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摘要

后生因素可以与基因程序相互作用, 调节基因表达, 调节 B 细胞功能。结合体外b 细胞刺激、qRT PCR、高通量 rna 序列和 mRNA 序列方法, 可以分析 b 细胞中 miRNA 和基因表达的表观遗传调控。

摘要

抗体应答是通过几个关键的 B 细胞内在的过程来完成的, 包括体细胞变异 (SHM), 类开关 DNA 重组 (CSR) 和血浆细胞分化。近年来, 表观遗传修饰或因素, 如组蛋白脱乙酰和 rna (rna), 已被证明与 B 细胞的遗传程序, 以形成抗体反应, 而表观遗传因素的功能障碍已发现导致自身抗体应答。分析 b 细胞的基因组全 miRNA 和 mRNA 表达对表观遗传调节因子的反应, 对于了解 b 细胞功能和抗体应答的表观遗传调节具有重要意义。在这里, 我们演示了一个协议诱导 b 细胞进行 CSR 和细胞分化, 治疗这些 b 细胞与组蛋白乙酰 (HDAC) 抑制剂 (助), 并分析 mRNA 和 rna 表达。在这个协议, 我们直接分析互补 DNA (cDNA) 序列使用下一代 mrna 测序 (mrna-seq) 和 miRNA 的技术, 测序读取的基因组, 和定量的反向转录 (qRT)-PCR。通过这些方法, 我们已经定义, 在 B 细胞中诱导的 csr 和细胞分化, 人类发展指数, 一个后生的调节器, 选择性地调节 miRNA 和 mRNA 表达, 改变 csr 和细胞分化。

引言

表观遗传标记或因素, 如 DNA 甲基化, 组蛋白后修饰, 编码 rna (包括 rna), 通过改变基因表达1调节细胞功能。表观遗传修饰调节 b 淋巴细胞功能, 如免疫球蛋白类-开关 DNA 重组 (CSR), 体细胞变异 (SHM), 并分化为记忆 b 细胞或血浆细胞, 从而调节抗体和自我抗体响应2,3。CSR 和 SHM 的关键要求激活诱导的胞脱氨酶 (援助, 编码为Aicda), 这是高度诱导 B 细胞响应 t 依赖性和 t 独立抗原4。类交换/hypermutated b 细胞进一步分化成血浆细胞, 其中分泌大量的抗体在时尚严重依赖于 B 淋巴细胞诱导成熟蛋白 1 (Blimp1, 编码为Prdm1)5。B 细胞异常的表观遗传变化可能导致异常的抗体/自身抗体应答, 这会导致过敏反应或自身免疫1,4。了解后生因素, 如 rna, 调节 B 细胞内在基因表达不仅对疫苗的发展很重要, 而且对于揭示潜在的异常抗体/自身免疫反应的机制也是必不可少的。

组蛋白乙酰化和脱乙酰度是由组蛋白乙酰 (HAT) 和组蛋白乙酰 (HDAC) 催化的蛋白组蛋白的赖氨酸残留修饰。这些修改导致染色质的增加或减少的可及性, 并进一步允许或阻止转录因子或蛋白质与 DNA 的结合和基因表达的改变5,6,7,8. HDAC 抑制剂 (HDI) 是一类干扰 HDACs 功能的化合物。在这里, 我们使用 HDI (VPA) 来解决 HDAC 对 B 细胞固有基因表达谱的调节及其机制。

rna 是小的, 编码 rna 大约18到22核苷酸长度是通过几个阶段产生的。miRNA 寄主基因转录和形成发夹主 rna (pri-rna)。它们被出口到细胞质中, 其中 rna 被进一步加工成前体 rna (pre-miRNAs)。最后, 成熟的 rna 是通过 pre-miRNAs 的裂解形成的。rna 识别在其目标基因的 3 "未翻译区域" 中的互补序列6,7。通过后沉默, rna 调节细胞活动, 如增殖, 分化, 和凋亡10,11。由于多个 rna 可以针对同一 mRNA, 而一个单一的 miRNA 可能针对多个基因, 因此重要的是要有一个上下文视图的 miRNA 表达式配置文件, 以了解个人的价值和 rna 的集体效应。rna 已被证明参与 b 细胞的发育和外周分化, 以及 b 细胞阶段特异性分化, 抗体应答, 和自身免疫1,4,9。在 3 "UTR Aicda和Prdm1中, 有几个经过验证或预测的进化保守站点, 可通过 rna8进行攻击。

后生调制, 包括组蛋白后修饰和 rna, 显示一个细胞类型和细胞阶段特异的基因表达调控模式9。在这里, 我们描述的方法, 以确定人的 HDI 介导的 miRNA 和 mRNA 表达, 社会责任, 和血浆细胞分化。其中包括诱导 B 细胞接受 CSR 和细胞分化的协议;用 HDI 治疗 B 细胞;并通过 qRT PCR、miRNA-seq 和 mrna-seq10、11、12、813来分析 miRNA 和 mrna 的表达。

研究方案

该协议遵循圣安东尼奥德克萨斯大学健康科学中心机构动物保育和使用委员会的动物保育准则.

1. 刺激企业社会责任、血浆细胞分化和 HDI 治疗的小鼠 B 细胞

  1. 脾细胞悬浮液的制备 注: 执行除鼠标外的层流罩中的所有步骤安乐死和解剖。
    1. 通过 CO 2 吸入安乐特定的无病原体 C57BL/6J 小鼠 (8-12 周龄)。
    2. 将鼠标放在解剖板上, 腹部朝上。用18口径1.5 英寸的皮下注射针头把所有四英尺的老鼠引脚.
    3. 用70% 乙醇浸泡过的湿巾对皮肤进行消毒.
    4. 使用一组蒸压的外科工具 (镊子和解剖剪刀) 切开胸腔下方的皮肤, 使脾脏可视化 (在腹部左侧, 就在肝脏下方).
    5. 使用另一种无菌钳和剪刀来提取脾脏, 它位于胃的更大的曲率之下, 通过用镊子钳夹脾并用解剖剪刀切断所有的连接组织。确保删除所有连接的组织.
    6. 将脾脏放入含有1000和 #181 的1.5 毫升离心管中; 完全 RPMI1640 培养基 (RPMI 1640 培养基补充10% 热灭活胎小牛血清 (FBS), 2 毫米 l-谷氨酰胺, 100 和 #181; g/毫升青霉素, 100 和 #181; g/毫升链霉素, 0.25 和 #181; g/毫升两性霉素 B, 和50和 #181; M 和 #946;-基).
    7. 将 70 #181; m 细胞过滤器放入一个50毫升的聚丙烯锥形离心管中, 然后将脾脏从离心管上倒入细胞滤网。使用15毫升聚丙烯锥形离心管的尖端, 通过过滤器轻轻地将脾脏捣碎。用15到20毫升的完全介质冲洗细胞过滤器.
    8. 向下旋转 350 x g 的单元格5分钟并丢弃上清.
    9. 取出脾脏细胞悬浮液中的红血球。重细胞颗粒在裂解缓冲液中 (每脾5毫升)。在室温下孵育4分钟, 偶尔摇动, 然后用25毫升完全培养基进行淬火.
    10. 将 350 x g 的单元格向下旋转5分钟, 然后丢弃上清。重1或10毫升的完整培养基中的细胞颗粒。使用例计数可用的单元格.
  2. b 单元格隔离
    注意: 按照制造商和 #39 的指示, 按负选择隔离 B 单元格。非 b 细胞的目标是去除化抗体针对非 b 细胞 (CD4, CD8, CD11b, CD43, CD49b, CD90.2, Ly-6C/G (Gr-1) 和 TER119) 和亲和涂层磁性粒子。
    1. 准备0.25 和 #160; 在无菌8毫升 (5 x 12 mm) 聚苯乙烯圆底管的完整介质中, 1 x 10 75 细胞/毫升的2毫升细胞悬浮液。将正常大鼠血清 (50 和 #181; L/毫升) 添加到样品中.
    2. 添加50和 #181; 与样品的分离鸡尾酒。通过轻轻地移 上下 2-3 次并在室温下孵育10分钟, 将单元格混合在一起.
    3. 添加75和 #181; 将亲和的磁性微粒涂到样品中。混合的混合物, 轻轻移上下2-3 次和孵化2.5 分钟的室温.
    4. 添加完整的 RPMI 1640 介质。混合的细胞, 轻轻移上下 2-3 倍.
    5. 将管 (不带盖子) 放入磁体中, 在室温下孵育2.5 分钟. 将含有未接触 B 细胞的上清液倒入新的15毫升锥形管中.
    6. 使用例和台盼蓝染色对活细胞进行计数。通过流式细胞仪分析 b 细胞表面标记物, 如 B220 和 CD19, 评估 b 细胞的纯度.
  3. b 细胞刺激和 HDI 治疗
    1. 重完全 RPMI 1640 培养基中的纯化 b 细胞, 最终浓度为 0.3 x 10 6 细胞/毫升.
    2. 使用48孔细胞培养板进行细胞培养。对于每个井, 添加1毫升纯化 B 细胞悬浮液 (0.3 x 10 6 细胞/毫升), LPS (3 和 #181; g/毫升最终浓度) 从 大肠杆菌 , IL-4 (5 ng/毫升最终浓度), 和0或500和 #181; M HDI (戊酸;VPA).
    3. 孵育37和 #176 的细胞; C 和 5% CO 2 60 h 用于 qRT PCR 和高通量 mRNA 和 miRNA 序列分析, 或 96 h 用于流式细胞仪分析.
  4. 流式细胞仪分析 CSR 和等离子体细胞分化
      在培养了96小时后, 通过多次移单元格, 将每一个井中的细胞分离出来。将细胞悬浮液转化为1.5 毫升的离心管。用台式离心机将电池在 350 x g 上旋转5分钟, 丢弃上清液.
    1. 重100和 #181 的单元格 (HBSS), 包含 1% BSA 和 0.5 ng/ml 荧光素 ( FITC )- 共轭山羊抗 - 小鼠 IgM 抗体 (Ab) , 0.2 ng/ml 复方 (APC)-共轭鼠 anti-mouse IgG1单克隆抗体, 0.2 ng/ml 藻 (PE)-共轭大鼠 anti-mouse B220 抗体, 0.2 ng/毫升 PE-Cy7-conjugated 鼠 anti-mouse CD138 抗体, 2 ng/ml 7-aminoactinomycin D (7-反倾销).
    2. 在室温下用荧光共轭抗体 (步骤 1.4.2) 孵育细胞30分钟.
    3. 用1毫升的 HBSS 和 1% BSA 冲洗细胞.
    4. 使用台式离心机向下旋转 1500 x g 的电池5分钟, 并丢弃上清液.
    5. 重300和 #181 中的细胞, HBSS 1% BSA, 将细胞悬浮液转移到圆底的聚苯乙烯管上。用箔盖住管子以避免光线照射.
    6. 对单细胞悬浮液进行流式细胞仪分析。为每个补偿样本收集5万事件和其他示例的25万事件。使用设备软件分析数据.
    7. 通过使用脉冲几何门 (fsc-h x fsc-a 和 ssc-h x ssc a) 消除碎片和双峰。适当的门 7-反倾销的阴谋, 以排除死细胞.

2。高通量的 mRNA-Seq

  1. 在60小时的区域性之后, 从 2-4 和 #215 中提取总 rna; 10 6 单元格使用总 rna 隔离套件, 它可以根据制造商和 #39 的指示恢复小 rna。包括一 dnasei I 治疗步骤.
  2. 根据制造商和 #39 的说明, 使用 bioanalyzer 验证 RNA 完整性.
  3. 使用500-1、000 ng 高质量的总 rna (rna 完整性数字和 #62; 8.0) 用于 rna 序列库的制备和商业 rna 样本 p代表工具包按照制造商和 #39 的说明操作.
  4. 根据各自的适配器的 6-bp 索引部分将单个 mRNA 序列库汇集在一起, 并按 50 bp/序列顺序排列库。根据制造商和 #39 的协议使用高通量的 DNA 系统.
  5. 顺序运行后, 解与 CASAVA 一起生成每个示例的 fastq 文件。执行读取映射和生物信息学分析, 如前面所概述的 11 .
  6. 使用 TopHat2 默认设置将所有顺序读取与其参考基因组 (UCSC 小鼠基因组构建 mm9) 对齐 14 。使用 HTSeq 来处理 bam 文件, 以获取所有样本中每一个基因的计数.

3。高通量 miRNA-seq

  1. 使用 100 ng-1 和 #181; 在步骤2.1 中编写的高质量总 rna g, 使用商业小 rna-seq 套件编写小的 rna 序列库.
  2. 结扎将退化的3和 #39; 适配器放到5和 #8242 上; 开始的小 RNA 分子的末端与商业结扎试剂盒。结扎退化的5和 #39; 适配器到3和 #8242; 开始的小 RNA 分子的末端与商业结扎试剂盒。通过反向转录将 rna 转化为 cDNA, 用商用试剂盒放大 PCR 扩增小 rna 序列库.
  3. 使用6% 本机页凝胶分离最后的小 RNA 序列库。运行的凝胶与1X 的缓冲区在200伏, 直到溴蓝色跟踪染料带接近底部的凝胶 (0.5-1 厘米).
  4. 从玻璃盘中取出凝胶, 然后用溴溴化物 (0.5 和 #181; 水中的 g/毫升) 在一个干净的容器中 2-3 min. 可视化 UV transilluminator 或其他凝胶文件仪器上的凝胶带.
  5. 用干净的剃刀把 150 bp 波段剪掉, 放到1.7 毫升的管子里.
  6. 根据制造商的说明使用凝胶萃取试剂盒提取 DNA.
  7. 检查最终库的大小分布, 并使用商用的超敏 DNA 检测方法, 并按照制造商和 #39 的商业 dsDNA 检测浓度进行检测; 说明.
  8. 将库用于放大, 然后根据制造商和 #39 的协议, 使用商业高通量 DNA 测序系统进行后续排序.
  9. 解与 CASAVA 一起为每个制造商和 #39 的协议生成每个示例的 fastq 文件.
  10. 对于每个样本的小 rna-seq 分析, 根据制造商和 #39 的协议使用闪烁进行小的 rna 对准。
    1. 删除与污染物 (如线粒体、rRNA、底漆等) 对齐的读取.
    2. 将数据与成熟的 miRNA 序列对齐.
    3. 将数据与发夹回路序列 (前体 miRNA) 对齐.
    4. 将数据与其他小 RNA 序列对齐 (使用 fRNA 数据库) 15 .
  11. 在对所有示例进行量化后, 定义不同组/示例之间的差异表达 rna。预测 rna 目标选择的基因或基因, 可以使用在线 miRNA 目标预测工具 (如 TargetScan 16 、微观世界 17 和 PicTar 18) 的选择性 miRNA 来瞄准。.
  12. 如果需要功能注释或路径分析, 请将预测的基因提交到独创性路径分析 (国际音标) 或 DAVID.

4。定量 rt-pcr (qRT pcr) 的基因和 rna

  1. qRT-pcr 分析 mRNA
    1. 从 0.2-5 和 #215 中提取 rna; 10 6 细胞使用商业总 rna 隔离套件, 可以恢复小 rna, 跟随制造商和 #39 的指示。包括一 dnasei I 治疗步骤.
    2. 用第一链 cdna 合成系统的全 RNA cdna, 利用寡糖-dT 引物.
    3. 采用 qRT pcr 方法, 利用 2x real-time pcr 方法, 用适当的引物对 cDNA 进行定量, 并与以下协议相结合:95、#176; c 为十五年代, 40 周期94和 #176; c 为十年代, 60 和 #176; c 为三十年代, 72 和 #176; c 为三十年代.
    4. 在72和 #176 期间执行数据获取; c 扩展步骤, 并执行从72到95和 #176 的熔融曲线分析; c.
  2. qRT miRNA
    1. 分 RNA 的 PCR 分析从步骤4.1.1 中准备的样本中提取.
    2. 反转-转录 RNA 为 cDNA。按照制造商和 #39 的说明使用商业 rna 反转录套.
    3. 使用 SYBR 绿色 real-time pcr 大师组合与 250 nM 成熟 miRNA 前向引物与通用反向底漆的 rna 进行 real-time pcr。
      1. 解冻 2x PCR 主混合、miRNA 特定的正向底漆和室温下的通用反向底漆。混合各个解决方案.
      2. 准备一个25和 #181 的反应组合; L 每好反应容量 (用于96井 PCR 板):
        2x PCR 主混合12.5 和 #181; l
        miRNA 前引物 (2.5 和 #956; m) 2.5 和 #181; l
        通用反向底漆 (2.5 和 #956; m) 2.5 和 #181; l
        RN无 water5 和 #181; l
      3. 添加22.5 和 #956; l 的反应混合到一个96的 PCR 板。添加2.5 和 #181; L 模板 cDNA (50 pg-3 ng) 到各自的板材井.
      4. 紧紧地封住底片。离心板1分钟, 在 1000 x g 和室温.
      5. 将盘放在 real-time 循环中, 并启动以下循环程序:95、#176; c 为5分钟, 40 周期为94和 #176; c 为十五年代, 55 和 #176; c 为三十年代, 和72和 #176; c 为三十年代.
    4. 使用 and #916; #916; 用电子表格进行 qRT PCR 数据分析的 Ct 方法。将相关 rna 的表达规范化到小核/核仁 rna Rnu6/RNU61/2、Snord61/SNORD61、Snord68/SNORD68 和 Snord70/SNORD70 的表达.
  3. 统计分析
    1. 执行统计分析, 通过配对和未配对的学生和 #39 来确定 p 值 t 使用电子表格进行测试, 并考虑 p 值和 #60; 0.05 作为重要.

结果

使用我们的协议, 纯化 B 细胞放置 LPS (3 µg/毫升) 和 IL-4 (5 ng/毫升) 的96小时可以诱导30-40% 的 CSR 到 IgG1 和〜10% 的血浆细胞分化。在与 HDI (500µM VPA) 治疗后, 对 IgG1 的 CSR 降低到 10-20%, 而血浆细胞分化降低到 ~ 2% (图 1)。post-recombination Iμ-Cγ1和成熟的 VhDJh-Cγ1记录的数量的减少进一步证实了 HDI 对 csr 的抑制, 这是已完成的 csr 的标志。由 qRT-PCR 测量,...

讨论

该协议提供了诱导 B 细胞类交换和细胞分化的综合方法;分析其对表观遗传调节剂的影响, 即 HDI;并检测人的 HDI 对这些细胞的 mRNA 和 miRNA 表达的影响。大多数这些方法也可以用来分析表观遗传因子对人 B 细胞功能和 mRNA/miRNA 表达的影响。qRT PCR 和 mRNA-seq/miRNA 的方法也可以用来分析 B 细胞分离的小鼠与后生调节剂, 如助。

表观遗传调节可能影响细胞增殖和活力等多种不同的细胞?...

披露声明

作者声明他们没有竞争的金融利益。

致谢

这项工作得到 NIH 资助 ai 105813 和 ai 079705 (对 pc), 狼疮研究的目标识别联盟狼疮补助金 ALR 295955 (对 pc), 和关节炎国家研究基金会研究补助金 (HZ)。TS 由中国长沙中南大学第二湘医院儿科医学中心支持, 湘医学院圣安东尼奥医科学生访问计划的背景。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
C57BL/6 miceJackson Labs664
Corning cellgro RPMI 1640 Medium (Mod.) 1X with L-Glutamine (Size: 6 x 500mL; With L-Glutamine)Fisher ScientificMT 10-040-CV 
FBSHycloneSH300
HyClone Antibiotic Antimycotic Solution 100 mLFisher Scientific - HycloneSV3007901 
β-MercaptoethanolFisher Scientific44-420-3250ML
Falcon Cell StrainersFisher Scientific21008-952  
Trypan Blue Stain 0.04%GIBCO/Life Technologies/Inv15250
ACK Lysis Buffer Fisher ScientificBW10-548E 
Hausser Scientific Bright-Line Counting ChamberFisher Scientific02-671-51B
EasySep MagnetStem Cell Technologies18000
Falcon Round-Bottom Polystyrene Tubes with CapFisher Scientific14-959-1A
EasySep Mouse B cell Isolation KitStem Cell Tech19854
BD Needle Only 18 Gauge 1.5 inch SHORT BEVEL 100/box BD Biosciences 305199
PE/Cy7 anti-mouse CD138 (Syndecan-1) AntibodyBioLegend 142513 (25 ug)
PE-Cy7 B220 antibodyBioLegend103222
7-AAD (1 mg)Sigma AldrichA9400-1MG
APC anti-mouse/human CD45R/B220 antibodyBiolegend103212
Mouse APC-IgG1 200 µgBiolegend406610
FITC anti-mouse IgM AntibodyBiolegend406506
FITC anti-mouse/human CD45R/B220 AntibodyBiolegend103206
PE Anti-Human/Mouse CD45R (B220) (RA3-6B2)Biolegend103208
HBSS 1XFisher ScientificMT-21-022-CM
Bovine Serum Albumin, Fraction V, Heat Shock Treated Fisher ScientificBP1600-100
LPS 25mg (Lipopolysaccharides from Escherichia coli 055:B5)Sigma AldrichL2880-25MG
Recombinant mouse IL-4 (carrier-free)BioLegend574302 (size: 10 ug)
Valproic acid sodium saltSigma AldrichP4543
SterilGARD e3 Class II Type A2 Biosafety CabinetThe Baker CompanySG404
Large-Capacity Reach-In CO2 Incubator Thermo Scientific3950
Isotemp Digital-Control Water Baths: Model 205Fisher Scientific15-462-5Q
5mL Round Bottom Polystyrene Test TubeFisher Scientific 14-959-5
Corning CentriStar 15ml Centrifuge Tubes Fisher Scientific 05-538-59A
1.7 mL Microtube, clearGenesee22-282
Higher-Speed Easy Reader Plastic Centrifuge Tubes 50mlFisher Scientific06-443-18
ELMI SkySpin CM-6MTELMICM-6MT
Rotor 6MELMI6M
Rotor 6M.06ELMI6M.06
Drummond Portable Pipet-Aid XP Pipet ControllerDrummond Scientific4-000-101
25 mL serological pipette tipsFisher Scientific89130-900
10 mL serological pipette tipsFisher Scientific89130-898
5 mL serological pipette tipsFisher Scientific898130-896
48-well platesFisher Scientific07-200-86
Allegra 6 Benchtop Centrifuge, Non-RefrigeratedBeckman Coulter366802
GH-3.8A Rotor, Horizontal, ARIES Smart BalanceBeckman Coulter366650
Allegra 25R Benchtop Centrifuge, RefrigeratedBeckman Coulter369434
TA-15-1.5 Rotor, Fixed AngleBeckman Coulter368298
Fisher Scientific AccuSpin Micro 17Fisher Scientific13-100-675
Fisher Scientific Analog Vortex Mixer Fisher Scientific02-215-365
miRNeasy Mini Kit (50)Qiagen217004
Direct-zol RNA MiniPrep kitZymo ResearchR2050
Chloroform (Approx. 0.75% Ethanol as Preservative/Molecular Biology)Fisher ScientificBP1145-1
Rnase-Free Dnase set (50)QIAGEN79254
NanoDrop 2000 SpectrophotometersThermo ScientificND-2000
Superscript III First-strand Synthesis System RT-PCRInvitrogen175013897
iTaq Universal SYBR Green SupermixBio-rad 172-5121
Fisherbrand 96-Well Semi-Skirted PCR Plates, case of 25Fisher14-230-244
Microseal 'B' Adhesive SealsBio-RadMSB-1001
MyiQ Optics ModuleBio-Rad170-9744
iCycler ChassisBio-Rad170-8701
Optical KitBio-Rad170-9752
BD LSR II Flow Cytometry AnalyzerBD Biosciences
FACSDiva softwareBD Biosciences
FlowJo 10BD Biosciences
2100 BioanalyzerAgilent TechnologiesG2943CA
S200 Focused-ultrasonicatorCovarisS200
SPRIworks Fragment Library System I for IlluminaBeckman CoulterA288267
cBot Cluster Generation StationilluminaSY-312-2001
HiSeq 2000 Genome SequencerIlluminaSY-401-1001
TruSeq RNA Library Prep Kit v2IlluminaRS-122-2001
TruSeq Small RNA Library Prep KitIlluminaRS-200-0012
NEXTflex Illumina Small RNA Sequencing Kit v3Bioo Scientific5132-05
2200 TapeStationAgilentG2964AA

参考文献

  1. Allis, C. D., Jenuwein, T. The molecular hallmarks of epigenetic control. Nat Rev Genet. 17, 487-500 (2016).
  2. Li, G., Zan, H., Xu, Z., Casali, P. Epigenetics of the antibody response. Trends Immunol. 34, 460-470 (2013).
  3. Zan, H., Casali, P. Epigenetics of Peripheral B-Cell Differentiation and the Antibody Response. Front Immunol. 6, 631 (2015).
  4. Xu, Z., Zan, H., Pone, E. J., Mai, T., Casali, P. Immunoglobulin class-switch DNA recombination: induction, targeting and beyond. Nat. Rev. Immunol. 12, 517-531 (2012).
  5. Nutt, S. L., Hodgkin, P. D., Tarlinton, D. M., Corcoran, L. M. The generation of antibody-secreting plasma cells. Nat. Rev. Immunol. 15, 160-171 (2015).
  6. Bartel, D. P. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 136, 215-233 (2009).
  7. Fabian, M. R., Sonenberg, N., Filipowicz, W. Regulation of mRNA translation and stability by microRNAs. Annu. Rev. Biochem. 79, 351-379 (2010).
  8. White, C. A., et al. Histone deacetylase inhibitors upregulate B cell microRNAs that silence AID and Blimp-1 expression for epigenetic modulation of antibody and autoantibody responses. J Immunol. 193, 5933-5950 (2014).
  9. Farh, K. K., et al. Genetic and epigenetic fine mapping of causal autoimmune disease variants. Nature. 518, 337-343 (2015).
  10. Nagalakshmi, U., Waern, K., Snyder, M. RNA-Seq: a method for comprehensive transcriptome analysis. Curr Protoc Mol Biol. , 11-13 (2010).
  11. Martin, J. A., Wang, Z. Next-generation transcriptome assembly. Nat Rev Genet. 12, 671-682 (2011).
  12. Luo, S. MicroRNA expression analysis using the Illumina microRNA-Seq Platform. Methods Mol. Biol. 822, 183-188 (2012).
  13. Shen, T., Sanchez, H. N., Zan, H., Casali, P. Genome-wide analysis reveals selective modulation of microRNAs and mRNAs by histone deacetylase inhibitor in B cells induced to uUndergo class-switch DNA recombination and plasma cell differentiation. Front. Immunol. 6, 627 (2015).
  14. Trapnell, C., et al. Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks. Nat Protoc. 7, 562-578 (2012).
  15. Kin, T., et al. fRNAdb: a platform for mining/annotating functional RNA candidates from non-coding RNA sequences. Nucleic Acids Res. 35, D145-D148 (2007).
  16. Agarwal, V., Bell, G. W., Nam, J. W., Bartel, D. P. Predicting effective microRNA target sites in mammalian mRNAs. Elife. 4, (2015).
  17. Griffiths-Jones, S., Saini, H. K., van Dongen, S., Enright, A. J. miRBase: tools for microRNA genomics. Nucleic Acids Res. 36, D154-D158 (2008).
  18. Anders, G., et al. doRiNA: a database of RNA interactions in post-transcriptional regulation. Nucleic Acids Res. 40, D180-D186 (2012).

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