Subventions NINDS NS49720 et NS65819, et NCI octroi CA97257

1. Préparation des cellules tumorales. Cellules pour xénogreffes de tumeurs humaines du cerveau peuvent être générés à partir de tumeurs propagées comme des excroissances sous-cutanée chez des souris athymiques, ou à partir de culture cellulaire. L&#39;utilisation des deux sources de cellules est discutée ci-dessous, avec la démonstration d&#39;une méthode d&#39;implantation des cellules. Pour préparer les cellules de tumeurs sous-cutanées pour le transfert vers le compartiment intracrânienne, tumeurs flanc excisées sont placés dans des boîtes de culture, où le tissu est d&#39;abord haché avec un scalpel puis mécaniquement perturbées par pipetage répétitifs pour créer une suspension totale des cellules 1. La suspension totale de cellules est ensuite passée à travers une maille de nylon filtre 70 uM pour produire une suspension cellulaire unique approprié pour l&#39;injection intracrânienne. La suspension cellulaire est centrifugée à 1000 rpm pendant 10 minutes à 4 ° C, et le surnageant aspiré avant la remise en suspension du culot cellulaire dans un volume approprié de milieu sans sérum pour obtenir une concentration de travail finale (voir ci-dessous). Pour la préparation de lignées cellulaires établies pour l&#39;implantation intracrânienne, les cellules sont récoltées par trypsinisation monocouches, ou par une collecte des cultures en suspension Neurosphère, puis centrifugation et remise en suspension des cellules, comme indiqué ci-dessus 2. Le nombre de cellules injectées est la variable dépendante sur l&#39;emplacement de l&#39;injection neuroanatomiques. Pour les injections nous avons l&#39;habitude d&#39;injecter supratentorielle 3-5 x 10 5 cellules dans 3 ul de milieu sans sérum (DMEM), tandis que pour les injections de 3 tronc cérébral, aussi peu que 5 x 10 4 cellules sont injectées dans 0,5 ul. L&#39;injection de volumes plus importants que ceux recommandés peut entraîner le reflux des cellules tumorales dans le tractus aiguille, avec exophytiques résultante (figure 1), plutôt que la croissance des tumeurs intracrâniennes. Après le retrait de l&#39;échantillon pour l&#39;injection intracrânienne, la suspension de cellules restantes devraient être placés dans la glace, avec des contenus mixtes fréquemment pour maintenir la concentration appropriée tout en complétant l&#39;établissement tumeur intracrânienne parmi les membres d&#39;une série d&#39;injection. 2. L&#39;implantation des cellules tumorales Remarque, toutes les procédures décrites ci-dessous ont été examinés et approuvés par l&#39;utilisation des animaux et du Comité institutionnel de soins à l&#39;Université de Californie à San Francisco. <ol><li> La zone chirurgicale doit être préparé par pulvérisation toutes les surfaces avec un désinfectant, comme solution de chlorhexidine à 2%. Après l&#39;utilisation du désinfectant, du matériel suivant doit être placé dans la zone chirurgicale: <ul><li> Coussin chauffant pour maintenir la température du corps de la souris </li><li> Deux petites boîtes de Pétri, l&#39;un contenant du peroxyde d&#39;hydrogène à 3%, et un contenant de la chlorhexidine à 2% </li><li> Tampons de gaze stérile et le coton </li><li> Stérile scalpels jetables </li><li> Autoclavés agrafeuse chirurgicale </li></ul></li><li> Pour l&#39;anesthésie une anesthésie injectée doit être utilisée; typiquement un mélange kétamine-xylazine. </li><li> Une fois que la souris est anesthésiée, le cuir chevelu est préparé par écouvillonnage à plusieurs reprises avec un morceau de gaze stérile trempée dans la solution de chlorhexidine. Pommade ophtalmique doit être appliqué pour maintenir une humidité adéquate pendant la procédure. Avec un scalpel stérile, remplir une incision sagittale sur l&#39;os pariéto-occipitale, environ 1 cm de long. La surface du crâne exposée est ensuite nettoyé avec un coton-tige trempé dans une solution de peroxyde d&#39;hydrogène à 3%. Le bregma devrait être évident à ce stade (voir vidéo). </li><li> Les coordonnées pour l&#39;injection de cellules tumorales varient selon l&#39;endroit désiré pour l&#39;établissement des tumeurs. Ce qui suit représente la procédure que nous utilisons pour l&#39;établissement des tumeurs intracérébrales 2 dans un endroit neuroanatomiques au cours de laquelle de nombreux patients atteints de tumeurs cérébrales expérience dans le développement tumoral. Autres lieux d&#39;intérêt dans la recherche comprennent la tumeur au cerveau Pons, pour la modélisation anatomique du tronc cérébral des tumeurs 3, et les injections sous-dural pour la modélisation de la localisation des tumeurs méningées 4. Avant l&#39;injection de cellules tumorales, utiliser une aiguille de calibre 25 stériles pointu pour perforer le crâne à 2 mm à la droite du bregma et 1 mm en avant de la suture coronale, créant ainsi une ouverture pour l&#39;injection de cellules tumorales (voir vidéo). Cette procédure fonctionne bien pour les souris et les rats (22 aiguille de la jauge pour les rats). </li><li> Avant de dessiner des cellules dans la seringue, mélanger le contenu de la suspension cellulaire en tapotant avec le doigt. Charger la seringue avec la quantité désirée de cellules en suspension, en prenant soin d&#39;éviter de créer des bulles d&#39;air. L&#39;extérieur de la seringue doit ensuite être nettoyé avec une compresse imbibée d&#39;alcool pour nettoyer l&#39;extérieur sans aucun cellules adhérentes, ce qui aidera à prévenir les tumeurs extracrâniennes création et la croissance (figure 1A). Afin de s&#39;assurer que la profondeur d&#39;injection approprié est atteint, utiliser un scalpel pour couper 3mm de l&#39;extrémité pointue d&#39;une pointe de P20 pipetteman. Cette section de la pointe peut être monté sur la seringue et agira pour limiter la profondeur d&#39;injection, et sera en outre s&#39;assurer que les tip de l&#39;aiguille de la seringue est de 3 mm de la face inférieure du crâne. Placez la seringue perpendiculairement au crâne et dans le trou créé précédemment, et injecter lentement la suspension de cellules (une suspension 3μL doit être injecté sur une période de 1 minute). Un angle d&#39;insertion inappropriée seringue peut conduire à une injection intraventriculaire de cellules et de la diffusion ultérieure vertébrale (Fig. 1B: Droit) Après avoir terminé l&#39;injection, laissez l&#39;aiguille en place pendant une minute, puis retirer lentement (voir vidéo): ces mesures contribueront à réduire le reflux des cellules tumorales. </li><li> Comme une alternative à l&#39;approche sans assistance ou main libre pour l&#39;implantation des cellules tumorales intracrâniennes 5, on peut utiliser un cadre stéréotaxique pour petits animaux (F panel d&#39;aperçu schématique), qui favorise généralement l&#39;emplacement d&#39;injection plus cohérent, mais au détriment de quantités importantes de le temps de procédure. Dans notre expérience, deux membres du personnel chirurgical peut injecter jusqu&#39;à 60 souris / heure lors de l&#39;utilisation de l&#39;approche main-libre, alors que le taux d&#39;injection maximal avec un cadre stéréotaxique petit animal est d&#39;environ 15 souris / heure. L&#39;opportunisme de procédure est une considération importante lors de l&#39;injection de grandes séries de souris, et aide à réduire le délai dans lequel les cellules tumorales, à injecter, sont laissés sur la glace. </li><li> Nettoyer le crâne avec du peroxyde d&#39;hydrogène à 3% et sec à l&#39;aide d&#39;un écouvillon de coton stérile sec. Appliquez la cire d&#39;os stérile pour le trou. En utilisant une pince, tirer sur le cuir chevelu ainsi que sur le crâne et l&#39;agrafer à fermer. Pour une cicatrisation optimale, le cuir chevelu doit être agrafé avec le derme de chaque côté du crâne les uns contre les autres (face contre face). Le cuir chevelu agrafés doivent être nettoyés en utilisant une solution de chlorhexidine, et la buprénorphine alors administrée par injection sous-cutanée pour soulager la douleur post-opératoire. </li><li> Surveiller toutes les souris post-opératoire jusqu&#39;à ce qu&#39;ils deviennent ambulants et de conserver une activité normale. Typiquement, le temps de récupération est d&#39;environ 30 minutes. </li></ol> 3. Surveillance bioluminescence de la croissance tumorale <ol><li> Contexte. L&#39;imagerie par bioluminescence (BLI) est basé sur l&#39;oxydation de la luciférine [D-(-) -2 - (60-hydroxy-20-benzothiazolyle)-thiazone-4-carboxylique] en présence d&#39;oxygène et de l&#39;adénosine triphosphate (ATP). Cette réaction est catalysée par l&#39;enzyme luciférase, qui convertit l&#39;énergie chimique en photons avec une émission résultante de la lumière. Les cellules humaines peuvent être modifiées pour exprimer la luciférase (voir ci-dessous), avec seulement luciférase exprimant des cellules capables d&#39;émettre de la lumière, en présence du substrat luciférine. Il ya de luminescence de fond minimal à partir d&#39;animaux traités avec des hôtes luciférine, tel qu&#39;il ya une très favorable signal-bruit pour détecter les émissions de luminescence de luciférase modifiée cellules tumorales, permettant un suivi très sensible de la croissance tumorale et la réponse au traitement in vivo. Par ailleurs, la luciférase et de son substrat, la luciférine, se sont avérés être non toxique pour les cellules de mammifères, et nous n&#39;avons pas observé de différences fonctionnelles entre les cellules exprimant la luciférase relatives aux cellules non modifiées correspondantes. Luciférine traverse facilement les membranes cellulaires et la barrière hémato-encéphalique après administration intrapéritonéale (ip) ou intraveineuse (iv) l&#39;injection chez la souris, permettant ainsi à l&#39;imagerie de chaque compartiment qui contient la luciférase cellules modifiées. Le niveau d&#39;émission de photons et le spectre de la lumière émise par la luciférase modifiée cellules est suffisante pour pénétrer les tissus des animaux de recherche de petites, comme les souris et les rats, et peut être détecté à l&#39;extérieur avec des caméras d&#39;imagerie de faible luminosité. Le caractère non invasif de l&#39;imagerie par bioluminescence permet la surveillance répétée de la croissance tumorale et la réponse au traitement chez des sujets animaux individuels. </li><li> Sources de cellules implantées doivent être modifiés de façon stable pour Firefly expression de la luciférase. Ces sources de cellules peuvent être achetés ou produits dans des laboratoires différents utilisant des lentivirus qui ont été construites pour l&#39;expression constitutive de la luciférase. Nous recommandons fortement l&#39;utilisation de cellules modifiées avec des lentivirus encodage luciférase, plutôt que de plasmide, pour assurer la stabilité de l&#39;expression cellulaire de la luciférase in vivo, ce qui est nécessaire pour l&#39;imagerie de luminescence quantitatifs pour fournir une indication précise des changements dans la charge tumorale chez les sujets animaux individuels qui sont reprises imagés au cours d&#39;une expérience. </li><li> Surveillance de BLI. Nous recommandons la réalisation d&#39;imagerie par bioluminescence quantitatives (qBLI) 1x-2x par semaine, en commençant une semaine après l&#39;injection de cellules tumorales. Notre qBLI est réalisé en utilisant l&#39;imagerie IVIS Lumina gare (Caliper Life Sciences), et nos résultats indiquent des données similaires sont obtenus en utilisant la Lumina IVIS, l&#39;IVIS 150, ou la station d&#39;imagerie IVIS 200. En préparation pour l&#39;imagerie, les souris sont simultanément anesthésiés avec kétamine / xylazine et administré luciférine (sel de potassium D-luciférine, 150 mg / kg, Caliper Life Sciences) par injection intrapéritonéale, aux souris imagé 12 minutes après l&#39;injection. La pharmacocinétique de la luciférine indiquent que le temps entre les admitration de la luciférine et la détermination de la luminescence cellule devrait être entre 10-15 minutes après l&#39;injection de luciférine, en vue d&#39;obtenir émission de luminescence maximale et la plus grande sensibilité de détection. La longueur du temps choisi dans l&#39;intervalle de 10-15 minutes de temps doit être maintenue aussi constante parmi les animaux qui sont imagés. Il est extrêmement important de maintenir la cohérence de la durée de temps entre l&#39;injection de luciférine et obtenir des lectures de BLI. Régions d&#39;intérêt englobant la région intracrânienne du signal sont définies en utilisant le logiciel image vivante (figure 2), et le photons/s/sr/cm2 total (photons par seconde et par stéradian par centimètre carré) sont enregistrées (voir vidéo). </li><li> L&#39;analyse des données. Alors que la croissance tumorale et la réponse thérapeutique sont surveillés chez des animaux individuels, nous recommandons fortement les groupes de traitement d&#39;au moins 8 pour augmenter la certitude statistique de conclusions concernant la réponse tumorale, ou son absence, à la thérapie. En ce qui concerne la présentation des résultats qBLI, des lectures de luminescence sont converties en valeurs normalisées en divisant la luminescence chaque souris s, obtenue pendant et après la réalisation de schéma thérapeutique, avec sa luminescence prétraitement correspondant maximale de lecture 6,7. Pour une analyse de survie, l&#39;estimateur de Kaplan-Meier 8 est utilisé, et dont les courbes de survie sont générées, et les valeurs de survie médiane déterminée. Différences entre les courbes de survie sont comparées en utilisant un test du log-rank 9. </li><li> Récupération du cerveau pour une analyse ultérieure de la tumeur traitée et non traitée. Sur l&#39;euthanasie des animaux, le cerveau de la souris doit être rapidement excisée (voir vidéo), et soit placé dans le formol pour analyse ultérieure de la morphologie de la tumeur et l&#39;immunohistochimie, ou devrait être monté dans un PTOM, pour la congélation des échantillons. </li></ol> 4. Les résultats représentatifs Dans l&#39;exemple illustré à la figure 3A, les souris recevant intracrânienne injection de cellules tumorales ont été suivis pour la luminescence intracrânienne jusqu&#39;en valeurs successives de luminescence moyenne indiquée croissance tumorale progressive, et à laquelle une thérapie de temps a été lancé (début flèche grise au jour 34: l&#39;erlotinib administré quotidiennement à 150 mg / kg jusqu&#39;à l&#39;euthanasie obligatoire). Les valeurs de luminescence pour chaque souris est fixé à une valeur normalisée de 1 au moment de l&#39;instauration du traitement, avec des lectures ultérieures de luminescence pour chaque souris normalisée à sa valeur pré-traitement d&#39;imagerie finale. À titre d&#39;exemple, une souris avec une lecture de luminescence de pré-traitement final de 2,0 x 10 7 photons / sec à 34 jours, dont la luminescence était passé à 6,0 x 10 7 photons / sec à 38 jours, aurait un jour 38 la valeur de luminescence normalisées de 3,0. Moyenne normalisée de bioluminescence et correspondant d&#39;erreur standard pour le contrôle et les groupes de traitement sont tracées pour chaque point de l&#39;imagerie en temps. Dans cet exemple, une différence significative dans la luminescence moyenne normalisée est évident au point de l&#39;imagerie en temps une première récidive à l&#39;initiation du traitement (jour 38), à la différence de la luminescence moyenne du groupe montrant augmenter encore à des temps ultérieurs. Dans la plupart des cas, activité anti-tumorale de la thérapie, comme indiqué par qBLI, est accompagné par une différence significative de survie correspondantes (ie, p &lt;0,05), comme c&#39;est le cas ici (figure 3B). Panneaux 3C et 3D montrent adjacentes hématoxyline &amp; éosine et anti-EGFR coupes colorées de cerveau de souris obtenues au moment de l&#39;euthanasie, après le placement du cerveau réséqué dans de la paraffine-enrobage formol et ultérieures pour la coupe. <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig1.jpg" alt="Figure 1" /> Figure 1. Indications d&#39;erreurs d&#39;injection intracrânienne. Une croissance) exophytique tumeur (extracrâniennes) (cercle rouge) peut être causée par un trop grand volume d&#39;injection, suspension cellulaire résiduelle fixée à la seringue, ou de retirer la seringue trop rapidement après l&#39;injection des cellules tumorales. B) injecter des cellules tumorales dans les ventricules peuvent causer la diffusion d&#39;une tumeur vertébrale (souris vers la droite), contrairement à bien injecté des cellules tumorales, le signal pour qui reste localisée au site d&#39;injection (souris vers la gauche). <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig2.jpg" alt="Figure 2" /> Figure 2. Représentations chaleur carte-image de l&#39;intensité de bioluminescence pour les souris représentant de contrôle (à gauche) et traitement (droite) des groupes d&#39;une expérience de la réponse thérapeutique. Le logiciel Image habitable peut être réglé afin de définir des régions d&#39;intérêt (cercles rouges), ou les opérateurs instrument peut définir des régions d&#39;intérêt manuellement. Pour utiliser des images comme celles-ci pour la construction de la figure, nous recommandons que l&#39;opérateur de l&#39;instrument montre des images carte de la chaleur en utilisant la gamme de bioluminescence même carte de chaleur (partie supérieure de la figure), pour fournir une représentation visuelle de l&#39;étendue de la différence entre les sujets de bioluminescence des animaux. <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig3.jpg" alt = &quot;Figure 3&quot; /&gt; Figure 3. Bioluminescence, la survie et l&#39;analyse des tissus tumoraux à partir d&#39;une expérience dans laquelle la réponse thérapeutique est évidente. A Plot) des lectures bioluminescence signifie pour le contrôle et la souris du groupe de traitement, avec une erreur standard indiqué pour chaque point de l&#39;imagerie. B) parcelle de survie pour les mêmes souris, p-valeur déterminée par l&#39;utilisation du log-rank test 7. C) l&#39;article H &amp; E tachés de cerveau de souris ayant une tumeur. D) L&#39;EGFR section tachés. E et F) des grossissements de zones indiquées par des panneaux C et D, respectivement, avec E panneau montrant une coloration négative protéine suppresseur de tumeur PTEN.

<ol>
	<li>Giannini, C., Sarkaria, J. N., Saito, A., Uhm, J. H., Galanis, E., Carlson, B. L., Schroeder, M. A., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patient+Tumor+EGFR+and+PDGFRA+Gene+Amplifications+Retained+in+an+Invasive+Intracranial+Xenograft+Model+of+GBM.">Patient Tumor EGFR and PDGFRA Gene Amplifications Retained in an Invasive Intracranial Xenograft Model of GBM.</a> Neuro-Oncol. 7, 164-176 (2005).</li><li>Ozawa, T., Wang, J., Hu, L. J., Bollen, A. W., Lamborn, K. R., Deen, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Growth+of+human+glioblastomas+as+xenografts+in+the+brains+of+athymic+rats.">Growth of human glioblastomas as xenografts in the brains of athymic rats.</a> In Vivo. 1, 55-60 (2002).</li><li>Hashizume, R., Ozawa, T., Dinca, E. B., Banerjee, A., Prados, M. D., James, C. D., Gupta, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+human+brainstem+glioma+xenograft+model+enabled+for+bioluminescence+imaging.">A human brainstem glioma xenograft model enabled for bioluminescence imaging.</a> J Neurooncol. , (2009).</li><li>Baia, G. S., Dinca, E. B., Ozawa, T., Kimura, E. T., McDermott, M. W., James, C. D., VandenBerg, S. R., Lal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+orthotopic+skull+base+model+of+malignant+meningioma.">An orthotopic skull base model of malignant meningioma.</a> Brain Pathol. 2, 172-179 (2007).</li><li>Ozawa, T., James, C. D., Van Meir, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+Brain+Tumor+Cell+and+Tumor+Tissue+Transplantation+Models.">Human Brain Tumor Cell and Tumor Tissue Transplantation Models.</a> CNS Cancer: Models, Markers, Prognostic Factors, Targets, and Therapeutic Approaches. , 147-162 (2009).</li><li>Sarkaria, J. N., Yang, L., Grogan, P. T., Kitange, G. J., Carlson, B. L., Schroeder, M. A., Galanis, E., Giannini, C., Wu, W., Dinca, E. B., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Molecular+Characteristics+Correlated+with+Glioblastoma+Sensitivity+to+EGFR+Kinase+Inhibition+Through+Use+of+an+Intracranial+Xenograft+Test+Panel.">Identification of Molecular Characteristics Correlated with Glioblastoma Sensitivity to EGFR Kinase Inhibition Through Use of an Intracranial Xenograft Test Panel.</a> Mol. Cancer Ther. 6, 1167-1174 (2007).</li><li>Dinca, E. B., Sarkaria, J. N., Schroeder, M. A., Carlson, B. L., Voicu, R., Gupta, N., Berger, M. S., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioluminescence+Monitoring+of+Intracranial+Glioblastoma+Xenograft+Response+to+Primary+and+Salvage+Temozolomide+Therapy.">Bioluminescence Monitoring of Intracranial Glioblastoma Xenograft Response to Primary and Salvage Temozolomide Therapy.</a> J. Neurosurg. 107, 610-616 (2007).</li><li>Kaplan, E. L., Meier, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-parametric+estimation+from+incomplete+observations.">Non-parametric estimation from incomplete observations.</a> J. Am. Stat. Assoc. 53, 457-481 (1958).</li><li>Peto, R., Peto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asymptotically+efficient+rank+invariant+procedures.">Asymptotically efficient rank invariant procedures.</a> J. R. Stat. Soc. Ser. A. Stat. Soc. 135, 185-207 (1972).</li><li>Camphausen, K., Purow, B., Sproull, M., Scott, T., Ozawa, T., Deen, D. F., Tofilon, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+in+vivo+growth+on+human+glioma+cell+line+gene+expression:+convergent+profiles+under+orthotopic+conditions.">Influence of in vivo growth on human glioma cell line gene expression: convergent profiles under orthotopic conditions.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.. 102, 8287-8292 (2005).</li></ol>

Orthotopique (intracrâniens) l&#39;établissement de xénogreffes de tumeurs cérébrales offre un microenvironnement approprié 10 pour la modélisation du cancer du SNC pour être testés pour la réponse thérapeutique. Ce type de modélisation fournit également des informations concernant l&#39;accès thérapeutiques au cerveau et tumeur au cerveau, ce qui est extrêmement important de déterminer si un agent expérimental devrait être avancée à l&#39;évaluation des essais cliniques chez les patients. Parce que la quantité de tumeur intracrânienne xénogreffe ne peut pas être mesurée directement, comme par des étriers, un suivi longitudinal de la croissance tumorale intracrânienne et la réponse au traitement nécessite l&#39;imagerie non invasive, l&#39;imagerie par bioluminescence avec nos expériences indiquant que l&#39;approche la plus pratique pour des expériences dont l&#39;objectif principal consiste à évaluer l&#39;étendue de la réponse tumorale au traitement. Lorsque les résultats de l&#39;imagerie par bioluminescence sont combinés avec une analyse de survie animal en question, les deux ensembles de données fournissent une approche puissante et fiable pour évaluer l&#39;efficacité thérapeutique expérimentale. Enfin, il est extrêmement important que intracrânienne xénogreffes tumorales du cerveau sont récoltées à partir de sujets animaux euthanasiés afin d&#39;évaluer les effets morphologiques et moléculaires de la thérapie, et pour ce que nous préférons une résection ensemble du cerveau au moment de l&#39;euthanasie, avec la préservation du cerveau réséqué pour une analyse ultérieure. Considérant que la présentation qui précède a été faite spécifiques à la recherche de tumeurs cérébrales, les concepts ne sont certainement généralisables à d&#39;autres cancers humains qui se prêtent à la modélisation orthotopique chez les rongeurs.

<table border="1">
	<thead>
		<tr>
			<th>Material Name</th>
			<th>Type</th>
			<th>Company</th>
			<th>Catalogue Number</th>
			<th>Comment</th>
		</tr>
	</thead>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Disposable Scapels</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Feather</td>
			<td>2975</td>
			<td>No.21</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Pad</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Dunlap</td>
			<td>HP950</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22028563</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton Swabs</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>23-400-100</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% Chlorhexidine</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>NC9756995</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3% Hydrogen Peroxide</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>H312P-4</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25g Needle</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305122</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10ul Hamilton Sharp Microsyringe</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>20734</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Skin Stapler and Staples</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td>59020</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic Frame</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Stoeling</td>
			<td>51725</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Image Software</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Caliper Life Science</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-luciferin</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Gold Biotechnology</td>
			<td>LUCK-1G</td>
			<td>Potassium Salt</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xenogen Lumina</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Caliper Life Science</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishing intracranial brain tumor xenografts with subsequent analysis of tumor growth and response to therapy using bioluminescence imaging

Transplantation des modèles utilisant des cellules tumorales humaines du cerveau ont servi une fonction essentielle dans la neuro-oncologie de recherche depuis de nombreuses années. Dans le passé, la procédure la plus couramment utilisée pour l&#39;établissement de xénogreffes de tumeurs humaines se composait de la collection de cellules provenant de flacons de culture, suivie par l&#39;injection sous-cutanée des cellules recueillies dans des souris immunodéprimées. Considérant que cette approche voit encore un usage fréquent dans de nombreux laboratoires, il ya eu un changement important dans l&#39;accent au cours de la dernière décennie vers l&#39;établissement de xénogreffes orthotopique, ce qui, dans le cas de tumeurs cérébrales, nécessite l&#39;injection de cellules tumorales dans des structures appropriées neuroanatomiques. Parce que l&#39;établissement de xénogreffes intracrânienne élimine la possibilité de surveiller la croissance tumorale par mesure directe, comme par l&#39;utilisation d&#39;étriers, la réorientation vers des modèles de xénogreffes de tumeurs cérébrales orthotopique a nécessité l&#39;utilisation de l&#39;imagerie non invasive pour évaluer la charge tumorale chez les animaux hôtes. Parmi les méthodes d&#39;imagerie actuellement disponibles, la surveillance est généralement considéré comme la bioluminescence pour offrir la meilleure combinaison de sensibilité, de l&#39;opportunisme, et le coût. Ici, nous allons démontrer les procédures de création de tumeur cérébrale orthotopique, et pour le suivi la croissance tumorale et la réponse au traitement lors du test de thérapies expérimentales.

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Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging

Luciférase modifiée xénogreffes de tumeurs humaines du cerveau peut être établie par voie intracrânienne chez des souris athymiques, avec un suivi ultérieur de la croissance tumorale et la réponse au traitement en utilisant l&#39;imagerie par bioluminescence. En combinaison avec une analyse de survie, de surveillance bioluminescence est un outil de recherche indispensable pour les essais pré-cliniques de thérapies envisagées pour le traitement des tumeurs cérébrales.

Établir intracrânienne xénogreffes tumorales du cerveau avec analyse ultérieure de la croissance tumorale et la réponse à la thérapie à l&#39;aide d&#39;imagerie par bioluminescence

Transplantation models using human brain tumor cells have served an essential function in neuro-oncology research for many years. In the past, the most ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

39.0K vues.  University of California, San Francisco - UCSF. Luciférase modifiée xénogreffes de tumeurs humaines du cerveau peut être établie par voie intracrânienne chez des souris athymiques, avec un suivi ultérieur de la croissance tumorale et la réponse au traitement en utilisant l'imagerie par bioluminescence. En combinaison avec une analyse de survie, de surveillance bioluminescence est un outil de recherche indispensable pour les essais pré-cliniques de thérapies envisagées pour le traitement des tumeurs cér?...

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Brain Imaging Investigation of the Impairing Effect of Emotion on Cognition

Emotions can impact cognition by exerting both enhancing (e.g., better memory for emotional events) and impairing (e.g., increased emotional distractibility) effects (reviewed in 1). Complementing our recent protocol 2 describing a method that allows investigation of the neural correlates of the memory-enhancing effect of emotion (see also 1, 3-5), here we present a protocol that allows investigation of the neural correlates of the detrimental impact of emotion on cognition. The main feature of this method is that it allows identification of reciprocal modulations between activity in a ventral neural system, involved in 'hot' emotion processing (HotEmo system), and a dorsal system, involved in higher-level 'cold' cognitive/executive processing (ColdEx system), which are linked to cognitive performance and to individual variations in behavior (reviewed in 1). Since its initial introduction 6, this design has proven particularly versatile and influential in the elucidation of various aspects concerning the neural correlates of the detrimental impact of emotional distraction on cognition, with a focus on working memory (WM), and of coping with such distraction 7,11, in both healthy 8-11 and clinical participants 12-14.

We present a protocol that allows investigation of the neural mechanisms mediating the detrimental impact of emotion on cognition, using functional magnetic resonance imaging. This protocol can be used with both healthy and clinical participants.

Investigation d&#39;imagerie cérébrale de l&#39;effet de nuire à l&#39;émotion sur la cognition

Emotions can impact cognition by exerting both enhancing (e.g., better memory for emotional events) and impairing (e.g., increased emotional ...

Recherche

Neurosciences

Enabling High Grayscale Resolution Displays and Accurate Response Time Measurements on Conventional Computers

Display systems based on conventional computer graphics cards are capable of generating images with 8-bit gray level resolution. However, most experiments in vision research require displays with more than 12 bits of luminance resolution. Several solutions are available. Bit++ 1 and DataPixx 2 use the Digital Visual Interface (DVI) output from graphics cards and high resolution (14 or 16-bit) digital-to-analog converters to drive analog display devices. The VideoSwitcher 3 described here combines analog video signals from the red and blue channels of graphics cards with different weights using a passive resister network 4 and an active circuit to deliver identical video signals to the three channels of color monitors. The method provides an inexpensive way to enable high-resolution monochromatic displays using conventional graphics cards and analog monitors. It can also provide trigger signals that can be used to mark stimulus onsets, making it easy to synchronize visual displays with physiological recordings or response time measurements.
Although computer keyboards and mice are frequently used in measuring response times (RT), the accuracy of these measurements is quite low. The RTbox is a specialized hardware and software solution for accurate RT measurements. Connected to the host computer through a USB connection, the driver of the RTbox is compatible with all conventional operating systems. It uses a microprocessor and high-resolution clock to record the identities and timing of button events, which are buffered until the host computer retrieves them. The recorded button events are not affected by potential timing uncertainties or biases associated with data transmission and processing in the host computer. The asynchronous storage greatly simplifies the design of user programs. Several methods are available to synchronize the clocks of the RTbox and the host computer. The RTbox can also receive external triggers and be used to measure RT with respect to external events. 
Both VideoSwitcher and RTbox are available for users to purchase. The relevant information and many demonstration programs can be found at <a href="http://lobes.usc.edu/">http://lobes.usc.edu/</a>.

Conventional computer hardware can not generate visual stimuli with sufficiently high grayscale resolution and measure response times with sufficient accuracy. We describe how to use the VideoSwitcher to produce high-resolution monochromatic displays, and the RTbox to measure response times with high accuracy on conventional computer hardware.

Activation des niveaux de gris écrans haute résolution et s&#39;assurer de mesures précises de temps de réponse sur les ordinateurs classiques

Display systems based on conventional computer graphics cards are capable of generating images with 8-bit gray level resolution. However, most experiments ...

Isolation and Expansion of Human Glioblastoma Multiforme Tumor Cells Using the Neurosphere Assay

Stem-like cells have been isolated in tumors such as breast, lung, colon, prostate and brain. A critical issue in all these tumors, especially in glioblastoma mutliforme (GBM), is to identify and isolate tumor initiating cell population(s) to investigate their role in tumor formation, progression, and recurrence. Understanding tumor initiating cell populations will provide clues to finding effective therapeutic approaches for these tumors. The neurosphere assay (NSA) due to its simplicity and reproducibility has been used as the method of choice for isolation and propagation of many of this tumor cells. This protocol demonstrates the neurosphere culture method to isolate and expand stem-like cells in surgically resected human GBM tumor tissue. The procedures include an initial chemical digestion and mechanical dissociation of tumor tissue, and subsequently plating the resulting single cell suspension in NSA culture. After 7-10 days, primary neurospheres of 150-200 &mu;m in diameter can be observed and are ready for further passaging and expansion.

This video protocol demonstrates the isolation and expansion of stem like cells from surgically resected human glioblastoma mutliforme (GBM) tumor tissue using the neurosphere assay culture method.

L&#39;isolement et l&#39;expansion des cellules humaines de glioblastome multiforme tumeur utilisant le test Neurosphère

Stem-like cells have been isolated in tumors such as breast, lung, colon, prostate and brain. A critical issue in all these tumors, especially in ...

Co-analysis of Brain Structure and Function using fMRI and Diffusion-weighted Imaging

The study of complex computational systems is facilitated by network maps, such as circuit diagrams. Such mapping is particularly informative when studying the brain, as the functional role that a brain area fulfills may be largely defined by its connections to other brain areas. In this report, we describe a novel, non-invasive approach for relating brain structure and function using magnetic resonance imaging (MRI). This approach, a combination of structural imaging of long-range fiber connections and functional imaging data, is illustrated in two distinct cognitive domains, visual attention and face perception. Structural imaging is performed with diffusion-weighted imaging (DWI) and fiber tractography, which track the diffusion of water molecules along white-matter fiber tracts in the brain (Figure 1). By visualizing these fiber tracts, we are able to investigate the long-range connective architecture of the brain. The results compare favorably with one of the most widely-used techniques in DWI, diffusion tensor imaging (DTI). DTI is unable to resolve complex configurations of fiber tracts, limiting its utility for constructing detailed, anatomically-informed models of brain function. In contrast, our analyses reproduce known neuroanatomy with precision and accuracy. This advantage is partly due to data acquisition procedures: while many DTI protocols measure diffusion in a small number of directions (e.g., 6 or 12), we employ a diffusion spectrum imaging (DSI)1, 2 protocol which assesses diffusion in 257 directions and at a range of magnetic gradient strengths. Moreover, DSI data allow us to use more sophisticated methods for reconstructing acquired data. In two experiments (visual attention and face perception), tractography reveals that co-active areas of the human brain are anatomically connected, supporting extant hypotheses that they form functional networks. DWI allows us to create a "circuit diagram" and reproduce it on an individual-subject basis, for the purpose of monitoring task-relevant brain activity in networks of interest.

We describe a novel approach for simultaneous analysis of brain function and structure using magnetic resonance imaging (MRI). We assess brain structure with high-resolution diffusion-weighted imaging and white-matter fiber tractography. Unlike standard structural MRI, these techniques allow us to directly relate anatomical connectivity to functional properties of brain networks.

Co-analyse de la structure du cerveau et son fonctionnement en utilisant l&#39;IRMf et imagerie de diffusion

The study of complex computational systems is facilitated by network maps, such as circuit diagrams. Such mapping is particularly informative when ...

Lineage-reprogramming of Pericyte-derived Cells of the Adult Human Brain into Induced Neurons

Direct lineage-reprogramming of non-neuronal cells into induced neurons (iNs) may provide insights into the molecular mechanisms underlying neurogenesis and enable new strategies for in vitro modeling or repairing the diseased brain. Identifying brain-resident non-neuronal cell types amenable to direct conversion into iNs might allow for launching such an approach in situ, i.e. within the damaged brain tissue. Here we describe a protocol developed in the attempt of identifying cells derived from the adult human brain that fulfill this premise. This protocol involves: (1) the culturing of human cells from the cerebral cortex obtained from adult human brain biopsies; (2) the in vitro expansion (approximately requiring 2-4 weeks) and characterization of the culture by immunocytochemistry and flow cytometry; (3) the enrichment by fluorescence-activated cell sorting (FACS) using anti-PDGF receptor-&#946; and anti-CD146 antibodies; (4) the retrovirus-mediated transduction with the neurogenic transcription factors sox2 and ascl1; (5) and finally the characterization of the resultant pericyte-derived induced neurons (PdiNs) by immunocytochemistry (14 days to 8 weeks following retroviral transduction). At this stage, iNs can be probed for their electrical properties by patch-clamp recording. This protocol provides a highly reproducible procedure for the in vitro lineage conversion of brain-resident pericytes into functional human iNs.

Targeting brain-resident cells for direct lineage-reprogramming offers new perspectives for brain repair. Here we describe a protocol of how to prepare cultures enriched for brain-resident pericytes from the adult human cerebral cortex and convert these into induced neurons by retrovirus-mediated expression of the transcription factors Sox2 and Ascl1.

Lineage reprogrammation de cellules pericyte dérivés du cerveau humain adulte en neurones induits

Direct lineage-reprogramming of non-neuronal cells into induced neurons (iNs) may provide insights into the molecular mechanisms underlying neurogenesis ...

Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons

Susceptibility to neuron cell death associated to neurodegeneration and ischemia are exceedingly increased in the aged brain but mechanisms responsible are badly known. Excitotoxicity, a process believed to contribute to neuron damage induced by both insults, is mediated by activation of glutamate receptors that promotes Ca2+ influx and mitochondrial Ca2+ overload. A substantial change in intracellular Ca2+ homeostasis or remodeling of intracellular Ca2+ homeostasis may favor neuron damage in old neurons. For investigating Ca2+ remodeling in aging we have used live cell imaging in long-term cultures of rat hippocampal neurons that resemble in some aspects aged neurons in vivo. For this end, hippocampal cells are, in first place, freshly dispersed from new born rat hippocampi and plated on poli-D-lysine coated, glass coverslips. Then cultures are kept in controlled media for several days or several weeks for investigating young and old neurons, respectively. Second, cultured neurons are loaded with fura2 and subjected to measurements of cytosolic Ca2+ concentration using digital fluorescence ratio imaging. Third, cultured neurons are transfected with plasmids expressing a tandem of low-affinity aequorin and GFP targeted to mitochondria. After 24 hr, aequorin inside cells is reconstituted with coelenterazine and neurons are subjected to bioluminescence imaging for monitoring of mitochondrial Ca2+ concentration. This three-step procedure allows the monitoring of cytosolic and mitochondrial Ca2+ responses to relevant stimuli as for example the glutamate receptor agonist NMDA and compare whether these and other responses are influenced by aging. This procedure may yield new insights as to how aging influence cytosolic and mitochondrial Ca2+ responses to selected stimuli as well as the testing of selected drugs aimed at preventing neuron cell death in age-related diseases.

Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons

Intracellular Ca2+ remodeling in aging may contribute to excitotoxicity and neuron damage, processes mediated by Ca2+ overload. We aimed at investigating Ca2+ remodeling in the aging brain using fluorescence and bioluminescence imaging of cytosolic and mitochondrial Ca2+ in long-term cultures of rat hippocampal neurons, a model of neuronal aging.

Fluorescence et bioluminescence imagerie des Subcellular Ca<sup&gt; 2+</sup&gt; In Aged neurones de l&#39;hippocampe

Susceptibility to neuron cell death associated to neurodegeneration and ischemia are exceedingly increased in the aged brain but mechanisms responsible ...

Preparation of Acute Brain Slices Using an Optimized N-Methyl-D-glucamine Protective Recovery Method

This protocol is a practical guide to the N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. Numerous recent studies have validated the utility of this method for enhancing neuronal preservation and overall brain slice viability. The implementation of this technique by early adopters has facilitated detailed investigations into brain function using diverse experimental applications and spanning a wide range of animal ages, brain regions, and cell types. Steps are outlined for carrying out the protective recovery brain slice technique using an optimized NMDG artificial cerebrospinal fluid (aCSF) media formulation and enhanced procedure to reliably obtain healthy brain slices for patch clamp electrophysiology. With this updated approach, a substantial improvement is observed in the speed and reliability of gigaohm seal formation during targeted patch clamp recording experiments while maintaining excellent neuronal preservation, thereby facilitating challenging experimental applications. Representative results are provided from multi-neuron patch clamp recording experiments to assay synaptic connectivity in neocortical brain slices prepared from young adult transgenic mice and mature adult human neurosurgical specimens. Furthermore, the optimized NMDG protective recovery method of brain slicing is compatible with both juvenile and adult animals, thus resolving a limitation of the original methodology. In summary, a single media formulation and brain slicing procedure can be implemented across various species and ages to achieve excellent viability and tissue preservation.

Preparation of Acute Brain Slices Using an Optimized N-Methyl-D-glucamine Protective Recovery Method

This protocol demonstrates the implementation of an optimized N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. A single media formulation is used to reliably obtain healthy brain slices from animals of any age and for diverse experimental applications.

Préparation de tranches de cerveau aiguë en utilisant un optimisé N-méthyl-D-glucamine méthode de recouvrement protecteur

This protocol is a practical guide to the N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. Numerous recent studies have ...

Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, formed by ribosomes, mRNAs, several proteins and non-coding RNAs, represent integrated platforms where translational controls take place. However, while the ribosome has been widely studied, the organization of polysomes is still lacking comprehensive understanding. Thus much effort is required in order to elucidate polysome organization and any novel mechanism of translational control that may be embedded. Atomic force microscopy (AFM) is a type of scanning probe microscopy that allows the acquisition of 3D images at nanoscale resolution. Compared to electron microscopy (EM) techniques, one of the main advantages of AFM is that it can acquire thousands of images both in air and in solution, enabling the sample to be maintained under near physiological conditions without any need for staining and fixing procedures. Here, a detailed protocol for the accurate purification of polysomes from mouse brain and their deposition on mica substrates is described. This protocol enables polysome imaging in air and liquid with AFM and their reconstruction as three-dimensional objects. Complementary to cryo-electron microscopy (cryo-EM), the proposed method can be conveniently used for systematically analyzing polysomes and studying their organization.

While ribosome structure has been extensively characterized, the organization of polysomes is still understudied. To overcome this lack of knowledge, we present here a detailed preparation protocol for accurate imaging of mammalian polysomes by atomic force microscopy (AFM) in air and liquid.

Peering au cerveau polysomes avec Atomic Force Microscopy

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, ...

Kinematic Analysis Using 3D Motion Capture of Drinking Task in People With and Without Upper-extremity Impairments

Kinematic analysis is a powerful method for objective assessment of upper extremity movements in a three-dimensional (3D) space. Three-dimensional motion capture with an optoelectronic camera system is considered as golden standard for kinematic movement analysis and is increasingly used as outcome measure to evaluate the movement performance and quality after an injury or disease involving upper extremity movements. This article describes a standardized protocol for kinematic analysis of drinking task applied in individuals with upper extremity impairments after stroke. The drinking task incorporates reaching, grasping and lifting a cup from a table to take a drink, placing the cup back, and moving the hand back to the edge of the table. The sitting position is standardized to the individual&#39;s body size and the task is performed in a comfortable self-paced speed and compensatory movements are not constrained. The intention is to keep the task natural and close to a real-life situation to improve the ecological validity of the protocol. A 5-camera motion capture system is used to gather 3D coordinate positions from 9 retroreflective markers positioned on anatomical landmarks of the arm, trunk, and face. A simple single marker placement is used to ensure the feasibility of the protocol in clinical settings. Custom-made Matlab software provides automated and fast analyses of movement data. Temporal kinematics of movement time, velocity, peak velocity, time of peak velocity, and smoothness (number of movement units) along with spatial angular kinematics of shoulder and elbow joint as well as trunk movements are calculated. The drinking task is a valid assessment for individuals with moderate and mild upper extremity impairment. The construct, discriminative and concurrent validity along with responsiveness (sensitivity to change) of the kinematic variables obtained from the drinking task have been established.

This protocol describes an objective method to evaluate the movement performance and sensorimotor function of the upper extremity applied to individuals with stroke and healthy controls. A standardized test procedure, kinematic analysis and outcome variables for three-dimensional motion capture of drinking task are provided.

Analyse cinématique 3D Motion Capture de tâche de consommation d’alcool chez les personnes avec et sans handicap de haut-extrémité

Kinematic analysis is a powerful method for objective assessment of upper extremity movements in a three-dimensional (3D) space. Three-dimensional motion ...

Analyzing Neural Activity and Connectivity Using Intracranial EEG Data with SPM Software

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive neuroscience. Intracranial electroencephalography (EEG) can directly record electrical neural activity and has the unique potential to accomplish this goal. Traditionally, averaging analysis has been applied to analyze intracranial EEG data; however, several new techniques are available for depicting neural activity and intra- and inter-regional connectivity. Here, we introduce two analytical protocols we recently applied to analyze intracranial EEG data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency SPM analysis for neural activity and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity. We report our analysis of intracranial EEG data during the observation of faces as representative results. The results revealed that the inferior occipital gyrus (IOG) showed gamma-band activity at very early stages (110 ms) in response to faces, and both the IOG and amygdala showed rapid intra- and inter-regional connectivity using various types of oscillations. These analytical protocols have the potential to identify the neural mechanisms underlying cognitive functions with high spatial and temporal profiles.

We present two analytical protocols that can be used to analyze intracranial electroencephalography data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency statistical parametric mapping analysis for neural activity, and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity.

Analyser l’activité neurale et la connectivité à l’aide des données EEG intracrânienne avec logiciel SPM

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive ...