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  • 摘要
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  • 研究方案
  • 结果
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  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

本方案描述了一种气动微流体平台,可用于高效的微粒浓缩。

摘要

本文介绍了一种利用微流体平台制造和操作气动阀以控制颗粒浓度的方法。该平台具有具有弯曲流体通道和三个气动阀的三维(3D)网络,通过与聚二甲基硅氧烷(PDMS)的双相复制来创建网络,通道和空间。该装置根据气动阀控制的流体流速的瞬态响应按以下顺序运行:(1)样品上样,(2)样品阻塞,(3)样品浓度和(4)样品释放。颗粒被筛阀(Vs)板的薄隔膜层变形阻挡并积聚在弯曲的微流体通道中。工作流体通过两个开/关阀的驱动排出。由于该操作,所有各种放大倍率的粒子都被成功拦截并脱离。当应用该技术时,操作压力、浓缩所需的时间和浓缩速率可能会根据设备尺寸和粒度放大倍率而变化。

引言

由于生物分析的重要性,微流体和生物医学微机电系统(BioMEMS)技术12 用于开发和研究用于纯化和收集微材料的装置234。粒子捕获分为主动或被动。主动式阱已用于作用于独立粒子的外部介电5、磁吞噬6、听觉7、视觉8或热9 力,从而能够精确控制其运动。然而,粒子和外力之间的相互作用是必需的;因此,吞吐量较低。在微流体系统中,控制流速非常重要,因为外力传递到目标颗粒。

一般来说,无源微流体器件在微通道1011中具有微柱。颗粒通过与流动流体的相互作用进行过滤,这些设备易于设计且制造成本低廉。然而,它们在微柱中引起颗粒堵塞,因此已经开发出更复杂的装置来防止颗粒堵塞12。具有复杂结构的微流体装置通常适用于管理有限数量的颗粒131415161718

本文描述了一种制造和操作气动驱动的大颗粒浓度微流体平台的方法,该平台克服了上述缺点18。该平台可以通过变形和驱动积聚在弯曲微流体通道中的筛阀(Vs)板的薄隔膜层来阻挡和浓缩颗粒。颗粒积聚在弯曲的微流体通道中,并且浓缩的颗粒可以通过两个PDMS密封件的开/关阀18的驱动排出工作流体来分离。这种方法使得可以处理有限数量的颗粒或浓缩大量小颗粒。诸如流速和压缩空气压力等工作条件可以防止不必要的电池损坏并提高电池捕获效率。

研究方案

1. 颗粒浓缩微流控平台设计

  1. 设计气动微流体平台,该平台由一个用于 3D 流网络中流体流动的气动阀和三个用于筛网 (V)、流体 (Vf) 和颗粒 (Vp) 操作的气动阀组成(图 1)。
    注意:Vs阻挡液体中的浓缩颗粒,Vf和Vp允许浓缩后释放流体和颗粒。三个气动端口提供来自流体/气动供应层(常开)的压缩空气和气动阀灯出口以驱动阀门。微流体通道网络是用CAD程序1819设计的。
  2. 将通道设计为气动供应层和 3D 通道网络层(图 2)。
    注意:流体网络与前部的弯曲通道和后部的矩形腔室相互连接。Vs堵塞入口,颗粒积聚在弯曲流体通道的收集区域。无颗粒流体(无颗粒液体)通过Qf出口排出,浓缩颗粒通过Qp出口排出(图3)。
  3. 根据以上条件,准备四种类型的SU-8模具。
    注:这四个模具包括一个允许 通过 气动装置控制阀门的模具、两个创建流体通道的模具和一个无形状的干净模具(图 4表 1)。提到的四种类型的模具是使用标准光刻工艺制造的。这种模具制造包括硅片上的SU-8模具,根据先前发布的报告1819图5 所示为器件芯片。

2. 颗粒浓缩微流控平台的制备

注: 图6 说明了浓缩颗粒的微流体平台的制造过程。

  1. 使用准备好的气动阀通道SU-8模具复制PDMS层(步骤1.3),用于气动控制阀门。
    1. 将10 mL液体PDMS和1mL固化剂(见 材料表)倒入准备好的气动阀通道模具中(步骤1.3),并在90°C下热活化30分钟。
    2. PDMS结构固化后,分离步骤2.1.1的SU-8模具。
    3. 使用1.5 mm穿刺将三个1.5 mm气动端口(Vs,Vf和Vp)打入根据步骤2.1.2制造的气动阀通道(参见 材料表)。
    4. 将10 mL液体PDMS和1 mL固化剂倒入步骤1.3中制备的干净SU-8模具中,并使用旋涂机以1,500rpm旋转涂覆15秒(参见 材料表)。然后在90°C下加热活化30分钟。
    5. PDMS结构固化后,分离步骤2.1.4的SU-8模具。
      注:阀门隔膜层根据气动压力控制流体流量。
    6. 将大气等离子体(见 材料表)处理为步骤2.1.3和2.1.5中制备的PDMS结构20 s。
    7. 通过用显微镜检查,根据通道结构,直接对准步骤2.1.6中经过等离子体处理的PDMS结构。
    8. 通过在90°C下加热30分钟来粘合步骤2.1.7中制备的对齐PDMS结构。
    9. 使用 1.5 mm 穿刺在气动通道部件内的流体通道入口 (Qfp) 和流体通道出口(Qf 和 Qp)上打一个直径为 1.5 mm 的孔,使用 1.5 mm 的穿刺。
  2. 使用两个SU-8模具复制PDMS层的两侧,以形成微流体通道。在前面使用弯曲的矩形微流体通道模具,在后面使用微流体互连通道模具。
    1. 将10 mL液体PDMS和1 mL固化剂倒入弯曲和矩形微流体通道模具中,并以1,200rpm的速度旋转涂层15秒。然后通过在90°C下热活化30分钟为弯曲的流体室和流体通道创建模具(图6A)。
    2. 分离形成微流体通道的PDMS层,然后通过处理大气等离子体20秒,通过粘合到玻璃晶圆上来制作覆盖密封通风壁的热活化模具(图6B)。
    3. 将3 mL液体PDMS倒入SU-8模具的互连通道中(图6C)。
    4. 将步骤2.2.2中制备的结构与微流体互连通道模具上的液体PDMS中的互连通道模具一起排列,并在130°C下干燥叠加结构30分钟(图6D)。
      注:在固化后部结构时,步骤2.2.2中制造的PDMS模具被空气层的热压膨胀,变形的PDMS层被热活化(图6E16
    5. 固化后,从微流体通道网络层中取出前SU-8模具,并小心地剥离后部PDMS模具(图6F)。
      注意:3D流体网络层允许创建前弯曲的流体室和微流体通道。
    6. 将 10 mL 液体 PDMS 和 1 mL 固化剂倒入干净的 SU-8 模具中。然后在90°C下加热活化30分钟。
    7. PDMS结构固化后,分离SU-8模具。
      注:此步骤将创建附加的密封层。
    8. 将大气等离子体处理为步骤2.2.3和2.2.7中制备的PDMS结构20 s。
    9. 通过用显微镜检查,根据通道结构直接对准等离子体处理的PDMS结构。
    10. 通过在90°C下加热30分钟来粘合对齐的PDMS结构。
  3. 根据通道结构对准步骤2.1和2.2中制备的PDMS结构,并通过处理大气等离子体20 s来粘合它们。

3. 设置设备

注: 图7 显示了制造浓缩颗粒的微流体平台。

  1. 使用10 mL注射器用无气泡的软化水手动填充微流体通道。
  2. 要控制P_Qfp和三个控制微珠流量的气动阀(P_Vs,P_Vf和P_Vp),请将具有四个或更多输出通道(参见 材料表)的精密压力控制器插入微流体(Qfp)到微流体平台中。
    注:具有四个输出通道的精密压力控制器可替换为多个精密压力控制器。本实验中,P_Qfp的工作压力为10 kPa,P_Vs为15 kPa,P_Vf和P_Vp均为18 kPa(图8表2)。 图8 显示了颗粒被微流体平台浓缩时工作流体流速,P_Vs为15 kPa, 表2 显示了根据气动阀的致动结果。
  3. 在蒸馏水中制备各种尺寸的羧基聚苯乙烯试验颗粒(见 材料表)。
    注意:本实验中使用的粒径为24.9,8.49和4.16μm;根据P_Vs的压力,可以使用各种尺寸的颗粒。
  4. 为了控制工作流体的流速,在玻璃瓶中装满一半的水(工作液),并将玻璃瓶盖连接到控制器输出通道和微阀。
    注意:将一根管子连接到微阀以接收来自控制器的压缩空气,并将另一根管子连接到微阀以注入水。
  5. 通过倒置显微镜观察所有平台操作的平台操作,并通过液体流量计测量出口处的操作流量(参见 材料表)。

4. 设备的操作

  1. 在入口处的压力下(Qfp)用Vp注入颗粒/流体混合物(图9A)。
    注:颗粒和清洁流体通过相互连接的通道从出口流出,分别 通过 Vp 和 Vf 进行控制(表 2)。
  2. 在 15 kPa 时向 V 施加压力,在 18 kPa 时向 Vp 施加压力以驱动阀门。
    注:此时,隔膜变形,流体Qfp的颗粒被阻挡在弯曲流体通道和弯曲流体悬臂之间的接触空间中,不需要的Qfp流体通过开放的Qf释放出来(图9B,C)。
  3. 当颗粒被浓缩时,仅对Vf施加压力。
    注意:此时,当仅对Vf施加压力时,堵塞的颗粒通过Qp释放(图9D)。

结果

图8 显示了四级平台操作的流体速率的流速,如 表2所示。第一阶段是加载状态(状态)。该平台在所有阀门打开的情况下提供流体,并且工作流体(Qf)和颗粒(Qp)几乎相同,因为微流体通道网络表现出结构对称性。在第二阶段(b状态)中,压缩空气被输送到Vs以阻挡颗粒,并且随着Vs隔膜变形,流路变窄,并且通过液压阻力减小了在出口处测量的流速。Qf和Qp...

讨论

该平台提供了一种纯化和浓缩各种尺寸颗粒的简单方法。颗粒通过气动阀控制积聚和释放,并且没有观察到堵塞,因为没有被动结构。使用该装置,呈现三种尺寸的颗粒的浓度。然而,操作压力、浓缩所需的时间和速率可以根据器件尺寸、粒径放大倍率和Vs 182021处的压力而变化。

当执行步骤3.1时,气?...

披露声明

作者没有利益冲突需要披露。

致谢

这项工作得到了韩国国家研究基金会(NRF)的支持,该基金由韩国政府(科学和信息通信技术部)资助。(编号NRF-2021R1A2C1011380)。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 mm punctureSelf procductionSelf procductionThis puncture was made by requesting a mold maker based on the Miltex® Biopsy Punch with Plunger (15110-15) product.
4 inch Silicon Wafer/SU-8 mold4science29-03573-014 inch (100) Ptype silicon wafer/SU-8 mold
Carboxyl Polystyrene Crosslinked Particle(24.9 μm)SpherotechCPX-200-10Concentrated bead sample1
Flow meterSensirionSLI-1000Flow measurement
High-speed cameraPhotronFASTCAM MiniObservation of concentration
Hot plateAs oneHI-1000heating plate for curing of liquid PDMS
KOVAX-SYRINGE 10 mL/SyringeKoreavaccine22G-10MLFill the microfluidic channel with bubble-free demineralized water.
Laboratory Conona treater/Atmospheric plasmaElectro-TechnicBD-20ACChip bonding/atmospheric plasma
Liquid polydimethylsiloxane, PDMSDow Corning Inc.Sylgard 184Components of chip
MicroscopeOlympusIX-81Observation of concentration
PEEK TubesSAINT-GOBAIN PPL CORP.AAD04103Inject or collect particles
Polystyrene Particle(4.16 μm)SpherotechPP-40-10Concentrated bead sample3
Polystyrene Particle(8.49 μm)SpherotechPP-100-10Concentrated bead sample2
Pressure controller/μfluconAMEDμfluconControl of air pressure
Spin coateriNexusACE-200spread the liquid PDMS on SU-8 mold

参考文献

  1. Whitesides, G. M. The origins and the future of microfluidics. Nature. 442 (7107), 368-373 (2006).
  2. Desitter, I., et al. A new device for rapid isolation by size and characterization of rare circulating tumor cells. Anticancer Research. 31 (2), 427-441 (2011).
  3. Hayes, D. F., et al. Circulating tumor cells at each follow-up time point during therapy of metastatic breast cancer patients predict progression-free and overall survival. Clinical Cancer Research. 12 (14), 4218-4224 (2016).
  4. Choi, S., Park, J. K. Microfluidic system for dielectrophoretic separation based on a trapezoidal electrode array. Lab on a Chip. 5 (10), 1161-1167 (2005).
  5. Jung, Y., et al. Six-stage cascade paramagnetic mode magnetophoretic separation system for human blood samples. Biomedical Microdevices. 12 (4), 637-645 (2010).
  6. Li, P., et al. Acoustic separation of circulating tumor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (16), 4970-4975 (2015).
  7. Lin, Y. H., Lee, G. B. Optically induced flow cytometry for continuous microparticle counting and sorting. Biosensors and Bioelectronics. 24 (4), 572-578 (2008).
  8. Gramotnev, D. K., et al. Thermal tweezers for surface manipulation with nanoscale resolution. Applied Physics Letters. 90 (5), 054108 (2007).
  9. Huang, L. R., et al. Continuous particle separation through deterministic lateral displacement. Science. 304 (5673), 987-990 (2004).
  10. Yin, D., et al. Multi-stage particle separation based on microstructure filtration and dielectrophoresis. Micromachines. 10 (2), 103 (2019).
  11. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-8 (2016).
  12. Alvankarian, J., Majlis, B. Y. Tunable microfluidic devices for hydrodynamic fractionation of cells and beads: a review. Sensors. 15 (11), 29685-29701 (2015).
  13. Irimia, D., Toner, M. Cell handling using microstructured membranes. Lab on a Chip. 6 (3), 345-352 (2006).
  14. Huang, S. B., et al. A tunable micro filter modulated by pneumatic pressure for cell separation. Sensors and Actuators B: Chemical. 142 (1), 389-399 (2009).
  15. Chang, Y. H., et al. A tunable microfluidic-based filter modulated by pneumatic pressure for separation of blood cells. Microfluidics and Nanofluidics. 12 (1-4), 85-94 (2012).
  16. Oh, C. K., et al. Fabrication of pneumatic valves with spherical dome-shape fluid chambers. Microfluidics and Nanofluidics. 19 (5), 1091-1099 (2015).
  17. Liu, W., et al. Dynamic trapping and high-throughput patterning of cells using pneumatic microstructures in an integrated microfluidic device. Lab on a Chip. 12 (9), 1702-1709 (2012).
  18. Jang, J. H., Jeong, O. C. Fabrication of a pneumatic microparticle concentrator. Micromachines. 11 (1), 40 (2020).
  19. McDonald, J. C., et al. Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic device. Accounts of Chemical Research. 35 (7), 491-499 (2002).
  20. Brivio, M., et al. A MALDI-chip integrated system with a monitoring window. Lab on a Chip. 5 (4), 378-381 (2005).
  21. Jeong, O. C., Konishi, S. The self-generated peristaltic motion of cascaded pneumatic actuators for micro pumps. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (8), 085017 (2008).
  22. Taff, B. M., Voldman, J. A scalable addressable positive dielectrophoretic cell-sorting array. Analytical Chemistry. 77 (24), 7976-7983 (2005).
  23. Pamme, N., et al. On-chip free-flow magnetophoresis: Separation and detection of mixtures of magnetic particles in continuous flow. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 307 (2), 237-244 (2006).
  24. Harris, N. R., et al. Performance of a micro-engineered ultrasonic particle manipulator. Sensors and Actuators B: Chemical. 111, 481-486 (2005).
  25. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-18 (2016).
  26. Beattie, W., et al. Clog-free cell filtration using resettable cell traps. Lab on a Chip. 14 (15), 2657-2665 (2014).
  27. Cheng, Y., et al. A bubble- and clogging-free microfluidic particle separation platform with multi-filtration. Lab on a Chip. 16 (23), 4517-4526 (2016).

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