤部位心肌梗死后^4。左心室组织死亡往往会导致心脏收缩功能衰竭。心脏疾病的动物模型是当务之急生物医学心血管研究的进步。小鼠C57BL / 6株已用于动物模型的流行选择由于它们的快速繁殖的时间，成本低和易于在遗传改变。心脏疾病的研究大多数小鼠模型手术涉及到左冠状动脉的LAD支闭塞。在LAD有时称为左钝缘^5,6。法援署提供血液到左室前壁和安特罗侧壁。结扎研究的目的是诱导前梗塞，有时延长INT澳劣质和侧壁区^7。

经常使用心肌梗塞研究两个模型包括慢性阻塞心肌梗塞和心肌缺血/再灌注损伤。慢性阻塞是通过手术缝合周围，阻止永久通过LAD血流创建。缺血/再灌注损伤被创建以相同的方式多只用一个短暂的，通常是30-60分钟，局部缺血期。实现短暂缺血，周围LAD咬合缝合关系和一个小的PE-10管，其被平行放置在LAD心脏的心外膜表面上，随后再灌注期，其中管子和封闭缝合被去除，血液是使其再次通过动脉并进入心肌流动。缺血/再灌注手术已被认为是临床相关的因再灌注损伤人体平行梗塞治疗，其中包括舞会的性质PT冠状动脉成形术和动脉支架置入，或冠状动脉旁路。典型地，这些手术期间，在小鼠心脏左心室的缺血是由心肌壁的可见苍白证实。但是，通过简单地不断监测条件下的心电图（ECG）垫进行手术，可在ECG波形观察到明显的变化，从而证实小鼠心肌缺血再灌注损伤。

虽然小鼠心脏在许多方面，包括它的四腔结构类似于人类的心脏，心中也有差异。一个明显的区别是成年小鼠的平均静息心脏速率为600 -每分钟（BPM）700次，而成人人类是^60-100〜8,9 BPM。此外，在小鼠复极化波，J和T，常合并与除极QRS波群作出明确的ST段难以辨别^10。要复杂electrocardiographicall的过程ý确认心肌缺血，它是T波和用作缺血和心肌梗死损伤在人体中的诊断标志物的ST段的抬高，临床上称为STëlevation 米 yocardial 我 nfarction或STEMI。一个人和鼠的波形之间的主要区别是，S波之后紧接着是J-波直接传送到负T波。期间小鼠急性心肌缺血S波减小的幅度，并随后直接由异常的J-波和倒T波^11。 T波似乎没有在小鼠中¹¹来表示复极化的显著一部分。尽管命名和鼠标与人类不同，小鼠心肌缺血再灌注心电图确认是仍然可行和相对简单的。为了简化波形解释的缘故，SJT之间的段被称为ST-segmeNT于此。

发表于2013 STEMI指南推荐小于90分钟¹²患者门到气球时间。这意味着从患者的冠状动脉闭塞的识别的时间帧，直至动脉重新打开应小于90分钟。跳动的心脏不断工作，因此，具有较高的氧化代谢和氧耗³的较高水平。为了提供这一点，毛细血管的网络是可用于每个肌细胞^3。只需要一个心脏跳动数耗尽它的氧气和营养供应。在90分钟的窗口，在一个人的缺血性心脏地区将被封锁接收5400名点附近摇摆心脏跳动的富含氧气的血液的价值。在同样的90分钟的窗口，鼠标将有54000 63000心脏跳动。对鼠缺血/再灌注损伤的实验时间点通常是30分钟和60分钟之间。

发展的重要性ING证实了小鼠模型心肌缺血再灌注的补充方法对心肌缺血/再灌注损伤的研究数据的一致性和可重复性产生深远的影响。目视观察心脏的组织颜色改变目前的做法是不够的作为一个独立的诊断。此外，除去管和缝合之后再灌注不能保证。虽然动脉不再打结，动脉可具有在手术期间持续伤害，并可能成为不可能reperfuse。这将是有益的的心电图变化的记录，以确认再灌注而不是依赖于心肌苍白和发红（红色）的意见。心不显示缺血/再灌注损伤的标记就可以迅速被标记，并就如何继续处理的决定可以由侦查进行。

最后，建立心电图的记录从基线整个日变化Ë缺血再灌注时间允许调查人员继续初次手术后监测心脏。目前调查的手术完成后尽快忘记的心脏。心电图是深入了解手术后在心肌小时发生至数天变化的简单方法。心电图记录的时间点，手术后可以揭示表明持续或恶化的组织死亡后发Q波。然而，为了有效地测厚仪新的或恶化的心电图标记，一个基线ECG必须可用于比较。

该协议将展示如何准备，获取和解读心电图，确认使用8小鼠心脏缺血再灌注 - 19周龄雄性C57BL / 6小鼠。

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研究方案

在动物身上进行的所有的外科手术应根据指南的护理实验动物¹³或其他适当的伦理准则的使用和进行。协议应在继续之前，与相应的机构的动物福利委员会的批准。

1.准备心电图

注:在开始之前，不要包括手套，眼镜和一个干净的实验室外套或一次性的礼服个人防护装备。

1. 使用非酒精和非漂白基于除污溶液清洁所述ECG垫。轻轻使用微妙的任务抹布擦拭掉多余的溶液，以确保电极焊盘不被损坏。
2. 如果ECG垫具有加热功能，使用它。麻醉小鼠倾向于迅速失温。加热垫40-42℃，在整个手术¹⁴保持正常体温的体温为37℃。显示器机身脾气ATURE使用直肠体温计。必要时调整垫温度保持体温〜37℃。
3. 由于大部分开胸用鼠标趴在它的后面（平卧）执行，确保切换翻转的"仰卧"设置。许多心电图垫具有的功能俯卧和仰卧位置之间切换。若未选择正确的方向可能会导致心电图事件的不实陈述。
4. 麻醉，用5％异氟醚吸入和1升/分钟氧气鼠标。一旦小鼠被麻醉，转印鼠标心电图垫配备有麻醉鼻锥和减少异氟烷以2％和1升/分钟的氧气。确认通过确保鼠标在鼠标的脚用钳子捏不恰当的反应麻醉。
5. 敷眼润滑药膏薄薄一层在老鼠的眼睛，以防止干燥和角膜损害，同时麻醉。
6. 清洁鼠标的爪子用湿擦拭以去除所有可见的床上用品可能卡住的爪子或可以与电脉冲从爪子到ECG垫的传输造成干扰。干爪子带有擦拭。
7. 应用高导电电解质凝胶的少量（比美元硬币稍小），以每个在ECG垫的四个金属电极。
   注意:一定要只适用凝胶少量的太多凝胶使得它难以自抑的爪子用胶布垫。此外，爪子很可能在手术过程中滑出克制的，如果他们申请磁带之前湿润。
8. 在仰卧位鼠标，可以使用明确医用胶带每个爪子抑制到其相应的电极（ 图1）。首先按每个爪子到一块胶布，然后坚持的磁带心电图垫。确保每个约束爪是与电解质凝胶和电极接触。

2.获取心电图

1. 根据用于心电采集，conf下的设备上igure机器，使得ECG波形可以实时可视化。用于使用超声机器上的生理监测设定心电图记录，一个活B模式图像将具有沿屏幕的底部运行ECG波形。
   注意:请参阅个人计算机用户指南，确定如何最好地配置设备。
2. 通过按压超声机器上的B模式键或其他ECG记录设备的等效使心电波形的实时可视化。
   1. 调整分辨率，占幅度的差异。如果Q波的R波或槽（谷）的峰值都出了视觉帧的，调整分辨率，直到波形的整个高度可被观察到。
      注:这可以在生理设置选项卡下的超声心动图检查机器上完成。点击增加或减少箭头，直到整个波形是可见的。
3. 任何时候，一个图像是要OBTained，清除工具的心电图垫。心电图记录用镊子或手指触摸时鼠标会扰乱波形。确保鼠标仍然是和原始心电图上垫记录任何心电图之前。
4. 鼠标进行任何手术切口之前，请使用本机的"记录"或"存储"功能。此图片稍后将作为基准进行比较。

3，手术过程及心电记录

1. 开始之前注射麻醉小鼠具有镇痛（丁丙诺啡，1.5微克，腹腔内）。缺血/再灌注外科手术的细节也可以在其他地方⁵找到。
2. 周围的手术部位去除毛发化学或机械和消毒用优碘溶液的区域。使用手术刀，使平行于食道和气管纵切口。轻轻移动到切口的每一侧的淋巴结，直到薄组织覆盖气管是裸露。使用镊子，轻轻直到气管的白软骨环是可见组织中分离出来。
   注:我们通常使用奈尔脱毛露。洗剂被施加于手术部位为约1分钟。奈尔然后彻底用生理盐水或水洗掉。此方法是优选的在我们的实验室，因为高分辨率超声心动图（其可检测毛囊）的手术前和手术后进行。但是，需注意避开敏感区域，如生殖器，然后彻底冲洗掉奈尔以避免潜在的皮肤灼伤。
3. 迅速从鼻锥去除老鼠的鼻子和插入通风管插入鼠标的嘴，朝喉咙。当通风管的尖端是通过暴露的颈部区域中可见，对准管与气管的开始。轻轻扭动管一边施加上行压力，直到管滑入气管，可从视觉上确认吨至另一侧hrough半透明气管。
4. 确保鼠标在插管过程中保持麻醉。从插管暂停和鼠标返回到鼻锥是否开始蠢蠢欲动。
5. 使用字符串的循环，通过循环勾鼠标的两颗门牙，并用胶带将字符串结尾的心电图垫稳鼠标的头部，并确保通风管手术过程中不会移动。快速连接的通风管连接到动物呼吸机，并根据鼠标的重量调整通风设置。到位磁带通风管道。
6. 覆盖了鼠标在温生理盐水浸湿纱布暴露气管，以保持组织的干燥。
7. 使用沿着胸骨的左侧手术刀的垂直切口。
8. 使用镊子，轻轻筋膜层从肌肉层分离。小心切割下面的肌肉层不削减可见血管。
9. 使用镊子，抢第三肋并拉动轻轻向上。保持在肋握一只手，用手术剪刀小心切开第三和第四肋骨之间的肋间肌组织。确保肺部没有损坏。
   注意:肺将缩回到胸腔几乎立即胸腔由手术切口凿孔之后由于压力梯度的丧失。等到肺部在继续之前收回。
10. 使用镊子抓，轻轻环绕心脏心包的薄层分开。
11. 插入牵开器或手动使用镊子作为肋拉钩到肋骨移动到一个位置，其中心脏是肋之间可见。
    注意:这是使得其结扎的放置期间重叠右下爪移动鼠标的左下爪子常见的做法。这有助于在心脏定位，以使左心耳，或耳廓，是结扎的放置过程中很容易地看到。请注意，有效的心电图W¯¯而左下爪子熄灭电极aveforms不能获得。出于这个原因，建议该缝合结扎穿过心肌组织，但结紧固前通过后爪返回其电极。
12. 找到LAD视觉，左耳廓下方。迅速插入7-0丝锥形缝合针到心肌足够深入的LAD下通过，但没有那么深穿透LV腔。通过直到有4厘米左右留在缝合结扎的自由（非针）结束缝合丝拉出缝合结扎。
13. 开始绑一个简单的缝合打结。一旦缝合丝的自由端已通过环拉以形成结，暂停。
14. 同时持有钳缝合丝的自由和针端插入PE-10管的约1cm部分形成结下方，上盖的心外膜表面。
15. 如果鼠标的左爪子被超过，返回爪子其亲每个电极。以便在PE-10管缝合到心脏紧结。释放与鼠标所有物理接触，以允许要被记录的ECG。
16. 通过对〜10秒让心电波形循环。目视检查，心电波形和记录波形为"闭塞的时代"。如果T波不振幅1分钟内增加，重新评估结扎的位置。
    1. 如果T波振幅也不会增加，无论是从研究丢弃动物或试图纠正结扎位置。
17. 目视检查心肌的颜色来确认LV缺血变白。
18. 如果心电图改变和心肌颜色变化表明缺血，成双结对周围的PE-10管缝合。
19. 盖打开胸腔用温生理盐水纱布。
20. 记录心电图每5-10分钟的局部缺血期的持续时间。

4.确认再灌注的使用心电图

1. 取出盐水纱布海湾环胸腔和可视化的心脏。
2. 用刀片切割缝合丝的PE-10管上面。一旦结扎切断，去除PE-10管的部分，轻轻取出从心肌缝合结扎。
3. 释放与鼠标所有物理接触，并允许所述ECG波形〜10秒循环。作为记录波形"再灌注的时间。"继续达到所需的实验时间点直到记录ECG波形每次5-10分钟。
4. 根据需要调整变化幅度分辨率。如果T波时不除去在PE-10管材和结扎的改变，再灌注未确认。
   1. 如果T波时不去除管子改变，无论是从研究丢弃动物或试图纠正结扎位置。
5. 目视检查心肌组织回红颜色还确认再灌注。
6. 关闭胸腔用5-0缝合肋间同时施加温和的压力，鼠标的胸部驱逐手术过程中已经进入过剩空气丝线缝合。然后缝合肌肉层，最后皮肤。注:施加压力至胸腔可能不足以疏散空气的胸腔中所有小鼠。因此，应采用疏散的注射器和针头的方法，以确保所有的空气已经被排出。
7. 从电极旋转吸入麻醉关闭和删除鼠标的爪子之前记录的最后一个心电图。增加氧气到2升/分钟，直到鼠标苏醒保持通风。
8. 允许小鼠恢复在恒温控制的环境中， 例如，加热垫或暖培养箱，以避免梗塞变性。根据需要由鼠标鬼脸刻度所指示的治疗小鼠与丁丙诺啡24小时的手术后，然后。
   注意:程序再灌注也详细Xu 等人讨论了^5。

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结果

正常鼠心电图与用于电事件P，Q，R，S，J和T P字母标记显示在图2中是初始心房去极化。 QRS是去极化在心室的浪潮。 J是早期复极T表示异构的复极又称恢复^11。应该指出的是，许多实验室不使用的J形波命名法，而是指SJT段作为ST段^10,15-17。在这里，结果和分析具有代表性和基于关闭40只小鼠的实验观察。大多数小鼠在手术的过程中表现出类似的波...

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讨论

使用心电图改变为确认心肌缺血再灌注补充的方法，确保咬合结扎的准确位置。结扎的位置精度是减少动物之间的数据变化的关键。在小鼠心脏的LAD是一个困难的动脉可视化。因此，补充的视觉与苍白心电图改变将有助于确保结扎并导致组织损伤的正确位置。

自所述ECG垫提供心脏的非侵入性的观点，可以在研究过程中获得的多个心电图。这可以帮助提供更好的理解期间和手?...

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材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Vevo 1100	Fujifilm Visual Sonics		Echocardiography Machine
Mouse Handling Plate	Fujifilm Visual Sonics		Heated ECG plate
Signa-Gel			Highly Conductive Multi-
Electrode Gel	Parker	15-25	Purpose Electrolyte
Transpore Medical Tape	3M	1527-0
PI-Spray II	Pharmaceutical Innovations	NDC 36-2013-25	Cleaning agent for ECG plate
C57Bl6 Mice	The Jackson Laboratory	000664	Male, 8 - 12 wk
IsoThesia-Isoflurane	Henry Schein	NDC 1169-0500-1
Excel	Microsoft
Systane Nighttime Lubricant Eye Ointment	Alcon	65050935
7-0 Perma-Hand Silk Sutures	Ethicon	640.O32
5-0 Perma-Hand Silk Sutures	Ethicon	K809.O32
Surgical Scissors	ROBOZ	RS-5881
Forceps	Fine Science Tools	11052-10
Gauze	Bio Nuclear Diagnostics Inc	DIS-022B
Needle Holder	Fine Science Tools	12565-14
Buprenex CIII	Patterson Veterinary	0-891-9756	Buprenorphine Hydrochloride Analgesic
Betadine	Purdue Products	67618-150-08
Nair	Church and Dwight Co.	NRSL-22339-05