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L’extrait translationnel de Leishmania (LTE) est un système d’expression de protéines eucaryotes libres dérivé du parasite unicellulaire, Leishmania tarentolae. Ce protocole optimisé rend la fabrication du LTE simple et rentable. Il convient à diverses applications axées sur l’expression multiparallèle et l’étude de protéines eucaryotes complexes et de leurs interactions.
Ce protocole décrit la production et l’optimisation d’un système d’expression de protéines acellulaires (CFPS) eucaryote dérivé du flagellé unicellulaire Leishmania tarentolae, appelé extrait translationnel de Leishmania ou LTE. Bien que cet organisme ait évolué à l’origine comme parasite des geckos, il peut être cultivé facilement et à moindre coût dans des flacons ou des bioréacteurs. Contrairement à Leishmania major, il n’est pas pathogène pour l’homme et ne nécessite pas de précautions particulières en laboratoire. Un autre avantage de l’utilisation de Leishmania pour le CFPS est que l’ajout d’un seul oligonucléotide antisens au CFPS, ciblant une séquence leader d’épissage conservée à l’extrémité 5' de tous les ARN codant pour des protéines, peut supprimer l’expression des protéines endogènes. Nous fournissons des procédures pour la rupture cellulaire et le traitement des lysats, qui ont été simplifiées et améliorées par rapport aux versions précédentes. Ces procédures commencent par de simples cultures en flacons. De plus, nous expliquons comment introduire de l’information génétique à l’aide de vecteurs contenant des sites d’initiation de traduction indépendants de l’espèce (SITS) et comment effectuer une optimisation simple des lots et un contrôle de la qualité pour assurer une qualité d’expression protéique constante.
Dans les années 1960, les systèmes d’expression des protéines acellulaires ont joué un rôle central dans la découverte du code génétique1. Cependant, les systèmes d’expression de protéines procaryotes libres de cellules, principalement basés sur E. coli, dominent actuellement les applications de laboratoire et commerciales. Bien que les systèmes à base d’E. coli offrent des avantages tels que la rentabilité, l’évolutivité et des rendements d’expression élevés, ils sont confrontés à des défis lorsqu’ils produisent des protéines multidomaines dans leurs formes actives et facilitent l’assemblage ....
Ce protocole comprend des recettes et des étapes détaillées qui impliquent la culture, la centrifugation, la mesure de la fluorescence GFP à l’aide d’un lecteur de plaques multimode, la mesure de la DO de culture600 nm et l’évaluation du lysat Abs280 nm. Il couvre également la configuration et l’imagerie des gels protéiques SDS-PAGE. Les matériaux requis ou suggérés pour ce protocole sont répertoriés dans la feuille de calcul des matériaux. Il est important de noter que les ressources de laboratoire typiques telles que les composants de milieux, les centrifugeuses, les tubes, les spectrophotomètres et les configu....
Le but de l’expression des protéines acellulaires est de produire des protéines de pleine longueur sous une forme active repliée adaptée à un large éventail d’applications. L’extrait de LTE (Leishmania tarentolae ) a déjà été comparé à d’autres systèmes d’expression acellulaire procaryotes et eucaryotes, démontrant une grande capacité à éviter la troncature et l’agrégation lorsqu’il fonctionne de manière optimale, en particulier par rapport à l?.......
Des protocoles de création de LTE ont été publiés au cours de la dernière décennie7 et ont fait l’objet de mises à jour périodiques25,34. Cependant, les nouveaux venus dans la technique rencontrent souvent une courbe d’apprentissage abrupte, ce qui entraîne des retards dans l’obtention d’une expression protéique de haute qualité et à haut rendement. Des défis similaires ont été signa.......
Il n’y a pas d’intérêts financiers concurrents.
Les auteurs souhaitent remercier les nombreux membres du laboratoire Alexandrov qui ont contribué au développement des systèmes LTE au cours des 10 dernières années, en particulier Sergey Mureev qui a été le pionnier du système et a développé le site d’entrée des ribosomes SITS. La figure 1 a été créée par Biorender.com et reproduite sous licence.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
PD-10 SuperDex 25 Columns | Cytiva | 17085101 | Gel filtration columns |
Nitrogen Cavitation cell disrupter | Parr Industries | 4635 or 4639 | Cell Disrupter |
Bovine derived Hemin | Sigma-Aldrich | H5533 | Culture additive |
Penicillin/Streptomycin 10000U/ml | Thermo-Fisher | 15140122 | Antibiotic mix |
Optiplate 384 | Perkin-Elmer | 6007290 | Multiwell plate for 10ul expressions |
Oligonucleotide | IDT synthesis | Oligo with sequence CAATAAAGTACAGAAACTGATAC TTATATAGCGTT | |
Creatine Phosphokinase | Sigma-Aldrich | 9001-15-4 | Enzyme |
Tecan Spark | Tecan | or similar Multimode Platereader | |
Chemidoc MP Imager | Biorad | or similar SDS-PAGE gel Imager | |
4-12% Bis-Tris Gels | Invitrogen | NW04125 | SDS-PAGE gels |
Biophotometer | Eppendorf | or similar Cuvette Specrophotometer | |
Nanodrop One | Thermofisher | Nanodrop spectrophotometer | |
Avanti JXN-26 centrifuge | Beckman Coulter | or similar centrifuge, with rotors/tubes rated 10K and 50K g | |
5424R microcentrifuge | Eppendorf | or similar microcentrifuge, with 1.5ml microcentrifuge tubes | |
Flask Incubator Inova S44i | Eppendorf | or similar flask incubator shaker suitable for 5L Flasks | |
5L glass culture flasks | Baffled glass flasks for culture growth | ||
Bactotryptone | BD | 211705 | Growth medium |
Yeast Extract | Merck | VM930053 | Growth medium |
Glycerol | Any analytical grade | ||
Glucose | Any analytical grade | ||
KH2PO4 | Any analytical grade | ||
K2HPO4 | Any analytical grade | ||
UltraPure water | Invitrogen | 10977-015 | Or output from any MilliQ-type water dispenser |
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