Nachdem Sie die native Leber aus der betäubten Empfängermaus extrahiert haben, fassen Sie die Leberpfortader oder den PV-Rand des Empfängers vorsichtig mit einer Stiftzange und sichern Sie sie mit einem Schraubstock. Führen Sie einen acht Millionen Seidenfaden um den PV und legen Sie eine Gefäßklemme darauf. Erstellen Sie einen viertel Umfangsabschnitt etwa 0,5 Millimeter von der PV-Kante entfernt.
Während Sie Kochsalzlösung durch das Loch führen, verwenden Sie ein spezielles Instrument, um das Loch zu vergrößern. Fassen Sie den Manschettengriff mit einer geraden Pinzette und führen Sie ihn in das Lumen ein. Befestigen Sie dann die Manschette mit einem 8.0 Seidenfaden.
Entfernen Sie die Gefäßklemme von PV, um eine Reperfusion der Leber zu ermöglichen. Lassen Sie schließlich die Stiftzange vorsichtig los, um die PV-Rekonstruktion abzuschließen. Bewegen Sie nach der Positionierung des Leberlappens die Stiftzange, die dorsal an der IHIVC-Empfängerpinzette befestigt ist, in den rechten Unterlappen des Transplantats.
Sichern Sie dann den IHIVC mit einem Schraubstock. Reiben Sie das verbleibende Lebergewebe um das IHIVC des Empfängers mit einem Wattestäbchen ab. Führen Sie einen 8,0-Seidenfaden um den IHIVC des Empfängers.
Erstellen Sie einen vierten Umfangsabschnitt, der etwa 0,5 Millimeter von der IHIVC-Kante des Empfängers entfernt ist. Nachdem Sie das Lumen mit Kochsalzlösung gespült haben, führen Sie die Manschette in das IHIVC-Lumen ein. Befestigen Sie die Manschette vorsichtig mit einem 8.0 Seidenfaden.
Entfernen Sie schließlich die Gefäßklemme und die Stiftzange. Die Konservierung des Transplantats bei kalten Temperaturen für eine Stunde führte zu Serum-Alanin-Aminotransferase-Spiegeln, die sechs Stunden nach der Reperfusion durchschnittlich etwa 2000 Einheiten pro Liter betrugen. Sieben Tage nach der Transplantation wurde eine Überlebensrate von 100 % beobachtet.
