Diese Arbeit wurde von Natural Science Foundation of Beijing (No.7162124) und Xin-Ao-Stiftung für die Peking-Universität der chinesischen Medizin unterstützt.

Alle Tiere wurden nach den Richtlinien von der chinesischen Gesetzgebung über die ethische Verwendung und Pflege von Versuchstieren beibehalten.
1. Pre-Modellierung-Vorbereitung
<ol><li>
Labor-Vorbereitung
	<ol>
<li>Führen Sie die UV-Lampe für mindestens 30 min vor dem Experiment.</li>
		<li>Die Lab-Temperatur bei 25 ± 3 ° C und die Relative Luftfeuchtigkeit ca. 30 % Steuern.</li>
		<li>Das Labor Licht am 06:00 schalten Sie und schalten Sie ihn aus, um 18:00, einen 12 h/12 h Hell/Dunkel-Zyklus zu etablieren.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Mehreren Plattform Kastenkonstruktion
	<ol>
<li>Konstruieren Sie eine undurchsichtige Kunststofftank ohne Abdeckung von 110 × 60 × 40 cm3.</li>
		<li>Fünfzehn kreisförmige Plattformen zu beheben (h = 8 cm, d = 6,5 cm) auf der Unterseite des Tanks, welche ordentlich in drei Zeilen und 5 Spalten verteilen. Lassen Sie genügend Platz zwischen jeder Plattform, etwa 10 cm zwischen Spalten und 13 cm zwischen den Reihen.</li>
		<li>Legen Sie einen Wasseraustritt an der lateralen Seite des Tanks und installieren Sie einen Wasserhahn zu.</li>
		<li>Machen Sie ein Eisen-Maschendraht-Cover für den Tank mit einer Lebensmittel-Box hängen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Gruppierung und Gehäuse Ratten Hinweis: Männliche Wistar Ratten 8 Wochen alt, mit einem Gewicht von ca. 200-210 g werden im Experiment verwendet. Die Ratten Leben in Gruppen während des Modellierungsprozesses.<ol>
<li>Nummerieren Sie die Ratten Schweif Wurzeln mit einem Filzstift.</li>
		<li>Wiegen Sie die Ratten, schließen Sie die extrem leichte oder schwere aus und teilen Sie den Rest nach dem Zufallsprinzip in das Modell und Kontrollgruppen.</li>
		<li>Legte die Ratten sanft in die saubere Käfige und es ihnen ermöglichen, an das Labor für mindestens 3 Tage akklimatisieren. Stellen Sie ausreichend Wasser und Verpflegung.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Modellierung mit MMPM
Hinweis: Der Prozess beginnt um 18:00 und endet um 08:00 am nächsten Tag, für eine Gesamtmenge von 14 h pro Tag, über 21 Tage. Zur Vermeidung von Störfaktoren ist die gleiche Person erforderlich, um das gesamte Experiment während des Tragens der gleichen Laborkittel durchzuführen. Im Experiment werden 10 Wistar-Ratten verwendet.
<ol><li>Platzieren Sie den Tank auf einer flachen Oberfläche, z. B., der Boden. Dann füllen Sie den Tank mit ca. 7 cm von Warmwasser (25 ± 3 ° C) ca. 1 cm unterhalb der flachen Plattform.</li>
	<li>Bereiten Sie genug Essen und trinken für alle Ratten im Tank für 1 Tag. Futter und Wasser in der Lebensmittel-Box und hängen Sie es auf dem Cover. Hinweis: Einige intelligente Ratten lernen, auf die Lebensmittel-Box zu ruhen. Wenn ja, fahren sie zurück in den Tank.</li>
	<li>Die Model Gruppe Ratten aus dem Käfig nehmen, greifen sie am Schwanz und legte sie sanft in den Tank. Die Ratten im Wasser anstelle von den Plattformen zu motivieren, ihre Angst vor dem Wasser zu starten. Stellen Sie sicher, dass jede Ratte eine Plattform bekommt auf, zu stehen, während Ratten der Kontrollgruppe in ihren ursprünglichen Käfigen mit ausreichend Nahrung und Wasser bleiben.</li>
	<li>Decken Sie den Tank. Überwachen Sie die Ratten um Verletzungen zu vermeiden. Wenn eine Ratte im Wasser für mehr als 1 h bleibt ohne Klettern auf der Plattform, wählen Sie es aus dem Tank und entfernen Sie sie aus dem Test.</li>
	<li>Nehmen Sie ab 14 Uhr die Modell-Ratten aus dem Tank und trocknen Sie ihre Haare mit einem Trockner. Neu markieren Sie die Ratten Schwänzen wenn es verblasst. Zurückkehren Sie die Ratten zu ihren ursprünglichen Käfigen und Ihnen Sie ausreichend Nahrung und Wasser.</li>
	<li>Spülen Sie jede Ecke des Tanks. Heben Sie eine Seite des Tanks zu und öffnen Sie den Wasserhahn, um das Abwasser Abfluss.</li>
	<li>Den Tank mit einem 75 % Ethanol Spray zu sterilisieren und das UV-Licht aussetzen.</li>
</ol>3. Modell: Behavioral Feststellungsprüfung
Hinweis: Alle Tests werden in der Verhaltenstherapie Labor durchgeführt. Zusätzliches Licht und Lärm während der Prüfung dürfen nicht um Störungen zu vermeiden. Verwenden Sie nach Möglichkeit die gleichen Personen, jeder Test durchzuführen. Einen dunklen Mantel und Handschuhe sind Voraussetzung für die Anerkennung der Graustufen in der Bildverarbeitung. Führen Sie das OFT zuerst, da es die geringsten Auswirkungen auf Ratte Verhalten hat.
<ol><li>
OFT
	<ol>
<li>Überprüfen Sie den Recorder über offenes Feld um sicherzustellen, dass es ordnungsgemäß an die Workstation angeschlossen und deckt jede Ecke des Feldes. Passen Sie die Beleuchtung um Schatten im Feld zu beseitigen.</li>
		<li>Verschieben Sie die Ratten in behavioral Labor in ihren ursprünglichen Käfigen. Lassen sie für mindestens 1 h vor dem Test zu akklimatisieren.</li>
		<li>Reinigen Sie und Desinfizieren Sie die Box mit 75 % Ethanol um sicherzustellen, dass es keinen Kot oder Geruch aus früheren Experiment verließ.</li>
		<li>Entfernen Sie eine Ratte aus dem Käfig, indem den Rücken und legen Sie es sanft in den zentralen Bereich des Feldes. Schnell ziehen Arme aus Feld, nicht um die Aufnahme zu blockieren.</li>
		<li>Geben Sie die Nummer der Ratte und Aufnahme starten. Zählen Sie und erfassen Sie die Häufigkeit der Ratte vertikale Aktivitäten, einschließlich der Aufzucht und Klettern.</li>
		<li>Beenden Sie nach 5 min die Aufnahme, die Ratte aus der Verpackung nehmen und in den Käfig zurück.</li>
		<li>Wiederholen Sie die Schritte 3.1.3 - 3.1.6, bis die Ratten den Test beendet haben.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
EPM
	<ol>
<li>Der Pre-Check und Akklimatisierung Schritte wie bei dem OFT (Schritte 3.1.1 - 3.1.2).</li>
		<li>Eine Ratte aus dem Käfig entfernen, indem den Rücken und legte sie sanft auf die Kreuzung der beiden Arme. Die Ratte in Richtung der linken offenen Arm landen und lassen Sie schnell um die Aufnahme zu blockieren.</li>
		<li>Geben Sie die Nummer der Ratte und Aufnahme starten. Zählen Sie und erfassen Sie die Häufigkeit der verschiedenen Arm-Eingänge. Sinkt die Ratte aus dem Labyrinth im Test, holen Sie es und senden Sie es an das Labyrinth zurück. Detaillierte Informationen zur Datenanalyse.</li>
		<li>Beenden Sie nach 5 min die Aufnahme, die Ratte heraus zu nehmen und in den Käfig zurück.</li>
		<li>Entfernen Sie die Exkremente und wischen Sie das Labyrinth mit 75 % Ethanol, die ehemalige Ratte Geruch zu beseitigen.</li>
		<li>Wiederholen Sie die Schritte 3.2.2 - 3.2.5 bis die Ratten den Test beendet haben.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
ES test
	<ol>
<li>Füllen Sie den Swimming Tank (70 × 30 × 110 cm3) mit 80 cm Warmwasser (25 ± 3 ° C). Hinweis: Ist ein Thermostat im Tank, sollte die Wassertemperatur ca. 37 ° C, festgelegt werden, die Ratte Körpertemperatur ähnelt. Ist dies nicht der Fall, setzen Sie ihn auf Zimmertemperatur, es konstant zu halten.</li>
		<li>Stellen eine Belastung für jede Ratte mit Pin Trauben und binden Sie es sanft auf seine Rute Wurzel. Die Last wiegt 10 % des Gewichts der Ratte.</li>
		<li>Greifen Sie eine Ratte am Schwanz zu und werfen Sie es in den Tank schwimmen. Wenn die Ratten drängen oder Klammern sich an die Wand, auseinander gesetzt und fahren sie zurück ins Wasser.</li>
		<li>Starten der Zeitmessung im Moment wenn die Ratte ist ins Wasser und Stop timing, wenn er erschöpft ist, beweist die als Misserfolg zu kämpfen, aus Wasser mit dem Mund und Nase unter dem Wasser für mehr als 10 s. Hinweis: Manchmal, Erschöpfung und ertrinken plötzlich auftreten. Achten Sie darauf, genügend Experimentatoren, aufnehmen und speichern das Tier zur gleichen Zeit haben.</li>
		<li>Entfernen Sie die erschöpften Ratten aus dem Wasser ohne andere zu unterbrechen. Trocknen Sie ihre Haare wieder markieren Sie ihre Zahlen und schicken sie zurück zum Käfig.</li>
		<li>Wechseln Sie das Wasser im Tank, nachdem eine Gruppe beendet wurde. Nachdem die Ratten fertig sind, leeren Sie den Tank Schwimmen und sauber und mit Ethanol und UV-Licht sterilisiert.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. Modell Bewertung: Zentrale Neurotransmitter Erkennung
<ol><li>Betäuben Sie die Ratte mit Intra peritoneale Injektion von 10 % Chloral Hydrate (3 mL/kg), bis sie bewusstlos ist.</li>
	<li>Die Ratte zu enthaupten.</li>
	<li>Eine longitudinale Einschnitt entlang der Post-mediale, der Schädel beidseitig zu öffnen und aussetzen des Gehirns. Umdrehen Sie der Schädel, entfernen Sie das Gehirn zu und setzen Sie das Gehirn auf einen Eisbeutel.</li>
	<li>Trennen Sie und entfernen Sie den Hypothalamus, die rautenförmigen Bereich im zentralen Teil der Basis des Gehirns, die eine klare Grenze mit umgebenden Gewebe hat. Legen Sie sie in ein steriles Röhrchen und fixieren Sie sie mit flüssigem Stickstoff. Alle Proben im Kühlschrank-80 ° C aufbewahren.</li>
	<li>Erkennen Sie den Inhalt der DA und 5-HT im Hypothalamus mit Hochleistungs-Flüssigkeitschromatographie (HPLC)8.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Ishii, A., Tanaka, M., Yamano, E., Watanabe, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neural+substrates+of+physical+fatigue+sensation+to+evaluate+ourselves:+a+magnetoencephalography+study.">The neural substrates of physical fatigue sensation to evaluate ourselves: a magnetoencephalography study.</a> Neuroscience. 261, 60-67 (2014).</li><li>Dalsgaard, M. K., Secher, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Brain+at+Work:+A+Cerebral+Metabolic+Manifestation+of+Central+Fatigue?.">The Brain at Work: A Cerebral Metabolic Manifestation of Central Fatigue?.</a> Journal of Neuroscience Research. 85 (15), 3334-3339 (2007).</li><li>Chaudhuri, A., Behan, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fatigue+in+neurological+disorders.">Fatigue in neurological disorders.</a> The Lancet. 363, 978-988 (2004).</li><li>Baston, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exercise-induced+central+fatigue:+a+review+of+the+literature+with+implications+for+dance+science+research.">Exercise-induced central fatigue: a review of the literature with implications for dance science research.</a> Journal of Dance Medicine &amp; Science. 17 (2), 53-62 (2013).</li><li>Yamashita, M., Yamamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tryptophan+and+Kynurenic+Acid+May+Produce+an+Amplified+Effect+in+Central+Fatigue+Induced+by+Chronic+Sleep+Disorder.">Tryptophan and Kynurenic Acid May Produce an Amplified Effect in Central Fatigue Induced by Chronic Sleep Disorder.</a> International Journal of Tryptophan Research. 7, 9-14 (2014).</li><li>Lee, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+duration+of+one+bout+treadmill+exercise+on+cell+proliferation+and+central+fatigue+in+rats.">The impact of duration of one bout treadmill exercise on cell proliferation and central fatigue in rats.</a> Journal of Exercise Rehabilitation. 9 (5), 463-469 (2013).</li><li>Su, k. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rutin,+a+flavonoid+and+principal+component+of+saussurea+involucrata,+attenuates+physical+fatigue+in+a+forced+swimming+mouse+model.">Rutin, a flavonoid and principal component of saussurea involucrata, attenuates physical fatigue in a forced swimming mouse model.</a> International Journal of Medical Sciences. 11 (5), 528-537 (2014).</li><li>Hashemi, F., Laufer, R., Szegi, P., Csomor, V., Kal &#225;sz, H., Tekes, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HPLC+determination+of+brain+biogenic+amines+following+treatment+with+bispyridinium+aldoxime+K203.">HPLC determination of brain biogenic amines following treatment with bispyridinium aldoxime K203.</a> Acta Physiologica Hungarica. 101 (1), 40-46 (2014).</li><li>Machado, R. B., Hipo'lide, D. C., Benedito-Silva, A. A., Tufik, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep+deprivation+induced+by+the+modified+multiple+platform+technique:+quantification+of+sleep+loss+and+recovery.">Sleep deprivation induced by the modified multiple platform technique: quantification of sleep loss and recovery.</a> Brain Research. 1004 (1-2), 45-51 (2004).</li><li>Alzoubi, K. H., Khabour, O. F., Tashtoush, N. H., AI-Azzam, S. I., Mhaidat, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+the+Effect+of+Pentoxifylline+on+Sleep-Deprivation+Induced+Memory+Impairment.">Evaluation of the Effect of Pentoxifylline on Sleep-Deprivation Induced Memory Impairment.</a> Hippocampus. 23 (9), 812-819 (2013).</li><li>Pires, G. N., Tufik, S., Andersen, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Grooming+analysis+algorithm:+Use+in+the+relationship+between+sleep+deprivation+and+anxiety-like+behavior.">Grooming analysis algorithm: Use in the relationship between sleep deprivation and anxiety-like behavior.</a> Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 41, 6-10 (2013).</li><li>Yamashita, M., Yamamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+rat+model+of+central+fatigue+induced+by+chronic+sleep+disorder+and+excessive+brain+tryptophan.">Establishment of a rat model of central fatigue induced by chronic sleep disorder and excessive brain tryptophan.</a> Japanese Journal of Cognitive Neuroscience. 15, 67-74 (2013).</li><li>Arai, M., Yamazaki, M., Inoue, K., Fushiki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+intracranial+injection+of+transforming+growth+factor-beta+relevant+to+central+fatigue+on+the+waking+electroencephalogram+of+rats+Comparison+with+effects+of+exercise.">Effects of intracranial injection of transforming growth factor-beta relevant to central fatigue on the waking electroencephalogram of rats Comparison with effects of exercise.</a> Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 26 (2), 307-312 (2002).</li><li>Han, C. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+behavioral+and+brain+changes+after+different+durations+of+the+modified+multiple+platform+method+on+rats:+An+animal+model+of+central+fatigue.">Distinct behavioral and brain changes after different durations of the modified multiple platform method on rats: An animal model of central fatigue.</a> PloS One. 12 (5), e0176850 (2017).</li><li>Tang, X., Yang, L., Sanford, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Individual+variation+in+sleep+and+motor+activity+in+rats.">Individual variation in sleep and motor activity in rats.</a> Behavioural Brain Research. 180 (1), 62-68 (2007).</li><li>Stanford, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Open+Field+Test:+reinventing+the+wheel.">The Open Field Test: reinventing the wheel.</a> Journal of Psychopharmacology. 21 (2), 134-135 (2007).</li><li>Ahn, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basal+anxiety+during+an+open+field+test+is+correlated+with+individual+differences+in+contextually+conditioned+fear+in+mice.">Basal anxiety during an open field test is correlated with individual differences in contextually conditioned fear in mice.</a> Animal Cells and Systems. 17 (3), 154 (2013).</li><li>Costa, A. A., Morato, S., Roque, A. C., Tin &#243;s, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+computational+model+for+exploratory+activity+of+rats+with+different+anxiety+levels+in+elevated+plus-maze.">A computational model for exploratory activity of rats with different anxiety levels in elevated plus-maze.</a> Journal of Neuroscience Methods. 236, 44-50 (2014).</li><li>Liu, Z., Wu, Y., Liu, T., Li, R., Xie, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serotonin+regulation+in+a+rat+model+of+exercise-induced+chronic+fatigue.">Serotonin regulation in a rat model of exercise-induced chronic fatigue.</a> Neuroscience. 349, 27-34 (2017).</li><li>Foley, T. E., Fleshner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroplasticity+of+dopamine+circuits+after+exercise:+implications+for+central+fatigue.">Neuroplasticity of dopamine circuits after exercise: implications for central fatigue.</a> NeuroMolecular Medicine. 10 (2), 67-80 (2008).</li><li>Leite, L. H., Rodrigues, A. G., Soares, D. D., Marubayashi, U., Coimbra, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+fatigue+induced+by+losartan+involves+brain+serotonin+and+dopamine+content.">Central fatigue induced by losartan involves brain serotonin and dopamine content.</a> Medicine &amp; Science in Sports &amp; Exercise. 42 (8), 1469-1476 (2010).</li></ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Die MMPM ist ursprünglich für Schlaf Entzug9. Ratten sind in einen Wassertank mit Plattformen auf der Unterseite fest ins Leben gerufen. Angetrieben durch die instinktive Angst vor dem Wasser, Ratten auf den Plattformen stehen bleiben und keinen Schlaf auftritt. Die Studie zeigt, dass verschiedene Stunden Schlafentzug zu verschiedenen Veränderungen der Ratte Verhalten und Stimmung, einschließlich Anerkennung Beeinträchtigung10, negative Emotionen11</s...

Müdigkeit ist einer der wichtigsten Faktoren, die die menschliche Gesundheit1bedrohen. In den vergangenen Jahrzehnten haben verschiedene Untersuchungen bewiesen, dass die Ermüdung peripher ausgelöst, sondern zentral gesteuert und immer begleitet mit emotionaler und kognitiver Störungen ist. Italienischer Physiologe A. Mosso schlug zuerst das Wort zentrale Ermüdung2. Es wird allgemein als begrenzte ehrenamtliche Tätigkeit und Kognition Beeinträchtigung durch Dysfunktion des Impuls-Übertragung in das zentrale Nervensystem (ZNS)3definiert. Verglichen mit peripheren Muskelermüdung, betont die zentrale Ermüdung Veränderungen im ZNS, als auch die daraus resultierende emotionale/Verhaltensstörungen, einschließlich Depression, Angst, Beeinträchtigung der Kognition und Gedächtnisverlust. Eine Studie zeigt, dass viele Faktoren zentrale Müdigkeit hervorrufen können, unter denen übermäßige körperliche Aktivität und psychischen Stress ganz unverzichtbar4sind. Für die Pathogenese erklären Theorien wie die Tryptophan-Kynurenin Weg Hypothese5 Änderungen in bestimmte Bahnen; Weitere vertiefende Studien sind jedoch immer noch erforderlich, die zentral-periphere Zusammenhänge der zentralen Ermüdung zu offenbaren.
Da der zugrunde liegende Mechanismus der zentralen Ermüdung noch unklar ist, ist ein effektives Tiermodell sehr wichtig für die weitere Forschung. Die vorhandene Müdigkeit-Modelle sind meist durch übermäßige Bewegung, wie Laufbänder6 und Gewicht Beladen Schwimmen7, mit wenig Sorge auf psychische Faktoren induziert. Um die Entwicklung der zentralen Ermüdung besser zu simulieren, hat unsere Gruppe einem Rattenmodell mit der MMPM entwickelt. Während des Modellierungsprozesses bleiben Ratten für lange Stunden, einschließlich eines Teils der Schlafzeit auf den schmalen Plattformen im Feld mehrere Plattform stehen. Anders als übermäßige Bewegung Modelle, verwendet das MMPM Modell partiellen Schlafentzug als ein geistiger Faktor unter Berücksichtigung der komplexen Pathogenese der zentralen Ermüdung.
Für Modellevaluierung verwenden wir die Tests OFT und EPM, um Angst Stimmung und ehrenamtliche Tätigkeit zu bestimmen. Der ES-Test wird durchgeführt, um die peripheren Muskelleistung messen. Darüber hinaus wir nehmen die Ratte Gehirn und Dopamin (DA) zu erkennen / Serotonin (5-HT) Inhalt in beiden Hypothalamuses, die zentrale Neurotransmitter Unterschiede zu beobachten.
Die unten dargestellte Protokoll soll Modell zentrale Ermüdung induziert durch wiederholte körperliche Aktivität und Mangel an Schlaf, imitiert eine häufige Erkrankung im menschlichen Leben. Jedoch kann durch Anpassung der Modell-Dauer, es in vielen anderen Bereichen, wie im Schlaf Beobachtung und Stress-Studien verwendet werden. In Zukunft Forschung, hoffen wir, dass dieses Modell mehr CNS Änderungen und deren Verbindung mit dem peripheren System hilft, um den Mechanismus der Pathogenese der zentralen Ermüdung zu offenbaren zu entdecken.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>multiple platform sleep deprivation water tank</td>
			<td>Customization,it is provided by the neuroimmunological laboratory of Beijing University of Chinese Medicine</td>
			<td></td>
			<td>110cm x 60cm x 40cm. There are 15 plastic small platforms at the bottom. The small platform is 6.5cm in diameter and 8cm high</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wistar rats</td>
			<td>Beijing Weitong Lihua Experimental Animal Technology Company</td>
			<td>license number SYXK (Beijing) 2016-0011</td>
			<td>Use 32 Wistar healthy male rats ,8 week old (200-210 g)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Agilent 1100LC high performance liquid chromatograph&#160;</td>
			<td>Agilent</td>
			<td>&#160;G1379A, G1311A, G1313A , G1316A&#160;</td>
			<td>&#160;G1379A, G1311A type chromatographic pump, G1313A automatic sampler, G1316A column temperature box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DECADE II SDC electrochemical detector</td>
			<td>Dutch ANTEC company</td>
			<td></td>
			<td>glassy carbon electrode, Ag/AgCl reference electrode, workstations (Clarity CHS)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biofuge Stratos high-speed refrigeration centrifuge</td>
			<td>HERAEUS</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VCX130 ultrasonic fracturing instrument</td>
			<td>SONICS</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACS-ZEAS electronic scale</td>
			<td>Phos technology development, Beijing.</td>
			<td></td>
			<td>The weight of the weighing rats can be accurate to 0.1g.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Open Field Box</td>
			<td>Customization,it is provided by the neuroimmunological laboratory of Beijing University of Chinese Medicine</td>
			<td></td>
			<td>wooden box of open field&#160; 100 cm by 100 cm x 40 cm, inside wall and bottom as the gray.The bottom is divided into 25 equal area squares, each of which is 20cm x 20cm, and the 16 grids along the outer wall are the external ones, and the other 9 grids are central.The camera is mounted above the median.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Elevated Plus-maze</td>
			<td>Beijing zhongshi dechuang technology development co. LTD.</td>
			<td></td>
			<td>The open arms and close&#160; arms of the cross are composed of 30cm x 5cm x 15cm, and the central area is 5cm x 5cm, with a camera mounted above the center and 45cm high.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>rat swimming bucket.</td>
			<td>Zhenhua biological instrument equipment co., LTD. Anhui,China.</td>
			<td></td>
			<td>The volume of plastic drum is 70cm x 30cm x 110cm, which is used for swimming in rats.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermometer</td>
			<td>Shiya instrument co., LTD., changzhou,China.</td>
			<td></td>
			<td>Control water temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small water pump</td>
			<td>Xincheng technology co., LTD., chengdu,China.</td>
			<td></td>
			<td>Used for water tank and swimming behavior.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethovition3.0 behavioral software.</td>
			<td>Nuldus,Netherlands</td>
			<td></td>
			<td>Measurement analysis of rat behavior videos.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a rat model of central fatigue using a modified multiple platform method

In diesem Artikel vorgestellt wir einem Rattenmodell der zentralen Ermüdung unter Verwendung der modifizierten mehrere Plattform Methode (MMPM). Feld mehrere Plattform wurde als ein Wassertank mit engen Plattformen auf der Unterseite entworfen. Die Modell-Ratten wurden in den Tank setzen und Stand auf den Plattformen für 14 h (18:00-08:00) pro Tag für 21 Tage, mit einer leeren Kontrollgruppe für Kontrast gesetzt. Am Ende der Modellierung zeigten Ratten in der Modellgruppe ein offensichtlich müde aussehen. Um das Modell zu beurteilen, haben wir mehrere Verhaltens Tests durchgeführt, einschließlich das Freiland testen (OFT), die erhöhte plus Labyrinth (EPM)-Test und die erschöpfende Schwimmtest (ES). Die Ergebnisse zeigten, dass Angst, raumkognition Beeinträchtigung, Armen Muskelleistung und abgelehnte Freiwilligentätigkeit im Modell Ratten präsentiert die Diagnose der zentralen Ermüdung zu bestätigen. Änderungen der zentralen Neurotransmitter überprüft auch das Ergebnis. Abschließend das Modell erfolgreich simuliert zentrale Ermüdung und Zukunftsstudie mit dem Modell kann helfen, den Pathomechanismus der Krankheit zeigen.

Wir beschreiben einem Rattenmodell der zentralen Ermüdung mit MMPM. 24 Wistar-Ratten sind zufällig in der Kontrollgruppe und der Modellgruppe mit 12 Ratten in den einzelnen Gruppen unterteilt. Das Modell Gerät dient als ein Wassertank mit engen Plattformen auf der Unterseite (Abbildung 1). Modell Ratten stehen auf den Plattformen für 14 h pro Tag, inklusive teilweise Schlafzeit, für 21 Tage (Abbildung 2).
<p class="jove_...

Watch this Scientific Journal Video about A Rat Model of Central Fatigue Using a Modified Multiple Platform Method at JoVE.com

A Rat Model of Central Fatigue Using a Modified Multiple Platform Method

Hier präsentieren wir ein Protokoll, um einem Rattenmodell der zentralen Ermüdung unter Verwendung der modifizierten vorstellen mehrere Plattform Methode (MMPM).

Eine Ratte Modell der zentralen Ermüdung mit einem modifizierten mehrere Plattform-Methode

In this article, we introduced a rat model of central fatigue using the modified multiple platform method (MMPM). The Multiple Platform box was designed ...

a-rat-model-central-fatigue-using-modified-multiple-platform

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.9K Aufrufe.  Beijing University of Chinese Medicine. Hier präsentieren wir ein Protokoll, um einem Rattenmodell der zentralen Ermüdung unter Verwendung der modifizierten vorstellen mehrere Plattform Methode (MMPM).

Serie: A Rat Model of Central Fatigue Using a Modified Multiple Platform Method

Application of a NMDA Receptor Conductance in Rat Midbrain Dopaminergic Neurons Using the Dynamic Clamp Technique

Neuroscientists study the function of the brain by investigating how neurons in the brain communicate. Many investigators look at changes in the electrical activity of one or more neurons in response to an experimentally-controlled input. The electrical activity of neurons can be recorded in isolated brain slices using patch clamp techniques with glass micropipettes. Traditionally, experimenters can mimic neuronal input by direct injection of current through the pipette, electrical stimulation of the other cells or remaining axonal connections in the slice, or pharmacological manipulation by receptors located on the neuronal membrane of the recorded cell.
Direct current injection has the advantages of passing a predetermined current waveform with high temporal precision at the site of the recording (usually the soma). However, it does not change the resistance of the neuronal membrane as no ion channels are physically opened. Current injection usually employs rectangular pulses and thus does not model the kinetics of ion channels. Finally, current injection cannot mimic the chemical changes in the cell that occurs with the opening of ion channels.
Receptors can be physically activated by electrical or pharmacological stimulation. The experimenter has good temporal precision of receptor activation with electrical stimulation of the slice. However, there is limited spatial precision of receptor activation and the exact nature of what is activated upon stimulation is unknown. This latter problem can be partially alleviated by specific pharmacological agents. Unfortunately, the time course of activation of pharmacological agents is typically slow and the spatial precision of inputs onto the recorded cell is unknown.
The dynamic clamp technique allows an experimenter to change the current passed directly into the cell based on real-time feedback of the membrane potential of the cell (Robinson and Kawai 1993, Sharp et al., 1993a,b; for review, see Prinz et al. 2004). This allows an experimenter to mimic the electrical changes that occur at the site of the recording in response to activation of a receptor. Real-time changes in applied current are determined by a mathematical equation implemented in hardware.
We have recently used the dynamic clamp technique to investigate the generation of bursts of action potentials by phasic activation of NMDA receptors in dopaminergic neurons of the substantia nigra pars compacta (Deister et al., 2009; Lobb et al., 2010). In this video, we demonstrate the procedures needed to apply a NMDA receptor conductance into a dopaminergic neuron.

In this video, we demonstrate how to apply a conductance into a dopaminergic neuron recorded in the whole cell configuration in rat brain slices. This technique is called the dynamic clamp.

Die Anwendung eines NMDA-Rezeptor-Leitwert in Rat Mittelhirn dopaminergen Neuronen Mit der Dynamic-Clamp-Technik

Neuroscientists study the function of the brain by investigating how neurons in the brain communicate. Many investigators look at changes in the ...

Forschung

Neurowissenschaften

Regioselective Biolistic Targeting in Organotypic Brain Slices Using a Modified Gene Gun

Transfection of DNA has been invaluable for biological sciences and with recent advances to organotypic brain slice preparations, the effect of various heterologous genes could thus be investigated easily while maintaining many aspects of in vivo biology. There has been increasing interest to transfect terminally differentiated neurons for which conventional transfection methods have been fraught with difficulties such as low yields and significant losses in viability. Biolistic transfection can circumvent many of these difficulties yet only recently has this technique been modified so that it is amenable for use in mammalian tissues.
New modifications to the accelerator chamber have enhanced the gene gun&#39;s firing accuracy and increased its depths of penetration while also allowing the use of lower gas pressure (50 psi) without loss of transfection efficiency as well as permitting a focused regioselective spread of the particles to within 3 mm. In addition, this technique is straight forward and faster to perform than tedious microinjections. Both transient and stable expression are possible with nanoparticle bombardment where episomal expression can be detected within 24 hr and the cell survival was shown to be better than, or at least equal to, conventional methods. This technique has however one crucial advantage: it permits the transfection to be localized within a single restrained radius thus enabling the user to anatomically isolate the heterologous gene&#39;s effects. Here we present an in-depth protocol to prepare viable adult organotypic slices and submit them to regioselective transfection using an improved gene gun.

Recent improvements in organotypic brain slice preparations have permitted their exploitation for biotechnological applications. Organotypic slices maintain local structural characteristics of in vivo biology, including functional synaptic connections. Here we present a regioselective biolistic delivery method to label and genetically manipulate these slices.

Regioselektive Biolistic Targeting in Organotypische Hirnschnitten mit modifizierter Gene Gun

Transfection of DNA has been invaluable for biological sciences and with recent advances to organotypic brain slice preparations, the effect of various ...

A Method of Nodose Ganglia Injection in Sprague-Dawley Rat

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located in the organs of the abdomen and thorax. The vagus nerve communicates information from stimuli such as heart rate, blood pressure, bronchopulmonary irritation, and gastrointestinal distension to the nucleus of solitary tract of the medulla. The cell bodies of the vagus nerve are located in the nodose and petrosal ganglia, of which the majority are located in the former. The nodose ganglia contain a wealth of receptors for amino acids, monoamines, neuropeptides, and other neurochemicals that can modify afferent vagus nerve activity. Modifying vagal afferents through systemic peripheral drug treatments targeted at the receptors on nodose ganglia has the potential of treating diseases such as sleep apnea, gastroesophageal reflux disease, or chronic cough. The protocol here describes a method of injection neurochemicals directly into the nodose ganglion. Injecting neurochemicals directly into the nodose ganglia allows study of effects solely on cell bodies that modulate afferent nerve activity, and prevents the complication of involving the central nervous system as seen in systemic neurochemical treatment. Using readily available and inexpensive equipment, intranodose ganglia injections are easily done in anesthetized Sprague-Dawley rats.

Afferent vagal signaling transmits important information to central nervous system from receptors located in organs of the abdomen and thorax. The nodose ganglia of vagus nerves contain many types of receptors that modulate vagal activity. This protocol describes a method of local injections of neurochemicals into the nodose ganglia.

Eine Methode der Ganglien nodosum Injection in Sprague-Dawley-Ratte

Afferent signaling via the vagus nerve transmits important general visceral information to the central nervous system from many diverse receptors located ...

Fabrication of High Contact-Density, Flat-Interface Nerve Electrodes for Recording and Stimulation Applications

Many attempts have been made to manufacture multi-contact nerve cuff electrodes that are safe, robust and reliable for long term neuroprosthetic applications. This protocol describes a fabrication technique of a modified cylindrical nerve cuff electrode to meet these criteria. Minimum computer-aided design and manufacturing (CAD and CAM) skills are necessary to consistently produce cuffs with high precision (contact placement 0.51 &#177; 0.04 mm) and various cuff sizes. The precision in spatially distributing the contacts and the ability to retain a predefined geometry accomplished with this design are two criteria essential to optimize the cuff&#39;s interface for selective recording and stimulation. The presented design also maximizes the flexibility in the longitudinal direction while maintaining sufficient rigidity in the transverse direction to reshape the nerve by using materials with different elasticities. The expansion of the cuff&#39;s cross sectional area as a result of increasing the pressure inside the cuff was observed to be 25% at 67 mm Hg. This test demonstrates the flexibility of the cuff and its response to nerve swelling post-implant. The stability of the contacts&#39; interface and recording quality were also examined with contacts&#39; impedance and signal-to-noise ratio metrics from a chronically implanted cuff (7.5 months), and observed to be 2.55 &#177; 0.25 k&#8486; and 5.10 &#177; 0.81 dB respectively.

This article provides a detailed description on the fabrication process of a high contact-density flat interface nerve electrode (FINE). This electrode is optimized for recording and stimulating neural activity selectively within peripheral nerves.

Die Herstellung von High-Kontakt-Dichte, Flach-Interface Nerve Elektroden für die Aufnahme und Stimulation Anwendungen

Many attempts have been made to manufacture multi-contact nerve cuff electrodes that are safe, robust and reliable for long term neuroprosthetic ...

Dynamic Quantitative Sensory Testing to Characterize Central Pain Processing

Central facilitation and modulation of incoming nociceptive signals play an important role in the perception of pain. Disruption in central pain processing is present in many chronic pain conditions and can influence responses to specific therapies. Thus, the ability to precisely describe the state of central pain processing has profound clinical significance in both prognosis and prediction. Because it is not practical to record neuronal firings directly in the human spinal cord, surrogate behavior tests become an important tool to assess the state of central pain processing. Dynamic QST is one such test, and can probe both the ascending facilitation and descending modulation of incoming nociceptive signals via TS and CPM, respectively. Due to the large between-individual variability in the sensitivity to noxious signals, standardized TS and CPM tests may not yield any meaningful data in up to 50% of the population due to floor or ceiling effects. We present methodologies to individualize TS and CPM so we can capture these measures in a broader range of individuals than previously possible. We have used these methods successfully in several studies at the lab, and data from one ongoing study will be presented to demonstrate feasibility and potential applications of the methods.

By assessing pain in response to repetitive or different types of standardized stimuli, dynamic quantitative sensory testing (QST) can reveal changes in the central processing of pain. We present methods to optimize and individualize two dynamic QST measures: temporal summation (TS) and conditioned pain modulation (CPM).

Dynamische Quantitative Sensory Testing zu Charakterisieren zentralen Schmerzverarbeitung

Central facilitation and modulation of incoming nociceptive signals play an important role in the perception of pain. Disruption in central pain ...

Measuring Progressive Neurological Disability in a Mouse Model of Multiple Sclerosis

After intracerebral infection with the Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus (TMEV), susceptible SJL mice develop a chronic-progressive demyelinating disease, with clinical features similar to the progressive forms of multiple sclerosis (MS). The mice show progressive disability with loss of motor and sensory functions, which can be assessed with multiple apparatuses and protocols. Among them, the Rotarod performance test is a very common behavioral test, its advantage being that it provides objective measurements, but it is often used assuming that it is straightforward and simple. In contrast to visual scoring systems used in some models of MS, which are highly subjective, the Rotarod test generates an objective, measurable, continuous variable (i.e., length of time), allowing almost perfect inter-rater concordances. However, inter-laboratory reliability is only achieved if the various testing parameters are replicated. In this manuscript, recommendations of specific testing parameters, such as size, speed, and acceleration of the rod; amount of training given to the animals; and data processing, are presented for the Rotarod test.

An optimized testing protocol is presented in this paper for the Rotarod performance test, used for measuring progressive neurological disability in TMEV-infected mice.

Mess Progressive neurologische Behinderungen in einem Mausmodell der Multiplen Sklerose

After intracerebral infection with the Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus (TMEV), susceptible SJL mice develop a chronic-progressive demyelinating ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor determining patient outcome and is therefore frequently taken as a study endpoint. However, in small animal studies on SAH, quantification of cerebral vasospasm is a major challenge. Here, an ex vivo method is presented that allows quantification of volumes of entire vessel segments, which can be used as an objective measure to quantify cerebral vasospasm. In a first step, endovascular casting of the cerebral vasculature is performed using a radiopaque casting agent. Then, cross-sectional imaging data are acquired by micro computed tomography. The final step involves 3-dimensional reconstruction of the virtual vascular tree, followed by an algorithm to calculate center lines and volumes of the selected vessel segments. The method resulted in a highly accurate virtual reconstruction of the cerebrovascular tree shown by a diameter-based comparison of anatomical samples with their virtual reconstructions. Compared with vessel diameters alone, the vessel volumes highlight the differences between vasospastic and non-vasospastic vessels shown in a series of SAH and sham-operated mice.

The goal of this article is to present a method that allows a 3-dimensional reconstruction of the cerebrovascular tree in mice after micro computed tomography and determination of volumes of entire vessel segments that can be used to quantify cerebral vasospasm in murine models of subarachnoid hemorrhage.

Eine Volumetrische Methode zur Quantifizierung der zerebralen Vasospasmus in einem Mausmodell der Subarachnoidalblutung

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

Direct Injection of a Lentiviral Vector Highlights Multiple Motor Pathways in the Rat Spinal Cord

Introducing proteins of interest into cells in the nervous system is challenging due to innate biological barriers that limit access to most molecules. Injection directly into spinal cord tissue bypasses these barriers, providing access to cell bodies or synapses where molecules can be incorporated. Combining viral vector technology with this method allows for introduction of target genes into nervous tissue for the purpose of gene therapy or tract tracing. Here a virus engineered for highly efficient retrograde transport (HiRet) is introduced at the synapses of propriospinal interneurons (PNs) to encourage specific transport to neurons in the spinal cord and brainstem nuclei. Targeting PNs takes advantage of the numerous connections they receive from motor pathways such as the rubrospinal and reticulospinal tracts, as well as their interconnection with each other throughout spinal cord segments. Representative tracing using the HiRet vector with constitutively active green fluorescent protein (GFP) shows high fidelity details of cell bodies, axons and dendritic arbors in thoracic PNs and in reticulospinal neurons in the pontine reticular formation. HiRet incorporates well into brainstem pathways and PNs but shows age dependent integration into corticospinal tract neurons. In summary, spinal cord injection using viral vectors is a suitable method for introduction of proteins of interest into neurons of targeted tracts.

This protocol demonstrates injection of a retrogradely transportable viral vector into rat spinal cord tissue. The vector is taken up at the synapse and transported to the cell body of target neurons. This model is suitable for retrograde tracing of important spinal pathways or targeting cells for gene therapy applications.

Direkter Einspritzung von Lentivirale Vektor zeigt mehrere motorische Bahnen im Rückenmark Ratte

Introducing proteins of interest into cells in the nervous system is challenging due to innate biological barriers that limit access to most molecules. ...

Dissection and Isolation of Murine Glia from Multiple Central Nervous System Regions

The methods presented here demonstrate laboratory procedures for the dissection of four different regions of the central nervous system (CNS) from murine neonates for the isolation of glial subpopulations. The purpose of the procedure is to dissociate microglia, oligodendrocyte progenitor cells (OPCs), and astrocytes from cortical, cerebellar, brainstem, and spinal cord tissue to facilitate further in vitro analysis. The CNS region isolation procedures allow for the determination of regional heterogeneity among glia in multiple cell culture systems. Rapid CNS region isolation is performed, followed by the mechanical removal of meninges to prevent meningeal cell contamination of glia. This protocol combines gentle tissue dissociation and plating on a specified matrix designed to preserve cell integrity and adherence. Isolating mixed glia from multiple CNS regions provides a comprehensive analysis of potentially heterogenous glia while maximizing the use of individual experimental animals. Additionally, following dissociation of regional tissue, mixed glia are further divided into multiple cell types including microglia, OPCs, and astrocytes for use in either single cell type, cell culture plate inserts, or co-culture systems. Overall, the demonstrated techniques provide a comprehensive protocol of broad applicability for careful dissection of four individual CNS regions from murine neonates and includes methods for the isolation of three individual glia cell types to examine regional heterogeneity in any number of in vitro cell culture systems or assays.

Here we present a protocol for in vitro isolation of multiple glial cell populations from a mouse CNS. This method allows for the segregation of regional microglia, oligodendrocyte precursor cells, and astrocytes to study the phenotypes of each in a variety of culture systems.

Dissektion und Isolierung von murinen Glia aus mehreren Regionen des zentralen Nervensystems

The methods presented here demonstrate laboratory procedures for the dissection of four different regions of the central nervous system (CNS) from murine ...

A Hydrophobic Tissue Clearing Method for Rat Brain Tissue

Hydrophobic tissue clearing methods are easily adjustable, fast, and low-cost procedures that allows for the study of a molecule of interest in unaltered tissue samples. Traditional immunolabeling procedures require cutting the sample into thin sections, which restricts the ability to label and examine intact structures. However, if brain tissue can remain intact during processing, structures and circuits can remain intact for the analysis. Previously established clearing methods take significant time to completely clear the tissue, and the harsh chemicals can often damage sensitive antibodies. The iDISCO method quickly and completely clears tissue, is compatible with many antibodies, and requires no special lab equipment. This technique was initially validated for the use in mice tissue, but the current protocol adapts this method to image hemispheres of control and transgenic rat brains. In addition to this, the present protocol also makes several adjustments to preexisting protocol to provide clearer images with less background staining. Antibodies for Iba-1 and tyrosine hydroxylase were validated in the HIV-1 transgenic rat and in F344/N control rats using the present hydrophobic tissue clearing method. The brain is an interwoven network, where structures work together more often than separately of one another. Analyzing the brain as a whole system as opposed to a combination of individual pieces is the greatest benefit of this whole brain clearing method.

Here we present a hydrophobic tissue clearing method that allows for the viewing of target molecules as part of intact brain structures. This technique has now been validated for F344/N control and HIV-1 transgenic rats of both sexes.

Eine hydrophobe Gewebereinigungsmethode für Rattenhirngewebe

Hydrophobic tissue clearing methods are easily adjustable, fast, and low-cost procedures that allows for the study of a molecule of interest in unaltered ...