Para empezar, utilice un bisturí para diseccionar el tejido del corazón humano fijado con paraformaldehído al 4% y hacerlo dentro de la cámara para la microscopía confocal. Deshidratar las muestras de corazón en una serie de metanol graduada durante una hora cada una a temperatura ambiente con agitación, seguida de inmersión durante la noche en una solución de 66% de diclorometano y 33% de metanol con agitación. Al día siguiente, blanquear la muestra realizando los pasos indicados.
A continuación, rehidratar la muestra con una serie de metanol graduada durante una hora cada una con agitación. Después del inmunomarcaje, realice los siguientes pasos para preparar el tejido para la obtención de imágenes. Coloque una cámara que contenga adhesivo en un portaobjetos y aplique esmalte de uñas alrededor del perímetro de la cámara.
Encienda el microscopio confocal de barrido láser vertical equipado con una lente 5X. Utilizando líneas láser apropiadas para los espectros de emisión de los fluoróforos utilizados, adquiera imágenes de escaneo de mosaico y apilamiento z a una resolución de 1024 por 1024. A nivel micromicro, la limpieza de tejido de las muestras cardíacas permite la visualización de los ganglios que contienen neuronas cardíacas y el patrón neural de la inervación miocárdica.