本研究得到了国家重点研发计划（2021YFA1101100）、国家自然科学基金（32000971）、中央高校基本科研业务费（2021FZZX001-42）和浙江大学上海高等研究院星夜科学基金（批准号：Grant No.SN-ZJU-SIAS-004）。

1. 组装磁铁组
<ol><li>组装条形图案的磁铁组。<ol><li>选择扁平矩形磁铁，如 图1A所示。用于此演示的矩形磁铁的尺寸为 1.5 mm × 10 mm × 35 mm（厚度×高度×长度）（参见 材料表）。磁铁的厚度决定了细胞条纹之间的间隙。</li>
		<li>将 2 毫米厚的硅胶板（参见 材料表）切成 2 毫米× 8 毫米× 30 毫米的矩形。确保这些硅胶板的后两个尺寸略小于上述矩形磁铁的尺寸，以优化组装。硅胶板的厚度决定了电池条纹的宽度。</li>
		<li>逐层组装矩形磁铁和硅胶板，如 图 1A 所示。每个磁铁组由 4 个磁铁和 3 个硅胶板组成。确保每个相邻磁铁的磁极相对，以便磁铁组可以由于内在吸引力而自动对齐。</li>
		<li>使用前对磁铁进行消毒。 注意：建议用纯水清洗磁铁组，然后将它们浸入 75% 乙醇中 10 分钟。这些磁体组的整体尺寸为 12 mm × 10 mm × 35 mm，设计用于标准 6 孔细胞培养板。</li>
	</ol></li>
	<li>组装点阵图案的磁铁组<ol><li>选择微型圆柱形磁铁，如 图1B所示。用于此演示的圆柱形磁铁的尺寸为 Φ1.5 mm × 10 mm（直径×高度），沿轴向磁化。</li>
		<li>如 图 1B 所示组装圆柱形磁铁。确保每个磁铁组由 36 个圆柱形磁铁组成，这些磁铁排列在 6 × 6 网格中。此外，确保每个相邻磁铁的磁极相对，以允许磁铁组由于内在吸引力而自动对齐。</li>
		<li>使用前对磁铁进行消毒，遵循与步骤 1.1.4 相同的步骤。这些磁体组的整体尺寸为 9 mm × 10 mm × 9 mm，设计用于标准 6 孔细胞培养板。</li>
	</ol></li>
</ol>2. 载玻片上的细胞图案
<ol><li>准备细胞培养装置。<ol><li>使用 2 毫米厚的硅胶板制作硅胶模具。使用打孔器在板上创建一个 1 厘米× 1 厘米的矩形孔。在孔周围修剪硅胶板，以制作一个圆形模具（直径 = 25 mm），孔位于中心，如 图 1C 所示。</li>
		<li>使用超声波清洗机彻底清洁硅胶模具。通过用纯净水洗涤模具10分钟来灭菌模具，然后用75%乙醇代替水再消毒10分钟。最后，将模具在65°C的灭菌器盒中干燥60分钟。</li>
		<li>将灭菌的硅胶模具连接到Φ25 mm圆形玻璃细胞载玻片上，轻轻按压，使硅胶粘附在玻璃上，如 图1C所示。由此产生的细胞培养装置将具有玻璃底面和 200 μL 培养腔。该装置的尺寸为 Φ25 mm × 2.15 mm，适用于标准 6 孔细胞培养板。 注意：上述细胞培养装置可以用其他底面薄于 0.5 毫米的培养皿代替，例如共聚焦培养皿。</li>
		<li>将磁铁组放在 6 孔板上。建议使用非磁性镊子，以便于操作。 注意：从这一点开始，所有后续步骤都应在无菌条件下进行，直到观察到细胞模式。</li>
		<li>将细胞培养装置放置在 6 孔板孔中的磁铁组顶部。确保细胞培养装置水平放置，底部与磁铁组紧密接触。</li>
	</ol></li>
	<li>制备含有Gd-DTPA的细胞培养基<ol><li>制备市售的Gd-DTPA注射液（见 材料表），通常浓度为500mM。通过将 30 μL Gd-DTPA 注射液加入 470 μL 完全细胞培养基中来稀释进样液，以达到 30 mM 的目标浓度。 注：根据当地法规和可用性，具有相同目标浓度的其他钆基造影剂 （GBCA） 可能会产生类似的结果11.</li>
	</ol></li>
	<li>创建单元格模式。<ol><li>收获细胞进行图案化。在本演示中，使用人脐静脉内皮细胞（HUVEC，见 材料表）进行图案化（图2）。将细胞在200× g （室温下）离心5分钟，以从悬浮液中收集它们，并将它们重悬于含有Gd-DTPA的培养基中。计算细胞密度。</li>
		<li>用含 Gd-DTPA 的培养基将细胞密度调节至约 ~2 ×10 个 5 个 细胞/mL。轻轻混合细胞悬液，并向每个细胞培养模具的腔中加入 200 μL，以形成充满边缘的液体表面。</li>
		<li>小心地将板转移到细胞培养箱中并孵育3-6小时，直到细胞很好地粘附在底物上。避免砰的一声关上培养箱门，以防止干扰细胞图案的组装。对于粘附率低的细胞，用GBCAs过夜处理通常是安全的12。</li>
		<li>当细胞粘附在细胞培养装置的腔底部时，细胞图案化被认为是完整的。用完全培养基替换含Gd-DTPA的培养基。</li>
		<li>从磁铁组中取出细胞培养装置。人们可以立即观察细胞模式或将设备转移到新的培养板中进行进一步培养。</li>
	</ol></li>
</ol>3. 磁铁侧向共培养图案：移动模板的制作
注意：以下程序旨在利用基于 Mag-Arch 的单元图案并探索更多应用的可能性。
<ol><li>按照步骤 1 和步骤 2 准备设备以进行条纹单元图案化。但是，将细胞密度降低到1×105 个细胞/mL，并用更薄的硅胶板替换将磁铁分开的硅胶板，使每个条纹细胞图案更薄。 注意：这为以条纹模式放置多个单元格提供了足够的区域。作为参考，我们建议使用 1 毫米硅胶板而不是 2 毫米来分离磁铁。</li>
	<li>对第一种类型的单元格进行图案化，如步骤 2.2-2.3 所示。此步骤还需要 3-6 小时进行细胞附着。 注意：为了区分共培养系统中的不同细胞类型，用户可以在图案化之前使用荧光染料（如 DiI、DiD 或细胞跟踪器（CMTPX、CMFDA、CMAC 等）标记细胞。例如，对于 DiI 和 DiD 染色，每 1 mL 无 FBS 培养基中加入 1 μL 储备溶液 （10 mM）（参见 材料表），并充分混合以获得工作溶液。用工作溶液替换培养基以覆盖贴壁细胞。孵育 30 分钟并用 PBS 洗涤 3 次后，继续进行细胞收获。</li>
	<li>对第一种类型的细胞进行图案化后，将细胞培养装置从下面的磁铁向右移动 1 mm，如 图 3Aii 所示。</li>
	<li>用 200 μL PBS 轻轻洗涤载玻片两次。避免让载玻片干燥。</li>
	<li>以步骤2.2-2.3中所示的相同方式对第二种类型的单元格进行图案化。</li>
	<li>如 图3Aiii所示，将细胞培养装置从下面的磁铁向右移动1 mm，并再次用200μLPBS洗涤载玻片。以步骤2.2-2.3中所示的相同方式对第三种类型的单元格进行图案化。</li>
	<li>对所有类型的细胞进行图案化后，用 200 μL PBS 轻轻洗涤载玻片两次，并用完整的细胞培养基替换。</li>
	<li>从磁铁组中取出细胞培养装置。然后可以观察细胞模式或将设备转移到新的培养板上进行进一步培养。</li>
</ol>4. 通过调节Gd-DTPA浓度进行共培养图案化
注意：GBCA在工作浓度（≤75 mM）下不会显着影响细胞粘附或随后的生长。此外，细胞模式受 Gd-DTPA 浓度的影响：浓度越高，细胞模式越小/越薄。因此，可以通过简单地调整Gd-DTPA的浓度来创建共培养系统。此示例演示了同心圆阵列的图案化。
<ol><li>使用步骤1.2中的微型圆柱形磁铁对第一种类型的电池进行图案化，如步骤2.2-2.3所示。在收获细胞之前，用荧光染料（如 DiI、DiD 或细胞追踪器）标记细胞，以区分共培养系统中的不同细胞类型。 注意：需要更高浓度的 Gd-DTPA（50 mM 而不是 30 mM）和更低的细胞密度，大约 1 × 10 个5 个 细胞/mL。</li>
	<li>对第一个细胞阵列进行图案化后，用 200 μL PBS 轻轻洗涤载玻片两次。避免让载玻片变干。</li>
	<li>按照与以前相同的步骤对第二种类型的细胞进行图案化。使载玻片在磁铁上保持相对不动，以防止脱位。建议将带有空心的硅胶板连接到载玻片的下表面，该空心适合磁铁组。 注意：在这里，需要较低浓度的Gd-DTPA（20mM而不是30mM），以便第二个细胞模式预计比第一个细胞模式大，如 图3B所示。</li>
	<li>对所有类型的细胞进行图案化后，用 200 μL PBS 轻轻洗涤载玻片两次，并用完全细胞培养基替换培养基。</li>
	<li>从磁铁组中取出细胞培养装置。然后可以观察细胞模式或将设备转移到新的培养板上进行进一步培养。</li>
</ol>5. 微流控芯片中的细胞图案化
注意：在我们之前的研究8 中，基于 Mag-Arch 的方法已被证明可以在封闭的狭窄腔室中工作。这是在微流体通道中图案化点阵的示例。
<ol><li>微流体芯片的制造<ol><li>定制 40 mm × 75 mm × 20 mm 聚四氟乙烯 （PTFE） 模具（参见 材料表），其中包含 24 mm × 50 mm × 8 mm 的矩形型腔，如 图 4A 所示。</li>
		<li>压平 0.5 毫米厚的硅胶板。根据流体通道的形状切割硅胶板，流体通道具有 15 mm × 20 mm × 0.5 mm 的矩形腔体，入口和出口侧都有三角形缓冲区，如图 4A，B 所示。</li>
		<li>定制 40 毫米× 75 毫米矩形玻璃板。用空气等离子清洗玻璃板 30 秒。</li>
		<li>空气等离子体清洗后，立即用 0.5 mL 市售抗粘连缓冲液覆盖玻璃板（参见 材料表）并让它们风干。用乙醇清洗玻璃板一次，然后让它们风干。</li>
		<li>将步骤5.1.2中制备的硅胶板牢固地连接到玻璃板的中间，如 图4A所示。</li>
		<li>根据制造商的说明制备聚二甲基硅氧烷（PDMS）预聚物（见 材料表）。对于每个PDMS芯片，将10 g碱成分和1 g固化剂称取到50 mL离心管中。</li>
		<li>用玻璃搅拌棒充分混合药剂，直到小气泡均匀分布在胶体中。混合需要5-10分钟，具体取决于胶体体积。将胶体预聚物在500× g （室温下）离心1分钟以消除气泡。</li>
		<li>将 ~10 mL 的预聚物缓慢倒入型腔中以填充 PTFE 模具。</li>
		<li>小心地将模具放入真空储液罐中并保持水平，以防止预聚物流走。</li>
		<li>用真空泵去除预聚物中残留的气泡。吸尘需要 120-180 分钟。</li>
		<li>如果需要，倒入更多的预聚物以进一步填充模具型腔。再吸尘 60 分钟。</li>
		<li>小心地用玻璃板盖住PTFE模具，二氧化硅面朝向型腔，如 图4Bi所示。</li>
		<li>确保消除所有气泡。将模具转移到60°C干燥箱中，使预聚物凝固过夜。</li>
		<li>从烤箱中取出模具。冷却后，小心地对凝固的PDMS盖进行脱模。用 Φ1 mm 针刺器创建入口和出口。</li>
		<li>按照步骤 2.1.2 清洗 PDMS 盖和 24 mm × 50 mm 盖玻片。 注意： 在无菌条件下继续执行以下步骤。</li>
		<li>连接PDMS盖和盖玻片，以创建包含高度约为~500μm的流道的微流体芯片。底部应由一个 ~0.15 mm 的玻璃盖玻片组成，以便使用基于 Mag-Arch 的策略进行细胞图案化。</li>
	</ol></li>
	<li>将市售的无菌适配器组装到微流体芯片8 的入口和出口中。</li>
	<li>制备2%（w / v，溶解在PBS中）明胶包衣缓冲液。通过高压灭菌对缓冲液进行灭菌。</li>
	<li>使用 1 mL 注射器 通过 入口适配器将明胶包被缓冲液注入芯片中。如果出现气泡，请用额外的涂层缓冲液将其冲洗掉。</li>
	<li>将芯片放入 10 cm 细胞培养皿中。在培养皿底部周围加入 1 mL PBS，以避免干燥。将培养皿转移到细胞培养箱中。涂层需要 30 分钟。</li>
	<li>通过入口用 2 mL 含 Gd 的培养基 （30 mM） 冲洗包被缓冲液。</li>
	<li>用 1 mL 注射器轻轻注射含有 30 mM Gd-DTPA 的 1 mL 细胞悬液。</li>
	<li>如步骤2.2-2.3所示的图案电池使用步骤1.2中的微型圆柱形磁铁。 注意： 但是，建议将带有适合磁铁组的空心硅胶板连接到载玻片的下表面，如 图 4Ci 所示。</li>
	<li>图案化后，用 1 mL 注射器冲洗，用 1 mL 完全培养基轻轻刷新含有 Gd-DTPA 的培养基。 注意：从步骤5.7-5.9开始，微流体中的细胞图案化过程大约需要180分钟，这类似于标准载玻片上的细胞图案化。</li>
	<li>在显微镜下量化图案。如果需要，将微流体芯片连接到循环培养装置以进行进一步培养。 注意：根据我们的经验，当由基于微泵的简单设备支持时，细胞能够生长至少 72 小时，该设备在细胞培养箱8 中为微流体提供连续流动的新鲜培养基。</li>
</ol>

一种新型的无墨水、无标记磁性阿基米德细胞图案化方法

<ol>
	<li>Christian, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+cell+adhesion+using+hydrogel+patterning+techniques+for+applications+in+traction+force+microscopy.">Control of cell adhesion using hydrogel patterning techniques for applications in traction force microscopy.</a> J Vis Exp. 179, e63121 (2022).</li><li>Abbas, Y., Turco, M. Y., Burton, G. J., Moffett, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Investigation+of+human+trophoblast+invasion+in+vitro.">Investigation of human trophoblast invasion in vitro.</a> Hum Reprod Update. 26 (4), 501-513 (2020).</li><li>Park, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulation+of+heterotypic+and+homotypic+cell-cell+interactions+via+zwitterionic+lipid+masks.">Modulation of heterotypic and homotypic cell-cell interactions via zwitterionic lipid masks.</a> Adv Healthc Mater. 6 (15), 1700063 (2017).</li><li>Ren, T., Chen, P., Gu, L., Ogut, M. 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提交人没有相互竞争的经济利益。

基于 Mag-Arch 的细胞图案化为大多数生物医学实验室提供了用户友好的解决方案。该方法与无墨水、无标记、独立于基材的特征以及高通量图案化的能力并行 8,13。对于单体细胞图案化，它以一步方式对细胞进行图案化。该过程只需刷新培养基即可完成。
以前的研究使用磁性粒子来标记细胞并用磁铁吸引它们以形成精确的图案<sup clas...

细胞图案化正在发展成为一种直观而强大的 体外 研究技术1.通过操纵培养板中的细胞位置，它为各种实验提供了解决方案，包括细胞迁移2、仿生多细胞共培养3、类器官组装4、生物材料研究5 等。在大多数情况下，无墨水、无标记方法是细胞图案化的首选方法，因为它为后续研究提供了易于操作和高细胞活力。
磁拱效应是一种物理现象，其中顺磁性液体中的抗磁性物体倾向于向磁场较弱的区域移动6.活细胞具有天然的抗磁性，而细胞培养基可以通过添加可溶性顺磁性元素制成顺磁性，例如钆喷酸二葡甲胺 （Gd-DTPA），通常用于静脉注射核磁共振成像作为造影剂7。因此，预计细胞将被周围的顺磁性介质排斥，并移动到磁场较弱的区域8.使用一组钕磁铁可以很容易地产生图案磁场。理想情况下，电池图案与磁铁图案相反。从技术上讲，这被定义为一种无标记方法，因为唯一的附加试剂 Gd-DTPA 保留在细胞外环境中并且不与细胞结合。因此，通过更换培养基，可以很容易地避免对后续细胞培养的潜在影响。与其他方法1,3,9,10相比，基于Mag-Arch的策略不需要生物墨水成分或应用特定颗粒来积极标记细胞。此外，它已被证明可以在多种底物上进行细胞粘附，并且能够实现高通量细胞图案化4。
本文介绍了使用基于 Mag-Arch 的方法进行细胞图案化的详细协议，涵盖了从设备制造到调整细胞图案的所有内容。除了我们已经演示的图案外，用户还可以使用磁铁和Gd-DTPA解决方案轻松创建各种单元图案。此外，还提供了用于在封闭的微流控芯片中组装复杂的共培养模式和操纵细胞的方案。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>A2780 ovarian cancer cells</td>
			<td>Procell</td>
			<td>CL-0013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell culture medium (DMEM, high glucose)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11995040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cover slides</td>
			<td>Citotest Scientific</td>
			<td>80340-3610</td>
			<td>For fabricating microfluidics. Dimension: 24 mm &#215; 50 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DiD</td>
			<td>MedChemExpress (MCE)&#160;</td>
			<td>HY-D1028</td>
			<td>For labeling cells with red fluorescence (Ex: 640 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DiI</td>
			<td>MedChemExpress (MCE)&#160;</td>
			<td>HY-D0083&#160;</td>
			<td>For labeling cells with orange fluorescence (Ex: 550 nm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Serum (FBS)</td>
			<td>Biochannel</td>
			<td>BC-SE-FBS07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gadopentetate dimeglumine (Gd-DTPA)</td>
			<td>Beijing Beilu Pharmaceutical&#160;</td>
			<td>H10860002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gelatin</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>V900863</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass cell slides</td>
			<td>Citotest Scientific</td>
			<td>80346-2510</td>
			<td>Diameter: 25 mm; thickness: 0.19-0.22 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass plates</td>
			<td>PURESHI hardware store</td>
			<td></td>
			<td>For fabricating microfluidics. Dimension: 40 mm &#215; 75 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Human Umbilical Vein Endothelial Cells (HUVECs)</td>
			<td>Servicebio</td>
			<td>STCC12103G-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neodymium-iron-boron magnets (N52)</td>
			<td>Lalaci</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-toxic glass plate coating (Gel Slick Solution)</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>1049286</td>
			<td>For convenience of demolding when fabricating microfluidics</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td>
			<td>Servicebio</td>
			<td>G4200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plasma cleaner</td>
			<td>SANHOPTT</td>
			<td>PT-2S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polydimethylsiloxane (PDMS) kit</td>
			<td>DOWSIL</td>
			<td>SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit</td>
			<td>For fabricating microfluidics</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polytetrafluoroethylene (PFTE) mold</td>
			<td>PURESHI hardware store</td>
			<td></td>
			<td>Customized online, for fabricating microfluidics</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon plate</td>
			<td>PURESHI hardware store</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smooth Muscle Cells (SMC)</td>
			<td>Procell</td>
			<td>CL-0517</td>
			<td></td>
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			<td>Ultrasonic cleaner</td>
			<td>Sapeen</td>
			<td>CSA-02</td>
			<td></td>
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cell patterning using magnetic-archimedes strategy

细胞图案化可以精确控制细胞定位，在细胞行为研究中具有独特的优势。在该协议中，引入了一种基于磁阿基米德（Mag-Arch）效应的细胞图案化策略。这种方法可以在不使用油墨材料或标记颗粒的情况下精确控制细胞分布。通过引入顺磁性试剂来增强细胞培养基的磁化率，细胞被磁铁排斥，并排列成与位于微流体基板下方的磁铁组互补的图案。
在本文中，提供了使用基于 Mag-Arch 的策略进行细胞图案化的详细过程。提供了用于单细胞类型以及用于共培养实验的多种细胞类型的图案化方法。此外，还提供了制造包含细胞图案化通道的微流控装置的综合说明。使用并行方法实现此功能具有挑战性，但可以以简化且经济高效的方式完成。采用基于 Mag-Arch 的细胞图案化为研究人员提供了强大的 体外 研究工具。

Cell patterning is evolving into an intuitive and powerful technology for in vitro studies1. By manipulating cell positions in culture plates, it provides solutions for a variety of experiments, including cell migration2, biomimetic multicellular co-culture3, organoid assembly4, biomaterial studies5, and more. In most situations, an ink-free, label-free method is preferred for cell patterning because it offers ease of operation and high cell viability for subsequent investigations.
The Mag-Arch effect is a physical phenomenon wherein diamagnetic objects in paramagnetic liquids tend to move toward regions with weak magnetic fields6. Living cells are naturally diamagnetic, while cell culture media can be made paramagnetic by adding soluble paramagnetic elements, such as gadopentetate dimeglumine (Gd-DTPA), commonly used intravenously in nuclear magnetic resonance imaging as a contrast agent7. Consequently, cells are expected to be repelled by the surrounding paramagnetic medium and move toward regions where magnetic fields are weaker8. A patterned magnetic field can be easily generated using a set of neodymium magnets. Ideally, cell patterns are assembled in opposition to the magnet patterns. Technically, this is defined as a label-free method because the only additional reagent, Gd-DTPA, remains in the extracellular environment and does not bind to cells. Thus, potential influences on subsequent cell culture can be easily avoided by replacing the culture medium. Compared to other methods1,3,9,10, the Mag-Arch-based strategy does not require bio-ink components or the application of specific particles to positively label the cells. Furthermore, it has been shown to work on multiple substrates for cell adhesion and is capable of high-throughput cell patterning4.
This article presents a detailed protocol for cell patterning using the Mag-Arch-based method, covering everything from device fabrication to adjusting the cell pattern. In addition to the patterns we have demonstrated, users can easily create various cell patterns using magnets and Gd-DTPA solution. Furthermore, protocols for assembling complex co-culture patterns and manipulating cells in enclosed microfluidic chips, are also provided.

作者聚焦：用于高通量生物医学应用的基于磁性的细胞图案化方法 

使用磁阿基米德策略的细胞图案化

选择矩形（1.5 mm × 10 mm × 35 mm）和圆柱形（Φ1.5 m × 10 mm）磁体来创建电池图案作为演示。用户可以灵活地修改磁铁的尺寸和形状，或以不同的方式组装它们以创建不同的细胞图案。在图1A，B中，磁铁被组装起来，磁极用蓝色（南）和红色（北）描绘，以清晰起见。在这种配置中，磁铁横向相互吸引并自行对齐，如图 2 所示。<strong class="xfig...

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该协议描述了一种基于磁阿基米德效应的无墨水、无标记、独立于基板、高通量细胞图案化的方法。

Cell patterning, allowing precise control of cell positioning, presents a unique advantage in the study of cell behavior. In this protocol, a cell ...

细胞图案化是用于体外研究的直观而强大的技术。我们的研究旨在提供一种多功能、用户友好且廉价的细胞模式方法，该方法可以在大多数生物医学实验室中复制。与其他方法相比，我们的协议不需要专门的技能和设备。此外，它还与无墨水、无标签、独立于基材的特征以及高通量图案化的能力并行。该协议只需要两种必需品：磁铁和钆基造影剂，它们都很容易以低廉的价格获得。基于磁性的细胞模式方法为各种实验的第一步提供了方便的解决方案，包括细胞迁移、仿生多细胞共培养、类器官组装、生物材料研究等。

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Research

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Bioengineering

Cell Patterning Using Magnetic-Archimedes Strategy

1.0K 次观看.  Zhejiang University School of Medicine. 细胞图案化是用于体外研究的直观而强大的技术。我们的研究旨在提供一种多功能、用户友好且廉价的细胞模式方法，该方法可以在大多数生物医学实验室中复制。与其他方法相比，我们的协议不需要专门的技能和设备。此外，它还与无墨水、无标签、独立于基材的特征以及高通量图案化的能力并行。该协议只需要两种必需品：磁铁和钆基造影剂，它们都很容易以低廉?...

视频: 作者聚焦：用于高通量生物医学应用的基于磁性的细胞图案化方法 

Cell patterning, allowing precise control of cell positioning, presents a unique advantage in the study of cell behavior. In this protocol, a cell patterning strategy based on the Magnetic-Archimedes (Mag-Arch) effect is introduced. This approach enables precise control of cell distribution without the use of ink materials or labeling particles. By introducing a paramagnetic reagent to enhance the magnetic susceptibility of the cell culture medium, cells are repelled by magnets and arrange themselves into a pattern complementary to the magnet sets positioned beneath the microfluidic substrate.
In this article, detailed procedures for cell patterning using the Mag-Arch-based strategy are provided. Methods for patterning single-cell types as well as multiple cell types for co-culture experiments are offered. Additionally, comprehensive instructions for fabricating microfluidic devices containing channels for cell patterning are provided. Achieving this feature using parallel methods is challenging but can be done in a simplified and cost-effective manner. Employing Mag-Arch-based cell patterning equips researchers with a powerful tool for in vitro research.

This protocol describes an ink-free, label-free, substrate-independent, high-throughput cell patterning method based on the Magnetic Archimedes effect.