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  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

此方法演示了利用北方杂交技术从总RNA提取物中检测miRNA。

摘要

MicroRNA (miRNA) 是一类内源性表达的非编码,±21 nt 小型RNA参与植物和动物基因表达的调控。大多数miRNA充当针对关键基因的基因表达的负开关。在植物中,原发性miRNA(原始miRNA)转录本由RNA聚合酶II生成,它们形成不同长度的稳定茎环结构,称为前miRNA。内核糖酶,像迪瑟一样1,将预米RNA处理成miRNA-miRNA*双工。从miRNA-miRNA* 双面的一股被选择并加载到Argonaute 1蛋白或其同源体上,以调解目标mRNA的裂解。虽然miRNA是关键信号分子,但它们的检测通常采用不太理想的基于PCR的方法,而不是敏感的北方印迹分析。我们描述了一种简单、可靠和极其敏感的北方方法,它非常适合从任何植物组织中对具有极高灵敏度的 miRNA 水平进行定量。此外,此方法可用于确认米RNA及其前体的尺寸、稳定性和丰度。

引言

最近发现的小型调控RNA,微RNA,已经领导了研究,了解它们及其在植物和动物中的作用1。miRNA的长前体由HYL1和特定的骰子样蛋白质2,3加工成21至24nt成熟的3miRNA。22 nt miRNA 可以通过生成二级 siRNA4启动级联沉默。研究表明,miRNA和二级siRNA在发育、细胞命运和压力反应5,6,中的作用

北方杂交是一种常规用于检测特定RNA分子的实验方法。此方法自定义其在检测大约 19 -24 nt 长的小 RNA 从总 RNA7 的池中的使用。在此演示中,我们演示了该技术用于检测和定量 miRNA。该方法使用放射性同位素对探头进行标签标记;因此,可以提高灵敏度检测样品中的miRNA水平。与基于 PCR 的方法不同,此方法可确保表达式的量化以及 miRNA 的大小确定。在该协议中,我们展示改善miRNA检测的关键步骤。我们修改了印迹和杂交步骤,以获得 miRNA 的高分辨率信号检测。此技术还可用于检测其他内生小RNA,如 siRNA、tasi-辅助RNA 和 snoRNA。

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研究方案

1. 制备15%变性聚丙烯酰胺凝胶

  1. 称重并加入4.8克尿素,加入3.75 mL的40%丙烯酰胺:双丙烯酰胺(19:1)溶液和1 mL的10x TBE pH 8.2放入无菌50 mL管中。
  2. 使用 60°C 的水浴将尿素溶解成清晰的溶液。
  3. 使用新鲜自功能开的无菌水将体积放大至 10 mL,将凝胶混合物冷却至室温。
  4. 准备新鲜的 10%(w/v)铵硫酸盐溶液。

2. 玻璃板和电泳装置的组装

  1. 用洗涤剂清洗凝胶电泳和电印所需的所有设备。用软海绵轻轻擦洗它们,去除残留的缓冲液和丙烯酰胺,用水冲洗,让它们干燥。
  2. 将两个玻璃板组装在一起,并牢固地放在海绵上。使用 1 毫米厚的板进行此设置。确保板处于同一水平,以避免泄漏。
  3. 在 10 mL 凝胶混合物中,加入 8 μL 的 TEMED 和 80 μL 新鲜制备的 10%(w/v)硫酸铵溶液。
  4. 毫不拖延地,轻轻混合并倒入组装的玻璃板之间。小心地放置梳子。在此步骤中避免产生气泡。
  5. 让凝胶聚合约 45 分钟。
  6. 在将聚合凝胶置于凝胶运行装置内之前,用无菌水清洗聚合凝胶。
  7. 组装运行盒内的板,轻轻拆下梳子。
  8. 将新鲜准备好的无菌 1x TBE、pH 8.2 倒入罐中。
  9. 通过移液液洗孔以去除盐晶体。此步骤可帮助 RNA 样品均匀地穿过凝胶。
  10. 在 80 V 下执行预运行 30 分钟。

3. 装载染料和样品的准备

  1. 对于10 mL的凝胶加载染料,重量5毫克的布罗莫酚蓝色,5毫克的二甲醇,加入10 mL的去化甲酰胺仔细混合。
  2. 将总RNA10μg放入无菌1.5 mL管中,并使用速度真空将样品干燥。不要过度干燥样品。
  3. 将RNA样品重新在8μL的负荷中。
  4. 在 98 °C 加热样品 2 分钟,在 RT 冷却 1 分钟,涡流和旋转样品 3 次。此步骤对于适当的再暂停至关重要,这反过来又有助于对样品进行相等的加载。

4. 凝胶电泳

  1. 在样品装载之前停止预运行并清洗油井。
  2. 在 98 °C 下加热样品 1 分钟,并使用毛细管尖端将样品加热到井中。将尖端插入井底,使样品在井中占据一层薄层。
  3. 完成所有样品的加载。包括加载RNA十年标记。
  4. 在 80 V 下运行凝胶,直到布罗莫酚蓝色染料几乎完全运行。溴酚蓝色运行在15%变性丙烯酰胺凝胶10个基点。

5. 电印准备

  1. 将 N+尼龙膜切割到玻璃板的尺寸,用 HB 铅笔将膜的右上角标记。
  2. 轻轻地将膜放在无菌水的表面,朝向有标记的一侧,朝向水面。预浸泡膜15分钟。
  3. 切割4件印迹纸I到纤维垫的尺寸。
  4. 准备凝胶三明治,将盒式磁带的灰色面放在干净的托盘中。
  5. 预湿纤维垫,并放在盒式磁带上。清除气泡。
  6. 在 1x TBE 中预湿一张印迹纸,并放在纤维垫上。通过将塑料移液器滚动到纸张上,去除气泡。再放一块预湿印迹纸并清除气泡。
  7. 小心地从运行盒中取下凝胶,并将其放在三明治设置上,使第一个加载的 RNA 样品朝向右侧。
  8. 轻轻地将预浸膜浸入 1x TBE 中,并放在凝胶上,朝向贴有标签的一侧朝下。推出以清除气泡。
  9. 浸一张印迹纸,放在膜上,去除气泡。再浸一张印迹纸,放在三明治上,去除气泡。
  10. 将预湿纤维垫放在设置上并牢固地关闭盒式磁带,完成三明治。
  11. 将转盘盒放在模块中,并填充 1x TBE,pH 8.2 至印迹标记。
  12. 在 10 V 下传输,在 4 °C 下过夜。
  13. 转移后,将湿膜放在纸片上,并立即用 254-nm 紫外线照射将 RNA 与膜交叉连接(120,000 μjoules/cm2)。交连印迹可能储存在4°C,用于进一步杂交。

6. 准备放射性标记探头

  1. 设计一个完全与要检测的小RNA互补的探针。
  2. 使用32ATP(ƳP从 BRIT 获得)在其 5' 端将组件组合在一起,根据表 1 中提供的配方,将探头标记为 32ATP(从 BRIT 获取)。
  3. 在37°C下孵育上述反应混合物30分钟。
  4. 根据制造商的协议,ƳP使用 Sephadex G-25 列将未标记的32ATP 从探头中分离。

7. 污点的混合

  1. 将交叉链接的印迹,RNA 侧朝顶部在杂交瓶内。
  2. 大力混合超敏感杂交缓冲液,加入10 mL,并在保持在35°C的杂交炉内孵化印迹,旋转。
  3. 执行预杂交 20 分钟。
  4. 将瓶子从烤箱中取出,并轻轻地将贴标探针添加到杂交缓冲液中。
  5. 在35°C下混合印迹,旋转12小时。
  6. 杂交后,小心地将杂交溶液转移到15 mL管中。此溶液可储存在 4 °C,直到重新使用。
  7. 通过添加 2x SSC 缓冲液加 0.5% SDS,快速清洗印迹 2 分钟,以消除多余的杂交解决方案。丢弃解决方案。
  8. 用 2x SSC 缓冲液加上 0.5% SDS 孵育 35 °C 的印迹,旋转 30 分钟。
  9. 再次用 0.5 倍 SSC 缓冲液加上 35°C 的 0.5% SDS 洗涤污点,旋转 30 分钟。
  10. 将印迹放在杂交盖内,拆下多余的缓冲液并密封。
  11. 在盒式磁带内隔夜将其暴露在无辐射荧光成像器屏幕上。
  12. 使用生物分子成像器检测杂交信号,使用合适的软件分析结果。
  13. 在 80 °C 下孵育污点,旋转 30 分钟,0.5 X SSC 缓冲液加 0.1% SDS 和 0.1 X SSC 缓冲器加 0.1% SDS 30 分钟。

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结果

在本次演示中,我们检测并量化了miR397在稻白粉不同组织中的表现(图1)。 varmiR397 是一个 22 nt miRNA 和保存的 miRNA。可以在所有测试的样品中检测到miR397的表达。根据下一代测序数据,样本 1(幼苗组织)具有 miR397,每百万(rpm)读取 5 次。我们舒适地检测到其信号,表明该方法非常敏感,可用于检测甚至非常低的丰富的miRNA。在此实验中,我们使用 miR168 ?...

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讨论

该方法可广泛用于检测和定量小RNA,包括不太丰富的miRNA。该协议主要描述了在加载缓冲液中变性总RNA的步骤,通过凝胶电泳进行大小分离,将RNA转移到膜上,将RNA交叉链接到膜,并使用所需的放射性标记寡聚探针进行杂交。

任何印迹实验的关键步骤是使用优质RNA进行样品制备。在装载凝胶之前,必须确保样品自由流动,不要粘在装料尖端。装载样品时必须小心,尖端应插入...

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披露声明

未声明利益冲突。

致谢

作者承认宿主研究所和英国为放射性同位素提供的辐射实验室。PVS实验室由国家生物科学中心、塔塔基础研究所和赠款支持(BT/PR12394/AGIII/103/891/2014;BT/IN/瑞士/47/JGK/2018-19;BT/PR25767/GET/119/151/2017) 来自印度政府生物技术部。MP 承认印度政府 DBT 研究助理。

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材料

NameCompanyCatalog NumberComments
40% Acrylamide-bisacrylamide solutionSigmaA9926
Ammonium persulphate (APS)BioRad1610700
Blotting paperwhatmann blotting paper I1001-125
Bromophenol blueSigmaB5525-5G
Capillary loading tipsBioRad2239915
Deionized formamideAmbionAM9342
Heating blockEppendorff5350
Hybond N+nylon membraneGERPN203B
Hybridization bottleSigmaZ374792-1EA
Hybridization OvenThermo Scientific1211V79
N,N,N’,N’-Tetramethylethylenediamine (TEMED)SigmaT7024-25ml
PhosphorImagerGE- Typhoon scanner29187194
PhosphorImager screen and cassetteGE healthcareGE28-9564-75
PipettesGilson, models: P20 and P10FA10002M, FA10003M
Plastic pipetteFalcon357550
Polyacrylamide gel apparatusBioRad1658003EDU
Sephadex G-25 columnGE healthcare27532501
Speed Vac ConcentratorThermo Scientific20-548-130
SpinwinTarsons1010
T4 Polynucleotide Kinase (PNK)NEBM0201S
Transblot apparatusBioRad1703946
ULTRAHyb hybridization bufferAmbionAM8670
UreaFischer Scientific15985
UV-crosslinkerUVPCL-1000L
VortexTarsons3020
Water bathNEOLABD-8810
Xylene cyanolSigmaX4126-10G

参考文献

  1. Baulcombe, D. RNA silencing in plants. Nature. 431, 356-363 (2004).
  2. Anushree, N., Shivaprasad, P. V. Regulation of Plant miRNA Biogenesis. Proceedings of the Indian National Science Academy. 95, (2017).
  3. Narjala, A., Nair, A., Tirumalai, V., Hari Sundar, G. V., Shivaprasad, P. V. A conserved sequence signature is essential for robust plant miRNA biogenesis. Nucleic Acids Research. , (2020).
  4. Chen, H. M., et al. 22-Nucleotide RNAs trigger secondary siRNA biogenesis in plants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107, 15269-15274 (2010).
  5. Shivaprasad, P. V., et al. A microRNA superfamily regulates nucleotide binding site-leucine-rich repeats and other mRNAs. Plant Cell. 24, 859-874 (2012).
  6. Shivaprasad, P. V., Dunn, R. M., Santos, B. A., Bassett, A., Baulcombe, D. C. Extraordinary transgressive phenotypes of hybrid tomato are influenced by epigenetics and small silencing RNAs. The EMBO Journal. 31, 257-266 (2012).
  7. Akbergenov, R., et al. Molecular characterization of geminivirus-derived small RNAs in different plant species. Nucleic Acids Research. 34, 462-471 (2006).
  8. Tirumalai, V., Swetha, C., Nair, A., Pandit, A., Shivaprasad, P. V. miR828 and miR858 regulate VvMYB114 to promote anthocyanin and flavonol accumulation in grapes. Journal of Experimental Botany. , (2019).
  9. Li, C., Zamore, P. D. Analysis of Small RNAs by Northern Hybridization. Cold Spring Harbor Protocols. (8), (2018).
  10. Swetha, C., et al. Major domestication-related phenotypes in indica rice are due to loss of miRNA-mediated laccase silencing. The Plant Cell. , (2018).

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